Для просмотра этого контента требуется подписка на JoVE. Войдите или начните свой бесплатный пробный период.

Методическая статья

Визуализация поверхности T-клеточного рецептора динамики четыре-Dimensionally использование решетки светлист микроскопии

7.6K просмотров

DOI:

10.3791/59914

30 января 2020 г.

В этой статье

Краткое содержание

Цель этого протокола состоит в том, чтобы показать, как использовать латетную световую микроскопию для четырехмерной визуализации динамики поверхностных рецепторов в живых клетках. Здесь показаны Т-клеточные рецепторы на CD4и первичных Т-клетках.

Аннотация

Сигнализация и функция клетки диктуются динамическими структурами и взаимодействиями ее поверхностных рецепторов. Чтобы по-настоящему понять структурно-функциональную связь этих рецепторов на месте, нам нужно визуализировать и отслеживать их на поверхности живой клетки с достаточным пространственно-временное разрешение. Здесь мы покажем, как использовать недавно разработанную решетку светолистной микроскопии (LLSM) для изображения Т-клеточных рецепторов (TCRs) четырехмерно (4D, пространство и время) на мембране живых клеток. Т-клетки являются одним из основных эффекторов клеток адаптивной иммунной системы, и здесь мы использовали Т-клетки в качестве примера, чтобы показать, что сигнализация и функция этих клеток обусловлены динамикой и взаимодействия ТКК. LLSM позволяет 4D-изображения с беспрецедентным пространственно-временное разрешение. Этот метод микроскопии поэтому может быть обычно применяется к широкому спектру поверхностных или внутриклеточных молекул различных клеток в биологии.

Введение

Точная динамика торговли молекулами и распространения на трехмерной поверхности клеток в режиме реального времени была загадкой для решения. Микроскопия всегда была балансом скорости, чувствительности и разрешения; если один или два максимизированы, третий сводится к минимуму. Поэтому из-за небольшого размера и огромной скорости, с которой движутся поверхностные рецепторы, отслеживание их динамики остается серьезной технологической проблемой в области клеточной биологии. Например, многие исследования были проведены с использованием общей внутренней флуоресценции (TIRF) микроскопии1,2 ,3,

Доступ ограничен. Войдите в систему или начните пробный период, чтобы просмотреть этот контент.

Протокол

5С. C7 TCR-трансгенных RAG2 нокаут мышей в B10. Справочная информация была использована в этом исследовании в соответствии с протоколом, утвержденным институциональным комитетом по уходу за животными и использованию Чикагского университета.

1. Урожай и активация Т-клеток

ПРИМЕЧАНИЕ: Эта часть протокола основана на предыдущих протоколах. Подробнее о цитатах можно узнать20,21.

  1. Euthanize 10-12 недель 5C. C7 трансгенной мыши любого пола (20-25 г) в соответствии с утвержденным протоколом IACUC (т.е. CO2 камеры следуют вывихшей шейки матки)....

Доступ ограничен. Войдите в систему или начните пробный период, чтобы просмотреть этот контент.

Результаты

Здесь мы описываем изоляцию, подготовку и визуализацию первичной мыши 5C. C7 T-клетки с помощью решетчатого светового листового микроскопа. Во время раздела 3, необходимо выровнять микроскоп правильно, и собрать PSF ежедневно, с которым deconvolve данные после сбора. На рисунке 2мы показываем правильные изображения выравнивания, которые будут видны при выравнивании микроскопа. Рисунок 2А и рисунок 2B

Доступ ограничен. Войдите в систему или начните пробный период, чтобы просмотреть этот контент.

Обсуждение

Представленный протокол был оптимизирован для использования CD4и Т-клеток, изолированных от 5C. C7 трансгенных мышей на используемом инструменте LLSM, и поэтому другие клеточные системы и LLSMs, возможно, должны быть оптимизированы по-разному. Тем не менее, этот протокол показывает силу 4D-изображения, так как он может быть использован для количественной оценки динамики поверхностного рецептора на всей клетке с наименьшим искажением в физиологических условиях. Таким образом, Есть много возможных будущих примен.......

Доступ ограничен. Войдите в систему или начните пробный период, чтобы просмотреть этот контент.

Раскрытие информации

Авторам нечего раскрывать.

Благодарности

Мы хотели бы отметить советы и рекомендации доктора Витаса Биндокаса из Чикагского университета. Мы благодарим комплексную световую микроскопию ВШЭ в Чикагском университете за поддержку и поддержание латисового светового листового микроскопа. Эта работа была поддержана NIH New Innovator Award 1DP2AI144245 и NSF Career Award 1653782 (To J.H.). J.R. поддерживается Программой стипендий для аспирантов NSF.

....

Доступ ограничен. Войдите в систему или начните пробный период, чтобы просмотреть этот контент.

Материалы

Список материалов, использованных в этой статье
ИмяКомпанияКаталожный номерКомментарии
1 мл шприцаBD309659Для сбора Т-клеток
2-меркаптоэтанолSigma-AldrichM3148-25MLДля культуры Т-клеток
5 мм круглые покровные стеклаWorld Precision Instruments502040Для визуализации
70 мкм Стерильный клеточный фильтрCorning7201431Для сбора Т-клеток
Alexa Fluor 488 антимышиный TCR и бета-цепь антителаBioLegend109215для визуализации
фетальной сыворотки крупного рогатого скота (FBS)X& Культура Y-клетокFBS-500Для культуры Т-клеток
FicollGE Healthcare17-1440-02Реагент Денистый градиент для забора Т-клеток
Флуоресцеин натриевая сольSigma-AldrichF6377Для юстировки микроскопа
FluoSpheres Карбоксилат-модифицированные микросферыThermo Fisher ScientificF8810Для юстировки микроскопа
ImarisBitplaneПрограммное обеспечение для н/дслежения; Другие варианты программного обеспечения для отслеживания включают Amira или Trackmate (Фиджи).
Решетчатый световой листовой микроскоп3iН/АМикроскоп Использован
Среда L-15 Лейбовица, без фенола красногоThermo Fisher Scientific21083027Для визуализации
L-глютаминаThermo Fisher Scientific25030-081Для культуры Т-клеток
LLSpyJanelia Research CampusN/ALLSpy использовался по лицензии Медицинского института Говарда Хьюза, исследовательского кампуса Джанелии. Свяжитесь с innovation@janelia.hhmi.org для доступа. Другие методы деконволюции и расшивки доступны в программах обработки изображений, таких как Fiji, Slidebook, Amira и других. https://llspy.readthedocs.io/en/latest/Moth
Цитохром C (MCC), последовательность ANERADLIAYLKQATKElimbioCustom SynthesisFor T cell harvest
Penacillin/StreptamycinLife Technologies15140122_3683884612Для культуры Т-клеток
Poly-L-лизинPhenix Research ProductsP8920-100MLДля визуализации
для лизиса эритроцитовeBioscience00-4300-54Для сбора Т-клеток
Рекомбинантная мышь IL-2Sigma-Aldrichi0523Для культуры Т-клеток
RPMI 1640 MediumCorningMT10040CVДля культуры Т-клеток
Slidebook3iN/ALLSM программное обеспечение для визуализации
Хирургические инструментыдля диссекцииNova-Tech InternationalDSET10Для сбора Т-клеток
Т-25 КолбыEppendorf2231710126Для культуры Т-клеток
Thermo Scientific Pierce Fab Наборы для микропрепаратовThermo Fisher Scientific44685Для приготовления Fab
буфера

Ссылки

  1. Poulter, N. S., Pitkeathly, W. T. E., Smith, P. J., Rappoport, J. Z. The Physical Basis of Total Internal Reflection Fluorescence (TIRF) Microscopy and Its Cellular Applications. Methods in Molecular Biology. 1251, Clifton, N.J. 1-23 (2015).
  2. Mattheyses, A. L., Simon, S. M., Rappoport, J. Z.

Доступ ограничен. Войдите в систему или начните пробный период, чтобы просмотреть этот контент.

Перепечатки и разрешения

Теги

Четырехмерная визуализациявизуализация живых клетокпространственно-временное разрешениерецепторы клеточной поверхностифлуоресцентное мечениецентрифугирование в градиенте плотностипротокол юстировки лучасбор PSF