-1::1
Simple Hit Counter
Skip to content

Products

Solutions

×
×
Sign In

RU

EN - EnglishCN - 简体中文DE - DeutschES - EspañolKR - 한국어IT - ItalianoFR - FrançaisPT - Português do BrasilPL - PolskiHE - עִבְרִיתRU - РусскийJA - 日本語TR - TürkçeAR - العربية
Sign In Start Free Trial

RESEARCH

JoVE Journal

Peer reviewed scientific video journal

Behavior
Biochemistry
Bioengineering
Biology
Cancer Research
Chemistry
Developmental Biology
View All
JoVE Encyclopedia of Experiments

Video encyclopedia of advanced research methods

Biological Techniques
Biology
Cancer Research
Immunology
Neuroscience
Microbiology
JoVE Visualize

Visualizing science through experiment videos

EDUCATION

JoVE Core

Video textbooks for undergraduate courses

Analytical Chemistry
Anatomy and Physiology
Biology
Cell Biology
Chemistry
Civil Engineering
Electrical Engineering
View All
JoVE Science Education

Visual demonstrations of key scientific experiments

Advanced Biology
Basic Biology
Chemistry
View All
JoVE Lab Manual

Videos of experiments for undergraduate lab courses

Biology
Chemistry

BUSINESS

JoVE Business

Video textbooks for business education

Accounting
Finance
Macroeconomics
Marketing
Microeconomics

OTHERS

JoVE Quiz

Interactive video based quizzes for formative assessments

Authors

Teaching Faculty

Librarians

K12 Schools

Biopharma

Products

RESEARCH

JoVE Journal

Peer reviewed scientific video journal

JoVE Encyclopedia of Experiments

Video encyclopedia of advanced research methods

JoVE Visualize

Visualizing science through experiment videos

EDUCATION

JoVE Core

Video textbooks for undergraduates

JoVE Science Education

Visual demonstrations of key scientific experiments

JoVE Lab Manual

Videos of experiments for undergraduate lab courses

BUSINESS

JoVE Business

Video textbooks for business education

OTHERS

JoVE Quiz

Interactive video based quizzes for formative assessments

Solutions

Authors
Teaching Faculty
Librarians
<<<<<<< HEAD
K12 Schools
Biopharma
=======
K12 Schools
>>>>>>> dee1fd4 (fixed header link)

Language

ru_RU

EN

English

CN

简体中文

DE

Deutsch

ES

Español

KR

한국어

IT

Italiano

FR

Français

PT

Português do Brasil

PL

Polski

HE

עִבְרִית

RU

Русский

JA

日本語

TR

Türkçe

AR

العربية

    Menu

    JoVE Journal

    Behavior

    Biochemistry

    Bioengineering

    Biology

    Cancer Research

    Chemistry

    Developmental Biology

    Engineering

    Environment

    Genetics

    Immunology and Infection

    Medicine

    Neuroscience

    Menu

    JoVE Encyclopedia of Experiments

    Biological Techniques

    Biology

    Cancer Research

    Immunology

    Neuroscience

    Microbiology

    Menu

    JoVE Core

    Analytical Chemistry

    Anatomy and Physiology

    Biology

    Cell Biology

    Chemistry

    Civil Engineering

    Electrical Engineering

    Introduction to Psychology

    Mechanical Engineering

    Medical-Surgical Nursing

    View All

    Menu

    JoVE Science Education

    Advanced Biology

    Basic Biology

    Chemistry

    Clinical Skills

    Engineering

    Environmental Sciences

    Physics

    Psychology

    View All

    Menu

    JoVE Lab Manual

    Biology

    Chemistry

    Menu

    JoVE Business

    Accounting

    Finance

    Macroeconomics

    Marketing

    Microeconomics

Start Free Trial
Loading...
Home
JoVE Journal
Biology
Подготовка биологический образец высокого давления замораживания, при содействии Микроволновая пе...

Research Article

Подготовка биологический образец высокого давления замораживания, при содействии Микроволновая печь контрастности и минимальным смолы, встраивание образов тома

DOI: 10.3791/59156

March 19, 2019

Anna M. Steyer1,2, Torben Ruhwedel1, Wiebke Möbius1,2

1Electron Microscopy Core Unit,Max Planck Institute of Experimental Medicine, 2Center Nanoscale Microscopy and Molecular Physiology of the Brain (CNMPB)

Cite Watch Download PDF Download Material list
AI Banner

Please note that some of the translations on this page are AI generated. Click here for the English version.

In This Article

Summary Abstract Introduction Protocol Representative Results Discussion Disclosures Acknowledgements Materials References Reprints and Permissions

Erratum Notice

Important: There has been an erratum issued for this article. View Erratum Notice

Retraction Notice

The article Assisted Selection of Biomarkers by Linear Discriminant Analysis Effect Size (LEfSe) in Microbiome Data (10.3791/61715) has been retracted by the journal upon the authors' request due to a conflict regarding the data and methodology. View Retraction Notice

Summary

Здесь мы представляем собой протокол для объединения двух методов обработки образца, высокого давления замораживания и образца при содействии микроволновой обработки, после чего минимальным смолы, встраивание для получения данных с целенаправленной ионного луча сканирующего электронного микроскопа (FIB-SEM). Это продемонстрировано с помощью мыши Большеберцовый нерв образца и Caenorhabditis elegans.

Abstract

Техника подготовки описан пример призван объединить лучшее качество ультраструктурных сохранения с наиболее подходящий контраст для визуализации модальности в целенаправленной ионного пучка сканирующего электронного микроскопа (FIB-SEM), который используется для получения стеки последовательных изображений 3D реконструкции и моделирования. Высокого давления, замораживания (HPF) позволяет близко к родной структурных сохранения, но последующие заморозить замены часто не обеспечивает достаточного контраста, особенно для больших образца, который необходим для высококачественных изображений в SEM, необходимых для 3D реконструкция. Таким образом, в настоящем Протоколе, после замены моратория, дополнительные контрастные шаги выполняются при комнатной температуре. Хотя эти шаги выполняются в микроволновую печь, это также можно следовать традиционной скамьи обработки, которая требуется более длительное время инкубации. Последующие вложения в минимальное количество смолы позволяет быстрее и более точной ориентации и подготовки внутри FIB SEM. Этот протокол является особенно полезным для образцов, которые требуют подготовки путем замораживания высокого давления для надежного сохранения ультраструктурных, но не получить достаточно контраст во время замораживания замены для тома изображений с помощью БМУ-SEM. В сочетании с минимальным смолы встраивание этот протокол обеспечивает эффективный рабочий процесс для приобретения высококачественных объем данных.

Introduction

Высокого давления замораживание является подготовка образца методом выбора для получения ультраструктурных сохранение высокого качества, который представляет состояние собственного образца гораздо лучше, чем обычные подготовка методы, с помощью химической фиксации1. Этот метод крио подготовка полезен для образцов ткани Миелинизированные мыши2 и строгое требование для использования модели организма Caenorhabditis elegans3. После замены замораживание и встраивание смолы эти образцы обычно анализируются просвечивающей электронной микроскопии (ТЕА) или электронная томография (ET). Если большие объемы должны отражаться с помощью БМУ-SEM или последовательный блок лицо изображений для высокого разрешения крупномасштабных 3D реконструкций, наш опыт показывает, что правильное изображений по SEM часто затрудняется отсутствием контраста. В FIB-SEM изображение записывается обычно обнаружение рассеяния электронов от основного электронного луча. Урожайность рассеяния электронов пропорциональна содержание тяжелых металлов в образце. Таким образом протоколы были специально разработаны для тома изображений для повышения контраста дополнительных тяжелых металлов полимерами. Такие методы основаны на химически фиксированных выборок и применять сочетание осмия тетраоксид thiocarbohydrazide осмия тетраоксид4, как описано в Knott et al.5, для последовательного блока лица и сосредоточены ионного пучка сканирующая электронная микроскопия. Изменения, включая использование формамида и пирогаллол6 или свинца аспартат7 успешно применяется для различных методов обработки изображений.

Протокол, здесь сочетает крио подготовка образцов по ЖКХ и заморозить замещения с последующей обработки для повышения контраста, используя thiocarbohydrazide/осмия тетраоксид в ацетон при комнатной температуре, при содействии Микроволновая печь. Мы демонстрируем это на tibialis Миелинизированные nervus мышей и Caenorhabditis elegans, которые представляют образцы, которые требуют высокого давления, замораживание ультраструктурных сохранения высокого качества. Кроме того показано, как, после обезвоживания и инфильтрации, образцы внедряются с как мало смолы как можно скорее. Этот минимальный смолы, встраивание8 позволяет быстрее ориентации структуры интереса и уменьшает время, затраченное на обработку образца, включая меньше времени, необходимого для предоставления региона интерес с пучком ионов. После выполнения дальнейшие действия по подготовке образца внутри Микроскоп, imaging и фрезерные образца осуществляется непрерывно приобретать стек изображений. Для 3D визуализации обработки изображений программное обеспечение (IMOD) используется для восстановления части набора данных.

Наш рабочий процесс описывает, как наиболее подходящим контрастные образцов для тома изображений может сочетаться с лучших ультраструктурных сохранения по ЖКХ и моратория замещение. Это полезно для образцов, которые строго требуют крио подготовка. Приложения ограничены небольшие образцы, которые могут быть подготовлены HPF. В образцах различной природы, такие как растительного материала или микроорганизмов этот протокол требует адаптации.

Protocol

Все эксперименты, включая образцы от животных, описанные здесь были одобрены институциональный уход животных и Нижней Саксонии государственного управления для защиты клиента и продовольственной безопасности (LAVES).

1. высокого давления блокирования и замораживания замещения

  1. Вскрыть tibialis nervus мыши (например, C57Bl6N, 12 недель, самка)9.
  2. Погрузите tibialis nervus в капли 20% поливинилпирролидона (1 g PVP в 5 мл) в-фосфатный буфер (PBS) и вырезать куски длиной 2 мм. Затем поместите его в металлические прободержатели (тип А, 0,2 мм глубина) с помощью тонкой щипцами. Добавьте еще один плоский перевозчика (тип B) покрыта тонким слоем гексадекан как крышкой и вставьте патрон образца этой Ассамблеи.
  3. Передача нескольких C. elegans взвешенных в капельки 20% бычьим сывороточным альбумином (БСА) в M9 (см. Таблицу материалы) с одноразовые пластиковые пипетки в металлический корпус (тип A). Затем добавьте второй перевозчик как крышка на вершине (тип B) и собрать картриджа.
  4. Для обоих образцов, продолжить следующим: высокого давления замораживания образца перевозчик сборки один на один, загружая их в трехсекционный патрон в загрузки станции высокого давления морозильник. Нажмите кнопку процесса согласно инструкции по эксплуатации изготовителя.
    Примечание: Обоих типов образцов могут быть обработаны вместе в последующих замораживание замещения.
  5. Поместите образцы в криопробирки, содержащих 2 мл замороженных дубильной кислоты 0,1% в ацетоне. Выполните передачу в ванну жидкого азота без разливать жидкого азота во флаконы. Передача криопробирки в блок автоматического замораживания в замену10 в-90 ° C и запустите программу.
    Примечание: Образцы хранятся в-90 ° C для 100 h. дубильной кислоты до osmification используется как Морилка для увеличения поглощения осмия тетраоксид11.
  6. Вручную мыть образцы 3 x 30 мин с 2 мл ацетона в-90 ° C в группе замещения моратория.
  7. Оставьте образцов в 2 мл 2% осмия тетраоксид, уранила ацетата 0,1% в ацетон для дальнейшего окрашивания в автоматическом заморозить замены блока для 7 h-90 ° c.
    Предупреждение: осмия тетраоксид токсичных и должны быть обработаны под вытяжного шкафа, и должны носить защитное снаряжение.
    Примечание: Замораживание замены блока автоматически поднимает температуру до-20 ° C на 5 ° C/ч. Образцы хранятся в-20 ° C для 16 h в группе замещения моратория. Температура будет вызываться автоматически до 4 ° C на 10 ° C/ч.
  8. Обмен осмия тетраоксид решение с чистым ацетоном, когда температура достигает 4 ° C. Удаление криопробирки из блока замещения моратория.

2. при содействии микроволновой обработки

Примечание: Выполнить все следующие шаги при комнатной температуре12 с помощью блока управления температуры для поддержания стабильной температуры (см. Таблицу материалы).

  1. Оставьте открытым колпачки трубы реакции во время обработки в микроволновой печи.
  2. Возьмите металла прободержателей из криопробирки и удалить образцы из металлический корпус, с помощью тонкой щипцами или иглы, сохраняя образцы submersed в ацетоне в часы стекло блюдо (150 мм).
  3. Передача образцов в 2 мл пробирок реакции с помощью тонкой щипцами или пипетки и мыть с 1 мл ацетона четыре раза для 40 s 250 Вт.
    Предупреждение: Thiocarbohydrazide является токсичным и должны быть обработаны под вытяжного шкафа, должны носить защитное снаряжение.
  4. Пятно образцы с 1 мл 1% thiocarbohydrazide в ацетоне 14 мин 150 W, чтобы увеличить контрастность. Для окрашивания, Пипетка решение thiocarbohydrazide в трубу реакции, поместите трубку в микроволновой печи и настроить программу на уровень мощности 150 W (с функцией вакуумной включен) для 2/2 мин от итерации для 14 мин. Запустите микроволновой печи.
    Примечание: Thiocarbohydrazide реагирует с осмия тетраоксид, которая применялась во время моратория замещение. Он образует мост, позволяя более осмия тетраоксид депонироваться на оригинальные сайты осмия тетраоксид13.
  5. Стирать образцы 4 x 1 мл ацетона для 40 s 250 W. пипеткой ацетона в реакции трубку, поместите трубку в микроволновой печи и выберите пункт 250 Вт для 40 s. старта микроволновой печи.
  6. Пятно в 1 мл 2% осмия тетраоксид в ацетоне 14 мин 150 Вт пипеткой осмия тетраоксид решения в реакции трубку, поместите трубку в микроволновой печи и настроить программу на уровень мощности 150 W (с функцией вакуумной включен) для 2 мин/2 мин от , итерации для 14 мин. Запустите микроволновой печи.
  7. Стирать образцы 4 x 1 мл ацетона для 40 s на 250 Вт (как это сделано в шаге 2.5).
  8. Проникнуть в 1 мл увеличения концентрации смолы в ацетоне (см. Таблицу материалы) 25%, 50%, 75%, 90%, 100% и 100% за 3 мин 250 W. дозатор смолы в реакции трубку, поместите трубку в микроволновой печи и установить программу для питания Леве l 250 Вт (с функцией вакуумной включен) на 3 мин начать Микроволновая печь.

3. Минимальный смолы, встраивание8

  1. Возьмите nervus tibialis и C. elegans из трубки реакции с зубочисткой и место их на кусок пластиковой пленки (см. Таблицу материалы).
  2. Используйте зубочистку для аккуратно вставьте образец на пленку пока не обнаружено никаких оставшихся смолы. Используйте галогенная лампа для отопления (см. Таблицу материалы), поэтому смола становится менее вязкой и возможность более легко снимается. Место галогенная лампа достаточно близко, чтобы нагреть вверх смолы (будьте осторожны, чтобы не обжечь руки).
  3. Полимеризоваться образцы для по крайней мере 48 часов при температуре 60 ° C на верхней части пластиковой пленки в духовке.

4. Подготовка к FIB-SEM

  1. Вырезать полимеризованной образцы вместе с пластиковой пленки с помощью лезвия бритвы на размер установки заглушки SEM и прикрепить их к SEM заглушки с помощью проводящая Серебряная смолы (см. Таблицу материалы). Полимеризоваться снова при 60 ° C для по крайней мере 4 h или на ночь.
  2. Распыления пальто образцы на SEM заглушки с золотом за 1 мин 35 мА с помощью распыления нанесения покрытий (платины/палладия также могут быть использованы; 10 Нм толщиной покрытия достаточно) и поместите их в FIB SEM.

5. сбор данных внутри FIB-SEM

  1. Изображения образцов с детектор электронов средней, с использованием базового программного обеспечения, вождение микроскопа (см. Таблицу материалы). Образца должна быть ориентирована таким образом, что регион интерес (например, средняя часть nervus tibialis или C. elegans) находится в поле зрения.
    Примечание: Для выполнения сбора данных, наклона этап на позицию так, что образец сталкивается ионного пучка под углом в 90° на соответствующем расстоянии рабочей (5 мм) в так называемой совпадение точки пучка ионов и электронов. С помощью нашего инструмента, это достигается на стадии наклона 54° и 5 мм Рабочее расстояние.
  2. Чтобы настроить правильное положение образца, центр общей чертой на 0° наклона при визуализации с детектор средних электронов. Медленно наклона 54 ° (5°, 20°, 54°), recentering и тот же объект, перемещая М-оси.
  3. Найти совпадение точки центрирования функции при визуализации с детектор средних электронов на 54°, а затем перемещая функцию центральное место в режиме FIB. Выполните это, показывая перекрестья в SEM программное обеспечение, чтобы иметь представление центра. Тогда сначала переместите выбранный образец компонента в центр области изображения с помощью функции точки центр SEM программного обеспечения. Затем центр функцию по оси y, перемещая сцене в z. Любое окончательное смещение между FIB и SEM корректируется с SEM луч сдвига.
  4. Открыть расширенный программного обеспечения (см. Таблицу материалы) для записи 3D наборов данных и следуйте шаг за шагом мастера программного обеспечения.
  5. В регионе интереса, депозит углерода или платины (400 Нм) на вершине ROI использованием 3 nA текущего разрешить даже фрезерные и уменьшить артефакты индуцированных зарядки.
    Примечание: Путем рисования региона, представляющих интерес для фрезерования на поверхности образца, отображаемого с FIB (ширина, высота, глубина), программное обеспечение вычисляет и начитан размеров различных образцов подготовка функций, таких как траншеи, чтобы быть фрезерованные или области для Платина/углерода осаждения. Кроме того будьте осторожны изображений поверхности образца с слишком высокие токи FIB, как это может повредить поверхности образца. Ток 50 ПА является достаточным для изображений.
  6. Используйте целенаправленного ионный луч для стан траншею подвергать региона интерес (ROI) с помощью 15/30 nA текущей.
  7. Используйте целенаправленный ионный луч для полировки сечения с 7 nA текущей.
  8. После окончания подготовки пробы, установите следующие параметры изображений: FIB фрезерные параметры на вкладке Настройка FIB (FIB фрезерования тока); Визуализации параметров на вкладке установки и изображения, Настройка параметров на вкладке SEM AutoTune SEM (выполнения автофокусировки и autostigmation каждые 60 мин, размер пикселя 50 Нм, продолжительность 3, строка средняя 3). Оптимизируйте это для каждого образца.
  9. Чтобы предотвратить любой тепловой дрейф, вызывая блок лицо дрейф во время выполнения, оставьте место для по крайней мере 2 ч до начала приобретения.
  10. Получить набор данных в непрерывный стан и приобрести режим с 700 ПА FIB текущей. Использование 1,5 кв (аналитический режим, 900 V) детектор ESB с напряжением 400 V приобрести Сетка Фото с 5 размер пикселя Нм, используя передовые программное обеспечение (см. Таблицу материалы) и 50 Нм толшины. Приобретение одного изображения занимает около 1,5 мин с продолжительность 6 МКС.
  11. Начало сбора данных. FIB изображение на фрезерные текущего приобретается обеспечить образца не двигаться и выбран правильный области интереса. При необходимости отрегулируйте.

6. а. Визуализация

  1. Откройте изображения в Фиджи, перетащив папку, содержащую все изображения в Фиджи и выберите Виртуальный стек.
  2. Обрезка области интереса, используя инструмент прямоугольник (изображение > урожай).
  3. Инвертировать данные, чтобы показать контраст традиционной передачи электронной микроскопии с мембранами, показывая вверх в темноте (Редактировать > Инвертировать).
  4. Использование TrackEM214 (15Фиджи) для выравнивания. Загрузить данные в TrackEM2 (Файл > Новый > TrackEM2), щелкнув на слое. После загрузки всех изображений, привести их в соответствие с помощью многослойной мозаика функции (щелкните правой кнопкой мыши на изображение > Align > Выровнять многослойных мозаика). После выравнивания, изображения экспортируются в отдельные файлы tiff (щелкните правой кнопкой мыши на изображение > Экспорт > сделать плоский образ). Выберите все изображения, которые должны быть экспортированы и выберите сохранить в файл.
  5. Для пост-обработки, используйте Гауссу (процесс > Фильтры > Gaussian blur; Сигма 2) и локальное улучшение контраста (процесс > повышения локального контраста; CLAHE: blocksize 127, гистограмма бункеров 256, максимальный наклон 1.5), которые применяются в Фиджи для сглаживания изображения и получить лучшее соотношение сигнал шум.
  6. IMOD16 используется для выполнения ручной сегментации и визуализировать структуру интереса к 3D. Откройте набор данных в IMOD и выберите инструменты рисования (Специальные > инструменты рисования) для выполнения ручной сегментации. Различные ручные инструменты могут использоваться для следовать структуре интерес во всем объеме (например, соединения, лепить). Используйте браузер изображений микроскопии (17МБ) для полуавтоматического сегментации.

Representative Results

Рабочий процесс начинается с образцом (здесь, tibialis nervus свежезаваренным расчлененных мыши) в металлических перевозчиков для замораживания высокого давления (рис. 1a). Перевозчики оправился от жидкого азота (рис. 1b) и помещается в блок замены заморозить на вершине замороженных первый химический коктейль (рис. 1С). После длительного замораживания замены протокола, включая 2% осмия тетраоксид и 0,1% ацетат уранилнитрата, образцы удаляются из перевозчиков при комнатной температуре (рис. 1 d). Для дальнейшего повышения контраста, образцы будут переданы пластиковые трубы для обработки в микроволновой печи (Рисунок 1e). Вакуумной камеры и блок управления температуры используются для оптимизации процесса (Рисунок 1f).

Чтобы иметь возможность выполнить встраивание минимальный смолы, зубочистки и листы пластиковой пленки необходимы (рис. 2a). После проникновения образцы смолой с помощью микроволновой печи, они размещены на куски пластиковой пленки и двигался до тех пор, пока не смолы остается на поверхности образца. Галогенная лампа используется для слива оставшиеся смолы и оставить образец минимально встроенных (Рисунок 2Б) на пластиковой пленки. Следует отметить, что больше смолы, удалены из верхней части образца является хорошим. По-прежнему должно быть небольшое количество слева под образец, чтобы держать его с подложкой. Этот образец полимеризуется на пленку вырезать и монтируется поверх SEM заглушки с серебряные проводящих смолы (рис. 2 c). Заглушки полимеризуется по крайней мере 4 часа при температуре 60 ° C (Рисунок 2d). Компоненты должны быть тщательно перемешивают, или смесь не может правильно полимеризоваться. Чтобы избежать зарядки внутри сканирующий электронный микроскоп, заглушки — кляксы с покрытием золотом или платины/палладия (Рисунок 2e).

Образцы помещаются в FIB-SEM и образы с детектор средних электронов для региона интерес (рис. 3ae). Ионный луч используется для удаления материала непосредственно перед региона интерес подвергать поперечного сечения (Рисунок 3b-d, 3f-h). Стандартные протоколы часто страдают от недостатка контрастности мембраны (Рисунок 3bf), в то время как расширение протокола обеспечивает сильное мембраны контраст (рис. 3 c-d, 3 g-h).

ЕТ данных (после пост-обработки) визуализируются с помощью IMOD, обработки изображений и моделирования программа. Для достижения лучшего понимания 3D информации, используется виртуальный reslicing данных (рис. 4a). Различные структуры набора данных разбиваются вручную (рис. 4b-d).

Figure 1
Рисунок 1: высокого давления замораживания, замораживание замены и при содействии микроволновой обработки. () образец перевозчика, содержащие tibialis nervus мыши, шкалы бар 3 mm. (b) прободержатели содержащие tibialis nervus мыши после высокого давления замораживания, шкалы бар 3 мм. (c) Автоматическое замораживание замещения (AFS) единицы с образцами. Вставка: по заказу металлический контейнер для до 23 образца флаконов и два больших флаконов, содержащих химические вещества в АФН. (d) образцы, удаляется из перевозчиков в стеклянную посуду в ацетоне, масштаб бар 3 мм (e) образцы реакции Пробирки положить в микроволновой печи для обработки. (f) вакуумной камеры и терморегулирование устройство микроволновой печи. Пожалуйста, нажмите здесь, чтобы посмотреть большую версию этой фигуры.

Figure 2
Рисунок 2: встраивание минимальный смолы и подготовка к FIB-SEM. () полиэтиленовой пленкой и зубочистками, которые используются для минимальной смолы встраивание, шкалы бар 4 cm. (b) Nervus tibialis осушенных смолы на верхней части пластиковой пленки, шкалы бар 250 мкм. (c) Nervus tibialis полимеризуется на пленку, а затем вырезать и монтируется поверх SEM заглушки с серебряные проводящих смолы, шкалы бар 250 мкм. (d) образцы полимеризуется на вершине SEM заглушки, шкала 3 мм бар. (e) образцы, покрытые золотом на SEM заглушки, шкалы бар 3 мм. пожалуйста, нажмите здесь, чтобы посмотреть большую версию этой фигуры.

Figure 3
Рисунок 3: Подготовка образца внутри FIB-SEM. (и e) Электрон средних изображения внутри SEM-FIB образца поверхности () Nervus tibialis, шкалы бар 100 µm. (e) C. elegans, шкалы бар 2 мкм (b-d) и (f-h) сечение через образец с помощью ESB детектор для изображений. (b и c) Nervus tibialis, масштаб бар 2 мкм. (f и g) C. elegans, шкалы бар 1 мкм и 200 Нм. (b и f) Приведены результаты высокого давления блокирования и замораживания замены без расширения, тогда как все другие изображения показывают результаты повышения моратория замещение. (d и h) Детальное изображение образца с помощью детектора ESB. (d) tibialis Nervus, шкалы бар 200 Нм. (h) C. elegans, шкалы бар 200 Нм. Пожалуйста, нажмите здесь, чтобы посмотреть большую версию этой фигуры.

Figure 4
Рисунок 4: приобретение и визуализации изображений. (a) ет данные, отображаемые в IMOD с практически resliced x / z и y/z самолеты, масштаб бар 2 мкм. (b) сегментированных аксоны на EM данных (синий), Remak связки (красный), миелиновой оболочки (желтый и оранжевый) и митохондрии (бирюзовый), масштаб бар 2 мкм. (c и d) 3D-модель, шкалы бар 2 мкм и 500 Нм . Пожалуйста, нажмите здесь, чтобы посмотреть большую версию этой фигуры.

Discussion

Отсутствие конфликта интересов объявил.

Disclosures

Здесь мы представляем собой протокол для объединения двух методов обработки образца, высокого давления замораживания и образца при содействии микроволновой обработки, после чего минимальным смолы, встраивание для получения данных с целенаправленной ионного луча сканирующего электронного микроскопа (FIB-SEM). Это продемонстрировано с помощью мыши Большеберцовый нерв образца и Caenorhabditis elegans.

Acknowledgements

FIB-SEM и а.с. (положение оператора FIB-SEM) финансируются кластера передового опыта и Deutsche Forschungsgemeinschaft (DFG) исследовательский центр наноразмерных микроскопии и молекулярной физиологии мозга (CNMPB). Мы благодарим лаборатории Томас Мюллер-Reichert за предоставление образцов C. elegans . Мы благодарим Ulrich Weikert за участие в фильме.

Materials

Лабораторная микроволновая печь Leica <
<сильно>Контрольно
Leica HPM100Leica
Автоматическая замена замерзания
с блоком контроля температурыTed Pella
EM ACE600 с золотой мишеньюLeica
Crossbeam 540Zeiss
Галогенная лампа 12 В/ 20 ВтOsram
OvenVWR
strong>Freezing
Bovine Serum AlbuminSigma-AldrichA2153
M9Домашняяпо C. Elegans - Практический подход I.A.Hope
HexadeceneSigma-Aldrich52276
ПоливинилпирролидонSigma-AldrichP2307
Носитель типаA Wohlwend GmbH#241
Носитель типа BWohlwend GmbH#242
Носитель щелиWohlwend GmbH#446
Пластиковые пипетки ПастераVWR612-1684
ЩипцыFST11200-10
Замещение замораживания
Ацетоннаучные услуги10015
Дубильная кислотаSigma-Aldrich403040
Тетраоксид осмияEMS19100
УранилацетатSPI-Chem02624-AB
АцетонEMS10015
ТиокарбогидразидSigma-Aldrich223220
Nunc CryoTubesSigma-AldrichV7884-450EA
Стеклянная посуда для часов, 150 ммVWR216-2189H
Eppendorf TubesEppendorf0030 120.094
Смола DurcupanSigma-Aldrich44610
Монтаж
SEM корешкиScience ServicesE75200
AclarScience Services50425-10
Зубочистки
фильтровальная бумагаVWR512-3618
проводящая серебряная смолаEMS12670-EEEPO-TEK EE 129-4
Software
Image acquisitionZeissSmartSEM
Image acquisitionZeissAtlas5 A3D
Обработка изображенийс открытым исходным кодомFijihttp://fiji.sc/#download
Визуализация изображенийс открытым исходным кодомIMODhttp://bio3d.colorado.edu/imod/

References

  1. Studer, D., Humbel, B. M., Chiquet, M. Electron microscopy of high pressure frozen samples: bridging the gap between cellular ultrastructure and atomic resolution. Histochemistry and Cell Biology. 130 (5), 877-889 (2008).
  2. Möbius, W., Nave, K. -. A., Werner, H. B. Electron microscopy of myelin: Structure preservation by high-pressure freezing. Brain Research. 1641, 92-100 (2016).
  3. Mancuso, J., Lich, B., McDonald, K. Three-Dimensional Reconstruction Methods for Caenorhabditis elegans Ultrastructure. Methods in Cell Biology. 96, 331-361 (2010).
  4. . NCMIR methods for 3D EM: A new protocol for preparation of biological specimens for serial block face scanning electron microscopy Available from: https://www.ncmir.ucsd.edu/sbem-protocol (2010)
  5. Knott, G., Rosset, S., Cantoni, M. Focussed Ion Beam Milling and Scanning Electron Microscopy of Brain Tissue. Journal of Visualized Experiments. (53), e2588 (2011).
  6. Eberle, A. L., et al. High-resolution, high-throughput imaging with a multibeam scanning electron microscope. Journal of Microscopy. 259 (2), 114-120 (2015).
  7. Hua, Y., Laserstein, P., Helmstaedter, M. Large-volume en-bloc staining for electron microscopy-based connectomics. Nature Communications. 6, 1-7 (2015).
  8. Schieber, N. L., et al. Minimal resin embedding of multicellular specimens for targeted FIB-SEM imaging. Methods in Cell Biology. 140, (2017).
  9. Batt, J. A. E., Bain, J. R. Tibial nerve transection - a standardized model for denervation-induced skeletal muscle atrophy in mice. Journal of Visualized Experiments. (81), e50657 (2013).
  10. Möbius, W., et al. Electron Microscopy of the Mouse Central Nervous System. Methods in Cell Biology. 96, 475-512 (2010).
  11. Hayat, M. A. . Stains and Cytochemical Methods. , (1993).
  12. Tapia, J. C., et al. High-contrast en bloc staining of neuronal tissue for field emission scanning electron microscopy. Nature Protocols. 7 (2), 193-206 (2012).
  13. Cardona, A., et al. TrakEM2 software for neural circuit reconstruction. PLoS ONE. 7 (6), (2012).
  14. Schindelin, J., et al. Fiji: An open-source platform for biological-image analysis. Nature Methods. 9 (7), 676-682 (2012).
  15. Kremer, J. R., Mastronarde, D. N., McIntosh, J. R. Computer visualization of three-dimensional image data using IMOD. Journal of Structural Biology. 116 (1), 71-76 (1996).
  16. Belevich, I., Joensuu, M., Kumar, D., Vihinen, H., Jokitalo, E. Microscopy Image Browser: A Platform for Segmentation and Analysis of Multidimensional Datasets. PLoS Biology. 14 (1), 1-13 (2016).
  17. Walther, P., Ziegler, A. Freeze substitution of high-pressure frozen samples: The visibility of biological membranes is improved when the substitution medium contains water. Journal of Microscopy. 208 (1), 3-10 (2002).
  18. Mcdonald, K. L., Webb, R. I. Freeze substitution in 3 hours or less. Journal of Microscopy. 243 (3), 227-233 (2011).
  19. Reipert, S., et al. Agitation Modules: Flexible Means to Accelerate Automated Freeze Substitution. Journal of Histochemistry & Cytochemistry. , (2018).
  20. Lešer, V., Drobne, D., Pipan, &. #. 3. 8. 1. ;., Milani, M., Tatti, F. Comparison of different preparation methods of biological samples for FIB milling and SEM investigation. Journal of Microscopy. 233 (2), 309-319 (2009).

Reprints and Permissions

Request permission to reuse the text or figures of this JoVE article
Request Permission

Play Video

Подготовка биологический образец высокого давления замораживания, при содействии Микроволновая печь контрастности и минимальным смолы, встраивание образов тома
JoVE logo
Contact Us Recommend to Library
Research
  • JoVE Journal
  • JoVE Encyclopedia of Experiments
  • JoVE Visualize
Business
  • JoVE Business
Education
  • JoVE Core
  • JoVE Science Education
  • JoVE Lab Manual
  • JoVE Quizzes
Solutions
  • Authors
  • Teaching Faculty
  • Librarians
  • K12 Schools
  • Biopharma
About JoVE
  • Overview
  • Leadership
Others
  • JoVE Newsletters
  • JoVE Help Center
  • Blogs
  • Site Maps
Contact Us Recommend to Library
JoVE logo

Copyright © 2026 MyJoVE Corporation. All rights reserved

Privacy Terms of Use Policies
WeChat QR code