Для просмотра этого контента требуется подписка на JoVE. Войдите или начните свой бесплатный пробный период.

Методическая статья

Мониторинг в ячейке передачи китовая птичка подобных белков агрегатов в Drosophila Melanogaster

7.7K просмотров

⸱

DOI:

10.3791/56906

⸱

12 марта 2018 г.

 , 
1Department of Biological Sciences, University of the Sciences

В этой статье

Краткое содержание

Накапливая доказательства поддерживает идею о том, что патогенные белка агрегатов, связанные с нейродегенеративных заболеваний спрэд между клеток с китовая птичка подобными свойствами. Здесь мы описываем метод, который позволяет визуализации ячеек для распространения прионы, как агрегатов в организме модель, Drosophila melanogaster.

Аннотация

Агрегации белков является центральным элементом большинства нейродегенеративных заболеваний, включая болезнь Альцгеймера (AD), болезнь Паркинсона (PD), болезни Гентингтона (HD) и боковой амиотрофический склероз (ALS). Белка агрегаты тесно связаны с невропатология в этих заболеваний, хотя точный механизм, по которому аномальным белка агрегации нарушает нормального клеточного гомеостаза не известно. Появляющиеся новые данные оказывать решительную поддержку гипотезу что патогенные агрегатов в AD, PD, HD, и ALS имеют много общего в прионы, которые являются только белок инфекционных агентов, ответственных за трансмиссивные формы губкообразной энцефалопатии. Прионы, шаблонов саморазмножается преобразование изначально сложить версий же белка, вызывая распространения фенотип агрегации. Как прионы и китовая птичка подобных белков в AD, PD, HD и ALS перехода от одной ячейки к другой в настоящее время площадь интенсивных расследований. Здесь описан модель Drosophila melanogaster , которая допускает контроль передачи китовая птичка как, к ячейке мутант гентингтина (НТТ) агрегатов, связанные с HD. Эта модель использует мощные инструменты для манипулирования трансген выражение во многих различных тканях дрозофилы и использует дневно тегами цитоплазматический белок передачи непосредственно доклад китовая птичка как мутант Htt агрегатов. Важно отметить, что подход, который мы описываем здесь может использоваться для выявления новых генов и пути, которые посредником, распространение агрегатов белка между клеток различных типов в естественных условиях. Информация, полученная от этих исследований будет расширяться ограниченное понимание патогенетических механизмов, которые лежат в основе нейродегенеративных заболеваний и выявить новые возможности для терапевтического вмешательства.

Введение

Прионы гипотеза утверждает, что инфекционный агент, ответственный за трансмиссивные формы губкообразной энцефалопатии (например, болезни Крейтцфельда - Якоба в организме человека, почесуха овец, хронической тратить болезни в оленя и лося и «коровьего бешенства», крупного рогатого скота ) исключительно состоит из белка и лишенный нуклеиновые кислоты1. В прионы заболеваний клеточных прионных белков (ОТРC) предполагает не носителями, стабильной складку (ScPrP), высоко бета лист богатые и может самостоятельно распространять путем преобразования и вербовки мономерных PrPC молекул в стабильной амилоид агрегатов. PrPSc агрегатов использовать этот самовоспроизводящихся механизм для распространения между различными клетки в организме и даже отдельных организмов2.

Сворачиванию белков и агрегации также является центральным элементом большинства нейродегенеративных заболеваний (болезни Альцгеймера (AD), болезнь Паркинсона (PD), болезни Гентингтона (HD) и боковой амиотрофический склероз (ALS))3. Создание сборок внутри или загородный cellular агрегированных белка в этих заболеваний тесно связан с цитотоксичность4 и прогрессирует дорожкам воспроизводимость и конкретных заболеваний через мозг за время5, 6. Эти модели распространения предполагают, что патогенные агрегатов, связанные с этими расстройствами китовая птичка как свойства. Решительная поддержка теперь существует для передачи прионы, как агрегатов, связанные с AD, PD, HD и ALS - они распространились от ячейки к ячейке и шаблон конформационные изменения Мономерных форм же белка в ранее силе клетки7, 8.

Большинство исследований, изучения распространения китовая птичка как белка агрегатов до настоящего времени были проведены с использованием модели культуры mammalian клетки, где агрегаты передачи в цитоплазме клеток наивные из внеклеточного пространства или из другой ячейки Цитоплазма9,10,11,12,13,14,15, или путем впрыскивать агрегат содержащих материалов в мозг мыши и мониторинг Совокупный внешний вид вне инъекции сайте16,17,18,19,20,21,22, 23. совсем недавно, трансгенные животные были использованы, чтобы продемонстрировать, что внутриклеточные агрегатов распространилась в другие ячейки в пределах нетронутыми мозги24,25,26,27, 28,29,30. Здесь мы описываем метод для прямой визуализации совокупного передачи между отдельными ячейками в нетронутыми мозга Drosophila melanogaster. Дрозофилы модели HD/Хантингтона (polyQ) заболеваний были впервые разработаны почти два десятилетия назад31,32 и предоставили много неоценимый вклад в патогенетических механизмов, которые лежат в основе этих расстройств 33. HD является унаследованным нейродегенеративных расстройств, вызванных аутосомно-доминантной мутации в ген, кодирующий белок гентингтин (НТТ)34. Эта мутация приводит расширение стрейч polyQ вблизи Htt в N-конечная помимо патогенного порог ~ 37 Глутамины, вызывая белка misfold и совокупных35,36. Одичал тип Htt белки содержащие < 37 Глутамины в этом участке достичь их родной фолд, но может быть наведено в совокупных после прямого физического контакта с Htt совокупных «семян»12,27,37. Мы используем этот homotypic, ядерных агрегации Htt одичал тип как индикация передачи китовая птичка как и цитоплазматических вход мутант Htt агрегатов, происходящих в других ячейках.

Определение механизмов по которой прионы, как агрегатов поездки между клеток может привести к идентификации роман терапевтических целей неизлечимым нейродегенеративных заболеваний. Мы воспользоваться преимуществом быстрого жизненного цикла, простота использования и генетических уступчивость Drosophila melanogaster определение молекулярных механизмов для распространения в ячейке мутант Htt агрегатов. Наши экспериментальные стратегии работают две системы двоичные выражения, в дрозофилы, устоявшихся вверх по течению Gal4-конкретных активации системы последовательности (Gal4-бас)38 и недавно разработанных QF-QUAS системы39. Соединение этих двух независимых систем позволяет ограничить выражение дикого типа и мутантов Htt трансгенов различных клеточных популяций в пределах же лететь40. Используя этот подход, осматриваем китовая птичка как распространение мутант Htt путем наблюдения за перераспределение цитоплазматических одичал тип Htt от состояния обычно диффузного, растворимые агрегированных государству, является прямым следствием физического контакта с предварительно сформированных мутант Htt совокупных «семя». Преобразования одичал тип Htt, мутант Htt может быть подтверждено с помощью биохимические или биофизических методов, которые сообщают белок белковых взаимодействий, таких, как энергия резонансной флуоресценции передачи (ЛАДА)9,27,41 .

Главное мы также можем получить доступ большое количество генетических инструментов у дрозофилы для идентификации генов и/или путей, которые посредником китовая птичка как распространение белка агрегатов. Недавно мы использовали этот подход раскрыть ключевую роль для клеточного рецептора поверхности мусорщика, Draper42,43, в передаче мутант Htt агрегатов от нейрональные аксоны близлежащие фагоцитарной глии в дрозофилы Центральной нервной системы (ЦНС)27. Таким образом генетические и изображений на основе - подход, который мы описываем здесь можно выявить важные основные биологическая информация о болезни соответствующие явления в простой в использовании но мощный модельный организм, дрозофилы.

Доступ ограничен. Войдите в систему или начните пробный период, чтобы просмотреть этот контент.

Протокол

1. муфта Gal4 - и QF-опосредованной Htt трансген выражение у дрозофилы

  1. Собрать и/или создания трансгенных Drosophila melanogaster строк, содержащих ткани конкретных Gal4 или QF «драйверы», а также строки, содержащие одичал тип или мутант Htt трансгенов вниз по течению Gal4-Уан38 или QF-QUAS39. Убедитесь, что белки, которые выражаются от этих трансгенов плавленого флуоресцентные белки или эпитоп тегами для дифференциации дикого типа и мутантов Htt трансген продуктов в том же ходу. Смотрите Рисунок 1.
    Примечание: Мы обычно используем экзона 1 фрагменты человеческих генов Htt27. Однако трансгенных мух вместо могут создаваться выразить больше Htt фрагменты или других генов, при желании.
  2. План генетическая стратегия, таким образом, что дикого типа и мутантов Htt трансгенов будет выражаться в собственный, non перекроя клеточных популяций.
    1. Если выражение параллелизма происходит, дикого типа и мутантов Htt Белки синтезируются в тех же камерах совместно агрегировать и предотвратить обнаружение китовая птичка подобных событий. Чтобы избежать этого, используйте Gal4 и QF конкретных подавляющего, Gal80 и QS40, соответственно (рис. 1). Выбор развивающих контролируемой Gal4 и/или QF драйверы может помочь ограничить выражение мутант Htt пост митотическая клетки, устраняя возможность что деление клеток может способствовать к ячейке совокупных распространения.
  3. С помощью стандартных условий культивирования, mate мух для создания потомства, что Экспресс Мутантные популяции клеток Htt через QF (или Gal4) в «донора» и популяции клеток одичал тип Htt через Gal4 (или QF) в «получатель». Смотрите Рисунок 1 для схемы показаны возможные генетические комбинации.
    Примечание: Драйверы QF и Gal4, которые были использованы для создания данных показано на рисунках 1-4 и в нашей предыдущей публикации27 включают DA1 обонятельных рецепторов нейронов (ORN) водитель, Or67d-QF и Пан глиальных водитель, репо Gal4.
  4. Генерировать мух управления параллельно, что Экспресс Htt одичал тип в обоих QF - и Gal4-меченых клеточных популяций.
  5. Собирать потомства желаемого генотипа, а возраст животных в соответствующих случаях.

figure-protocol-1
Рисунок 1 . Генетический подход для спаренных выражение дикого типа и мутантов трансгенов Htt, с использованием систем двоичные выражения QF-QUAS и Gal4-UAS. В «ячейку A,» mCherry тегами мутант Htt белка содержащие патогенные длина polyQ стрейч (Q91) выражается с помощью QF водитель находится ниже по течению от ткани конкретной промоутера («PA»). В «клетке B,» рекламы ЯФП тегами Htt одичал типа, содержащие нормальные polyQ стрейч (Q25) выражается через драйвер Gal4 контролируется ткани конкретной промоутера B («PB»). На рисунках 2-4Or67d-QF был использован для привода QUAS-HttQ91-mCherry выражение в DA1 ORNs и репо Gal4 был использован для Экспресс бла-HttQ25-рекламы ЯФП всех глии27. Важно отметить, что HttQ91-mCherry только выражается в QF-выражая клетки силу QUAS последовательность размещены выше по течению от трансген. Аналогично только HttQ25-рекламы ЯФП выражается через Gal4, который конкретно признает UAS. При обнаружении какого-либо дублирования в распределении ткани QF и Gal4 драйверы, трансгенов кодирования QS в Gal4-выражая клеток и Gal80 в клетках QF-выражения могут быть введены. Добавление метки флуоресцентный белок на дикого типа и мутантов Htt позволяет для дифференциации двух белков во время обработки изображений и возможность оценки ЛАДА между парами соответствующих доноров/акцептора (например, СЛП/рекламы ЯФП или рекламы ЯФП/mCherry). Пожалуйста, нажмите здесь, чтобы посмотреть большую версию этой фигуры.

2. микро рассечение и фиксации взрослых дрозофилы мозги

Примечание: Эта процедура диссекции был изменен с предыдущей публикации44и может использоваться для подготовки мозги для визуализации прямых флуоресценции сигнала от Htt флуоресцентный протеин сплавливания. Изменения в процедуры, которые могут быть сделаны для иммуноокрашивания мозги, обсуждаются в следующем разделе.

  1. Соберите следующие материалы и место на льду: фосфат амортизированное saline, содержащие 0,03% Тритон X-100 (PBS/T); Microcentrifuge трубки содержащих 970 мкл параформальдегида 4% (PFA) фиксирующие раствор, приготовленный путем добавления 200 мкл 20% PFA до 770 мкл PBS/Т; Блюдо прозрачное стекло, содержащие скважины; накапайте одноразовой передачи; два рассечения щипцы (один № 3 и один № 5).
  2. Анестезировать взрослых мух с помощью CO2 и передавать их на одной скважиной стеклянную посуду на льду.
  3. С помощью пипетки передачи, добавить небольшое количество (~ 500 мкл) из холодной PBS/T, чтобы хорошо содержащие мух также относительно пустой колодец. Избегайте введения слишком много пузырьков, как они могут мешать рассечение.
  4. Установите стеклянную посуду на плоскую поверхность под микроскопом рассечения и отрегулируйте масштаб до летать тела заполняет поле зрения и находится в фокусе.
  5. Положение пару гусиная шея источников света, так что свет освещает обе стороны стеклянную посуду. Якорь ткани сложить лаборатории под стеклянную посуду отказаться частей тела/кутикулы во время вскрытия.
  6. С помощью щипцов № 3 в руке недоминирующих, передачи одной мухи в хорошо содержащие иммобилизации PBS/т., Муха, захватывая провести ее живота с вентральной стороне, обращенной.
  7. Сохраняя лету полностью погруженной в PBS/T, удалите летать голову пинцетом № 5 в доминирующей рукой. Вставьте один подсказки этого щипцы под кутикулы в небольшом пространстве, прилегающих к Хоботок на одной стороне покупать головы. Закрепите ручку на голове, щипать пинцет, чтобы схватить глаз от обеих сторон.
  8. Удалите летать голову из своего тела, потянув за два щипцы друг от друга. Распоряжаться летать тела на ткани лаборатории расположены поблизости. Поддерживайте давление на доминирующей рукой пинцет, так что покупать головы не теряется.
  9. Один наконечник позиция № 3 щипцов в недоминирующих рука же небольшом пространстве под кутикулой на другой стороне Хоботок. После того, как размещены, щепотка щипцы для захвата глаза в том же месте по обе стороны головы.
  10. После того, как сцепление на кутикулу является безопасным, осторожно, потяните щипцы были друг от друга на 180°. Это действие будет разбить голову Кутикула без повреждения мозга. Отказаться от кутикулы остатков на ткани лаборатории.
    1. Хотя идеальным, головы кутикулы не могут быть полностью удалены в один шаг. В этом случае удалите кутикулы, кусок за куском, пока мозг полностью разоблачил. Будьте осторожны, чтобы не повредить мозг, избегая прямого контакта с щипцами.
  11. Удалите расчлененных мозга от PBS/T захвата ahold прилагаемый трахеи, или аспирационных мозга в пространство между щипцами советы действием капиллярных.
    Примечание: Удаление трахеи является необязательным, как правило, не заслонять усиков лопастями на передней поверхности головного мозга, где мы обычно изображения. Однако если трахеи вмешиваться с работой с образами, удалите их тщательно так, что мозг не поражен этой манипуляции.
  12. Перевести весь мозг в один из microcentrifuge пробирки, содержащие фиксирующие решение на льду. Убедитесь, что мозг отсоединяется от щипцы и погружен в решении фиксирующие.
  13. После того, как все мозги были расчленены, подвергать их «короткий исправить», поместив закрытые трубы на nutator для ~ 5 мин при комнатной температуре в темноте.
    Примечание: Этот шаг короткий фиксацию гарантирует, что мозги легче обрабатывать последующие шаги и не придерживаться стороны пробки microcentrifuge.
  14. Большинство фиксирующие решения с пипеткой P1000 снимите и выбросьте его.
    1. Избегайте аспирационных мозги из трубки в течение этого и любых последующих мыть шаг. Установите P1000 низкой громкости (например, 650 мкл) и удалить супернатант в два этапа. Кроме того удерживая microcentrifuge трубы в соответствии с источником света (например, верхний свет) аспирационных лучше визуализировать мозги.
  15. Добавьте 1 mL свежих PBS/T в мозг. Помыть быстро (< 1 мин) в темноте, аспирационная супернатант от мозги и отбросить.
  16. Повторите стирка с PBS/T в темноте при комнатной температуре в соответствии со следующим графиком: 2 стирок быстро (< 1 мин), 1 X 5 мин, 3 X 20 мин и 1 X 1 h мыть. Безопасный топы на microcentrifuge трубы и трубы на nutator между моет.
    1. По желанию DAPI окрашивание, заменить окончательное 1 h мыть с 1 X 30 мин инкубации с 250 нг/мл DAPI разводят в PBS/T, следуют 2 X быстрый и 1 X 20 мин смывки.
  17. После последнего вымыть удалить большинство супернатант буфера мытья, стараясь не нарушить мозги и добавьте 30 мкл Реагента на основе глицерина antifade мозги. Инкубируйте на 4 ° C в темноте без движения, по крайней мере 1 час и до 24 часов.

3. изменения к разделу 2 для взрослых иммуноокрашивания мозги

Примечание: Используйте этот протокол для визуализации не флуоресцентные белки или флуоресцентный протеин сплавливания с слабой флуоресценции.

  1. 10 раз увеличить концентрацию Тритон X-100 в PBS/T (PBS + 0,3% Тритон X-100) для каждого шага. Это гарантирует, что достаточно посуды присутствует разрушения мембран клеток и позволить антитела для доступа к внутриклеточной запрещено.
  2. Исправить мозги в 4% ПФА в PBS/T для 20 мин при комнатной температуре.
  3. После выполнения всех моет, Инкубируйте 30 мин при комнатной температуре в темноте мозги в свежеприготовленные блокирующем буфере (PBS/T + 5% нормальной козьего сыворотки (НГС)).
  4. Снимите и выбросьте блокирующий буфер. Добавить 0,5 мл раствора первичного антитела на трубки, подготовленных как мастер смесь путем разбавления первичных антител в соответствующих случаях в свежих блокирующем буфере (см. Таблицу материалы для часто используемых антител и разведения). Инкубируйте мозги в первичных антител на nutator для по крайней мере 24 часа при температуре 4 ° C в темноте.
  5. Удаление основного антитела решения из мозга с помощью P1000 и заповедника в свежий трубки. Добавьте 1 mL PBS/T, чтобы промыть мозги.
    Примечание: Зарезервированные основное антитело раствор может храниться при температуре 4 ° C на срок до четырех недель. Мы успешно восстановленный первичного антитела до два раза в последующих экспериментах.
  6. Промыть мозги быстро (< 1 мин) в PBS/T, аспирационная супернатант от мозги и отбросить. Еще раз повторите этот быстрой стирки.
  7. Продолжить Стиральная с 1 мл PBS/T при комнатной температуре в соответствии со следующим графиком: 1 X 5 мин, 3 X 20 мин и 1 X 1 h мыть. Безопасный топы на microcentrifuge трубы и трубы на nutator во время мойки.
  8. После последнего вымыть, удалить большинство супернатант PBS/T и добавить 0,5 мл раствора вторичного антитела, подготовленных как мастер смесь путем разбавления антитела в соответствующих случаях в свежих блокирующем буфере (см. Таблицу материалы для часто используемых антитела и разведения). Инкубируйте мозги в вторичные антитела для 24 ч при температуре 4 ° C в темноте.
  9. Повторите шаги мыть в шагах 3,5, 3,6 и 3,7 после инкубации с вторичные антитела.
  10. После окончательного вымыть удалить часть буфера мытья и убедитесь, что все мозги расположены в нижней части трубки. Добавьте 30 мкл Реагента antifade мозги. Инкубируйте на 4 ° C в темноте без движения за 16-24 ч.

4. весь мозг монтажа

  1. Место стекло микроскопа под микроскопом рассечения и этикетка с идентифицирующей информации.
    Примечание: в качестве альтернативы, мозг может быть установлен непосредственно на Стекло покровное для доступа к обе стороны мозга во время визуализации. Протокол, описывая эта процедура установки была ранее опубликованные45.
  2. Удаление мозги из пробирки microcentrifuge, используя кончик притупляются пипетки (подготовлен с использованием лезвие для удаления нижней ~ 1 см от кончика 1-200 мкл) и передачи их в середине слайда. Передача как мало antifade реагента с мозги как можно скорее.
  3. Используйте щипцы для расположения мозги в желаемой ориентации (например, спинной, указывая в направлении верхней части слайдов и передней поверхности вверх для визуализации усиков лепестка). При ориентировании мозги, рассмотрим светового луча Микроскоп, чтобы использоваться для визуализации их.
  4. Удалите излишки реагента antifade из слайдов, используя острый угол ткани сложить лаборатории не нарушая мозги. Пусть слайд сидеть за ~ 5-10 мин в темноте, чтобы позволить мозги, чтобы присоединиться к слайду.
  5. Окружают летать мозги с четырех небольших части сломленного стекла крышка, размещены на каждой стороне мозги, чтобы сформировать квадрат это ~ 19 мм х 19 мм. место один край стекла Обложка 22 x 22 мм № 1,5 просто вне одно из этих кусочков стекла и аккуратно опустите coverslip над мозги, чтобы завершить мост гора.
  6. Медленно распределять свежий antifade реагент для заполнения поверхности под coverslip, стараясь не нарушить coverslip или мозги. Стереть любой избыток antifade, используя острый угол ткани сложить лаборатории без напрямую связаться с coverslip.
  7. Добавьте каплю ясно, быстросохнущий лак для каждого из четырёх углов coverslip. Дайте высохнуть на ~ 10 мин. Затем уплотнение края четыре coverslip с Лак полностью подложить умы.
  8. Изображения мозга немедленно, или хранить при 4 ° С до готовности.
    1. Если визуализация внутренней флуоресценции из НТТ флуоресцентный протеин сплавливания, изображения мозги в течение 24 h для лучший сигнал.

5. обработки изображений и количественного определения передачи прионы, как агрегатов

  1. Изображения монтируется мозги с использованием Конфокальный микроскоп оснащен 40 X или 60/63 X нефти цель собрать z фрагмент изображения через регион головного мозга, где выражаются выбранные драйверы Gal4 и QF (рис. 2A, B).
    1. Возбуждают флуоресцентный протеин сплавливания или полученных белков, используя соответствующие лазеры (например, 488 нм для GFP/рекламы ЯФП/FITC или 552 Нм для mCherry/Cy3). Настройка обнаружения windows, которые захватывают максимальная люминесцентных сигнал устраняя канала кросс talk с помощью либо спектральных обнаружения системы или группы/Лонг пройти выбросов фильтры специфические для каждого Флюорофор.
      Примечание: Будьте внимательны при визуализации белка агрегатов. Это легко для пикселей в центре каждого агрегата для насыщения, особенно в крупных агрегатов. Попытка уменьшить насыщенность изображения, но осознавать риск потери сигнала от небольших агрегированных видов (рис. 2B, C, D). Слишком много насыщенности увеличит фон изображения, что делает его более трудным для определения изолированных puncta. Тестирование различных изображений настройки для оптимизации до принятия окончательного изображения в каждом наборе данных.
  2. Анализ данных путем определения количественных показателей отдельных puncta, либо вручную путем перемещения через отдельные z фрагменты (например, Рисунок 2C и Рисунок 4A) или после рендеринга конфокальный ломтики в 3 измерениях (рис. 3 A, B).
    Примечание: Это может быть сделано в J изображение или другой обработки изображений программное обеспечение.
    1. Если агрегаты хорошо разделенных и есть минимальный фон флуоресценции, используйте программное обеспечение для анализа изображений для систематического выявления, количественной оценки и анализа агрегатов как собственный «объектов» или «поверхностей» в 3D-реконструкции (конфокальный стека Рисунок 3 B).
      Примечание: Описанные действия программного обеспечения являются специфическими для инструмента и программное обеспечение, используемое здесь (см. Таблицу материалов).
      1. Визуализируйте конфокальный z серии в режим 3D-просмотра. Мастер «Анализ» позволяет определить отдельные места в выбранном канале (например красный канал для HttQ91-mCherry агрегатов на рис. 3). Настройка порога и фильтры, чтобы точно представлять все агрегаты гетерогенно размера как отдельные объекты в изображении.
      2. Включите «Split объектов» под «Двоичной обработки предварительный фильтр «отделить тесно связанные агрегатов, которые они объединяются алгоритмом программного обеспечения. Обратите внимание, что общее количество объектов и их связанные измерения сообщается под «Измерения».
        Примечание: Этот метод количественной оценки мутант Htt агрегатов не поддаются протокол иммуноокрашивания потому что центр амилоида агрегатов, непроницаемой для антител. В результате агрегаты появляются на микроскопе как кольцо как структуры, и программное обеспечение для анализа изображений не может точно идентифицировать и отличать эти отдельные «пятна».
    2. Количественно одичал тип Htt агрегатов вручную перемещая через z стек и скоринг агрегатов Htt одичал типа, убедившись, нет агрегатов двойной забил если они появляются в более чем один ломтик (рис. 4A).
      Примечание: Этот подход ручной количественной оценки может использоваться, когда количество агрегатов в каждому конфокальных стека является разумным (например, 20-50). Это также полезно, когда программное обеспечение для анализа изображений не может различать отдельные puncta от окружающих сигнал в том же канале (например, сигнал из диффузных Htt одичал тип в близлежащих клеток) (Рисунок 2B, C и Рисунок 4 A). Количественная оценка одичал тип Htt агрегатов также может быть сложным по потому, что многие нормальные структуры головного мозга появляются пунктата (например, процессы клеток и синапсы). Совместное локализации одичал типа и мутантов Htt сигналов можно использовать в качестве критерия отбора; Однако вполне возможно, что некоторые черепашки Htt «семена» падает ниже предела обнаружения конфокальный. Белок помимо Htt, не подлежащей статистической обработке в получателя ячейки (например, GFP) может использоваться для обозначения несвязанных пунктата структур головного мозга.
  3. Используйте программное обеспечение для анализа изображений для выполнения дальнейших характеристика отдельных агрегатов. К примеру определить распределение по размерам агрегатов (рис. 3C), процент локализации совместно между мутант и белки Htt одичал типа (рис. 4A), или непосредственно измерить белок белковых взаимодействий с использованием ладу) Рисунок 4 B).
    1. Определите размер распределение отдельных puncta, с использованием алгоритма обнаружения пятно или поверхности, который точно идентифицирует все видимые агрегатов в определенном канале. Использовать программное обеспечение для анализа изображений принять соответствующие измерения пятна или поверхностей, например получить «совокупный диаметр» (рис. 3 C), «том», или «интенсивности» информация «Измерения» в мастере «Анализ» программного обеспечения, описанный в шаге 5.2.1.
      Примечание: На рисунке 3C, мы сообщаем распределения диаметров для всех HttQ91-mCherry puncta, определенных в одном glomerulus DA1.
    2. Определите процент локализации совместно между HttQ25-рекламы ЯФП и HttQ91-mCherry агрегатов вручную перемещая срез по срез конфокальный z стека (наиболее точный метод). Однако заботиться не рассчитывать любой агрегатов дважды. Чтобы предотвратить это, только количество агрегатов в частности z срез если плоскость фокуса через центр агрегата (рис. 4A).
    3. Рассчитайте эффективность ладу индуцированных HttQ25-рекламы ЯФП агрегатов с colocalized HttQ91-mCherry сигнал, с помощью метода Фотообесцвечивание акцептора.
      1. Во-первых Устраните потенциальные помехи между каналами рекламы ЯФП и mCherry путем создания обнаружения windows для mCherry- и только для рекламы ЯФП сигналов, которые производят не сигнал, в другой канал. Используя эти параметры, возьмите «образ» отдельных HttQ25-рекламы ЯФП puncta и их связанные HttQ91-mCherry сигнал ( рис. 4B) до.
      2. Затем, photobleach mCherry сигнал, регулируя красный лазер (например, 552 Нм) до 100% интенсивности и сканирования до тех пор, пока сигнал нет. Вернуться к параметрам, используется для «образ» до и принять «после образ» же puncta (Рисунок 4B).
      3. Вычислите измерения интенсивности флуоресценции для каждого punctum, до и после Фотообесцвечивание, с помощью программного обеспечения для анализа изображений.
      4. Рассчитать эффективность ладу путем вычитания рекламы ЯФП доноров флуоресценции измеряется в «образ» до (рекламы ЯФПпервоначальный) от рекламы ЯФП доноров флуоресценции в изображении «после» (рекламы ЯФПокончательный). Разделите это значение рекламы ЯФПокончательныйи умножить на 100.
        Примечание: Эффективность лад может быть рассчитана, пиксель в пиксель или общий для каждого HttQ25-рекламы ЯФП агрегата (Рисунок 4B). Акцепторной Фотообесцвечивание является особенно полезным методом для расчета эффективности ладу, при достаточно высокой производить обнаружению рекламы ЯФП dequenching после mCherry Фотообесцвечивание mCherry сигнал, связанные с каждой HttQ25-рекламы ЯФП punctum.

Доступ ограничен. Войдите в систему или начните пробный период, чтобы просмотреть этот контент.

Результаты

Описанные здесь методы производить надежные данные демонстрации китовая птичка как передача Htt белка агрегатов от населения одной ячейки в другую в неповрежденной летают ЦНС. Преобразование Htt одичал тип диффузного пунктата наблюдается прямой флуоресценции этой рекламы ЯФП синтез белка в получателей глии в результате HttQ91-mCherry выражение в ORNs доноров (рис. 2A-C и рис. 4A, B). Точной отчет...

Доступ ограничен. Войдите в систему или начните пробный период, чтобы просмотреть этот контент.

Обсуждение

Как числа пациентов, страдающих от нейродегенеративных заболеваний продолжает расти, существует настоятельная необходимость более глубокого понимания молекулярный патогенез этих заболеваний, так что лучше терапии могут быть разработаны. Здесь мы описываем методы, которые позволяют для мониторинга передачи прионы, как агрегатов патогенных белка между различных типов клеток в организме модель, Drosophila melanogaster. Недавно мы использовали эту методологию продемонстрировать передачи китовая птичка как мутант Htt...

Доступ ограничен. Войдите в систему или начните пробный период, чтобы просмотреть этот контент.

Раскрытие информации

Авторы не имеют ничего сообщать.

Благодарности

Мы благодарим членов Kopito, Luo и Пирс лабораторий для многих полезной дискуссии в ходе разработки этих методов. Мы также благодарим Брайана Temsamrit для критических чтении этой рукописи. Эта работа была поддержана средств от университета наук и W.W. Смит благотворительных фондов.

Доступ ограничен. Войдите в систему или начните пробный период, чтобы просмотреть этот контент.

Материалы

Список материалов, использованных в этой статье
ИмяКомпанияКаталожный номерКомментарии
Фосфатно-солевой буфер (PBS), 10X, pH 7,4ThermoFisher ScientificAM9625Разбавленный до 1X
Triton X-100Sigma-AldrichT9284-1L
KimwipesThomas Scientific2904F24
20% параформальдегид (PFA)Электронная микроскопия Sciences15713-S
Сыворотка от нормальной козы (NGS), фильтрованнаялампа Biological Laboratories7332500Аликвота и заморозка при получении
Курица анти-GFPAves LabsGFP-1020Использование при разведении 1:500
Кролик анти-DsRedClontech632496Использование при разведении 1:2000; может распознавать флуоресцентные белки на основе DsRed (например, mCherry, mStrawberry, tdTomato и т.д.)
Мышиный анти-BruchpilotDevelopmental Studies Hybridoma Banknc82Использовать при разведении 1:100; будет маркировать активные пресинаптические структуры через мозг мухи
FITC против курицыThermoFisher ScientificSA1-7200Использовать при разведении 1:250
Alexa Fluor 568 анти-кроликLife TechnologiesA11011Использовать при разведении 1:250
Alexa Fluor 647 антитело против мышиLife ТехнологииA21235Использование при разведении 1:250
Slowfade Gold Antifade ReagentLife TechnologiesS36936
Предметные стекла для микроскопа (25 x 75 x 1,0 мм)Fisher Scientific12-550-143
Защитное стекло (22 x 22 мм)Globe Scientific1404-15
Dumont Biology Grade Щипцы, Стиль 3Ted Pella503использование в недоминирующей руке
Щипцы Dumont Biology Grade, Style 5Ted Pella505использование в доминирующей руке
LAS X программное обеспечение для анализа изображенийLeica
ImarisBitplane

Ссылки

  1. Prusiner, S. B. Biology and genetics of prions causing neurodegeneration. Annu Rev Genet. 47, 601-623 (2013).
  2. Haïk, S., Brandel, J. P. Infectious prion diseases in humans: Cannibalism, iatrogenicity and zoonoses. Infect Genet Evol. 26, 303-312 (2014).
  3. Balch, W. E., Morimoto, R. I., Dillin, A., Kelly, J. W. Adapting Proteostasis for Disease Intervention. Science. 319 (5865), 916-919 (2008).
  4. Stroo, E., Koopman, M., Nollen, E. A., Mata-Cabana, A. Cellular Regulation of Amyloid Formation in Aging and Disease. Front Neurosci. 11, 64(2017).
  5. Brundin, P., Melki, R., Kopito, R. Prion-like transmission of protein aggregates in neurodegenerative diseases. Nat Rev Mol Cell Biol. 11 (4), 301-307 (2010).
  6. Jucker, M., Walker, L. C. Self-propagation of pathogenic protein aggregates in neurodegenerative diseases. Nature. 501 (7465), 45-51 (2013).
  7. Stopschinski, B. E., Diamond, M. I. The prion model for progression and diversity of neurodegenerative diseases. Lancet Neurol. 16 (4), 323-332 (2017).
  8. Walker, L. C., Jucker, M. Neurodegenerative diseases: expanding the prion concept. Annu Rev Neurosci. 38, 87-103 (2015).
  9. Holmes, B. B., et al. Heparan sulfate proteoglycans mediate internalization and propagation of specific proteopathic seeds. Proc Natl Acad Sci U S A. 110 (33), 3138-3147 (2013).
  10. Munch, C., O'Brien, J., Bertolotti, A. Prion-like propagation of mutant superoxide dismutase-1 misfolding in neuronal cells. Proc Natl Acad Sci U S A. 108 (9), 3548-3553 (2011).
  11. Nonaka, T., et al. Prion-like properties of pathological TDP-43 aggregates from diseased brains. Cell Rep. 4 (1), 124-134 (2013).
  12. Ren, P. H., et al. Cytoplasmic penetration and persistent infection of mammalian cells by polyglutamine aggregates. Nat Cell Biol. 11 (2), 219-225 (2009).
  13. Trevino, R. S., et al. Fibrillar structure and charge determine the interaction of polyglutamine protein aggregates with the cell surface. J Biol Chem. 287 (35), 29722-29728 (2012).
  14. Volpicelli-Daley, L. A., et al. Exogenous alpha-synuclein fibrils induce Lewy body pathology leading to synaptic dysfunction and neuron death. Neuron. 72 (1), 57-71 (2011).
  15. Zeineddine, R., et al. SOD1 protein aggregates stimulate macropinocytosis in neurons to facilitate their propagation. Mol Neurodegener. 10, 57(2015).
  16. Ayers, J. I., Fromholt, S. E., O'Neal, V. M., Diamond, J. H., Borchelt, D. R. Prion-like propagation of mutant SOD1 misfolding and motor neuron disease spread along neuroanatomical pathways. Acta Neuropathol. 131 (1), 103-114 (2016).
  17. Clavaguera, F., et al. Brain homogenates from human tauopathies induce tau inclusions in mouse brain. Proc Natl Acad Sci U S A. 110 (23), 9535-9540 (2013).
  18. de Calignon, A., et al. Propagation of tau pathology in a model of early Alzheimer's disease. Neuron. 73 (4), 685-697 (2012).
  19. Eisele, Y. S., et al. Induction of cerebral beta-amyloidosis: intracerebral versus systemic Abeta inoculation. Proc Natl Acad Sci U S A. 106 (31), 12926-12931 (2009).
  20. Luk, K. C., et al. Pathological alpha-synuclein transmission initiates Parkinson-like neurodegeneration in nontransgenic mice. Science. 338 (6109), 949-953 (2012).
  21. Meyer-Luehmann, M., et al. Exogenous induction of cerebral beta-amyloidogenesis is governed by agent and host. Science. 313 (5794), 1781-1784 (2006).
  22. Mougenot, A. L., et al. Prion-like acceleration of a synucleinopathy in a transgenic mouse model. Neurobiol Aging. 33 (9), 2225-2228 (2012).
  23. Rey, N. L., et al. Widespread transneuronal propagation of alpha-synucleinopathy triggered in olfactory bulb mimics prodromal Parkinson's disease. J Exp Med. 213 (9), 1759-1778 (2016).
  24. Babcock, D. T., Ganetzky, B. Transcellular spreading of huntingtin aggregates in the Drosophila brain. Proc Natl Acad Sci U S A. 112 (39), 5427-5433 (2015).
  25. Kim, D. K., et al. Anti-aging treatments slow propagation of synucleinopathy by restoring lysosomal function. Autophagy. 12 (10), 1849-1863 (2016).
  26. Liu, L., et al. Trans-synaptic spread of tau pathology in vivo. PLoS One. 7 (2), 31302(2012).
  27. Pearce, M. M., Spartz, E. J., Hong, W., Luo, L., Kopito, R. R. Prion-like transmission of neuronal huntingtin aggregates to phagocytic glia in the Drosophila brain. Nat Commun. 6, 6768(2015).
  28. Pearce, M. M. Prion-like transmission of pathogenic protein aggregates in genetic models of neurodegenerative disease. Curr Opin Genet Dev. 44, 149-155 (2017).
  29. Pecho-Vrieseling, E., et al. Transneuronal propagation of mutant huntingtin contributes to non-cell autonomous pathology in neurons. Nat Neurosci. 17 (8), 1064-1072 (2014).
  30. Wu, J. W., et al. Neuronal activity enhances tau propagation and tau pathology in vivo. Nat Neurosci. 19 (8), 1085-1092 (2016).
  31. Jackson, G. R., et al. Polyglutamine-expanded human huntingtin transgenes induce degeneration of Drosophila photoreceptor neurons. Neuron. 21 (3), 633-642 (1998).
  32. Warrick, J. M., et al. Expanded polyglutamine protein forms nuclear inclusions and causes neural degeneration in Drosophila. Cell. 93 (6), 939-949 (1998).
  33. McGurk, L., Berson, A., Bonini, N. M. Drosophila as an In Vivo Model for Human Neurodegenerative Disease. Genetics. 201 (2), 377-402 (2015).
  34. The Huntington's Disease Collaborative Research Group. A novel gene containing a trinucleotide repeat that is expanded and unstable on Huntington's disease chromosomes. Cell. 72 (6), 971-983 (1993).
  35. Bates, G. P., et al. Huntington disease. Nat Rev Dis Primers. 1, 15005(2015).
  36. Scherzinger, E., et al. Self-assembly of polyglutamine-containing huntingtin fragments into amyloid-like fibrils: implications for Huntington's disease pathology. Proc Natl Acad Sci U S A. 96 (8), 4604-4609 (1999).
  37. Chen, S., Berthelier, V., Yang, W., Wetzel, R. Polyglutamine aggregation behavior in vitro supports a recruitment mechanism of cytotoxicity. J Mol Biol. 311 (1), 173-182 (2001).
  38. Brand, A. H., Perrimon, N. Targeted gene expression as a means of altering cell fates and generating dominant phenotypes. Development. 118 (2), 401-415 (1993).
  39. Potter, C. J., Tasic, B., Russler, E. V., Liang, L., Luo, L. The Q system: a repressible binary system for transgene expression, lineage tracing, and mosaic analysis. Cell. 141 (3), 536-548 (2010).
  40. Riabinina, O., Potter, C. J. The Q-System: A Versatile Expression System for Drosophila. Methods Mol Biol. 1478, 53-78 (2016).
  41. Costanzo, M., et al. Transfer of polyglutamine aggregates in neuronal cells occurs in tunneling nanotubes. J Cell Sci. 126 (16), 3678-3685 (2013).
  42. Freeman, M. R., Delrow, J., Kim, J., Johnson, E., Doe, C. Q. Unwrapping glial biology: Gcm target genes regulating glial development, diversification, and function. Neuron. 38 (4), 567-580 (2003).
  43. MacDonald, J. M., et al. The Drosophila cell corpse engulfment receptor Draper mediates glial clearance of severed axons. Neuron. 50 (6), 869-881 (2006).
  44. Wu, J. S., Luo, L. A protocol for dissecting Drosophila melanogaster brains for live imaging or immunostaining. Nat Protoc. 1 (4), 2110-2115 (2006).
  45. Tito, A. J., Cheema, S., Jiang, M., Zhang, S. A Simple One-step Dissection Protocol for Whole-mount Preparation of Adult Drosophila Brains. J Vis Exp. (118), (2016).
  46. Roszik, J., Szöllosi, J., Vereb, G. AccPbFRET: an ImageJ plugin for semi-automatic, fully corrected analysis of acceptor photobleaching FRET images. BMC Bioinformatics. 9, 346(2008).
  47. Spires-Jones, T. L., Attems, J., Thal, D. R. Interactions of pathological proteins in neurodegenerative diseases. Acta Neuropathol. 134 (2), 187-205 (2017).

Доступ ограничен. Войдите в систему или начните пробный период, чтобы просмотреть этот контент.

Перепечатки и разрешения

Теги

Мониторинг в ячейке передачи китовая птичка подобных белков агрегатов в Drosophila Melanogaster
Свяжитесь с нами
Рекомендовать библиотеке

Конфиденциальность

Условия эксплуатации

Политика

Авторские права © 2026 MyJoVE Corporation. Все права защищены.