Методическая статья

Ориентация Альфа Синуклеин Агрегаты в кожных периферных нервных волокон по свободно плавающей иммунофлуоресценции Анализ

DOI:

10.3791/59558

25 июня 2019 г.

В этой статье

Краткое содержание

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Здесь мы представляем протокол для свободно плавающей непрямой иммунофлуоресценции анализ на биопсии кожи разделов, что позволяет для выявления болезни конкретных вариантов конформации альфа-синуклеина, участвующих в болезни Паркинсона и несколько белков периферической нервной системы.

Аннотация

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

На сегодняшний день для большинства нейродегенеративных заболеваний доступна только посмертная гистопатологическая диагностика. Для болезни Паркинсона (PD), диагноз по-прежнему опирается только на клинические признаки двигательной участия, которые появляются позже в течение болезни, когда большинство дофаминергических нейронов уже потеряны. Таким образом, существует острая потребность в биомаркере, который может идентифицировать пациентов в начале заболевания или на риск его развития. За последние несколько лет биопсия кожи оказалась отличным исследовательским и диагностическим инструментом для периферических заболеваний нервов, таких как небольшая клетчатка невропатии. Интересно, что небольшие волокна невропатии и альфа-синуклеин (Зин) нервных отложений были показаны биопсии кожи у пациентов PD. Действительно, биопсия кожи имеет большое преимущество быть легкодоступной, минимально инвазивной и безболезненной процедурой, которая позволяет анализировать периферические нервные ткани, склонные к патологии. Кроме того, возможность повторения биопсии кожи в ходе наблюдения за тем же пациентом позволяет изучать продольную корреляцию с прогрессированием заболевания. Мы создали стандартизированный надежный протокол для исследования наличия агрегатов «Syn» в волокнах нервов кожи пациента PD. Этот протокол включает в себя несколько коротких шагов фиксации, криотомосирование, а затем свободно плавающей иммунофлуоресценции двойное окрашивание с двумя конкретными антителами: анти протеин ген продукт 9.5 (PGP9.5), чтобы отметить кожные нервные волокна и анти 5G4 для обнаружения «Синтез агрегаты. Это универсальный, чувствительный и простой в исполнении протокола, который также может быть применен для ориентации других белков, представляющих интерес для нервов кожи. Способность маркировать агрегаты «Syn» является еще одним шагом вперед к использованию биопсии кожи в качестве инструмента для установления предсмертной гистопатологической диагностики PD.

Введение

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Биопсия кожи приобрела большое значение в качестве диагностического иисследовательского инструмента в области неврологических расстройств 1. Действительно, эпидермис и дерма содержат обильные соматические сенсорные нервные волокна (миелинированные и немиелинированные), ноцицептивные свободные нервные окончания, сенсорные рецепторы и вегетативную инвенвацию потовых желез, сосудов, сальных желез и мышечных арфистых пилорумов 2.

В середине 20-го века, установка для иммуногистохимии PGP9.5 антитела позволили доказательства обширной иннервации человеческой эпидермис кожи млекопитающих3. PGP9.5 представляет собой карбоксило-терминальную гидролазу, равномерно распределенную по аксонам как центральной, так и периферической нервной системы (PNS). Наличие этого антитела позволило не только прояснить морфологию и анатомию PNS в коже, но и внедрить исследование заболеваний, связанных с ней3,4. Биопсия кожи способствовала определению новой клинической сущности: мелкой клетчатки невропатии. Несколько международных групп продемонстрировали связь между потерей интраэпидермальных нервных волокон и симптомами/признаками мелкой клетчатки невропатии5 анализом биопсии кожи и предоставили стандартизированные протоколы для нервной морфометрии, а также нормативные эталонные значения, которые будутиспользоваться в клинической практике 6,7,8.

В последнее время большое количество доказательств показало, что нейродегенеративные заболевания, характеризующиеся неправильно сложенными накоплениями белка в центральной нервной системе, являются многосистемными патологиями9. Действительно, PD характеризуется накоплением син в дофаминергическом нейроне substantia nigra,но было продемонстрировано, что «Син и его патологическая форма, фосфорилированный син (P-'Syn), могут быть обнаружены также в периферических тканях. гастро-кишечная слизистая оболочка10, слюнные железы11, кожа вегетативных волокон, окружающих потовые железы и пиломоторные мышцы12,13,14, показать иммунореактивность к патогенным формам Syn, в в соответствии с гипотезой Браак, что интригующе постулировать, что патология syn может начаться в PNS заблаговременно, до его накопления в мозге15. Кроме того, наличие р-Зсин было продемонстрировано в кожных нервах пациентов с расстройствами поведения REM, которые считаются продромальными PD16,17 таким образом, патологический кожный синтез можно считать перспективным ранним периферическим гистопатологический маркер синуклейнопатии.

Связь мелкого волокна невропатии в PD было продемонстрировано ранее, и было установлено, что интраэпидермальные нервные волокна плотность отражает прогрессирование заболевания18,19. Таким образом, биопсия кожи является полезным инструментом для изучения нейродегенерации в PD и для установления досмертной гистопатологической диагностики заболевания. Действительно, биопсия кожи имеет большое преимущество в том, что легко доступная и минимально инвазивная процедура, позволяющая анализировать нервную ткань, склонную к патологии. Наконец, возможность повторения биопсии кожи в ходе наблюдения за теми же пациентами позволяет изучать продольную корреляцию с прогрессированием заболевания.

В нашей лаборатории, используя двойное иммуно-окрашивание с PGP9.5 и конформации конкретных моноклональных 5G4 антитела, что признает болезни конкретных форм "Syn в том числе малых агрегатов20,21, мы смогли показать наличие агрегатов «Syn» в кожных нервах с перспективной высокой диагностической эффективностью19. Иммунофлуоресценция анализ биопсии кожи при конформационных заболеваниях выделяется как перспективный источник биомаркеров, сочетая как обнаружение белковых агрегатов, так и меру нейродегенерации в vivo. Далее мы иллюстрируем простой и универсальный протокол по обработке биопсии кожи и выполнению свободно плавающего иммунофлуоресцентного окрашивания для обнаружения агрегатов Syn. Кроме того, этот протокол может быть адаптирован для ориентации любого другого белка, интересуемого в коже PNS.

Следующий протокол исследования был использован для оценки диагностической полезности агрегированного анализа Syn в PNS PD по биопсии кожи19. Критерии включения для PD были: определенный клинический диагноз в соответствии с диагностическими критериями Банка мозга Великобритании, продолжительность заболевания по крайней мере 3 лет, нет семейной истории, и никаких серьезных когнитивных нарушений или основных дистоветномических симптомов в истории. Критериями исключения были известны причины невропатии (гликированный гемоглобин, креатинин, витамин В12, ТТГ, иммунофиксация сыворотки, ВИЧ, ВГС, сифилис и боррелиоз). Каждый предмет прошел 3 мм-диаметр биопсии кожи на трех анатомических участках (шея на дерматомном уровне C8, бедро 10 см выше колена, нога 10 см выше боковой malleolus) на стороне, которая была клинически более пострадавших. В целом, следующий протокол об обработке биопсии кожи и выполнения свободно плавающей иммунофлуоресцентности окрашивания и анализа. Поэтому его можно адаптировать и использовать для обнаружения других белков, представляющих интерес в тканях кожи.

Доступ ограничен. Войдите в систему или начните пробный период, чтобы просмотреть этот контент.

Протокол

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Протокол был одобрен Кантональным комитетом по этике, и все зачисленные субъекты дали письменное информированное согласие на исследование.

1. Коллекция биопсии кожи

  1. Пусть квалифицированный врач выполняет биопсию кожи в соответствующих клинических условиях.
  2. Выберите область для выполнения биопсии кожи и очистить его с алкоголем тампон.
  3. Приготовьте обезостереженое раствор с 1 кубиком лидокаина 2%.
  4. С иглой параллельно области, вводят местную анестезию подкожно.
  5. После проверки эффекта анестезии, принять 3 мм одноразовый пунш и применять вращательное и деликатное понижательное давление, чтобы повернуть его вниз через эпидермис и дерму, пока подкожный жир достигается.
  6. Сними удар.
  7. Используйте одноразовые щипки, чтобы аккуратно вытащить кожу подключите.
  8. Используйте ножницы, чтобы вырезать основание образца на уровне жировой ткани.
  9. Поместите образец в трубку, содержащую 10 мл фиксаторного раствора периодии-лизина-параформальдегида (ПЛП).
  10. Дезинфицировать область и покрыть его клейкой повязкой.

2. Исправление и хранение тканей

  1. Сделать свежий PLP фиксаторное решение (см. Таблица 1).
  2. Сразу же после сбора биопсии кожи, погрузить его в трубку, содержащую 10 мл plP фиксаторного раствора и инкубировать его на ночь (O / N) при 4 градусах Цельсия.
  3. На следующий день после этого, под дымом капот, удалить PLP фиксатор мягко и в той же трубке, мыть биопсии 3 раза в течение 5 мин с 5 мл 0,1 М Растворсен раствор (Таблица 1).
  4. Откажитесь от раствора Соренсена и инкубируйте биопсию 5 мл криозащитного раствора O/N при 4 градусах Цельсия.
  5. Храните биопсию при 4 градусах Цельсия, если разрез с криотомом выполняется в течение 1 недели; хранить биопсию при -20 градусах Цельсия, если разрез выполняется в течение 3 месяцев; вставлять биопсию в криомольд (шаги 3.2-3.4) и хранить его при -80 градусах По Цельсию, чтобы сохранить ее в течение более длительного периода времени.

3. Ткань вырезать с криотомом

  1. Установите криотомо на уровне -20 градусов.
  2. Возьмите криомолд и заполните его крио-встраивающей средой. Избегайте создания пузырьков.
  3. Использование пинцета погружайте биопсию в крио-встраивающую среду с продольной оси (эпидермис - дерма) параллельно нижней части криомолда.
  4. Привязать заморозить образец с жидким азотом для получения твердого куба крио-встраивательных среды, содержащей биопсии в правой ориентации.
  5. Положите образец в криостат и подождите 30 минут, чтобы биопсия акклиматизировалась.
  6. Зафиксните образец на криостате и вырежьте 50 мкм секций.
  7. С помощью небольшой кисти, передача крио-секций в 96 хорошо пластины, содержащие 200 зл. раствор антифриза в каждом колодце. Один раздел на скважину.
  8. Хранить при -20 градусах по Цельсию.
    ПРИМЕЧАНИЕ: Если анализировать всю биопсию не анализируется, вырежьте ее лишь частично. В этом случае секции должны храниться при -20 градусах Цельсия, а остальная часть биопсии - при -80 градусов по Цельсию, чтобы сохранить ее в течение более длительного периода времени.

4. Иммунофлуоресценция окрашивание

  1. Заполните 96 хорошо пластины, с 100 л стирального раствора.
  2. Перенесите секции для анализа с тарелки на новую, содержащую стиральный раствор. 1 секция на каждую скважину (4 секции на анатомический участок, на одного пациента: обычно в общей сложности 12 секций на пациента).
  3. Оставьте секцию в стиральном растворе на 10 мин при комнатной температуре (RT). Перенесите секцию в другой колодец, содержащий тот же раствор, и повторите стирку.
  4. Переместите секции в новые скважины, содержащие 100 qL блокирующего раствора и инкубировать, по крайней мере 90 мин и не более 4 ч на RT.
  5. Разбавить первичные антитела анти-PGP9.5 (Кролик поликлональный, 1:1000) и анти-5G4 (Мышь моноклональной, 1:400) в рабочем растворе.
  6. Перенесите секции в новые скважины, содержащие 100 зЛ рабочего раствора первичных антител и инкубировать их O/N на РТ.
  7. В качестве шага 4.3, мыть разделы 2 раза, по крайней мере 10 мин на RT, с 100 зл стирки раствора.
  8. Разбавить вторичные антитела (конъюгированные с различными флюорофорами) Коза анти-Кролик для обнаружения PGP9.5 (1:700) и Коза анти-мышь для обнаружения 5G4 (1:700) в рабочем решении.
  9. Перенесите секции в новые скважины, содержащие 100 зЛ рабочего раствора вторичных антител на 90 мин на РТ. С этого момента, покрыть 96 хорошо пластины с алюминиевой фольгой, чтобы избежать отбеливания фторфора сопряжены со вторичными антитела / ies.
  10. В качестве шага 4.3, мыть разделы 2 раза, по крайней мере 10 мин, с 100 зл стирки раствора.
  11. Перенесите секции в новые скважины, содержащие 100 зл DAPI (разбавленные 1:5,000 в PBS 1x) в течение 5 минут на RT.
  12. В качестве шага 4.3, мыть разделы 2 раза, по крайней мере 10 мин, с 100 зл стирки раствора.
  13. Установите секции на слайде в правильном положении, избегая неправильного сворачивания.
  14. Добавьте несколько капель монтажной среды на слайд и накройте крышкой.
  15. Пусть слайды сухой O / N перед использованием конфокальный / флуоресцентный микроскоп.
  16. Храните слайды в соответствующей коробке при 4 градусах По Цельсию, избегая воздействия света. При точном хранении сигнал будет виден в течение 6 месяцев.
    ПРИМЕЧАНИЕ: Передача секции из пластины 96 скважин, содержащей недавно нарезанные ломтики, на пластину 96 скважин, содержащую стиральный раствор (шаг 4.1), осуществляется с помощью небольшой кисти, которая помогает подобрать биопсию. После переноса секции в первый колодец, каждый раз, когда срез должен быть инкубирован другим раствором, перемещайте его из колодца в колодец с помощью кисти.

5. Иммунофлуоресценция

  1. Просмотр разделов под перевернутым флуоресцентным микроскопом или конфокальный микроскоп (20X, 40x или выше увеличения, используйте последовательные кадры с шагом в 2 мкм на плане стек для достижения наилучших результатов).
  2. Приобретение изображений с помощью подключенной к микроскопу камеры
  3. Используйте адекватное программное обеспечение для визуализации (т.е. ImageJ) для анализа положительных сигналов в разделах с точки зрения пространственного распределения и интенсивности сигнала. Для этого выполните шаги, упомянутые ниже.
    1. Откройте файл с помощью программного обеспечения ImageJ.
    2. Нажмите на изображение , цвет
    3. Нажмите Изображение и стек и стек, чтобы получить слияние нескольких приобретений раздела.
    4. Нажмите изображение
Решение антифриза
(хранить при 4 градусах по Цельсию до 6 месяцев)
30% Глицерол
30% этиленгликоль
30% dH2O
10% 2x фосфатный буфер
Блокирующее решение
(подготовьтесь в данный момент)
4% Нормальная коза сыворотка
1% Тритон X-100
в стиральном растворе
Крио-защита
(хранить при 4 градусах по Цельсию до 6 месяцев)
20% Глицерол
80% решение Соренсена
Раствор фосфата водорода динатрия
(хранить на RT до 6 месяцев)
0.45M Фосфат водорода динатрия (Na2HPO4) в dH2O
Фильтр в стерильной бутылке
Лизинское решение
(хранить при 4 градусах по Цельсию в течение 3 недель)
50% раствор моногидрохлорида 0,3 МЛ-лизин
50% от решения 0.1M Соренсена pH7.6
pH 7.4, фильтр в стерильной бутылке
Параформальдегид (PFA) 8%
(подготовьте под капотом дыма и храните при 4 градусах По Цельсия до 1 месяца)
2.6M PFA в dH2O (до 55 градусов по Цельсию, чтобы избежать образования фомийной кислоты)
фильтр в стерильной бутылке
Фосфат буфер 2x
(хранить при 4 градусах по Цельсию до 6 месяцев)
6% Раствор фосфата натрия monosodium (NaH2PO4)
45% Раствор фосфата динатрия (Na2HPO4) в dH2O
Фиксаторное решение PLP
(подготовьте на данный момент, под дымом капот )
25% Параформальдегид 8%
0.01M Натрий (мета)период
75% Лизинское решение;
Дигидроген дигидроген Моногидрат
(хранить на RT до 6 месяцев)
0.52M натрия диводород фосфат моногидрат (NaH2PO4'H2O) в dH2O
Фильтр в стерильной бутылке.
Решение Соренсена
(хранить при 4 градусах по Цельсию до 1 месяца)
2.5% Раствор фосфата натрия мононатрия
18.7% Раствор фосфата динатрия
pH7.6, в dH2O
Стиральная раствор
(подготовьтесь в данный момент)
0.25M база Трицма
0.26M NaCl
pH7.6, в dH2O
Рабочее решение
(подготовьтесь в данный момент)
50% Блокирующее решение
50% Стиральная раствор

Таблица 1: Необходимые решения. Список необходимых решений для протокола и краткое описание того, как его подготовить.

Доступ ограничен. Войдите в систему или начните пробный период, чтобы просмотреть этот контент.

Результаты

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Следуя описанной процедуре(Рисунок 1), мы обнаружили ,Syn агрегаты, помеченные 5G4 антитела, в дермальных нервных фасциклов иннерватирования вегетативных структур PD пациентов. Морфология альфа-синуклеина появляется как пунктирный сигнал вдоль аксонов дермальных нервов(рисунок 2). Действительно, используя этот протокол в 19 PD пациентов и 17 контроля в биопсии кожи на трех анатомических сайте (шейка матки, бедра и дистальной ноги) мы обнаружили, что 5G4 было 81%...

Доступ ограничен. Войдите в систему или начните пробный период, чтобы просмотреть этот контент.

Обсуждение

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Мы описываем свободно плавающий иммунофлуоресценционный анализ биопсии кожи для диагностики PD: он использует двойное иммуносохранение с анти-PGP9.5 антитела, panaxonal маркер, и анти-5G4, конформации конкретных антител, который признает агрегированной форме из «Син».

Большие преимущества биопсии кожи для диагностических целей в PD и, возможно, в других белковых конформанформальных расстройств являются: 1) прямой доступ к нервной ткани склонны к болезни с легкаю инвазивной техникой и, таким об...

Доступ ограничен. Войдите в систему или начните пробный период, чтобы просмотреть этот контент.

Раскрытие информации

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Авторам нечего раскрывать.

Благодарности

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Мы благодарим Паркинсона Швейза и ABREOC (Консультативный совет по научным исследованиям Кантонале Энте Оспедедеро) за финансовую поддержку этого исследования.

Доступ ограничен. Войдите в систему или начните пробный период, чтобы просмотреть этот контент.

Материалы

Список материалов, использованных в этой статье
ИмяКомпанияКаталожный номерКомментарии
5G4 (античеловеческий &альфа; Syneclein 5G4)Analytik Jena Roboscreen847-0102004001Мышь моноклональная 
AlexaFluor 488 Козий антикролик IgG Invitrogen19714182 мг/мл
AlexaFluor 594 козий анти мышиный IgG Invitrogen19228492 мг/мл
раствор гидрофосфата натрияMerk Millipore106586
этиленгликольSigma-Aldrich324558
глицеринSigma-AldrichG7757
L-лизин моногидрохлоридSigma-AldrichL5626
параформальдегидAldrich Chemistry
PGP9.5Abcamab15503Кролик поликлональный
хлорид натрияSigma S3014
Моногидрат дигидрофосфата натрияMerck Millipore106346
натрия (мета)периодат Sigma-AldrichS1878
База Тризма Sigma T1503
Tryton X-100Sigma-AldrichX100
Vectashield Vector LaboratoriesH-1000Монтажный материал
441244

Ссылки

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,
  1. McArthur, J. C., Griffin, J. W. Another Tool for the neurologist's Tollbox. Annals of Neurology. 57, 163-167 (2005).
  2. Wilkinson, P. F., Millington, R. Skin. , Cambridge University Press. Cambridge. ISBN 978-0-521-10681-8 49-50 (2009).
  3. Weddell, G., et al. Nerve endings in mammalian skin. Biological reviews of the Cambridge Philosophical Society. 30, 159-195 (1954).
  4. Wang, L., et al. Protein gene product 9.5-immunoreactve nerve fibers and cells in human skin. Cell and Tissue Research. 261 (1), 25-33 (1990).
  5. Holland, N. R., et al. Intraepidermal nerve fiber density in patients with painful sensory neuropathy. Neurology. 48, 708-711 (1997).
  6. McArthur, J. C., Stocks, E. A., Hauer, P., Cornblath, D. R., Griffin, J. W. Epidermal nerve fiber density: normative reference range and diagnostic efficiency. Archives of Neurology. 55 (12), 1513-1520 (1998).
  7. Lauria, G., et al. European Federation of Neurological Societies/Peripheral Nerve Society Guideline on the use of skin biopsy in the diagnosis of small fiber neuropathy. Report of a joint task force of the European Federation of Neurological Societies and the Peripheral Nerve Society. European Journal of Neurology. 17, 903-912 (2010).
  8. Provitera, V., et al. A multi-center, multinational age- and gender-adjusted normative dataset for immunofluorescent intraepidermal nerve fiber density at the distal leg. European Journal of Neurology. 23, 333-338 (2016).
  9. Wakabayashi, K., et al. Involvement of the peripheral nervous system in synucleinopathies, tauopathies and other neurodegenerative proteinopathies of the brain. Acta Neuropathology. 120, 1-12 (2010).
  10. Ruffmann, C., et al. Detection of alpha-synuclein conformational variants from gastro-intestinal biopsy tissue as a potential biomarker for Parkinson's disease. Neuropathology and Applied Neurobiology. 44 (7), 722-736 (2018).
  11. Lee, J. M., et al. The search for a peripheral biopsy indicator of alpha-synuclein pathology for Parkinson Disease. Journal of Neuropathology & Experimental Neurology. 76, 2-15 (2017).
  12. Donadio, V., et al. Skin nerve misfolded alpha-synuclein in pure autonomic failure and Parkinson disease. Annals of Neurology. 79, 306-316 (2016).
  13. Doppler, K., et al. Cutaneous neuropathy in Parkinson's disease: a window into brain pathology. Acta Neuropathologica. 128, 99-109 (2014).
  14. Zange, L., Noack, C., Hahn, K., Stenzel, W., Lipp, A. Phosphorylated alpha-synuclein in skin nerve fibres differentiates Parkinson's disease from multiple system atrophy. Brain. 138, 2310-2321 (2015).
  15. Braak, H., et al. Staging of brain pathology related to sporadic Parkinson's disease. Neurobiology of Aging. 24, 197-211 (2003).
  16. Doppler, K., et al. Dermal phospho-alpha-synuclein deposits confirm REM sleep behaviour disorder as prodromal Parkinson's disease. Acta Neuropathologica. 133 (4), 535-545 (2017).
  17. Antelmi, E., et al. Skin nerve phosphorylated α-synuclein deposits in idiopathic REM sleep behavior disorder. Neurology. 88 (22), 2128-2131 (2017).
  18. Nolano, M., et al. Small fiber pathology parallels disease progression in Parkinson disease: a longitudinal study. Acta Neuropathologica. , (2018).
  19. Melli, G., et al. Cervical skin denervation associates with alpha-synuclein aggregates in Parkinson disease. Annals of Clinical and Translational Neurology. 5, 1394-1407 (2018).
  20. Kovacs, G. G., et al. Intracellular processing of disease-associated alpha-synuclein in the human brain suggests prion-like cell-to-cell spread. Neurobiology Disease. 69, 76-92 (2014).
  21. Kovacs, G. G., et al. An antibody with high reactivity for disease-associated alpha-synuclein reveals extensive brain pathology. Acta Neuropathologica. 124, 37-50 (2012).

Доступ ограничен. Войдите в систему или начните пробный период, чтобы просмотреть этот контент.

Перепечатки и разрешения

Запросить разрешение на повторное использование текста или иллюстраций этой статьи JoVE

Запросить разрешение

Теги

Cutaneous Nerve FibersSkin Biopsy ProtocolParkinson Disease BiomarkerPGP9 5 Nerve Marker5G4 Antibody DetectionCryotome SectioningFluorescence Microscopy AnalysisPeripheral Nervous Tissue

Похожие статьи