Method Article

Внеклеточная матрица модель трехмерных костей для остеосаркомы

DOI:

10.3791/59271

April 12th, 2019

In This Article

Summary

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Кость внеклеточного матрикса (BEM) модель для остеосаркомы (ОС) является хорошо установленным и показано здесь. Он может использоваться как подходит леска подражая первичной опухоли роста в пробирке и предоставления идеальная модель для изучения гистологическое и цитогенетических неоднородность OS.

Abstract

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Остеосаркома (ОС) является наиболее распространенным и высоко агрессивной первичной костной опухоли. Она характеризуется с анатомическими и гистологические варианты диагностических и прогностических трудности. OS включает в себя genotypically и фенотипически гетерогенных раковых клеток. Кость микроокружения элементы обоснованы с учетом неоднородности и болезнь прогрессии опухоли. Кость внеклеточного матрикса (BEM) сохраняет микроструктурных матрицы и биохимических компонентов родной внеклеточного матрикса. Ткани специфические ниши обеспечивает благоприятные и долгосрочные леску для OS ячейки посева и распространения. Эта статья предоставляет протокол для подготовки БЭМ модели и ее дальнейшее экспериментальное приложение. OS клетки могут расти и дифференцироваться в несколько фенотипы с гистопатологические сложности OS клинических образцов. Модель также позволяет визуализировать различные морфологии и их ассоциации с генетическими аномалиями и основные механизмы регулирования. Как гомологичных человека ОС эта модель БЭМ-OS может разработана и применяется к патологии и клинических исследований ОС.

Introduction

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Остеосаркома (OS) обычно происходит в активно растущих областей, метафизе длинных костей, в подростковом возрасте. Более 80% пострадавших от OS сайты имеют предпочтение метафиз проксимального отдела голени и проксимального отдела плечевой кости, а также проксимальных и дистальных бедра, соответствующее расположение роста пластина1. OS включает в себя несколько подтипов клеток с мезенхимальных свойствами и значительное разнообразие в Гистологические особенности и класс. Свидетельства поддержки мезенхимальных стволовых клеток (МСК), остеобласты совершено прекурсоров и pericytes как клетки происхождения-2,-3,-4,-5. Эти клетки могут накапливаться генетических или эпигеномные изменения и привести к OS под влиянием некоторых костей microenvironmental сигналов. Внутренние и внешние механизмы в результате геномная нестабильность и неоднородность ОС, с несколько морфологических и клинических фенотипов6,7. Для индивидуальной терапии или скрининга новых лекарственных препаратов Роман модели должен быть сгенерирован для против неоднородность или других клинических расстройств.

OS-внутри костной злокачественная опухоль твердых. Сложность и активности окружающих микроокружения элементы предоставляют фенотипических и функциональные различия по OS клеток в разных местах опухоли. Кость внеклеточного матрикса (BEM) обеспечивает структурных и биохимические леску для осаждения минеральных и костного ремоделирования. Органической частью внеклеточного матрикса (ECM), главным образом состоит из типа я коллагена выделяется клетками osteoblastic линии, в то время как его минерализованных часть состоит из фосфата кальция в виде гидроксиапатита8. Динамическая роль ECM сетей заключается в регулировании клеточной адгезии, дифференциация, кросс talk и ткани функции обслуживания9.

Деминерализованная БЭМ и ECM гидрогели были успешно использованы в культуре клеток и может повысить клетки распространения10,11. Синтезированные кости как ECM может регулировать размер пула, судьба решения и линии прогрессирование MSCs12,,1314. Кроме того результаты свидетельствуют его клиническое значение для предоставления Остеогенные деятельности путем стимулирования клеточных процессов во время кости формирования и регенерации15,16,17.

В этой статье наша группа устанавливает модифицированная модель и благоприятной альтернативой для трехмерных долгосрочные культуры. OS клетки вводят в ткани производные БЭМ представляют гетерогенно мезенхимальных фенотип легко по сравнению с пластиковой двумерных культур. BEM производным от участкам гомологичной ткани показать его драматические преимущество как родной ниши для OS клетки в пробирке и имеет большой потенциал в OS теоретических и клинических исследованиях. Эта платформа характеризуется BEM является простой, но эффективный в vitro исследования и может быть продлен в моделировании нескольких видов рака.

Access restricted. Please log in or start a trial to view this content.

Protocol

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Уход за животными и использования проводятся согласно национальных институтов здравоохранения руководство для ухода и использования лабораторных животных (публикация NO.80-23, пересмотренной в 1996 году низ) после утверждения от животных этики Комитета Sun Yat-sen University.

1. кость подготовки

  1. Получите 4-6 week-old мышей BALB/c (без конкретного пола требование). Усыпить мыши асептически, вывих шейного и отрезать свежие малоберцовой кости, голени и бедра от задних конечностей с стерильные хирургические ножницы. Отделите эпителиальной ткани и затем удалить как можно больше мягких тканей, как можно, используя ножницы и щипчики.
  2. Промывайте кости ноги с стерильные 10 мм-фосфатный буфер (PBS) дважды, чтобы удалить крови в 6 см блюдо. Погружать костей в 75% этанола на 3 мин, затем ополосните с PBS дважды. Чистой кости могут храниться в стерильных 50 мл пластиковых пробирок с стерильных PBS-80 ° c для месяцев, до тех пор, пока требуется.
    Примечание: PBS, используются в следующих шагах имеет 10 мм PO43−.

2. кости деминерализации и decellularization

  1. Оттепель замороженных костей при комнатной температуре, а затем заморозить снова в-80 ° C, за 1 ч., подлежащих костей более чем 2-3 циклов замораживания оттаивания для клеток тканей и лизис пробоя.
  2. Инкубировать костей в стерильных 50 мл пластиковых пробирок с 0,5 N HCl на ночь при комнатной температуре на качания платформы или орбитальный шейкер с нежным качания/пожимая для обеспечения полной и даже костей.
    Примечание: Убедитесь, что кости полностью погружен во время движения в кислоты и не соглашайтесь во время процесса. Объем раствора HCl должен быть более чем в десять раз, что из костей.
  3. После декальцинации декантируют раствор HCl полностью и промойте под струей воды 1 ч. Затем вымойте кости дважды за 15 мин за промыть дистиллированной воды на качалки платформы или орбитальный шейкер.
    Примечание: Убедитесь, чтобы полностью удалить раствора или воды между моет и после окончательной стирки с дистиллированной водой.
  4. Извлечение липидов в деминерализованной кости с 1:1 смесь метанола и хлороформ в 50 мл пластиковых пробирок завернутый с фольгой олова для 1 ч при комнатной температуре10.
  5. Затем передачи костей в другую трубу метанола, завернутый с фольгой олова 30 мин полностью удалить метанола и смойте дистиллированной воды дважды за 15 мин с нежно тряска. Сцеживаться окончательный мыть водой и выполните следующие шаги в стерильных условиях.
    Примечание: Во время извлечения шага, свет необходимо избегать предотвратить разложение хлороформ. Смесь может храниться в светостойкими контейнере или пластиковых пробирок завернутый с фольгой олова. Выполнить все обращения и мыть шаги под скромным вращение или качалки движения.
  6. Промыть кости в 6 см блюдо с стерильных PBS на 3 мин, а затем передать кости в новых центрифуг Тюбик 50 мл. Добавьте 40 мл стерильного 0,05% трипсина ЭДТА (TE) в трубку и инкубировать кости для 23 h в инкубатор CO2 при 37 ° C18.
  7. Отменить решение TE и дважды промыть стерильной PBS, дополненная 90 мкг/мл Ампициллин и канамицин 90 мкг/мл. После декантирующие финал Вымойте PBS полностью, пополнить с 40 мл стерильного PBS. Вымойте тщательно за 24 ч при комнатной температуре с нежным тряся или тряска для антибиотиков замочить.
    Примечание: Все стерильные PBS, используемый в этом и следующих шагов содержит 90 мкг/мл Ампициллин и канамицин 90 мкг/мл. Ночь мыть под вращение или качалки движения выполняются для длительных периодов тщательного погружения с помощью антибиотиков для достижения эффективной стерилизации поры.
  8. Удаление PBS и передачи кости в свежий 50 мл пластиковых пробирок наполнены стерильный PBS. Приготовленные деминерализованной и decellularized костей, называются кости внеклеточного матрикса (BEM) и может храниться при температуре 4 ° C на 2 месяца, до тех пор, пока требуется.

3. сотовый посева и культура

  1. Возьмите БЭМ из 4 ° C холодильник и погрузите его в этанол 75% для 30 s, а затем промыть PBS дважды. Передача БЭМ на тарелку чистой 6-ну клетки культуры. Добавьте 2 мл полной питательной среды (Дульбекко изменение орла среднего/F12 (DF12) содержащий плода бычьим сывороточным 5%, 90 мкг/мл Ампициллин и канамицин 90 мкг/мл). Инкубировать БЭМ на ночь в инкубатор CO2 при 37 ° C.
  2. Получите людей OS клеточных линий (МННГ/HOS и мг-63). Приостановить приблизительно 1.0 x 105 OS клетки с PBS 100 мкл, содержащих фенол красный индикатор.
    Примечание: Чтобы лучше отслеживать и наблюдать многослойных клетки внутри трехмерной модели BEM, МННГ/HOS и мг-63 заражены лентивирусные вектора выражения флуоресцентный mCherry и Зеленый флуоресцентный белок (ГПУП).
  3. После БЭМ полностью замачивают в среде, придать OS клетки БЭМ от проксимальный и дистальный эпифиз когда игла достигнет полости мозгового БЭМ. Инкубировать OS-BEM модель для минимум 2 ч в увлажненные 5% CO2 атмосфера при 37 ° C для обеспечения вводили клетки твердо придерживаться БЭМ.
    Примечание: Предварительно теплой все средства массовой информации, используемые для клеточной культуры. Инкубатор для культуры клеток имеет увлажненные 5% CO2 атмосфера при 37 ° C.
  4. Добавить 1 мл полной питательной среды в пластину, чтобы полностью покрыть поверхность БЭМ культуры на ночь в инкубатор CO2 при 37 ° C.
  5. Аккуратно перенесите ОС-BEM модель в новой скважины 6-ну пластины с стерильный пинцет и refeed 1 мл свежей питательной среды. Культура модели на 14 дней в инкубатор CO2 при 37 ° C и обновите питательной среды согласно ситуации распространения ОС клеток.
  6. Держите состоянием средний цвет и клеток под микроскопом Перевернутый флуоресценции во время процесса культуры. Когда OS клетки расширяться к пластине, аккуратно перенести ОС-BEM модель в другую новых хорошо с стерильный пинцет.
    Примечание: Питательной среды является ярко-красный в рН 7,4, оптимальный рН для наиболее млекопитающих клеточной культуры. Если носитель превращается в желтый, оранжевый или даже, немедленно обновите средство для поддержания здоровой окружающей среды для OS клеток.
  7. Передача ОС-BEM модель в новой скважины с помощью пинцета и осторожно промойте PBS для удаления питательной среды. Затем перевести в 15 мл пластиковых пробирок и исправить с формалина 10% буферизации для гистологической идентификации.

Access restricted. Please log in or start a trial to view this content.

Results

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

После установки деминерализации и decellularization BEM, по-видимому, полупрозрачные, с сильной стойкость и упорство, по сравнению с родной мыши кости. Немного мышцы остатков и пространство медуллярного полости можно ясно наблюдать (рис. 1A, B). Чтобы определить эффективный decellularization BEM, Бэм заливали в парафин после фиксации и затем нарезанный в разделы 3-5 мкм для гематоксилином эозином (H & E) окрашивания. Тщательного удаления клеточных ядер показано светлые о...

Access restricted. Please log in or start a trial to view this content.

Discussion

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Как правило ОС могут быть классифицированы как osteoblastic, chondroblastic и fibroblastic подтипов в зависимости от ее доминирующей гистологических компонента. Его прогноз зависит не только от гистологических параметров, но и на своем сайте анатомические. Это может произойти внутри костей (в Интрамедуллярные или intracortical отсека), на поверхности костей и в extraosseous сайты19. Появление и неоднородность ОС можно освещены как спряжение онкогенных событий и адекватной microenvironmental импульс...

Access restricted. Please log in or start a trial to view this content.

Disclosures

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Авторы заявляют, что они не имеют никаких финансовых интересов.

Acknowledgements

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Авторы значение поддержка Чэнь Liuying ее административной помощи и длинные Чжао за его прекрасную технической помощи при строительстве подмостей внеклеточного матрикса костной ткани. Это исследование поддерживается за счет субсидий из национального фонда Китая естественных наук (31871413).

Access restricted. Please log in or start a trial to view this content.

Materials

List of materials used in this article
NameCompanyCatalog NumberComments
15 мл центрифужная пробиркаGreiner188271
50 мл центрифужная пробиркаGreiner227270
6 см чашка для клеточных культурGreiner628160
6-луночная пластинаGreiner657160
ампициллинSigma-AldrichA9393
C57-BL/6J мышьСунь Ятсен Университетская лаборатория Animal Center
CO2SHEL LABSCO5A
Двухосновной фосфат натрияГуанчжоу Завод химических реактивовBE14-GR-500G
DMEM/F12Sigma-AldrichD0547
Фетальная бычья сывороткаГиклонSH30084.03
ГемоцитометрBLAU717805
КанамицинСигма-ОлдричPHR1487
MG-63Китайская академия наук, Шанхайский банкКлеточная линия остеосаркомы человека
MNNG/HOSКитайская академия наук, Шанхайский банкКлеточная линия остеосаркомы человека
Фенол красныйSigma-AldrichP4633В качестве индикатора pH используется раствор фенольного красного: его цвет демонстрирует постепенный переход от желтого к красному в диапазоне pH от 6,6 до 8,0.
Хлорид калияSangon BiotechA100395
фосфат калия одноосновныеSangon BiotechA501211
хлорид натрияSangon BiotechA501218
инкубатор клеток клеток

References

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,
  1. Longhi, A., Errani, C., De Paolis, M., Mercuri, M., Bacci, G. Primary bone osteosarcoma in the pediatric age: State of the art. Cancer Treatment Reviews. 32, 423-436 (2006).
  2. Mohseny, A. B., et al. Osteosarcoma originates from mesenchymal stem cells in consequence of aneuploidization and genomic loss of Cdkn2. Journal of Pathology. 219, 294-305 (2009).
  3. Mutsaers, A. J., Walkley, C. R. Cells of origin in osteosarcoma: mesenchymal stem cells or osteoblast committed cells. Bone. 62, 56-63 (2014).
  4. Sato, S., et al. Mesenchymal tumors can derive from Ng2/Cspg4-Expressing pericytes with β-Catenin modulating the neoplastic phenotype. Cell Reports. 16, 917-927 (2016).
  5. Patane, S., et al. MET overexpression turns human primary osteoblasts into osteosarcomas. Cancer Research. 66, 4750-4757 (2006).
  6. Poos, K., et al. Genomic heterogeneity of osteosarcoma - shift from single candidates to functional modules. PLoS One. 10, 123082(2015).
  7. Martin, J. W., Squire, J. A., Zielenska, M. The genetics of osteosarcoma. Sarcoma. 2012, 1-11 (2012).
  8. Alfranca, A., et al. Bone microenvironment signals in osteosarcoma development. Cellular and Molecular Life Sciences. 72, 3097-3113 (2015).
  9. Alford, A. I., Kozloff, K. M., Hankenson, K. D. Extracellular matrix networks in bone remodeling. The International Journal of Biochemistry & Cell Biology. 65, 20-31 (2015).
  10. Sawkins, M. J., et al. Hydrogels derived from demineralized and decellularized bone extracellular matrix. Acta Biomaterialia. 9, 7865-7873 (2013).
  11. Alom, N., Peto, H., Kirkham, G. R., Shakesheff, K. M., Bone White, L. J. Bone extracellular matrix hydrogel enhances osteogenic differentiation of C2C12 myoblasts and mouse primary calvarial cells. Journal of Biomedical Materials Research Part B-Applied Biomaterials. 106, 900-908 (2018).
  12. Datta, N., Holtorf, H. L., Sikavitsas, V. I., Jansen, J. A., Mikos, A. G. Effect of bone extracellular matrix synthesized in vitro on the osteoblastic differentiation of marrow stromal cells. Biomaterials. 26, 971-977 (2005).
  13. Rubio, R., et al. Bone environment is essential for osteosarcoma development from transformed mesenchymal stem cells. Stem Cells. 32, 1136-1148 (2014).
  14. Sadr, N., et al. Enhancing the biological performance of synthetic polymeric materials by decoration with engineered, decellularized extracellular matrix. Biomaterials. 33, 5085-5093 (2012).
  15. Gautschi, O. P., Frey, S. P., Zellweger, R. Bone morphogenetic proteins in clinical applications. Anz Journal of Surgery. 77, 626-631 (2007).
  16. Rochet, N., et al. Modification of gene expression induced in human osteogenic and osteosarcoma cells by culture on a biphasic calcium phosphate bone substitute. Bone. 32, 602-610 (2003).
  17. Spang, M. T., Christman, K. L. Extracellular matrix hydrogel therapies: in vivo applications and development. Acta Biomaterialia. 68, 1-14 (2018).
  18. Schenke-Layland, K., et al. Impact of decellularization of xenogeneic tissue on extracellular matrix integrity for tissue engineering of heart valves. Journal of Structural Biology. 143, 201-208 (2003).
  19. Klein, M. J., Siegal, G. P. Osteosarcoma: anatomic and histologic variants. American Journal of Clinical Pathology. 125, 555-581 (2006).
  20. Lipinski, K. A., et al. Cancer evolution and the limits of predictability in precision cancer medicine. Trends in Cancer. 2, 49-63 (2016).
  21. McGranahan, N., Swanton, C. Clonal heterogeneity and tumor evolution: past, present, and the future. Cell. 168, 613-628 (2017).
  22. Brown, H. K., Schiavone, K., Gouin, F., Heymann, M., Heymann, D. Biology of bone sarcomas and new therapeutic developments. Calcified Tissue International. 102, 174-195 (2018).
  23. Abarrategi, A., et al. Osteosarcoma: cells-of-origin, cancer stem cells, and targeted therapies. Stem Cells International. 2016, 1-13 (2016).
  24. Tsukamoto, S., et al. Mesenchymal stem cells promote tumor engraftment and metastatic colonization in rat osteosarcoma model. International Journal of Oncology. 40, 163-169 (2012).
  25. Rodriguez, C. J., et al. Aerosol gemcitabine: preclinical safety and in vivo antitumor activity in osteosarcoma-bearing dogs. Journal of Aerosol Medicine and Pulmonary Drug Delivery. 23, 197-206 (2010).
  26. Rodriguez, C. J. Using canine osteosarcoma as a model to assess efficacy of novel therapies: Can old dogs teach us new tricks. Advances in Experimental Medicine and Biology. 804, 237-256 (2014).
  27. Mohseny, A. B., et al. An osteosarcoma zebrafish model implicates Mmp-19 and Ets-1 as well as reduced host immune response in angiogenesis and migration. Journal of Pathology. 227, 245-253 (2012).
  28. Saalfrank, A., et al. A porcine model of osteosarcoma. Oncogenesis. 5, 210(2016).
  29. Zhang, Y., Pan, Y., Xie, C., Zhang, Y. MiR-34a exerts as a key regulator in the dedifferentiation of osteosarcoma via PAI-1–Sox2 axis. Cell Death & Disease. 9, (2018).
  30. Hashimoto, Y., et al. The effect of decellularized bone/bone marrow produced by high-hydrostatic pressurization on the osteogenic differentiation of mesenchymal stem cells. Biomaterials. 32, 7060-7067 (2011).
  31. Benders, K. E. M., et al. Extracellular matrix scaffolds for cartilage and bone regeneration. Trends in Biotechnology. 31, 169-176 (2013).
  32. Grayson, W. L., et al. Effects of initial seeding density and fluid perfusion rate on formation of tissue-engineered bone. Tissue Engineering Part A. 14, 1809-1820 (2008).
  33. Mikulic, D., et al. Tumor angiogenesis and outcome in osteosarcoma. Pediatric Hematology and Oncology. 21, 611-619 (2004).
  34. Ren, K., et al. Vasculogenic mimicry: a new prognostic sign of human osteosarcoma. Human Pathology. 45, 2120-2129 (2014).
  35. Bonuccelli, G., et al. Role of mesenchymal stem cells in osteosarcoma and metabolic reprogramming of tumor cells. Oncotarget. 5, 7575-7588 (2014).

Access restricted. Please log in or start a trial to view this content.

Reprints and Permissions

Request permission to reuse the text or figures of this JoVE article

Request Permission

Tags

Bone Extracellular MatrixOsteosarcoma ModelDecellularization ProtocolFreeze Thaw CyclesHCl DecalcificationLipid ExtractionTE Solution TreatmentSterilization WashOS Cell SeedingImmunohistochemical Analysis

Related Articles