Для просмотра этого контента требуется подписка на JoVE. Войдите или начните свой бесплатный пробный период.

Методическая статья

Изоляция региона конкретных микроглии от одного взрослого полушария мозга мыши для глубокой одноклеточной РНК секвенирования

10.5K просмотров

⸱

DOI:

10.3791/60347

⸱

3 декабря 2019 г.

 , 
1Department of Neurobiology, Stanford University School of Medicine

В этой статье

Краткое содержание

Мы предоставляем протокол для изоляции микроглии от различных расчлененных областей полушария мозга взрослой мыши, а затем полуавтоматизированную подготовку библиотеки для глубокого одноклеточного секвенирования РНК полнометражных транскриптомов. Этот метод поможет выяснить функциональную неоднородность микроглии в здоровье и болезни.

Аннотация

Как резидент макрофаги в центральной нервной системе, микроглии активно контролируют развитие мозга и гомеостаза, и их дисфункции могут управлять человеческими заболеваниями. Значительные успехи были сделаны, чтобы раскрыть молекулярные подписи гомеостатической микроглии, а также изменения их экспрессии генов в ответ на экологические стимулы. С появлением и созреванием одноклеточных геномных методологий все шире признается, что неоднородная микроглия может лежать в основе различных ролей, которые они играют в различных условиях развития и патологических условиях. Дальнейшее вскрытие такой неоднородности может быть достигнуто путем эффективной изоляции микроглии от данной области интереса, за которой следует чувствительное профилирование отдельных клеток. Здесь мы предоставляем подробный протокол для быстрой изоляции микроглии из различных областей мозга в одном полушарии мозга для взрослых мышей. Мы также демонстрируем, как использовать эти отсортированные микроглии для одноклеточного секвенирования РНК на основе пластин. Мы обсуждаем приспособляемость этого метода к другим сценариям и предоставляем руководящие принципы для совершенствования системы для размещения крупномасштабных исследований.

Введение

Микроглия, представляющая 5%-10% всех нервных клеток, являются резидентными макрофагами, разбросанными по всей центральной нервной системе (ЦНС)1. Защищенный за гематоэнцефалии барьер, типичные микроглии в здоровом мозге взрослого содержат много тонких процессов, которые быстро продлить и втягивать взаимодействовать с нейронами и другими глиальными клетками в parenchyma. Микроглия может также принять амебоидной морфологии, связанные с увеличением фагоцитарной функции на конкретных стадиях развития или на иммунные проблемы при травме и болезни1,2,3,4. Недавние захватывающие открытия ясно показали, что микроглии ни в коем случае не являются пассивными наблюдателями к мозгу полученных или патологических сигналов, но играют ключевую роль в контроле развития мозга и гомеостаза, например, поддерживая выживание нейронов, обрезка незрелых синапсов, содействие дифференциации линий олигодендроцитов, а также ангиогенез1. По мере того как больше функций микроглии выяснены, возбуждение более далее подпитывается людскими исследованиями генетики, которые показали что много нейродегенеративных генов риска заболевания, such as TREM2, большей частью или исключительн выражено микроглией5,6,7. . Учитывая их значение в развитии и правдоподобные болезни вождения роли, огромные усилия были направлены на наше понимание микроглиальной регуляции генов и функции в надежде найти новые терапевтические цели для нейродегенеративных заболеваний1,8.

Секвенирование РНК (РНК-сек) позволяет объективно охарактеризовать экспрессию генов типа клеток, что, в свою очередь, направляет ученых к изучению функций генов в плотных клеточных сетях7. РНК-сек в основном было сделано на массовых образцов, что привело к открытию гомеостатической микроглиальной подписи гена, который отличает их от других нервных и иммунных клеток9. Однако такой подход может упускать из виду молекулярные и функциональные различия между микроглией, особенно те, которые временно присутствуют в процессе развития, или связанные со старением и болезнями. Действительно, одноклеточный РНК-сек (scRNA-seq) предлагает чувствительность и разрешение, которые произвели революцию в этой области, выявив ранее недооцененную неоднородность микроглии в различных контекстах2,3,10. Кроме того, в связи с наличием других аналогичных иммунных клеток на цНС-циркуляции интерфейса, scRNA-seq предоставляет информацию, помогающую дизайн новых инструментов для разделения и функционально вскрыть эти связанные клетки с небольшим ипредварительных знаний2,11.

Был изобретен разнообразный набор платформ scRNA-seq, каждая из которых подходит для определенных приложений12. В целом, методы на основе капель, такие как 10x геномика, выше пропускной связи с (десятки) тысячи клеток последовательной в каждом запуске, и они менее избирательны для ввода, которые могут содержать смешанные популяции клеток, требующих широкой классификации. Методы на основе плит обеспечивают более высокую чувствительность и глубину чтения13,14, как правило, ориентации конкретных популяций от сортировки клеток, чтобы выявить тонкие различия или редкие стенограммы. Учитывая небольшой процент микроглиальных клеток, особенно субпопуляций, связанных с развитием или болезнями, среди всех типов клеток ЦНС, часто желательно изолировать микроглию от конкретной области, интересуемых, и получить глубокую и полноформатную транскриптомическую информацию, с тем чтобы понять их неоднородность.

Здесь мы предоставляем подробную информацию о том, как изолировать микроглии из различных областей мозга мыши расчленены из одного полушария, которые используются для одноклеточных (или объемных) РНК-сек после полуавтоматической пластины на основе процедуры подготовки библиотеки. Другое полушарие может быть использовано для гистологической проверки. Оптимизированный из ранее опубликованного метода9,этот протокол изоляции направлен на максимизацию выхода от небольшого количества исходных материалов, а тем временем поддерживать эндогенные профили экспрессии микроглиальных генов. Мы используем флуоресценцию активированных клеток сортировки (FACS) для обогащения микроглии (или других связанных иммунных клеток, представляющих интерес) в 96-колодных пластин и миниатюризации объемов реагентов для подготовки библиотеки для того, чтобы увеличить пропускную способность. Мы выделяем эту чувствительную платформу scRNA-seq, хотя могут быть применены и другие стратегии на основе пластин. Этот метод может быть легко адаптирован для изоляции микроглии от других расчлененных тканей, таких как травмы или заболевания очагов, и возраст мыши может варьироваться практически на всех послеродовых стадиях. Эффективная изоляция региональной микроглии для одноклеточных исследований транскриптомики будет способствовать лучшему пониманию их функций в области здравоохранения и болезней.

Доступ ограничен. Войдите в систему или начните пробный период, чтобы просмотреть этот контент.

Протокол

Все процедуры с участием грызунов соответствовали руководящим принципам Стэнфордского университета, которые соответствуют национальным законам и политике штатов. Все процедуры для животных были одобрены Административной группой Стэнфордского университета по уходу за лабораторными животными.

ПРИМЕЧАНИЕ: Все решения и буферные композиции приведены в таблице материалов.

1. Подготовка в День изоляции ячеек

  1. Подготовьте следующие реагенты и охладьте их на льду: средний A (50 мл), магнитно-активированный сортировка клеток (MCS) буфер (30 мл), буфер FACS (25 мл), фосфат-буферный солен (PBS; 30 мл), DNase (320 л) и ингибитор RNase (30 л).
    ПРИМЕЧАНИЕ: Объемы, приведенные здесь, достаточны для изоляции микроглии от 4 областей мозга (например, коры головного мозга, мозжечка, гиппокампа и стриатума) одного полушария мозга мыши. Масштабируйте, если используется больше тканей.
  2. Поместите четыре чистых 2 мл Dounce гомогенизаторов на льду и добавить 2 мл среднего С 80 зл DNase (12500 единиц / мл) и 5 л ингибитора RNase в каждом dounce гомогенизатор. Охладите поршни в трубках 15 мл.
  3. Пометьте четыре 6 см блюда Петри с областями мозга для сбора тканей и добавьте 200 кл холодного среднего А в каждое блюдо на льду. Добавить около 5 мл среднего в 6 см Петри блюдо для вскрытия.
    ПРИМЕЧАНИЕ: Перед использованием убедитесь, что все реагенты стерильны и подходят для РНК-приложений. Скамейка и вскрытие инструменты должны быть чистыми и распыляется с RNase обеззараживания решение (Таблица материалов).

2. Рассечение региона мозга

ПРИМЕЧАНИЕ: Этот шаг должен занять 30 мин.

  1. Вводят в пеританум ювенильной и взрослой сценической мыши 400-500 л кетамина/ксилазина (24 мг/мл кетамина и 2,4 мг/мл ксилазина) в перитонею несовершеннолетнего для взрослых сценических мышей (nogt;1 месяц).
    ПРИМЕЧАНИЕ: Мужская мышь используется здесь для иллюстрации, но любой пол подходит.
  2. Подождите 5 минут и щипать заднюю лапу, чтобы обеспечить отсутствие опровержения.
  3. Немедленно используйте иглу 26 G x 3/8 для выполнения перфузии транскардиаального с 20-30 мл ледяного PBS до тех пор, пока буфер не иссякнет без видимой крови.
  4. Обезглавить мышь с помощью хирургических ножниц. Используйте небольшие ножницы, чтобы разрезать кожу, чтобы разоблачить под черепом, а затем прорезать сагитальный шов, лямбдой шва и коронарный шов. Используйте щипцы, чтобы снять обе стороны теменной кости и межпальковой кости, не повреждая ткани, и осторожно переместить мозг в рассечение чашку Петри со средним А.
  5. Используйте предварительно охлажденное лезвие, чтобы разрезать мозг через середину в два полушария.
    ПРИМЕЧАНИЕ: Четыре области мозга, описанные здесь из одного полушария дают достаточное количество микроглии для одноклеточных или объемных применений РНК-сек. Другое полушарие может быть использовано для иммуногистохимии или РНК на месте проверки.
  6. Отделить мозжечок от корковой доли и ствола мозга с #55 щипцов и перенести ткань в коллекцию чашку Петри.
  7. Используйте #55 щипцы, чтобы тщательно вскрыть гиппокампа и стриатум из коры и передать каждую ткань в коллекцию чашку Петри.

3. Механическая диссоциация тканей

ПРИМЕЧАНИЕ: Держите клетки и реагенты остыть все время, за исключением во время окрашивания шагов. Этот шаг должен занять 30 мин.

  1. Нарезать каждую ткань мозга с лезвием бритвы в злот;1 мм3 мелких кусочков.
  2. Используйте 1 мл пипетки (с наконечниками отрезали) для передачи частей ткани в предварительно охлажденных Dounce гомогенизаторов, каждый из которых содержит 2 мл среднего с DNase и ингибиторОм RNase.
  3. Гомогенизировать ткань, медленно скручивая поршень в и из гомогенизатора Dounce для 6'10 полных ударов, пока нет видимых кусков.
    ПРИМЕЧАНИЕ: Douncing убивает нейроны и большинство других глиальных клеток, но оставить микроглиальных клеток, а нетронутыми. Как недостаточное, так и чрезмерное дуновирование может привести к низкой урожайности клеток.
  4. Перенесите диссоциированные ткани в трубки 50 мл через 70 мкм-ситектов.
  5. Промыть каждый Dounce гомогенизатор и поршень в общей сложности 6 мл холодной среды и фильтрования раствор а через тот же ситечко в соответствующую трубку.
  6. Перенесите одноклеточные подвески (около 8 мл каждая) в конические трубки 15 мл и центрифугу при 400 х г в течение 5 мин при 4 кв с тормозом No 5.

4. Удаление Миелина

ПРИМЕЧАНИЕ: Этот шаг должен занять 60 мин.

  1. Подготовьте 1 колонку большого истощения (LD) (для коры головного мозга) и 3 больших колонки (LS) (для других 3 областей) в магнитном сепараторе(Таблица материалов). Промыть каждый столбец с 3 мл буфера MCS.
  2. После того, как центрифугация закончена, пипетка и отбросить супернатант, не нарушая гранулы. Для тканей коры и мозжечка, resuspend клетки в 850 Зл буфера MCS с 1,8 л ингибитора RNase. Для гиппокампа и стриатумт тканей, resuspend клеток в 400 зл и в буфере MCS с 0,9 л ингибитора RNase.
    ПРИМЕЧАНИЕ: Столбцы (LD против LS) и объем, используемый для повторной подвески, оптимизированы в зависимости от количества миелина, присутствующем в ткани. Если другие области мозга анализируются, эти условия, возможно, должны быть скорректированы в зависимости от размера ткани и сколько миелина может существовать. Эффективность удаления миелина можно оценить в шаге 4.9.
  3. Добавьте 100 зЛ бисера удаления миелина каждый в клетки из коры и мозжечка и добавить 50 зликат миелина удаления бисера каждый в клетки из гиппокампа и стриатума.
  4. Аккуратно перемешайте клетки с бисером и насигните трубки на льду в течение 10 мин.
  5. Доведите объем трубки с корковыми клетками до 2 мл с буфером MCS, а все остальные до 1 мл (т.е. добавьте 1 мл для корковых клеток; 500 л для гиппокампальных и стриатальных клеток; нет необходимости добавлять буфер к мозжечковым клеткам).
  6. После того, как столбцы опорожняются, поместите трубку длиной 15 мл ниже каждой колонны. Нагрузка корковых клеток (2 мл) на столбец LD, и все остальные (1 мл каждый) на столбцы LS. Немедленно используйте 1 мл буфера MCS каждый для мытья оригинальных труб и загрузите раствор на соответствующие колонны.
  7. Вымойте столбец LD один раз с 1 мл буфера MCS и мыть каждый столбец LS дважды с 1 мл буфера MCS каждой стирки. Продолжайте собирать сквозной раствор во время стирки.
  8. Фильтр клетки в круглые нижние трубки FACS через 35 мкм ситечко.
    ПРИМЕЧАНИЕ: Каждая трубка должна собрать около 4 мл одноклеточной подвески, истощенной миелином.
  9. Дополнительно, возьмите 10 qL клеточной подвески и смешайте его с 10 зл 0,4% trypan синий раствор. Изучите клетки под 10-м ярким полевым микроскопом, чтобы оценить урожайность, выживаемость и уровень остаточного миелина.
    ПРИМЕЧАНИЕ: Успешный препарат должен генерировать более 90% живых клеток (круглый по форме и за исключением синего красителя) практически без миелина мусора.
  10. Клетки пеллет в трубках FACS при 400 х г в течение 5 мин при 4 градусах По цельсию, с тормозом 5. Медленно вылить супернатант и мазок края трубки на бумаге. Resuspend клетки в каждой трубке с 300 зл и l буфера FACS.
    ПРИМЕЧАНИЕ: Если сортировка MCS предпочтительна, шарики CD11b могут быть использованы для выбора микроглии и других миелоидных клеток после удаления миелина. Эти клетки могут быть использованы для не-пластины на основе scRNA-seq, а также объемНОЙ РНК-сек. Предостережение этого альтернативного подхода заключается в том, что бисер CD11b не отделяет микроглию от других связанных иммунных клеток, которые также являются положительными для этого антигена.

5. Окрашивание для флуоресценции активированной сортировки клеток

ПРИМЕЧАНИЕ: Этот шаг должен занять 40 минут.

  1. Добавить 5 зл и l рецепторов мыши Fc блок реагента (Таблица материалов) в каждой трубке. Инкубировать в течение 5 мин на льду.
  2. Добавьте в каждую трубку 1 qL CD45-PE-Cy7 и 1 Зл CD11b-BV421.
    ПРИМЕЧАНИЕ: Антитела с другими конъюгированными флюорофорами могут быть использованы. Антитела против TMEM119, специфический маркер для гомеостатической микроглии9, также могут быть включены, но рекомендуется использовать вместе с CD45 и CD11b, потому что некоторые субпопуляции микроглии могут потерять выражение поверхности TMEM119.
  3. Инкубировать трубки на шейкере в течение 10 минут при комнатной температуре (RT).
  4. Добавьте 2 мл буфера FACS для мытья.
  5. Клетки пеллет при 4 градусах Цельсия, 400 х г в течение 5 мин. Медленно вылейте супернатант и обмазать край трубки на бумажной ткани. Повторное использование клеток в каждой трубке с использованием 400 qL буфера FACS с 1 qL ингибитора RNase и 0,5 зла пропидий йодида (PI, 1:1,000 разбавления).

6. Индекс FACS Сортировка

ПРИМЕЧАНИЕ: Этот шаг должен занять 1 ч.

  1. Следуя стандартной процедуре FACS, рисуйте ворота на основе рассеяния (за исключением мусора), одиночных клеток, живых клеток (PI отрицательный), микроглии и миелоидных клеток (CD45,CD11b).
    ПРИМЕЧАНИЕ: Типичные микроглиальные клетки выражают CD45 на более низких уровнях по сравнению с другими связанными с границами макрофагами, такими как периваскулярные и менингеальные макрофаги, и, следовательно, gating на CD45 низкий CD11b- должно быть достаточно, если в центре внимания исследования находится профили экспрессии генов в этих классических микроглии1,2. Тем не менее, некоторые подмножества микроглии могут иметь более высокое выражение CD45, и это особенно верно во время развития или в условиях заболевания. Для обеспечения объективного анализа экспрессии микроглиальных генов, cd45 высоких и CD45 низких иммунофенотипов могут быть записаны через настройки сортировки индекса и обе популяции собраны для секвенирования и анализа вниз по течению. Кроме того, выражение поверхности TMEM119 может быть использовано для таргетинга на гомеостатической микроглиальной популяции (см. шаг 5.2) и проанализировано вместе с уровнями CD45 и результатами секвенирования.
  2. Сортировать одну микроглию (с соплом 100 мкм) в 96-хорошо полимеразы цепной реакции (ПЦР) пластин, содержащих 4 Зл лиза буфера каждый хорошо (см. опубликованный протокол14 для деталей).
    ПРИМЕЧАНИЕ: Внешний консорциум управления РНК (ERCC) РНК шип-в смеси (Таблица материалов) могут быть добавлены в 1:2.4 х 107 в буфере лизиса для контроля качества и нормализациицелей 2.
  3. Кратко вихрь пластин и спина вниз с помощью скамейки верхней центрифуги.
  4. Немедленно заморозить образцы на сухом льду. Храните тарелки при -80 градусах по Цельсию до подготовки библиотеки.
    ПРИМЕЧАНИЕ: Кроме того, больше клеток могут быть собраны в 1,5 мл труб с РНК-буфер экстракции для навалом РНК-сек. По опыту авторов, 3000 ячеек достаточно для создания библиотек хорошего качества после опубликованного протокола2,14.

7. Одноклеточный РНК-секвенирование библиотеки Подготовка

ПРИМЕЧАНИЕ: Здесь, опубликованный протокол14 следует для создания scRNA-seq библиотек с помощью жидкости обработки робототехники и несколько модификаций. В этой статье процедура лишь кратко описана, и различия выделены. Обработка 4 пластин одновременно занимает около 2,5 дней.

  1. Оттепель пластин на льду и выполнять обратную транскрипцию с Oligo-dT30VN грунтовки (в буфере лисиса) для генерации кДНК с тепловыми циклами (Таблица 1): 42 C 90 мин; 70 кв 5 мин; 4 градуса по Цельсию. Затем усиливайте кДНК дополнительным шагом пищеварения exonuclease в начале (Таблица 2) с помощью мастер-микса ПЦР и на месте ПЦР (ISPCR) грунтовки(Таблица материалов) и следующее состояние ПЦР: 37 кв 30 мин; 95 кв 3 мин; 23 цикла по 98 градусов по Цельсию 20 с, 67 градусов по Цельсию 15 с, 72 кв 4 мин; 72 кв 5 мин.
  2. Очистите кДНК с использованием 18 л магнитных бусин окнух (коэффициент 0,7:1). Инкубировать пластину на магнитной подставке в течение 5 мин и мыть образцы дважды с свежеприготовленным 80% этанола, 80 л на скважину каждый раз. После высыхания пластины в течение 15-20 мин, elute кДНК с 20 злицита буфера на хорошо.
    ПРИМЕЧАНИЕ: Для контроля качества используйте анализатор фрагментов (высокой чувствительностью следующего поколения, анализ фрагментов, 1-6000 вт) для проверки распределения размеров и концентраций кДНК, и только дальнейшие образцы процесса с мазком между 500-5,000 bp, и выше 0,05 нг/л.
  3. Для создания библиотек смешайте 0,4 л каждого образца кДНК с 1,2 злителя тимента Tn5 реагентов из комплекта подготовки библиотеки(Таблица материалов)в 384-хорошую пластину с помощью нанолитрового трубачного аппарата, при 55 кв 10 мин.
    ПРИМЕЧАНИЕ: Здесь добавляется 1/12,5 из предлагаемого объема реакции (5 л образца и 15 л реагентов тегментации) добавляется для снижения затрат и между тем увеличения пропускной всей проходики. Нанолитерная трубачная машина(Таблица материалов)используется для передачи реагентов (это и последующие шаги) из и до 384-колодцев.
  4. Добавьте 0,4 л буфера нейтрализации, чтобы остановить реакцию тегменции на RT в течение 5 мин.
  5. Добавьте 384 индекса(Таблица Материалов,0,4 л вперед и 0,4 л обратного), 1,2 л смеси ПЦР к образцам (по 2 л каждый) и усиливайте библиотеки, используя следующее условие: 72 кв 3 мин; 95 градусов по Цельсию 30 с; 10 циклов по 95 градусов по Цельсию 10 с, 55 градусов по Цельсию 30 с, 72 кв 1 мин; 72 кв 5 мин.
  6. Объедините все отдельные библиотеки (возьмите по 1 л каждая) из одной и той же пластины 384 колодца вместе и используйте магнитные бусы(таблица материалов,соотношение 0,7:1) для очистки окончательных объединенных библиотек.
  7. Используйте флюорометр(Таблица материалов) для измерения концентраций и биоанализатор(Таблица материалов) для изучения распределения размеров объединенных библиотек перед секвенированием. Целевой глубины секвенирования на 1 миллион сырых считывает на ячейку.
  8. Следуйте стандартным биоинформатическим процедурам для фильтрации и обрезки секвенирования считывания и выполнения выравнивания2. Используйте таблицу подсчета и метаданные в качестве входных данных для анализа кластеризации с пакетом Seurat15.

Доступ ограничен. Войдите в систему или начните пробный период, чтобы просмотреть этот контент.

Результаты

Этот протокол описывает метод изоляции и сортировки микроглии из различных областей мозга в одном взрослом полушарии мозга, за которым следует scRNA-seq. Мы используем douncing для создания одной подвески клеток, а также в качестве первого шага для обогащения микроглии. Недостаточное или чрезмерное наддувание снижает урожайность. Кроме того, мозг и мозг и мозг взрослых мышей содержат высокий уровень миелина, что также может снизить эффективность сортировки и урожайность, если не удалить должным образом. Таким образом, мы...

Доступ ограничен. Войдите в систему или начните пробный период, чтобы просмотреть этот контент.

Обсуждение

Микроглия активно взаимодействует с другими типами клеток в ЦНС, и они очень чувствительны к экологическим стимулам. Для того, чтобы свести к минимуму воспалительные реакции и аномальные изменения в экспрессии их генов в процессе изоляции, этот протокол был упорядочен из ранее опубликованного метода9, и теперь подходит для изоляции микроглии из нескольких областей одного полушария мозга мыши параллельно. Ткани и реагенты хранятся при холодной температуре, а эксперименты проводятся своевременно (ок...

Доступ ограничен. Войдите в систему или начните пробный период, чтобы просмотреть этот контент.

Раскрытие информации

Авторам нечего раскрывать.

Благодарности

Мы благодарим Марико Л. Беннетт, Лиану Николь Бонанно и Спироса Дарманиса за помощь в разработке этого протокола. Мы также благодарим Стэнфордский общий фонд FACS, в частности Мередит Вегларц и Лиза Николс; Иен Тран, Майкл Экарт из Стэнфордского протеина и нуклеиновой кислоты фонда (PAN) за их большую поддержку для съемок. Эта работа финансируется Фондом JPB и Фондом Винсента Коутса.

Доступ ограничен. Войдите в систему или начните пробный период, чтобы просмотреть этот контент.

Материалы

Список материалов, использованных в этой статье
ИмяКомпанияКаталожный номерКомментарии
5 М БетаинSigma-AldrichCat# B0300-5VL
10 мМ dNTP смесьThermo Fisher ScientificCat# R0192
0,5 М ЭДТА, pH 8,0Thermo Fisher ScientificCat# 15575020
10X Hanks' Сбалансированный солевой растворThermo Fisher ScientificCat# 14185-052
1 м HEPESThermo Fisher ScientificCat# 15630080
1X KAPA HIFI Hotstart Master MixKapa BiosciencesCat# KK2602
5 мл Круглое дно Полистирольная трубка, с крышкой клеточного фильтраCorningCat# 352235
AATI, Высокочувствительный набор для анализа фрагментов NGS (1 bp – 6,000.н.)Advanced AnalyticalCat# DNF-474-1000
Бычий сывороточный альбуминSigma AldrichCat# A8806
DNase IWorthingtonCat# LS002007Рабочий раствор: 12500 единиц/мл
DTT, Molecular GradePromegaCat# P1171
ERCC RNA Spike-In Mix ThermoFisher ScientificCat# 4456740
Фетальная бычья сывороткаThermo Fisher ScientificCat# 10437-028
Illumina XT Index Kit v2 Set A (96 индексов)IlluminaCat# FC-131-2001
Illumina XT Index Kit v2 Set B (96 индексов)IlluminaCat# FC-131-2002
Illumina XT Index Kit v2 Set C (96 индексов)IlluminaCat# FC-131-2003
Illumina XT Index Kit v2 Set D (96 индексов)IlluminaCat# FC-131-2004
Лямбда-экзонуклеаза (5 U/μ l)New England BioLabsCat# M0262S
Мышь Fc блокBD PharmingenCat# 553142
Шарики для удаления миелинаMiltenyl BiotecCat# 130-096-433
Nextera XT Набор для подготовки образцов ДНКIlluminaCat# FC-131-1096
NextSeq 500/550 High Output Kit v2.5 (150 циклов)IlluminaCat# 20024907
PBS ( 10X), pH 7.4Thermo Fisher ScientificCat# 70011044
PCRClean DX бусиныAline BiosciencesCat# C-1003-50
Пропидий йодидThermo Fisher ScientificCat# P3566Окрашивание: 1:1000
Qubit dsDNA HS Assay KitThermal Fisher ScientificCat# Q32851
Крыса моноклональная антимышиная/человеческая CD11b, Brilliant Violet 421 (клон M1/70)BioLegendCat# 101236; RRID: AB_11203704Окрашивание: 1:300
Крысиный моноклональный антимышиный CD45, PE/Cy7 (клон 30-F11)Thermo Fisher ScientificCat# 25-0451-82; RRID: AB_469625Окрашивание: 1:300
Рекомбинантный ингибитор РНКазыTakara BioCat# 2313B
SMARTScribe Обратная транскриптаза (100 U/μ l)ClontechCat# 639538содержит 5x буфер первой цепи
<сильный>олигонуклеотиды
0,1 μ M ISPCR Oligo: 5' - AAGCAGTGGTATCAA
CGCAGAGT-3'		(Picelli et al., 2014)
Олиго-dT30VN праймер: 5' - AAGCAGTGGTATCAACGCA
GAGTACT 30 VN-3'		(Picelli et al., 2014)
TSO 5' - AAGCAGTGGTATCAACGCAGA
GTACATrGrG+G-3' ("r" - форрибобазы и "+" - база LNA)		(Picelli et al., 2014)
Solutions
FACS буферРецепт: стерильно-фильтрованный 1% FBS, 2 мМ ЭДТА, 25 мМ ГЕПС в 1X PBS
MCS буферРецепт: стерильно отфильтрованный 0,5% БСА, 2 мМ ЭДТА в 1X PBS
Medium AРецепт: 15 мМ HEPES, 0,5% глюкоза в 1X HBSS без фенола красный
<сильный>Тарелки
384-луночные ПЦР-планшеты Rigi-Plate, Axygen ScientificVWR89005-556
Hard-shell 96-луночные ПЦР-планшетыBio-RadHSP9631
Others
Dumont #55 щипцыFine Science Tools11295-51
Dounce гомогенизатор, 2 млWheaton
Большая сессионная колоннаMiltenyi Biotec130-042-901
Большая селекционная колоннаMiltenyi Biotec130-042-401
MACS MultiStandMiltenyi Biotec130-042-303
Сепаратор QuadroMACSMiltenyi Biotec130-090-976
RNAzapThermo Fisher ScientificAM9780
Ситечко (70 μ m)Falcon352350
Equipment
BD FACSAria IIBD Bioscienceshttp://www.bdbiosciences.com/
БиоанализаторAgilent2100
Анализатор фрагментовAgilent5300
Mosquito HTS нанолитровый пипеткаробот TTP Labtechhttps://www.ttplabtech.com/
Qubit 4 флуориметрThermo Fisher ScientificQ33226
357422

Ссылки

  1. Li, Q., Barres, B. A. Microglia and macrophages in brain homeostasis and disease. Nature Reviews Immunology. 18 (4), 225-242 (2018).
  2. Li, Q., et al. Developmental Heterogeneity of Microglia and Brain Myeloid Cells Revealed by Deep Single-Cell RNA Sequencing. Neuron. 101 (2), 207-223 (2019).
  3. Keren-Shaul, H., et al. A Unique Microglia Type Associated with Restricting Development of Alzheimer's Disease. Cell. 169 (7), 1276-1290 (2017).
  4. Bohlen, C. J., et al. Diverse Requirements for Microglial Survival, Specification, and Function Revealed by Defined-Medium Cultures. Neuron. 94 (4), 759-773 (2017).
  5. Guerreiro, R., et al. TREM2 variants in Alzheimer's disease. New England Journal of Medicine. 368 (2), 117-127 (2013).
  6. Jonsson, T., et al. Variant of TREM2 associated with the risk of Alzheimer's disease. New England Journal of Medicine. 368 (2), 107-116 (2013).
  7. Zhang, Y., et al. An RNA-sequencing transcriptome and splicing database of glia, neurons, and vascular cells of the cerebral cortex. Journal of Neuroscience. 34 (36), 11929-11947 (2014).
  8. Colonna, M., Butovsky, O. Microglia Function in the Central Nervous System During Health and Neurodegeneration. Annual Review of Immunology. 35, 441-468 (2017).
  9. Bennett, M. L., et al. New tools for studying microglia in the mouse and human CNS. Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America. 113 (12), 1738-1746 (2016).
  10. Hammond, T. R., et al. Single-Cell RNA Sequencing of Microglia throughout the Mouse Lifespan and in the Injured Brain Reveals Complex Cell-State Changes. Immunity. 50 (1), 253-271 (2019).
  11. Van Hove, H., et al. A single-cell atlas of mouse brain macrophages reveals unique transcriptional identities shaped by ontogeny and tissue environment. Nature Neuroscience. 22 (6), 1021-1035 (2019).
  12. Chen, G., Ning, B., Shi, T. Single-Cell RNA-Seq Technologies and Related Computational Data Analysis. Frontiers in Genetics. 10, 317(2019).
  13. Svensson, V., et al. Power analysis of single-cell RNA-sequencing experiments. Nature Methods. 14 (4), 381-387 (2017).
  14. Picelli, S., et al. Full-length RNA-seq from single cells using Smart-seq2. Nature Protocols. 9 (1), 171-181 (2014).
  15. Macosko, E. Z., et al. Highly Parallel Genome-wide Expression Profiling of Individual Cells Using Nanoliter Droplets. Cell. 161 (5), 1202-1214 (2015).
  16. Ziegenhain, C., et al. Comparative Analysis of Single-Cell RNA Sequencing Methods. Molecular Cell. 65 (4), 631-643 (2017).
  17. Tabula Muris, C., et al. Single-cell transcriptomics of 20 mouse organs creates a Tabula Muris. Nature. 562 (7727), 367-372 (2018).
  18. Bohlen, C. J., Bennett, F. C., Bennett, M. L. Isolation and Culture of Microglia. Current Protocols in Immunology. 125 (1), 70(2018).
  19. Haimon, Z., et al. Re-evaluating microglia expression profiles using RiboTag and cell isolation strategies. Nature Immunology. 19 (6), 636-644 (2018).
  20. Collins, H. Y., Bohlen, C. J. Isolation and Culture of Rodent Microglia to Promote a Dynamic Ramified Morphology in Serum-free Medium. Journal of Visualized Experiments. (133), e57122(2018).
  21. Nikodemova, M., Watters, J. J. Efficient isolation of live microglia with preserved phenotypes from adult mouse brain. Journal of Neuroinflammation. 9, 147(2012).
  22. Swartzlander, D. B., et al. Concurrent cell type-specific isolation and profiling of mouse brains in inflammation and Alzheimer's disease. Journal of Clinical Investigation Insight. 3 (13), 121109(2018).
  23. Hennig, B. P., et al. Large-Scale Low-Cost NGS Library Preparation Using a Robust Tn5 Purification and Tagmentation Protocol. G3. 8 (1), Bethesda. 79-89 (2018).

Доступ ограничен. Войдите в систему или начните пробный период, чтобы просмотреть этот контент.

Перепечатки и разрешения

Теги

FACSCD45 CD11B
Изоляция региона конкретных микроглии от одного взрослого полушария мозга мыши для глубокой одноклеточной РНК секвенирования
Свяжитесь с нами
Рекомендовать библиотеке

Конфиденциальность

Условия эксплуатации

Политика

Авторские права © 2026 MyJoVE Corporation. Все права защищены.