Для просмотра этого контента требуется подписка на JoVE. Войдите или начните свой бесплатный пробный период.

Методическая статья

Перинатальной асфиксии Lamb модель: Модель для реанимации новорожденных

10.4K просмотров

⸱

DOI:

10.3791/57553

⸱

15 августа 2018 г.

 ,  ,  ,  ,  ,  ,  , 
1Department of Pediatrics, University of California Davis, 2Department of Pediatrics, University at Buffalo

* These authors contributed equally

В этой статье

Краткое содержание

Инвазивные инструментария плода Агнца обеспечивает точные измерения физиологических перепрофилирования циркуляции в модель, которая тесно имитирует новорожденного младенца.

Аннотация

Асфиксия плода при рождении составляет около одного миллиона случаев смерти во всем мире каждый год и является одной из основных причин ранней неонатальной заболеваемости и смертности. Многие аспекты нынешних руководящих принципов неонатальной реанимации остаются спорными, учитывая трудности в проведении рандомизированных клинических испытаний вследствие нечастых и часто непредсказуемые потребность обширные реанимации. Большинство исследований по реанимации новорожденных связаны с манекена модели, которые не действительно отражают физиологические изменения или модели Пятачок, очистили их жидкости легких и что завершили переход от плода к неонатальной циркуляции. Настоящий Протокол обеспечивает подробное пошаговое описание о том, как создать модель перинатальной асфиксии плода ягненка. Предлагаемая модель имеет перепрофилирования циркуляции и легкие, заполненные жидкостью, которые имитирует человека новорожденных после родов и, следовательно, отличную животных модель для изучения физиологии новорожденных. Важное ограничение экспериментов ягненка является выше, связанные с этим расходы.

Введение

Перинатальной асфиксии происходит в примерно 4 на 1000 живорождений термина в Соединенных Штатах и отвечает за приблизительно 25% из 4 миллионов неонатальных смертей во всем мире1,2. На протяжении всего естественного развития плода несколько приспособлений должны проходить во время родов и при рождении, чтобы разрешить для плавного перехода от интра - внематочная окружающей среде при легких взять на себя роль плаценты как орган газообмена. Любая неудача новорожденного адекватно перехода при рождении дальнейшие компромиссы реанимационные усилия. Случаи, когда просвет легких плода является неполной или задержка в3,4и обстоятельства, которые приводят к5 воздействия стойких высокой легочного сосудистого сопротивления (PVR) эффективность вентиляции, которая остается наиболее важное вмешательство в реанимации асфиксии новорожденных6. Кроме того немедленное пережатие пуповины и низкий сопротивление отделения плаценты может привести к резким изменениям в сердечного выброса, которые могут привести к дисфункции миокарда7,8.

Ввиду необходимости редко агрессивные реанимации (потребность компрессии грудной клетки и/или администрации эпинефрина)1,9является отсутствие убедительных доказательств от крупных рандомизированных клинических испытаний для поддержки текущей Реанимация программа (NRP) руководящие принципы. Многие трансляционного исследования в реанимации проводятся с использованием послеродовой Животные модели (особенно поросят), которые не адекватно отражают переход плода циркуляции и заполненные жидкостью легких новорожденных присущие доставки номер. С учетом уникальных проблем, связанных с переходом от плода обращения к неонатальной циркуляции, перинатальной асфиксией сердца плода ягненка модель идеально подходит для изучения физиологии новорожденных реанимационные.

Исследования по Джозеф Баркрофт на плода ягнят, еще в 1930 году, заложили основу для плода и новорожденного физиологии10. Во второй половине 20-го века Джеффри Dawes инновационные и дотошный эксперименты на плода баранины модели, и позднее те Авраам Рудольф чрезвычайно способствовали знания о физиологии сердечно-сосудистых и легочных плода 11 , 12. в последние годы, исследования на моделях плода/новорожденного ягненка предоставили лучшего понимания влияния вентиляции на гемодинамику13,14, эффекты оксигенации PVR15,16, а также кровообращения изменения, которые происходят во время пережатия пуповины7,17. Наконец в прошлом году, новорожденных ягненка служил Роман модель для изучения Гемодинамические эффекты во время реанимации18,19,20. Шаг за шагом повествование о том, что участвует в проведении ягненка эксперимента, а также подробное описание хирургические контрольно-измерительных приборов и экспериментальная методология будет представлен.

Доступ ограничен. Войдите в систему или начните пробный период, чтобы просмотреть этот контент.

Протокол

Все протоколы были одобрены институциональный уход животных и использование Комитет (IACUC) в Буффало государственного университета Нью-Йорка. Иллюстрация методологии, изображающие инвазивный и неинвазивный мониторинг показано на рисунке 1.

1. Животные

  1. Использование своевременная, Q-лихорадка овец (смешанные породы, Саффолк-Дорсет-Катадин породы) серонегативных, беременных с плода ягнят на 127 – 143 дней беременности.
    Примечание: Срок беременности овец – 145 дней и 127 гестации ягнят ведут себя как крайняя недоношенных детей.

2. дооперационного подготовка

  1. Удержать пищу из эве 12 ч до операции.
  2. Степенный Эве с внутривенного (IV) диазепама (0.25-1.5 мг/кг) и кетамин (4 мг/кг).
  3. Руководство эве в боковых recumbency на тележку лифта.
  4. Переместите эве спинной recumbency на V-лучшие столы.

3. анестезия

Примечание: Перед кесаревым сечением, эве седации с диазепамом и кетамин и интубированных следуют непрерывной ингаляции изофлюрановая (1 – 4%). Адекватность анестезии контролируется оценки мышечной тон и глаз рефлексов наряду с непрерывный мониторинг уровня кислорода в крови пульсовый оксиметр и частоты сердечных сокращений. Во время инструментирования ягнята будет под влиянием материнской анестезии и будут также получать местный анестетик сайты инструментирования.

  1. Интубировать Эве с эндотрахеальной трубки 10.0 мм манжетой (ЭТТ). Заранее ETT через вокал шнуры 1 – 2 см за манжету. Надуйте манжет ETT и галстук ETT вокруг эве челюсти, чтобы закрепить его на месте.
    1. Когда глазной ответ отсутствует, настройте изофлюрановая (обычно достаточно 2-3%).
    2. Предоставить искусственного дыхания, обычной искусственной вентиляции легких (ЦМВ) с долей вдохновили кислорода (FIO2) 0,21. Установите вентилятор предоставлять приливных тома 10 – 15 мл/кг.
    3. Непрерывно контролировать оксигемоглобина насыщения пульсоксиметр на язык эве.
    4. Измерьте конца Приливные диоксида углерода (2EtCO) с Капнограф.
    5. Отрегулируйте FIO2 и ЦМВ поддерживать оксигемоглобина насыщения между 90-97% и выдохнул CO2 между 35 – 45 мм Hg, соответственно.
  2. Закрепите эве конечностей в хирургической таблицу с хирургической галстук Даунс.
    1. Отрегулируйте хирургические таблицы, чтобы отменить положение Тренделенбурга ослабить давление на плод.
  3. Место orogastric трубки для распаковки и слейте желудочного содержимого.
  4. Дополнение IV жидкости (нормальное saline или раствор лактат Ringers) 10 мл/кг/ч.
  5. Место ректальной температуры зонда для получения постоянной температуру.

4. хирургия

Примечание: Кесарево сечение и плода процедуры считаются острых хирургических операций, в которых животные находятся умерщвлены управляющими Натрий Пентобарбитал IV 100 мг/кг. Овцы являются умерщвлены после доставки ягнят и ягнят умерщвлены после завершения экспериментов. Эвтаназия подтверждается асистолии. Также используется вторичный метод двусторонних торакотомия или обескровливания. В этом случае асептическая технология не практикуется во время операции. Персонал по-прежнему должны носить защитную одежду во время животных контакта.

  1. Брить шерсть от брюшной живота.
  2. Используйте Прижигающая сделать разрез поверхностно брюшной 15 – 18 см над linea alba подвергать фасции.
    1. Создайте небольшое отверстие в животе, используя давление с тупым наконечником кровоостанавливающий.
    2. Сохранить это открытие во время скольжения тупым наконечником ножниц в брюшной стенке.
    3. Используйте ножницы для завершения разрез linea alba.
  3. Найдите и неубранной головки плода в матке от живота.
    1. Держите головку плода, с одной стороны и использовать Прижигающая сделать 10 см разрез через стенку матки (над Агнца в лоб). Обеспечить, чтобы избежать любых семядоли.
    2. Использование Babcock щипцы для зажима слои матки и плаценты вместе на четырех противоположных углов.
    3. Разоблачить Агнца в голову через матку и вне эве живота.
    4. Оставьте Babcock щипцы, укладка вне живота во время фетальной хирургией.

5. плода дыхательных путей

  1. Интубировать частично подвергается плода ягненка с 3,5 — 4,5 мм манжетой ETT. Заранее ETT через голосовые связки 1 см за манжету.
    1. Надуйте манжет и зафиксируйте ЭТТ, связывая пупочной ленту вокруг трубки, а затем вокруг головы.
    2. Разрешить превышение легких плода жидкости в ETT осушить пассивно, наклоняя голову в сторону. Это имитирует выход жидкости из легких во время родов.
    3. Загородить ETT предотвратить обмен газа во время задыхаясь в asphyxial период.

6. шеи судно приборостроение

  1. Брить шерсть и проникнуть на всех участках разрез 1-2 мл подкожно бупивакаин гидрохлорид (0,25%).
    1. Сделать два разреза кожи 3 см с каждой стороны шеи (примерно 6 см дистальнее головы) рядом с трахеи. Разрезов должно поперечные шеи.
    2. Выполните разрез с помощью Прижигающая при палаток в кожу, чтобы избежать трагических глубоких тканей.
  2. Отдельные фасции, используя щипцы изогнутые Келли или комаров.
  3. Изолируйте правой внутренней яремной вены и правой общей сонной артерии.
    1. Место два 20 см, 0 шелковыми швами под обоих судов.
    2. Разрешить (проксимальнее дистальной) пространство 1 см между шелковыми швами.
    3. Аккуратно поднимите каждый шов, что вокруг судна, поверхностно, ограничивать поток крови и сделать 1-2 мм поперечного раскроя в сосуд, используя Ножницы хирургические Iris.
  4. Для сонной артерии вставьте один из предварительно промыть катетер (15 – 17 G) в правой сонной артерии каудально к аорты мониторинг артериального давления и проб крови.
    1. Используйте проксимальной галстук, чтобы полностью перевязать артерии.
    2. Повторите шаги 6.3.2 - 6.3.3.
    3. Вставьте предварительно промыть катетер сонной артериальной и использовать дистальной Шелковый шов завязать вокруг артерии и катетер с 3 узлов.
  5. Использование подобную технику, чтобы вставить один из предварительно промыть катетер (14 – 16 G) в яремную Вену, повторите шаги 6.3.2–6.3.3, заранее 7 – 10 см каудально к отдыху в пределах грудной входе (в направлении правого предсердия). Это используется для жидкости и лекарства администрации, а также измерение венозного давления.
    1. Проверьте катетер для проходимости с гепаринизированным засолены и затем завершить швов галстук вокруг судна и катетер (с проксимальных шовные только) с помощью 2-3 knots.
    2. Вставьте второй катетера (14 – 16 G) приблизительно в 5 см рострально для сбора крови от мозгового кровообращения. Используйте же разрез для размещения обеих катетеры.
    3. Повторите шаг 6.5.1, как он относится к дистальной шовные и катетер, а затем связать шелковые швы вокруг линии сопротивляясь катетер для обеспечения их во избежание скручивания.
  6. Расширить ранее сделанные разрезы в T-фигуру (1 – 2 см) на левой стороне.
    1. Поднимите левой сонной артерии, с использованием открытых изогнутые hemostats.
    2. Место 2 мм периваскулярной потока зонд вокруг судна для измерения потока крови.
    3. Обложка потока зонд 1-см гибкий полимер рукав для стабилизации зонд в позиции.
    4. Поместите кабельной линии потока зонд в Т-образный разрез, позволяя кабель параллельно с судна.
    5. Закройте разрез кожи. Галстук вокруг кабеля и вокруг петлю кабеля, чтобы избежать ограничения потока, если потянул.

7. большое судно приборостроение

  1. Экстракт плода ягненка подвергать грудь и покрыть открытые участки кожи с полиэтиленовой пленкой для предотвращения потери тепла.
  2. Положите баранину в правой боковой recumbency.
  3. Позиция левого передних конечностей вокруг шеи подвергать хирургической сайта.
  4. Проникновения 3 мл бупивакаин гидрохлорид (0,25%) вдоль 4й межреберное пространство и сделать разрез кожи 6 см, с помощью Прижигающая.
    1. Тщательно проколоть межреберные мышцы с тупым Изогнутый пинцет, круг под 3rd ребра и выйти между следующий межреберное пространство. Убедитесь в том, чтобы не травмировать легких или сердце.
    2. Откройте зажим для предварительно отрезанный кусок 0 шелка и привести его окружить ребра.
    3. Повторите шаги 7.4.1–7.4.2 для защиты швов под 4й ребра.
    4. Зажим связей вокруг каждого ребра. Осторожно потяните и вставьте хлопок наконечником аппликатором в груди под 4й межреберное пространство.
    5. Используйте аппликатор ручки для защиты содержимого грудь в то время как с помощью Прижигающая открыть межреберное пространство в 1 см для окончательного открытия 6-8 см. Убедитесь, что легких не поймали в ребра связей.
    6. Место ребра разбрасыватель в груди отверстие. Открытие груди будет выявить левой верхних долей легких, легочной артерией (ПА) и открытого артериального протока.
  5. Используйте 2 x 2 дюйма сетки окутывать легких и аккуратно вставьте любой подвергаются ткани вне области хирургического.
    1. Используйте небольшой ручной втягивающего улучшить поле зрения (при необходимости).
    2. Место пупочной лента (1/4 дюйма ширина, длина 6 дюймов) предварительно замочить в амнион вокруг магистральных сосудов. Замачивания пупочной ленты уменьшается трение (и травмы) на стенках сосудов.
  6. С помощью щипцов, поднимите перикарда и разрезать вдоль главной легочной артерии, стараясь не вырезать блуждающего нерва. Используйте аппликатор палку держать правого предсердия от вмешательства с боковым разрезом перикарда вдоль блуждающего нерва.
  7. С помощью щипцов Близнецы, щипцы медленно двигаться от надреза протоковой/PA вокруг и за левую ПА «окружить» и выйти на другой стороне левой ПА. Многие деликатные ткани работать в этой области и только если существует никакого сопротивления.
    1. Когда кончик щипцами наблюдается, откройте только достаточно далеко, захватить один конец предварительно смоченной пупочной ленты. Зажим с только 1 позиции, выбранной в месте. Вполне возможно, что окружающие ткани могут быть перехвачены в щипцы слишком, и если плотно зажата что ткани может быть пойман с пуповинной ленты, судно травме.
    2. Аккуратно обратно щипцами вытащить кассету в позицию. Это служит чтобы открыть пространство для потока зонд и помогает направлять вставки потока зонды (рис. 2). Уход для защиты вырез часть любого судна необходимо, как это наиболее хрупкой частью ткани.
  8. Место 4 – 6 мм периваскулярной потока зонд осторожно подняв пупочной ленты и руководства (L-скобка) металлические части зонда вокруг судна вдоль установленной открытия.
    1. Прямые ленты к задней части датчика чтобы помочь место судна на месте и визуализировать конца L-скобка таким образом позволяя скольжения закрытие обеспечивается.
    2. Убедитесь, что судно > 75% от размера зонд для обеспечения потока жесткой подходят и точных измерений.
    3. Аккуратно отрежьте конец пуповины ленты недалеко от зонда и осторожно потяните другой конец удалите ленту с судна. Ленты, будет мешать измерения, если они не будут удалены.
    4. Нанесите гель для УЗИ и отрегулировать положение датчика и кабеля для повышения интенсивности сигнала и качества.
  9. Повторите шаги 7,6 – 7.7.4, как она относится к размещение 6-8 мм периваскулярной потока зонд вокруг открытого артериального протока.
  10. Удалите любые защитные марлей 2 x 2 из груди и позволяют легких пересмотреть позицию.
  11. Место новой марлей 2 x 2 вокруг каждого металла кронштейна потока зонда для защиты легких.
  12. Закройте грудь в слои с помощью конической иглы и 2.0 синтетического моноволокна шовный материал. Закрепите кабели потока зондов внешней кожи с помощью цикла с помощью иглы резки и 2.0 Шелковый шов.

8. неинвазивное измерение

  1. Прикрепите ЭКГ приводит в правой подмышечной впадине, левой подмышечной впадине и правой паховой области (три ведущий ЭКГ). Пред- и пост протоковой артериальной оксигемоглобина насыщения (SpO2) контролируется с пульсоксиметр размещен на правой передних конечностей и либо задних конечностей, соответственно. Безопасные спектроскоп ближней ИК-области (БИК) монитор на лоб с швы и непрозрачные заправкой.

9. сбор данных

  1. Собирать и записывать данные, используя программное обеспечение для сбора данных. Рисунок 1 иллюстрирует инвазивные и неинвазивные параметров, в том числе: артериальной и Центральной венозной крови давление, левый общей сонной артерии, левой легочной и протоковой артериальной крови поток, ЭКГ, SpO2, НДК, ETCO2.
    Примечание: Установка программного обеспечения и оборудования для сбора данных может изменяться и выходит за рамки этой статьи.

10. экспериментальный протокол

  1. Загородить и отрезать пуповину, переместить ягненка от матери живот лучистого теплее.
  2. В asphyxial период, вставьте пупочного венозного катетера для администрирования эпинефрина (0,01-0,03 мг/кг IV, на NRP рекомендации).
  3. Вставьте артериального катетера для катетеризации пуповинной для сбора газов после протоковой артериальной крови.
  4. Следить за Агнцем для предстоящего асистолия, которая может быть определена как отсутствие обнаруженных сонной потока и давления.
  5. Обеспечить наличие надлежащего персонала и выделить каждому человеку для следующих задач: (1) Управление вентиляцией и дыхательные пути, (2) выполнять компрессии грудной клетки, (3) Администрирование лекарства, (4) рисовать образцы крови, (5) привести код.
  6. Начните реанимации, предоставляя вентиляции с положительным давлением (PPV) с тройник реаниматолог при давлении 35/5 см H2O. инициировать таймер 20 мин для экспериментальных реанимации протокола.
  7. После 30 s вентиляции, начать компрессии грудной клетки, поместив большой палец и пальцы одной руки на противоположных сторонах груди.
    1. Обеспечивают компрессии грудной клетки, сжимая пальцами и большим пальцем вместе на глубину примерно 1/3.
  8. Администрировать эпинефрина интервалом 3-мин.
  9. Продолжать усилия реанимации до возвращения спонтанное обращения или до 20 мин.
  10. При возвращении спонтанное циркуляции, непрерывной IV жидкости (5 cc/кг/ч) и фентанилом (0,5-2,0 мкг/кг/ч; титруемая для эффекта), даются через ранее установленных югулярной венозного катетера. После реанимации период 20 мин животное умерщвлены. Если ягнята не достигают ДССК по 20 мин, приступайте к эвтаназии.

Доступ ограничен. Войдите в систему или начните пробный период, чтобы просмотреть этот контент.

Результаты

После инструментирования плода ягнят гемодинамики переменные могут быть записанные (рис. 3 и рис. 4), затем проанализированы и интерпретировать (рис. 5). Частые крови могут быть собраны, и на рисунке 6 показан pH и Пако2 данные из одного из экспериментов. Иногда катетеры и зонды потока может работать неправильно или получить выбили и данные можно, таким образо...

Доступ ограничен. Войдите в систему или начните пробный период, чтобы просмотреть этот контент.

Обсуждение

Lamb модель сопоставимые по размеру с человека новорожденных и позволяет легко инструментария для измерения инвазивных гемодинамических переменных. Модель плода/новорожденного ягненок был бесценный исследовательского инструмента, который богато способствовала пониманию перехода циркуляции, а также легких и сердечно-сосудистой физиологии новорожденных. Несколько экспериментальных ягненка модели были созданы за годы изучения стратегии оптимальной вентиляции в недоношенных новорожденных ягнят13,...

Доступ ограничен. Войдите в систему или начните пробный период, чтобы просмотреть этот контент.

Раскрытие информации

Авторы не имеют никаких конфликтов интересов объявить

Материалы

Список материалов, использованных в этой статье
ИмяКомпанияКаталожный номерКомментарии
Щипцы BabcockMiltex16-44
Преобразователь артериального давленияBecton DickinsonP23XL-1Используется с заполненными физиологическим раствором куполами
диафрагмы Ножницы с тупым наконечникомMiltex98SCS50-56
КапнографPhilips7900Используется с неонатальными датчиками потока
Карандаш для прижиганияValley Lab287879
Устройство для прижиганияValley LabSSE2K
Изогнутые щипцыEverost711714
Программное обеспечение для сбора данныхBiopac Systems Inc.
EKGBiopac Systems Inc.
Эндотрахеальная трубка с манжетой111780035
модулятором потокаTransonic Systems Inc. T403
Проточный зондTransonic Systems Inc. MC4PSS-LS-WC100-CM4B-GA
Желудочный зондJorgensen Labs Inc.J0106LEДля декомпрессии и дренирования овечьего живота
Машинка для стрижки волосAndis Company65340 # 40 Лезвие машинки для стрижки
младенцев Лучистый утеплительGE healthcare7810
Внутривенные катетерыBecton Dickinson381234
Iris хирургические ножницыPatterson510585
Kelly ForecepsPatterson
Москитные щипцыRICA Surgical Products INC1-74
Ближняя инфракрасная спектроскопияNonin Medical Inc. X-100MSensmart Equanox & Датчик PureSAT
RSO2 NoninMedical Inc. 8004CB-NAНеонатальные 
Рукоятка и лезвие скальпеляEverost707203
Шовные нити -шелк 2-0CovidienSS-695Используется для привязывания катетеров к сосудам
Шовные нити -vicryl  2-0EthiconJ269HИспользуются для закрытия торакотомии 
Т-образный реанимационный аппаратNeo-TeeMCM1050812
пуповинными связямиJorgensen Labs Inc.
Втягивающий ретрактор WeitlanderMiltex11-625
ACK100WECG100C510535J0025UA

Ссылки

  1. Wyckoff, M. H., Berg, R. A. Optimizing chest compressions during delivery-room resuscitation. Semin Fetal Neonatal Med. 13 (6), 410-415 (2008).
  2. Black, R. E., et al. Global, regional, and national causes of child mortality in 2008: a systematic analysis. Lancet. 375 (9730), 1969-1987 (2010).
  3. Guglani, L., Lakshminrusimha, S., Ryan, R. M. Transient tachypnea of the newborn. Pediatr Rev. 29 (11), e59-e65 (2008).
  4. Brown, M. J., Olver, R. E., Ramsden, C. A., Strang, L. B., Walters, D. V. Effects of adrenaline and of spontaneous labour on the secretion and absorption of lung liquid in the fetal lamb. J Physiol. 344, 137-152 (1983).
  5. Lakshminrusimha, S., Saugstad, O. D. The fetal circulation, pathophysiology of hypoxemic respiratory failure and pulmonary hypertension in neonates, and the role of oxygen therapy. J Perinatol. 36 Suppl 2, S3-S11 (2016).
  6. Wyckoff, M. H., et al. Part 13: Neonatal Resuscitation: 2015 American Heart Association Guidelines Update for Cardiopulmonary Resuscitation and Emergency Cardiovascular Care. Circulation. 132 (18 suppl 2), S543-S560 (2015).
  7. Bhatt, S., et al. Delaying cord clamping until ventilation onset improves cardiovascular function at birth in preterm lambs. J Physiol. 591 (Pt 8), 2113-2126 (2013).
  8. Katheria, A. C., Brown, M. K., Rich, W., Arnell, K. Providing a Placental Transfusion in Newborns Who Need Resuscitation). Front Pediatr. 5 (1), (2017).
  9. Kapadia, V. S., Wyckoff, M. H. Drugs during delivery room resuscitation--what, when and why? Semin Fetal Neonatal Med. 18 (6), 357-361 (2013).
  10. Barcroft, J. Researches on Pre-natal Life. 1, Blackwell Scientific Publications. 292(1946).
  11. Dawes, G. S. Foetal and Neonatal Physiosolgy. A Comparative Study of the Changes at Birth. , Yeark Book Medical Publishers. (1968).
  12. Rudolph, A. Congenital Diseases of the Heart: Clinical-Physiological Considerations. , Wiley-Blackwell. 1-24 (2009).
  13. Sobotka, K. S., et al. An initial sustained inflation improves the respiratory and cardiovascular transition at birth in preterm lambs. Pediatr Res. 70 (1), 56-60 (2011).
  14. Polglase, G. R., et al. Positive end-expiratory pressure differentially alters pulmonary hemodynamics and oxygenation in ventilated, very premature lambs. J Appl Physiol (1985). 99 (4), 1453-1461 (2005).
  15. Lakshminrusimha, S., et al. Oxygen concentration and pulmonary hemodynamics in newborn lambs with pulmonary hypertension. Pediatr Res. 66 (5), 539-544 (2009).
  16. Lakshminrusimha, S., et al. Pulmonary hemodynamics in neonatal lambs resuscitated with 21%, 50% and 100% oxygen. Pediatr Res. 62 (3), 313-318 (2007).
  17. Hooper, S. B., et al. Cardiovascular transition at birth: a physiological sequence. Pediatr Res. 77 (5), 608-614 (2015).
  18. Vali, P., et al. Evaluation of Timing and Route of Epinephrine in a Neonatal Model of Asphyxial Arrest. J Am Heart Assoc. 6 (2), (2017).
  19. Vali, P., et al. Continuous Chest Compressions During Sustained Inflations in a Perinatal Asphyxial Cardiac Arrest Lamb Model. Pediatr Crit Care Med. , (2017).
  20. Vali, P., et al. Hemodynamics and gas exchange during chest compressions in neonatal resuscitation. PLoS One. 12 (4), e0176478(2017).
  21. Tana, M., et al. Determination of Lung Volume and Hemodynamic Changes During High-Frequency Ventilation Recruitment in Preterm Neonates With Respiratory Distress Syndrome. Crit Care Med. 43 (8), 1685-1691 (2015).
  22. Morin, F. C. Ligating the ductus arteriosus before birth causes persistent pulmonary hypertension in the newborn lamb. Pediatr Res. 25 (3), 245-250 (1989).
  23. Morin, F. C., Egan, E. A. Pulmonary hemodynamics in fetal lambs during development at normal and increased oxygen tension. J Appl Physiol (1985). 73 (1), 213-218 (1992).
  24. Morin, F. C., Egan, E. A., Ferguson, W., Lundgren, C. E. Development of pulmonary vascular response to oxygen. Am J Physiol. 254 (3 Pt 2), H542-H546 (1988).
  25. Rawat, M., et al. Neonatal resuscitation adhering to oxygen saturation guidelines in asphyxiated lambs with meconium aspiration. Pediatr Res. , (2015).
  26. Chandrasekharan, P. K., et al. Continuous End-Tidal Carbon Dioxide Monitoring during Resuscitation of Asphyxiated Term Lambs. Neonatology. 109 (4), 265-273 (2016).
  27. Lakshminrusimha, S., et al. Tracheal suctioning improves gas exchange but not hemodynamics in asphyxiated lambs with meconium aspiration. Pediatr Res. 77 (2), 347-355 (2015).
  28. Meuli, M., et al. In utero surgery rescues neurological function at birth in sheep with spina bifida. Nat Med. 1 (4), 342-347 (1995).
  29. Meuli, M., et al. Creation of myelomeningocele in utero: a model of functional damage from spinal cord exposure in fetal sheep. J Pediatr Surg. 30 (7), 1028-1032 (1995).
  30. Adzick, N. S., et al. Correction of congenital diaphragmatic hernia in utero. IV. An early gestational fetal lamb model for pulmonary vascular morphometric analysis. J Pediatr Surg. 20 (6), 673-680 (1985).
  31. Harrison, M. R., Bressack, M. A., Churg, A. M., de Lorimier, A. A. Correction of congenital diaphragmatic hernia in utero. II. Simulated correction permits fetal lung growth with survival at birth. Surgery. 88 (2), 260-268 (1980).
  32. Turley, K., et al. Intrauterine cardiothoracic surgery: the fetal lamb model. Ann Thorac Surg. 34 (4), 422-426 (1982).
  33. Reddy, V. M., et al. In utero placement of aortopulmonary shunts. A model of postnatal pulmonary hypertension with increased pulmonary blood flow in lambs. Circulation. 92 (3), 606-613 (1995).
  34. Hemway, R. J., Christman, C., Perlman, J. The 3:1 is superior to a 15:2 ratio in a newborn manikin model in terms of quality of chest compressions and number of ventilations. Arch Dis Child Fetal Neonatal Ed. 98 (1), F42-F45 (2013).
  35. Solevåg, A. L., Schmölzer, G. M. Optimal Chest Compression Rate and Compression to Ventilation Ratio in Delivery Room Resuscitation: Evidence from Newborn Piglets and Neonatal Manikins. Frontiers in Pediatrics. 5 (3), (2017).
  36. Solevåg, A. L., et al. Chest compressions in newborn animal models: A review. Resuscitation. 96, 151-155 (2015).

Доступ ограничен. Войдите в систему или начните пробный период, чтобы просмотреть этот контент.

Перепечатки и разрешения

Теги

Переход от фетального к неонатальному периодуасфиксия при рождениипроцедура с открытой грудной клеткойпериваскулярный датчик кровотокаэндотрахеальная интубациякатетеризация пупочной веныгемодинамический мониторингПрограмма реанимации новорожденных
Перинатальной асфиксии Lamb модель: Модель для реанимации новорожденных
Связаться с нами
Порекомендовать библиотеке

Конфиденциальность

Условия использования

Политики

© 2026 MyJoVE Corporation. Все права защищены.