Для просмотра этого контента требуется подписка на JoVE. Войдите или начните свой бесплатный пробный период.

Методическая статья

Функциональная магнитно-резонансная спектроскопия в 7 T в коре ствола крыс во время активации ограничитель выбросов

8.6K просмотров

⸱

DOI:

10.3791/58912

⸱

8 февраля 2019 г.

 ,  ,  ,  ,  ,  , 
1Centre de Résonance Magnétique des Systèmes Biologiques (CRMSB), Unités Mixtes de Recherche (UMR) 5536, Centre National de la Recherche Scientifique (CNRS)/Université Bordeaux

В этой статье

Краткое содержание

После проверки по крови кислород уровня зависимой функциональной магнитно-резонансной томографии (жирный МР-томографию), соответствующий соматосенсорные баррель коры площади поля (называемый S1BF) правильно активирован, Главная цель этого исследования заключается в количественном определении содержания лактата колебания в активированных крыса мозги на локализованных протонного магнитного резонанса спектроскопии (1H-MRS) в 7 т.

Аннотация

Спектроскопия ядерного магнитного резонанса (ЯМР) предлагает возможность измерения мозгового метаболит содержимое в естественных условиях и неинвазивно. Благодаря технологических разработок последнего десятилетия и увеличение прочности магнитного поля это теперь возможно получить хорошее разрешение спектров в естественных условиях в мозге крыс. Neuroenergetics (т.е., исследование метаболизма мозга) и, особенно, метаболического взаимодействия различных типов клеток привлекают все больше и больше интереса в последние годы. Среди этих метаболического взаимодействия существование лактат Трансфер между нейронами и астроциты все еще обсуждается. Это, таким образом, большой интерес для выполнения функциональных протонного магнитного резонанса спектроскопии (1H-MRS) в мышиной модели активации и монитор лактат мозга. Однако метил лактат пик перекрывается резонанс пиков липидов и трудно поддаются количественной оценке. Описанные ниже протокол позволяет метаболических и лактата колебания контролироваться в районе активированного мозга. Церебральный активации получается путем стимуляции нитевидные и 1H-MRS выполняется в соответствующего активированного баррель коры, чьи области обнаруживается с помощью крови кислород уровня зависимой функционального магнитного резонанса (жирный МР-томографию). Подробно описаны все шаги: выбор анестетиков, катушек и последовательности, достижение эффективного нитевидные стимуляции непосредственно в магнит и обработки данных.

Введение

Мозг обладает встроенные механизмы, которые позволяют регуляции ее основных субстрата (то есть, глюкозы), и за его вклад и его использования, в зависимости от различий в местных мозговой деятельности. Хотя глюкозы является главным энергетическим субстратом для мозга, эксперименты, проведенные в последние годы показали, что лактат, который производится путем астроциты, может быть эффективной энергии субстрат для нейронов. Это поднимает гипотеза лактат Трансфер между астроциты и нейроны1. Известный как ANLS, экзоцитоз нейрон лактат Трансфер2, теория обсуждается до сих пор высоко но привело к предложению что глюкоза, вместо того, чтобы идти прямо в нейроны, могут ввести астроциты, где он метаболизируется в лактат, метаболита , затем переданы нейронов, которые используют его как энергии эффективным субстрат. Если в естественных условияхсуществует такой трансфер, он будет иметь несколько важных последствия, как для понимания основных методов в функциональной мозгового томографии (позитронно-эмиссионная томография [PET]), так и для расшифровки метаболических изменений наблюдается в патологии мозга.

Для изучения метаболизма мозга и, особенно, метаболические взаимодействия между нейронами и астроциты, четыре основные методы доступны (не включая микро-/ Наносенсоры): авторадиографии, PET, два Фотон флуоресцентные confocal микроскопии и миссис. Авторадиографии был одним из первых предлагаемых методов и предоставляет образы региональных накопления радиоактивного 14C-2-deoxyglucose в срезах головного мозга, а PET урожайности в vivo изображения регионального поглощение радиоактивных 18 F-deoxyglucose. Они оба имеют недостаток использования irradiative молекул при производстве низким пространственное разрешение изображений. Двух Фотон микроскопии обеспечивает сотовой резолюции флуоресцентных зондов, но рассеяния света в ткани ограничивает глубину визуализации. Эти три технологии ранее использовались для изучения neuroenergetics грызунов в столбик стимуляции3,4,5,6. В естественных условиях Миссис имеет двойное преимущество неинвазивной и нерадиоактивных, и любой структуры мозга могут быть изучены. Кроме того миссис может быть выполнена во время активации нейронов, называемый функциональный миссис (ОФМ), которая была разработана совсем недавно в грызунов7. Таким образом протокол для мониторинга метаболизм мозга во время мозговой активности 1H-MRS в естественных условиях и неинвазивно предлагается. Процедура описана в взрослых здоровых крыс с активации мозга, полученных путем стимуляции нитевидные воздуха слоеное, выполняются непосредственно в 7 тепловизор магнитный резонанс (МР) T, но могут быть адаптированы в генетически модифицированных животных, а также в любые патологические состояния .

Доступ ограничен. Войдите в систему или начните пробный период, чтобы просмотреть этот контент.

Протокол

Все животные процедуры проводились в соответствии с руководящими принципами экспериментов животных директиву Совета европейских сообществ от 24 ноября 1986 (86/609/ЕЕС). Протокол встретился этические принципы французского министерства сельского хозяйства и лесов и был одобрен комитетов местных этики (Comité d «этики pour L» исследования Animale Бордо n ° 50112090-A).

Примечание: Во время измерений MR, адекватный уровень анестезии и физиологического мониторинга (температура тела, частота дыхания) являются необходимым требованиям.

1. Животные

  1. Использование самцов крыс Wistar, весом от 350 до 450 g.
  2. Держите их на 12:12 ч света: темные цикла и предоставления продовольствия и воды ad libitum.

2. анестезия

  1. Подготовка оборудования, необходимого для анестезии (рис. 1A, B, смотрите Таблицу материалы): шприц 5 мл, содержащие medetomidine в растворе физиологического раствора (240 мкг/кг/ч, с частотой перфузии 20 мкл/мин), 0,5 мл шприц содержащие Атипамезола (20 мкл, в 0,5 мл физиологического раствора) и глазную мазь.
    Примечание: Сохраняйте все оборудование под вытяжкой, за исключением шприц 5 мл, содержащие medetomidine, который находится в шприцевой насос рядом магнит для анестезии во время приобретения MR.
  2. Место крыса в зале индукции, запустите анестезии, обеспечивая 4% изофлюрановая и отрегулировать скорость потока кислорода до 1,5 Л/мин.
  3. Оценка глубины анестезии путем оценки вывод лапы рефлексов.
  4. Когда крыса не реагирует на стимуляцию, взять его из коробки анестезии, поместите его на скамейке с его носом в изофлюрановая маске и поддержания анестезии, обеспечивая 2,5% кислорода в 1,5 Л/мин.
  5. Мягко массаж хвост и место жгут (рис. 1 c).
    Примечание: Массаж может выполняться в теплой воде при температуре между 38 и 42 ° C, чтобы получить лучше вазодилатация вен.
  6. Вставьте периферического внутривенного катетера (22 G), ранее гепаринизированным, в духе левый или правый хвост. Обратите внимание, что наблюдается венозный возврат (капля крови виден на дистальной части иглы) когда катетер правильно вставлен (рис. 1 d).
  7. Задуть воздушные пузыри в том катетер Мертвое пространство, используя шприц 2 мл, содержащих физиологического раствора раствор и гепарина.
  8. Примените Глазную мазь и подготовки шприц, содержащие Атипамезола (17 мкг/мл) чтобы пробудить крыса в конце эксперимента.

3. крыса размещение в магнит для стимуляции столбик

  1. Поместите датчик дыхание на кровати магнит и затем передать крысы из скамейке магнит кровати. Поместите его в лежачем положении с его носом в изофлюрановая маске, с датчиком дыхания, расположенный между грудной клетки и магнит кровати.
    Примечание: Все оборудование, которое входит в комнату МРТ должна быть МРТ Сейф.
  2. Уменьшение изофлюрановая (от 4% до 1,5%-2%), во время размещения Крыса и переключитесь анестезии medetomidine в конце этой процедуры. Убедитесь, что правый усы свободны, нарезав правый край в передней части крыса МРТ кровати заранее, чтобы позволить движение усы.
  3. Держите крыса в положении с лентой и контролировать свое дыхание, которая должна быть между 60 и 80 дыханий в минуту.
  4. Сделайте парус, который перехватывает все права усы в бумажной ленты (рис. 2). Совместите гибкие трубы системы воздуха слоеного вдоль крыса МРТ кровати так, что часть, выход из трубки перпендикулярна и около 1,5 см от паруса. Исправить это с бумажной ленты.

4. нитевидные стимуляции

  1. Подключите гибкий впускной трубы из источника сжатого воздуха (1 бар) электромагнитный клапан входа и сливную трубу к выходу Клапан электромагнитный контроль (рис. 3). Убедитесь, что электромагнитный клапан управления остается за пределами комнаты магнит.
  2. Подключите устройство пульсирующей электромагнитный клапан и в магнит, используя Транзисторно транзисторная логика (ТТЛ)-порт. Настроить его так, что пульсирующий частота = 8 Гц, пульсирующая время = 20 s и время отдыха = 10 s.
    Примечание: Эти параметры, визуализируется на небольшой жидкокристаллический экран (LCD), являются регулируемыми через три выделенных аналогическое потенциометры. Электронные пульсирующей устройство, которое контролирует парадигмы, должны состоять из высокого качества электронных компонентов, чтобы избежать любых дрейф в параметры времени (для правильного постобработка).

5. смелые МР-томографию приобретения

  1. Место мозга крысы, чтобы он был в вертикальном положении и использовать ухо баров для его поддержания. Место объем массива катушки над головой крыса (рис. 4A) и исправить ее с помощью липкой ленты. Проверьте, что парус движется правильно (переднезаднем движения, без вращения и без трения парус) когда система воздуха слоеное это оказалось на; затем выключите его.
  2. Вставьте кровати и катушка в центре магнита. Проверьте, что парус еще движется правильно, когда кровать находится внутри магнита, когда воздух слоеного система находится на; затем выключите его. Полностью переход от изофлюрановая к medetomidine (скорость перфузии: 20 мкл/мин).
  3. Проверьте что крысы хорошо расположен с помощью последовательности локализации (TE = 2,5 мс; TR = 100 мс; Средний = 1; повторение = 1; ломтик = 1 мм; Размер изображения = 256 x 256; поле зрения (FOV) = 50 x 50 мм; время сканирования = 12 s 800 мс). Перетащите вкладку последовательность локализатор в инструкции имя и нажмите кнопку продолжить.
  4. Перетащите вкладку последовательность T2_Star_FID_EPI в инструкции имя, центр ПЗ на середине мозга и перейдите на вкладку Настройка платформы чтобы открыть инструкцию отредактированный сканирования. Записать карту0 B и приступить к сканирования ШИМ.
    Примечание: Для карты B0 , используйте следующие параметры: впервые эхо = 1.65 мс; TR = 20 мс, средний = 1; флип угол = 30°; Эхо интервал = 3.805 МС; ломтик = 58 мм; Размер изображения = 64 x 64 x 64; ПЗ = 58 х 58 х 58 мм; время сканирования = 1 м 24 s 920 г-жа для сканирования ШИМ, используйте следующие параметры: voxel селективного возбуждения = паровой Гаусса импульса; TE = 5 мс; время смешивания = 10 мс; приобретение длительность = 204.8 мс; пропускная способность = 10000 Гц; время нахождения = 50 μs).
  5. Начало последовательности T2 Star_FID_EPI (TE = 16.096 МС; TR = 500 мс; Средний = 1; повторение = 600; ломтик = 1 мм; четыре последовательных фрагментов; Размер изображения = 128 x 128; ПЗ = 20 x 20 мм; пропускная способность = 333,333.3 Гц; время сканирования = 5 мин 00 s).
    Примечание: Из-за порт ТТЛ, внешний сигнал начнет воздуха слоеного системы в то же время. Парадигма = [20 s активации + 10 s отдых] x 10, для общей продолжительностью 600 сканов, 500 мс за сканирования. Ломтики сосредоточены на середине площади поля баррель.
  6. Приобрести другой последовательности локализации (же, как описано в разделе Шаг 5.3), чтобы сравнить с первой и проверить ли крыса перешла во время последовательности T2_Star_FID_EPI.
  7. Принести кровать в его начальное положение, удалить катушка массива тома и подключить поверхности катушки.

6. смелые обработка

  1. Откройте файл T2 Star_FID_EPI и читать T2 Star_FID_EPI изображения в Изображение. Откройте окно Запуск функционального контроллера, называется FunController.
  2. В этой вкладке, Обработка , выберите функциональные визуализации окна и определить протокол стимуляции (продолжительность и чередование на/Off периоды, соответствующие парадигме используется).
  3. Выберите окно протокола (dataset с 600 кадров) и вставьте значение 40 в закладке На период и 20 в Off период tab. Нажмите на вкладке Инвертировать атрибуции и перетащите Стимуляции государств ползунок влево, чтобы выбрать значение 1.
  4. В окне предварительной обработки нажмите на медиана-фильтр в плоскости для предварительной обработки и фильтра Median (2D, 3D) для последующей обработки.
  5. На вкладке выполнение нажмите кнопку и перетащите курсоры для настройки оверлея таблицы подстановки. Визуализируйте области активированного мозга (рис. 4В).

7. Протон миссис приобретений

  1. Чтобы правильно расположить поверхности катушки, измените положение головы крысы. Поворот головы (примерно 30° по часовой стрелке), так что поверхности катушки (рис. 5А) могут находиться чуть выше левый ствол мозга во время горизонтального и расположен в центре магнита внутри магнита.
  2. Место поверхности катушки, исправить ее на мозг крыс с помощью ленты (Рисунок 5B) и проверьте, что парус движется правильно (переднезаднем движения, без вращения и без трения паруса) когда система воздуха слоеное это оказалось на; затем он в Выключите главный выключатель.
  3. Проверьте, что парус движется правильно после кровати находится внутри магнита, когда воздух слоеного система находится на. Затем выключите его.
  4. Проверьте крыса позиционируется правильно с помощью последовательности локализации. Установите параметры следующим образом: TE = 2,5 мс; TR = 100 мс; Средний = 1; повторение = 1; ломтик = 1 мм; Размер изображения = 256 x 256; ПЗ = 50 x 50 мм; время сканирования = 12 s 800 мс.
    1. Перетащите вкладку последовательность локализатор в окно имени инструкции и нажмите на вкладку Continue , чтобы выполнить программу сканирования.
  5. Когда мозг локализации является правильным, перетащите вкладку последовательность T2_TurboRARE в окне инструкции имя и нажмите на продолжить , чтобы запустить программу сканирования. Эти анатомические изображения, вместе с предыдущих приобретения смелые МР-томографию, позволит правильно локализации voxel в S1BF для миссис.
    Примечание: Параметры T2_TurboRARE являются 14 срезов, 2 мм на срез, ПЗ = 2,5 х 2,5 см, TE = 100 мс, TR = 5000 мс, матрица = 128 x 128, последовательность время = 2 мин 40 с.
  6. Перетащите вкладку последовательность лазера в окно имени инструкции , место voxel (2 мм, длиной 2,5 мм, глубиной 3 мм) в центре области S1BF.
    1. Используйте Атлас мозга крыс и смелые МР-томографию повышение локализовать зоны на T2 изображения (рис. 6). Перейдите на вкладку Настройка платформы чтобы открыть инструкцию отредактированный сканирования. Нажмите на вкладку раскачиваться и изменить сопротивление (электронная загрузка) катушка получения слегка, чтобы настроить его. Щелкните на вкладке Применить по завершении настройки чтобы закрыть редактор Инструкция и применить изменения в отредактированных инструкции.
  7. Записать карту0 B и приступить к сканирования ШИМ и, затем, выполнять местные ШИМ.
    Примечание: Для карты B0 , используйте следующие параметры: впервые эхо = 1.65 мс; TR = 20 мс, средний = 1; флип угол = 30°; Эхо интервал = 3.805 МС; ломтик = 58 мм; Размер изображения = 64 x 64 x 64; ПЗ = 58 х 58 х 58 мм; время сканирования = 1 м 24 s 920 г-жа для сканирования ШИМ, используйте следующие параметры: voxel селективного возбуждения паровой Гаусса импульса; TE = 5 мс; время смешивания = 10 мс; приобретение длительность = 204.8 мс; пропускная способность = 10000 Гц; время нахождения = 50 МКС. Для местных ШИМ, используйте следующие параметры: вода подавления, пара приобретение длительность = 1,363.15 мс; очки = 4096; пропускная способность в Гц = 3,004.81 Гц; пропускная способность в ppm = 10 ppm; время нахождения = 166.40 μs; спектральное разрешение = 0,37 Гц/очков. Параметры лазера: эхо время = 19.26 МС; TR = 2500 МС; в среднем = 128 или 32; время сканирования = 5 мин 20 s или 1 мин 20 сек; приобретение очков = 4096.
  8. Выполните 1H-MRS.
    1. Начало 1H-MRS приобретение сначала в период покоя (4 x 32 лазерное сканирование + 128 Лазер сканирует; 2500 ms за сканирования).
    2. Приобрести другой последовательности локализации (же, как описано в разделе Шаг 5.3) для сравнения с Первая записанная и убедитесь, что крысы не переехал во время приобретения лазера.
    3. Выполнить 1H-MRS во время активации столбик с помощью лазера последовательности (4 x 32 лазерное сканирование + 128 Лазер сканирует; 2500 ms за сканирование) с системой воздуха слоеное (парадигмы = 20 s активации и 10 s отдыха).
    4. Еще раз выполните последовательность локализации, чтобы проверить ли крыса переехал.
      Примечание: Количество сканов и периодов отдыха/активации могут быть адаптированы и изменение, но всегда убедитесь, что крысы не движется, регулярно выполняя последовательность локализации.
  9. Принести кровать в его начальное положение, удалить поверхности катушки и переместить крысы обратно на скамейке. Inject Атипамезола в складку кожи, сделанные в крыса обратно вспять анестезии и пробудить его.

8. Протон миссис обработка

  1. Откройте программное обеспечение LCModel и нажмите на соответствующую вкладку для выбора типа данных справа ( Бесплатные спад индукции файл) и выбрать нужный файл. Нажмите кнопку ОК , когда это делается.
  2. Оптимизируйте параметры контроля количественной оценки шаг за шагом.
    1. В разделе название введите название и вручную определить адекватные ppm диапазона (например, 0,2 до 4,0 ppm), вручную введя необходимые значения в соответствующих полях.
    2. В разделе основы файлов , выберите и скачать нужный файл правильно подогнать макромолекулы базовый (он может быть предоставлен поставщиком программного обеспечения).
    3. Определить и загрузить элемент управления для ввода параметров. Подготовьте сохранить процесс всех типов полезных файлов заранее (таблица = компактных таблиц; PS = необходимости вывода PostScript; CSV = формат для таблиц; COORD = координаты для участков). Нажмите на вкладку RunLCModel , чтобы начать количественной оценки LCModel.
  3. Определение отдельных метаболитов для создания статистики.
    Примечание: LCModel обеспечивает метаболит количественного определения и оценки ошибок значение называют Cramér-РАО Нижняя граница (CRLB). Значение с CRLB < 15 рассматривается как оптимальная количественной оценки. CRLB > 25 указывает значение ненадежны.

Доступ ограничен. Войдите в систему или начните пробный период, чтобы просмотреть этот контент.

Результаты

Этот протокол позволяет количественная оценка метаболит колебаний во время активации мозга, который получается путем стимуляции правой нитевидные непосредственно в магнит.

В этом исследовании Общая цель смелые МР-томографию было проверить, что столбик стимуляции был эффективным, чтобы визуализировать области активированного S1BF и правильно найти voxel для 1H-ОФМ. Устройство для активации столбик является эффективным....

Доступ ограничен. Войдите в систему или начните пробный период, чтобы просмотреть этот контент.

Обсуждение

Ствол коры, также называется S1BF соматосенсорной коры или ствол поля, — регион в пределах коркового слоя IV, который можно наблюдать с помощью цитохрома с-оксидазы пятнать9, и ее организация хорошо известно, так как он был во многом описанные 10,11. Один пришла связан с одного ствола, в котором около 19000 нейронов организованы в колонке12. Столбик баррель коры путь имеет несколько преимуществ. Во-первых оно может ...

Доступ ограничен. Войдите в систему или начните пробный период, чтобы просмотреть этот контент.

Раскрытие информации

Авторы не имеют ничего сообщать.

Благодарности

Эта работа была поддержана тропа LabEx Грант, ссылка АНР-10-LABX-57 и Французск-Швейцарца АНР-ФНС предоставить ссылку АНР-15-CE37-0012. Авторы благодарят Орельен Тротье за его техническую поддержку.

Доступ ограничен. Войдите в систему или начните пробный период, чтобы просмотреть этот контент.

Материалы

Список материалов, использованных в этой статье
ИмяКомпанияКаталожный номерКомментарии
Шприц 0,5 мл с иглойBecton, Dickinson and Company, США2020-100,33 мм (29 G) x 12,7 мм
1H спектроскопия поверхностная катушкаBruker, Эттлинген, ГерманияT116344
7T система Bruker BiospecBruker, Эттлинген, Германия70/20 USR
Arduino Uno на базе импульсного устройствана заказ
АтипамезолVé toquinol, S.A., FranceV8335602Антиседан, 4,28 мг
Дыхательная маскана заказ
Глазная мазьTVM laboratoire, Франция40365Гель Ocry 10 г
Индукционная камерана заказ30x17x15 см
Входная гибкая трубаGardena, Германия1348-204,6 мм диаметр, длина
3 мИзофлурановый насос, испаритель серии Модель 100, классический T3Surgivet, Harvard ApparatusWWV90TTот OH 43017, США
Изофлуран, жидкость для ингаляцийVertflurane, Virbac, ФранцияQN01AB061000 мг/мл
KD Scientific шприцевой насосKD sientific, Holliston, СШАLegato 110
LCModel программное обеспечениеLCModel Inc., Онтарио, Канада6.2
Медетомидина гидрохлоридVé toquinol, S.A., FranceQN05CM91Domitor, 1 мг/мл
Микропористый рулон лейкопластыря3M micropore, Миннесота, СШАMI912
Микропористый рулон лейкопластыря3M micropore, Миннесота, СШАMI925
Система мониторинга физиологических параметровSA Instruments, Inc, Стоуни-Брук, Нью-Йорк, СШАModel 1025
NaClFresenius Kabi, ГерманияB05XA030,9 % 250 мл
Выходная гибкая трубаGardena, Германия1348-20диаметр 4,6 мм, длина 4 м
Программное обеспечениеParavision Bruker, Ettlingen, Германия6.0.1
Периферический внутривенный катетерTerumo, Shibuya, Tokyo, JaponSP500930S22 G x 1", 0,85x25 мм, 35 мл/мин
Катушка для крысиной головыBruker, Ettlingen, Германия
Sodic гепарин, раствор для инъекцийChoai, Sanofi, Париж, ФранцияB01AB015000 МЕ/мл
электромагнитные регулирующие клапаны, плунжерный клапан 2/2-ходовой прямого действияBurkert, Германия3099939Модельный тип 6013
Terumo 2 мл шприцTerumo, Сибуя, Токио, JaponSY243с иглой 21 г x 5/8"
Terumo 5 мл шприцTerumo, Сибуя, Токио, Япония05SE1
Wistar RJ-Han ratsJanvier Laboratories, Франция

Ссылки

  1. Pellerin, L., et al. Activity-dependent regulation of energy metabolism by astrocytes: an update. Glia. 55, 1251-1262 (2007).
  2. Pellerin, L., Magistretti, P. J. Glutamate uptake into astrocytes stimulates aerobic glycolysis: a mechanism coupling neuronal activity to glucose utilization. Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America. 91, 10625-10629 (1994).
  3. Cholet, N., et al. Local injection of antisense oligonucleotides targeted to the glial glutamate transporter GLAST decreases the metabolic response to somatosensory activation. Journal of Cerebral Blood Flow & Metabolism. 21, 404-412 (2001).
  4. Voutsinos-Porche, B., et al. Glial Glutamate Transporters Mediate a Functional Metabolic Crosstalk between Neurons and Astrocytes in the Mouse Developing Cortex. Neuron. 37, 275-286 (2003).
  5. Zimmer, E. R., et al. [18F]FDG PET signal is driven by astroglial glutamate transport. Nature Neuroscience. 20 (3), 393-395 (2017).
  6. Haiss, F., et al. Improved in vivo two-photon imaging after blood replacement by perfluorocarbon. The Journal of Physiology. , (2009).
  7. Mullins, P. G. Towards a theory of functional magnetic resonance spectroscopy (fMRS): A meta-analysis and discussion of using MRS to measure changes in neurotransmitters in real time. Scandinvian Journal of Psychology. 59, 91-103 (2018).
  8. Rat Brain Atlas. , Available from: http://Labs.gaidi.ca/rat-brain-atlas/ (2018).
  9. Wong-Riley, M. T., Welt, C. Histochemical changes in cytochrome oxidase of cortical barrels after vibrissal removal in neonatal and adult mice. Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America. 77, 2333-2337 (1980).
  10. Petersen, C. C. The functional organization of the barrel cortex. Neuron. 56, 339-355 (2007).
  11. Cox, S. B., Woolsey, T. A., Rovainen, C. M. Localized dynamic changes in cortical blood flow with whisker stimulation corresponds to matched vascular and neuronal architecture of rat barrels. Journal of Cerebral Blood Flow & Metabolism. 13, 899-913 (1993).
  12. Feldmeyer, D. Excitatory neuronal connectivity in the barrel cortex. Frontiers in Neuroanatomy. 6, 24(2012).
  13. Boussida, S., Traore, A. S., Durif, F. Mapping of the brain hemodynamic responses to sensorimotor stimulation in a rodent model: A BOLD fMRI study. PLoS One. 12, e0176512(2017).
  14. Heinke, W., Koelsch, S. The effects of anesthetics on brain activity and cognitive function. Current Opinion in Anesthesiology. 18, 625-631 (2005).
  15. Horn, T., Klein, J. Lactate levels in the brain are elevated upon exposure to volatile anesthetics: a microdialysis study. Neurochemistry International. 57, 940-947 (2010).
  16. Boretius, S., et al. Halogenated volatile anesthetics alter brain metabolism as revealed by proton magnetic resonance spectroscopy of mice in vivo. Neuroimage. 69, 244-255 (2013).
  17. Sinclair, M. D. A review of the physiological effects of alpha2-agonists related to the clinical use of medetomidine in small animal practice. Canadian Veterinary Journal. 44, 885-897 (2003).
  18. Weber, R., et al. A fully noninvasive and robust experimental protocol for longitudinal fMRI studies in the rat. Neuroimage. 29, 1303-1310 (2006).
  19. Hartmann, M. J., Johnson, N. J., Towal, R. B., Assad, C. Mechanical characteristics of rat vibrissae: resonant frequencies and damping in isolated whiskers and in the awake behaving animal. The Journal of Neuroscience. 23, 6510-6519 (2003).
  20. Prichard, J., et al. Lactate rise detected by 1H NMR in human visual cortex during physiologic stimulation. Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America. 88, 5829-5831 (1991).
  21. Sappey-Marinier, D., et al. Effect of photic stimulation on human visual cortex lactate and phosphates using 1H and 31P magnetic resonance spectroscopy. Journal of Cerebral Blood Flow & Metabolism. 12, 584-592 (1992).
  22. Mazuel, L., et al. A neuronal MCT2 knockdown in the rat somatosensory cortex reduces both the NMR lactate signal and the BOLD response during whisker stimulation. PLoS One. 12, e0174990(2017).
  23. Castellano, G., et al. NAA and NAAG variation in neuronal activation during visual stimulation. Brazilian Journal of Medical and Biological Research. 45, 1031-1036 (2012).
  24. Sarchielli, P., et al. Functional 1H-MRS findings in migraine patients with and without aura assessed interictally. Neuroimage. 24, 1025-1031 (2005).
  25. Baslow, M. H., Hrabe, J., Guilfoyle, D. N. Dynamic relationship between neurostimulation and N-acetylaspartate metabolism in the human visual cortex: evidence that NAA functions as a molecular water pump during visual stimulation. Journal of Molecular Neuroscience. 32, 235-245 (2007).
  26. Mangia, S., Tkac, I. Dynamic relationship between neurostimulation and N-acetylaspartate metabolism in the human visual cortex: evidence that NAA functions as a molecular water pump during visual stimulation. Journal of Molecular Neuroscience. 35, 245-248 (2008).
  27. Baslow, M. H., Hrabal, R., Guilfoyle, D. N. Response of the authors to the Letter by Silvia Mangia and Ivan Tkac. Journal of Molecular Neuroscience. 35, 247-248 (2008).
  28. Barros, L. F., Weber, B. CrossTalk proposal: an important astrocyte-to-neuron lactate shuttle couples neuronal activity to glucose utilisation in the brain. The Journal of Physiology. 596, 347-350 (2018).
  29. Bak, L. K., Walls, A. B. CrossTalk opposing view: lack of evidence supporting an astrocyte-to-neuron lactate shuttle coupling neuronal activity to glucose utilisation in the brain. The Journal of Physiology. 596, 351-353 (2018).

Доступ ограничен. Войдите в систему или начните пробный период, чтобы просмотреть этот контент.

Перепечатки и разрешения

Теги

7BOLD
Функциональная магнитно-резонансная спектроскопия в 7 T в коре ствола крыс во время активации ограничитель выбросов
Свяжитесь с нами
Рекомендовать библиотеке

Конфиденциальность

Условия эксплуатации

Политика

Авторские права © 2026 MyJoVE Corporation. Все права защищены.