Для просмотра этого контента требуется подписка на JoVE. Войдите или начните свой бесплатный пробный период.

Методическая статья

Беспроводная электрофизиологическая запись нейронов movable Tetrodes в Свободно плавающих рыб

8.7K просмотров

⸱

DOI:

10.3791/60524

⸱

26 ноября 2019 г.

 ,  , 
1Department of Biomedical Engineering, Ben-Gurion University of the Negev, 2Zlotowski Center for Neuroscience, Ben-Gurion University of the Negev, 3Department of Life Sciences, Ben-Gurion University of the Negev

* These authors contributed equally

В этой статье

Краткое содержание

Представлен новый беспроводной метод записи внеклеточных нервных сигналов из мозга свободно плавающей золотой рыбки. Записывающее устройство состоит из двух тетродов, микропривода, регистратора нейронных данных и водонепроницаемого корпуса. Все детали изготовлены на заказ, за исключением регистратора данных и его разъема.

Аннотация

Нейронные механизмы, регулирующие поведение рыб, остаются в основном неизвестными, хотя рыбы составляют большинство всех позвоночных. Способность записывать активность мозга от свободно движущихся рыб будет заранее исследования на нервной основе поведения рыбы значительно. Кроме того, точный контроль места записи в головном мозге имеет решающее значение для изучения скоординированной нейронной активности в различных регионах в рыбьем мозге. Здесь мы представляем технику, которая записывает беспроводной из мозга свободно плавающих рыб, контролируя глубину места записи. Система основана на нейронном регистраторе, связанном с новым водносовместимым имплантатом, который может регулировать местоположение записи с помощью тетродов, управляемых микроприводом. Возможности системы иллюстрируются с помощью записей из теленцефалона золотой рыбки.

Введение

Рыбы являются самой большой и разнообразной группой позвоночных, и, как и другие позвоночные, они обладают сложными когнитивными способностями, такими как навигация, общение, сон, охота и т.д. Тем не менее, нейронные механизмы, регулирующие поведение рыб, по большей части остаются неизвестными.

В последние несколько десятилетий внеклеточные записи из обездвиженых рыб в первую очередь были реализованы для изучения различных аспектов нейронной основы поведения1,2. Хотя этот метод подходит для некоторых сенсорных систем, исследование всего спектра нервной основы поведения трудно, если не невозможно в обездвиженные животные. Первые достижения включали запись из клеток Mauthner привязанных плавающих рыб3,4. Тем не менее, клетки Маутнера непропорционально большие, и записанные потенциальные амплитуды действия, которые могут достигать нескольких м.В., облегчают запись. Позже, Canfield и др. описал доказательство концепции при использовании привязанного животного для записи из теленцефалона рыбы5. Другой недавний метод для записи нейронной активности от рыбы является изображения кальция (см. отзывы Оргер и де Polavieja6, и Vanwalleghem и др.7). Этот метод был разработан для использования с личинками зебры, потому что кожа и череп прозрачны во время личиночной стадии. Однако этот метод не может быть использован для изучения сложного поведения на более поздних стадиях разработки.

Здесь мы представляем новую технику для записи внеклеточной нервной активности из мозга свободно плавающих рыб. Это модифицированная версия протокола, описанная в Vinepinsky et al.8. Основным нововведением является добавление микропривода, который позволяет контролировать положение электродов после операции. Техника предназначена для записи из теленефалиона золотой рыбки с использованием набора тетродов, которые подключены к регистратору нейронных данных с помощью микропривода. Вся установка беспроводной и закреплены на черепе рыбы. Специфический вес системы выравнивается с водным весом, добавляя небольшой поплавок, который позволяет рыбе свободно плавать.

Методика основана на использовании регистратора нейронных данных, который усиливает, оцифровывает и хранит сигнал в бортовом устройстве памяти. Телеметрическая система регистратора используется для запуска и остановки записей, а также для синхронизации с видеокамерой. В этом протоколе используется 16-канальный нейронный регистратор, встроенный в водонепроницаемую коробку вместе с микроприводом.

Сборка микропривода изготовлена из двух основных компонентов: самого микропривода и корпуса микропривода(рисунок 1A,B). Корпус держит микропривод и тетроды, а также выступает в качестве якоря между черепом и коробкой регистратора(Рисунок 1C). Коробка регистратора ПВХ изготовлена с помощью машинного процесса и герметична с помощью O-кольца(рисунок 1E-G, см. также Дополнительную диаграмму 1, Дополнительная фигура 2, и Дополнительная рисунок 3 для трехмерной диаграммы 3D). С одной из концов, кусок полистирола пены крепится к коробке регистратора, чтобы компенсировать вес имплантата и обеспечить рыбу с плавучести нейтральный имплантат. Конструкция микропривода, описанная в протоколе, соответствует процедуре, представленной Vandecasteele et al.9 с модификацией для присоединения микропривода к корпусу(рисунок 1А). Представлены все основные шаги.

Процедура, описанная в протоколе подготовки черепа рыбы, аналогична процедуре, представленной в Vinepinsky et al.8, и кратко описана в протоколе. На следующий день после операции, рыбы, как правило, полностью оправился от последствий анестезии и готовы к поведенческим экспериментам. Обратите внимание, что расположение тетроде может быть скорректировано путем поворота микроприводного винта. Винт имеет интервал 300 мкм на полное вращение и продвижение 75 мкм рекомендуется до тех пор, пока целевой расположение мозга не будет достигнуто. Соответствующий атлас мозга следует консультироваться с целью конкретной области мозга, представляющих интерес. Целесообразно испытать электрод impedance каждый раз, когда рыба под анестетом для замены батареи или карты памяти.

Доступ ограничен. Войдите в систему или начните пробный период, чтобы просмотреть этот контент.

Протокол

Все хирургические процедуры должны быть одобрены местными комитетами по этике по защите животных (например, IACUC).

1. Строительство микроприводного жилья

  1. Чтобы построить корпус, вырезать 1 мм шириной латунной пластины в 19 мм х 29 мм х 1 мм пластины с помощью пилы. Вырежьте две 5,5 мм прорези на каждой из длинных сторон перпендикулярно краю, так что каждая щель 6,5 мм от узких сторон(рисунок 2A).
  2. Используя плоскогубцы, сложите область между прорезями на длинных сторонах внутрь, затем сложите нижнюю часть внутрь и верхнюю сторону наружу, чтобы получить корпус(рисунок 2B,C).
  3. Используя 3 мм сверло бит, сделать отверстия для винтов в микроприводе корпуса.
    ПРИМЕЧАНИЕ: Эти отверстия будут использованы позже, чтобы прикрепить корпус к коробке регистратора(Рисунок 2D).
  4. Солдер стороны жилья.
  5. Используя тонкий круговой файл, генерировать небольшой, 1,5 мм в радиусе, полукруглой щели в нижней части корпуса(рисунок 2E).
    ПРИМЕЧАНИЕ: Это будет использоваться позже, чтобы вставить трубку из нержавеющей стали для руководства электродов.
  6. Используйте 1 мм сверло бит, чтобы сделать отверстие в задней части корпуса для тетродов(Рисунок 2F).
    ПРИМЕЧАНИЕ: 3D-модель жилья содержится в дополнительном корпусе.

2. Строительство микропривода

  1. Используя резак, разорвать три-контактный кусок от одного ряда мужской заголовок полосы(рисунок 1H). Используя плоскогубцы, вытащите средний штифт.
  2. Используя резак, вырезать оставшиеся булавки до 10 мм в длину (2 мм меньше, чем длина винта). Другая возможность заключается в использовании более длинного винта (см. шаг 2.4).
  3. Просверлите отверстие с помощью #65 сверла через среднее отверстие штыря. Просверлите поток с помощью крана 00–99.
  4. Соберите микропривод и латунные пластины (7,5 мм х 2,5 мм х 0,6 мм, см. Дополнительную рис учку 4)так, чтобы латунные пластины касались булавок. Вставьте винт (#00-90 круглая головка, 12 мм, латунь) через первую латунную пластину, затем через нить заголовок и вторую латунную пластину. Наконец, поместите гайку на винт и аккуратно затяните собранный микропривод.
  5. Приспойка булавки вместе с латунными пластинами, и гайка с кончиком винта.
  6. Приспойка микроприводв в микропривод корпуса в четырех точках по бокам микропривода латунных пластин.
  7. Вырезать одну трубку из нержавеющей стали длиной 6 мм с внутренним диаметром 1,5 мм, а другой трубкой из нержавеющей стали длиной 3 мм с внутренним диаметром 1,2 мм. Польский концы труб, чтобы избежать резких концов.
  8. Клей трубки длиной 6 мм к небольшой полукруглой щели в нижней части корпуса микропривода с помощью эпоксидной смолы. Клей 3 мм длиной из нержавеющей стали в контактный заголовок, выстроились с 6 мм длиной трубки на корпусе.
  9. Вырезать два сегмента силиконовой трубки длиной 5 см диаметром 0,64 мм и одну пятисантиметровую полиимидную трубку диаметром 0,250 мм.
  10. Вставьте три трубки в две трубки из нержавеющей стали. Клей трубки из нержавеющей стали трубки прилагается к штырь заголовок с помощью клея цианоакрилат. Винт микропривод атакжем вверх и отрезать избыток труб от верхней и нижней части двух стальных труб.
    ПРИМЕЧАНИЕ: Микропривод с корпусом теперь готов к использованию(рисунок 1C).

3. Подготовка тетродейской решетки

  1. Чтобы изготовить имплантат с двумя тетродеями с четырьмя электродами на каждом тетроде, приготовьте восемь проводов длиной 12 см, Formvar изолирован, из 25 мкм диаметром вольфрамовой проволоки.
    ПРИМЕЧАНИЕ: Такая же конструкция может вместить четыре тетрода.
  2. Поместите под микроскопом держатель для 16-канального электродного интерфейса (EIB-16) PCB (см. Таблица материалов).
  3. Используя мягкий наконечником пинцета и зажигалку, удалить покрытие от каждого из восьми проводов с одной стороны, используя пламя.
    ПРИМЕЧАНИЕ: Это необходимо для того, чтобы провод был должным образом подключен к разъему PCB позже.
  4. Нажмите проволоку в одно из отверстий в ЕИБ-16 с покрытием стороны в отверстие. Поместите булавку и нажмите его с помощью плоскогубцев. Проверьте подключение, измерив сопротивление между штифтом и непокрытой стороной провода.
    ПРИМЕЧАНИЕ: Сопротивление находится на порядок десятков Ohms.
  5. Повторите шаг 3.4 со всеми восемью проводами.
  6. Лента две группы из четырех проводов вместе с помощью клейкой лентой в конце каждого провода.
    ПРИМЕЧАНИЕ: Каждая группа будет склеена позже, чтобы сформировать тетрод.
  7. Вырезать один кусок вольфрама проволоки 12 см в длину с диаметром 50 мкм. Подключите его к одному из соединений ЕИБ-16.
    ПРИМЕЧАНИЕ: Этот провод будет служить эталонный электрод.
  8. Вырезать две голые серебряные провода 12 см в длину с диаметром 75 мкм, которые послужат основанием для записи регистратора. Солдер два провода к наземному соединению в ЕИБ-16.
  9. Держите EIB-16 над моторизованным поворотным устройством и поместите конец клейкой ленты одной группы из четырех проводов на моторизованном тюнинговочном устройстве. Нанесите 130 раундов по часовой стрелке с последующим 20 ротациями против часовой стрелки. Нанесите цианоакрилатный клей, чтобы покрыть тетрод.
  10. Подождите, пока клей вылечится. Вырезать тетрод близко к клейкой лентой.
  11. Повторите шаги 3.9 и 3.10 со вторым тетрод.
    ПРИМЕЧАНИЕ: Это производит готовый двухтетодный массив(рисунок 1D).

4. Сборка имплантата

  1. Винт микропривод авнизу вниз.
  2. Используя круглые головные винты 1 x 3M Phillips, прикрепите EIB-16 к пластине из ПВХ.
  3. Используя мягкие пинцеты конца, вытяните все тетроды и провода через отверстие в передней части крышки коробки logger.
  4. Используя плоские головные винты 2 x 6M Phillips, прикрепите пластину из ПВХ к крышке ящика для регистраторов. Держите разъем ЕИБ-16 в правильной ориентации, чтобы регистратор мог быть установлен на EIB-16. Убедитесь, что EIB-16 фиксируется на месте, чтобы избежать артефактов движения в записанном сигнале.
  5. Печать проводов в коробку с помощью эпоксидной смолы. Применить как можно меньше, потому что первичное уплотнение будет сделано по комнатной температуры вулканизации (RTV) позже.
  6. Прикрепите корпус микропривода к крышке ящика для регистраторов с помощью 2-мм винтов.
  7. Нить тетродов и все провода через отверстие в задней части корпуса микропривода. Нить тетродо в двух силиконовых труб в микроприводе. Нить 50 мкм вольфрама провода через полиимидную трубку в микродрайве.
  8. Клей тетродов и проводов к их трубам, применяя цианоакрилат клей в верхнем конце труб, чтобы обеспечить движение согласуется с микроприводом. Винт микропривод атакжем до самого верха.
  9. Применить мягкую нефть (см. Таблица материалов) на подвергаются тетрод и провода внутри корпуса микропривода, чтобы предотвратить движение.
  10. Вырежьте 12 мм х 14,5 мм Петри блюдо нижнее окно с помощью нагретого лезвия бритвы. Прикрепите окно к передней части корпуса микропривода с эпоксидной смолой. Держите наземные провода за окном.
  11. Нанесите покрытие RTV на открытые тетроды и провода между крышкой ящика для регистраторов и корпусом микропривода.
  12. После RTV вылечить, закрыть коробку с небольшим весом внутри, и погрузиться в воду на ночь, чтобы убедиться, что нет утечки воды в коробку.
  13. Вырежьте тетроды и эталонную проволоку до нужной длины с помощью острых ножниц.
  14. Прикрепите к коробке маркированную экструдированную пену полистирола (см. таблицу материалов). Отрегулируйте его размер, чтобы его плавучесть была сбалансирована при погружении в водяную ванну.
  15. Опустите наконечники тетрода в платиновый черный раствор и используйте прямой ток (-0,2 зА), чтобы покрыть электроды и установить импедацию электродов по желанию. Используйте мультиэлектродный тестер impedance (см. Таблица материалов)для измерения покрытия и impedance.
    ПРИМЕЧАНИЕ: В паллиуме золотая рыбка, значение 40 kOhm лучше. В зависимости от применения, электрод impedance может быть отрегулирован путем изменения платинового черного покрытия10,11.

5. Препарат анестезии - 1% МС-222 Stock Solution

ПРЕДЕКТО: Препарат анестезии включает в себя использование порошкообразного МС-222, канцерогена. Таким образом, шаги 5.2 и 5.3 должны быть сделаны в химическом капюшоне с помощью перчаток.

  1. Добавьте 100 мл воды в трубку, которая может содержать более 100 мл.
  2. В химический капот, поместите одноразовые пластины взвешивания на шкале. Добавьте 1 г порошка MS-222 с помощью шпателя, затем добавьте порошок в трубку.
  3. Встряхните трубку хорошо.
    ПРИМЕЧАНИЕ: В жидкой форме, MS-222 может быть использован вне химического капота носить перчатки, но не требует маски.
  4. Поместите одноразовую пластину для взвешивания по шкале. Добавьте 2 г бикарбоната натрия с помощью шпателя, затем добавьте порошок в трубку. Встряхните трубку хорошо.

6. Подготовка черепа рыбы

ПРИМЕЧАНИЕ: На этом этапе рыба готова к операции по имплантации. Перед операцией убедитесь, что все компоненты и материалы были стерилизованы соответствующими процедурами. Для этого шага, из воды U-образный держатель рыбы не требуется. В этом протоколе, алюминиевый держатель, который подходит 15 см головы до хвоста длинной золотой рыбки используется. Эта система держит рыбу из воды, в то время как пронизывание жабры с кислородом воды. Подробности см. Винепинский и др.8.

  1. Поместите рыбу в 0,02% модной ванны MS-222 в течение 20 минут, пока рыба не заснет.
  2. Используя стерильные перчатки, возьмите рыбу из воды и поместите ее в держатель.
    ПРИМЕЧАНИЕ: Кислородная вода, пронизаваемая рыбой, содержит МС-222 с концентрацией 0,02%, так что рыба остается под обезболной во время операции.
  3. Используя стерильный шпатель, нанесите лидокаин 5% пасты на кожу выше назначенного места для операции в течение 10 минут, затем удалите лидокаин.
    ПРИМЕЧАНИЕ: Проконсультируйтесь с соответствующим атласом мозга, чтобы ориентироваться на конкретную область мозга.
  4. Используя стерильный 15 лезвия скальпель, удалить кожу над черепом в области имплантата.
  5. Используя стоматологическую дрель с 0,7 мм сверло битов, просверлите 4 отверстия в черепе. Вставьте 1 мм винт (3 мм в длину) в каждое отверстие и применить cyanoacrylate клей на отверстия прямо перед вставкой винта.
  6. Используя зубную ожоговую часть, нанесите зубной цемент на винты и на периферию открытых черепа.
  7. Используя стоматологическую дрель, сделайте отверстие диаметром 5 мм в черепе над областью интереса мозга. Удалить жировой ткани между черепом и мозгом и подвергать цель области мозга с помощью тонкой пинцетом и мягкой бумаги ткани. Будьте осторожны, чтобы не повредить большие кровеносные сосуды под черепом.
    ПРИМЕЧАНИЕ: К концу этого этапа, рыба готова имплантировать зонд. Здесь описаны только основные шаги, характерные для этого протокола. Несколько послеоперационных процедур (таких как подробная документация о здоровье животного и стерилизации хирургических инструментов и области) не представлены или обсуждены, поскольку они применимы ко всем операциям с рыбой или мелкими животными.

7. Имплантация зонда

ПРИМЕЧАНИЕ: Для завершения заключительного шага в протоколе необходим манипулятор, который может удерживать имплантат на месте, пока он вставляется в мозг.

  1. Используйте манипулятор, чтобы держать крышку ящика с тетродами, указывающими вниз к рыбьему мозгу.
  2. Согните эталонный электрод таким образом, что, когда тетроды опускаются в мозг, эталон остается вне мозга.
  3. Вырезать основания так, что они вписываются в череп. Дополнительно соедините один грунтовый провод с одним из винтов черепа.
  4. Нижняя имплантат так, что электроды вставляются в мозг в то время как нижняя часть корпуса микропривода рядом с черепом.
  5. Начните прикреплять имплантат к черепу, применяя небольшое количество зубного цемента между корпусом и ближайшим черепным винтом.
  6. После того, как первая часть зубного цемента вылечивается, наносите зубной цемент и закрывают отверстие над черепом и весь открытый череп.
    ПРИМЕЧАНИЕ: Обычно несколько раундов стоматологического цемента приложений, необходимых для того, чтобы покрыть весь открытый череп.
  7. Установите регистратор и батарею в коробку и запечатать коробку со всеми винтами.
  8. Применяют антибиотики и местные обезболивающие в зависимости от типа рыбы, используемой для экспериментов.
  9. Промыть жабры рыбы с пресной водой, пока рыба не начнет просыпаться. Удалите рыбу из держателя и поместите его обратно в свой домашний резервуар.
    ПРИМЕЧАНИЕ: Рыба полностью восстанавливается в течение 60 минут после операции.
  10. Убедитесь, что рыба может свободно плавать с имплантатом(Рисунок 3, Дополнительное видео 1). При необходимости спорите размер экструдированной пены полистирола над коробкой регистратора так, чтобы рыба легко балансировала.

Доступ ограничен. Войдите в систему или начните пробный период, чтобы просмотреть этот контент.

Результаты

Во время записи сессии золотая рыбка свободно плавала в квадратном резервуаре для воды, в то время как нейронная активность в ее теленефалионе была записана. Целью этих экспериментов было изучение того, как нейронная активность одиночных клеток определяет поведение рыбы. Для этого в зарегистрированных данных необходимо определить пиковую активность. Активность мозга, будучи записанной, была оцифрована на 31 250 Гц и высокой проходной фильтруется на 300 Гц регистратором данных. Затем, в ав...

Доступ ограничен. Войдите в систему или начните пробный период, чтобы просмотреть этот контент.

Обсуждение

В этом протоколе подробно описаны шаги, связанные с вжививанием тетроде массива в теленцефалон свободно плавающей золотой рыбки. Этот метод реализует нейронный регистратор, который усиливает и записывает сигналы, полученные из до 16 каналов вместе с микроприводом, который может регулировать положение тетродев в мозге. Микропривод позволяет регулировать положение в мозге для оптимизации записи.

Этот протокол может быть легко изменен для записи из других областей мозга (см. Vinepinsky et al.

Доступ ограничен. Войдите в систему или начните пробный период, чтобы просмотреть этот контент.

Раскрытие информации

Авторам нечего раскрывать.

Благодарности

Мы благодарны Нахуму Улановскому и сотрудникам Улановской лаборатории за помощь. Кроме того, мы благодарны Таль Новопланскому-Цуру за полезную техническую помощь. Мы с благодарностью отмечаем финансовую поддержку со стороны Университета Бен-Гуриона негритянского университета Негева (грант No 281/15) и Благотворительного фонда Хелмсли в рамках Инициативы по аграрной, биологической и когнитивной робототехнике Университета Бен-Гуриона в Негеве.

Доступ ограничен. Войдите в систему или начните пробный период, чтобы просмотреть этот контент.

Материалы

Список материалов, использованных в этой статье
ИмяКомпанияКаталожный номерКомментарии
Круглые сверлаСовместимы со сверлом.
15 лезвий скальпельSigma-Aldrich
16 канальная печатная платаNeurlynxEIB-16
1x3M крестообразные винтынержавеющая сталь. Любого типа.
1x3M винты с крестообразным шлицем с круглым шлицем Любого типа.
27 см x 19 см x 1 ммСмотрите Рисунок 2
ВинтыНержавеющая сталь. Любого типа.
3140 RTV покрытиеDow Crowning2767996
75 &микро; m Серебряная проволокаA-M Systems
Латунные крепежные винты #00-90947-1006
Латунные пластины 7,5 мм x 2,5 мм x 0,6 ммПредоставляется 3D чертеж. Смотрите дополнительно 1
Вольфрамовая проволока с покрытием 25&микро; mCalifornia Fine Wire Company5000160В зависимости от области применения тетроды могут быть изготовлены из любого типа проволоки. Популярными проводами являются нихромные провода, которые можно встретить с меньшими диаметрами (например, А-М системы, 762000)
Вольфрамовая проволока с покрытием 50 & микро; mA-M Systems795500Может быть заменен на любой другой провод с низким импедансом
Цианоакриловый клей
Dental BurnisherComDent UKПодойдет любой небольшой стерильный нержавеющий инструмент.
Стоматологический цемент - GCFujiPLUSGC431011Другие стоматологические цементы, вероятно, тоже подойдут, хотя мы никогда не пробовали другие.
Стоматологическая бормашина или бормашинаСтоматологические бормашины стоят дорого, дрель для лака может стать дешевой заменой.
Сверло #65947-65
Быстроотверждаемая эпоксидная смолаЗдесь можно использовать любую эпоксидную смолу для отверждения за 5 минут.
Коробка регистратора с уплотнительным кольцомПредоставляется 3D-чертеж. См. дополнительные пункты 1-3. Коробка должна быть изготовлена машинным способом (не используйте 3D-принтеры). Используйте транспирантный материал, чтобы иметь возможность видеть светодиоды индикатора на регистраторе.
Моторизованное поворотное устройство,изготовленное на заказ, как описано на сайте "open ephys". Также может быть куплен у нейрорыси («Tetrode Spinner 2.0») или использован другими способами.
Нейрологгер Mouselog-16Deuteron Technologies LtdНа рынке доступно несколько нейрологгеров, в том числе: SpikeGadget (UH32 32channels) и Neurologger 2/2A/2B Алексея Высоцкого. Следует отметить, что вес не является существенным недостатком, так как его можно уравновесить плавающим пенополистиролом
MS-222Sigma AldrichE10521Ethtl 3-аминобензоатметансульфонатом 98%
Nano-Z покрытиеWhite Matter LLC Нано-Zможно купить у нескольких поставщиков. Можно использовать любой импедансметр, например IMP-1 / 6662 / 2788, BAK Electronics.
Контакты для печатных платNeurlynxNeuralynx EIB Pins
Polymide трубки 250 &; mA-M Systems822000
Аккумуляторная батарея3.7 Lipo батарея, 370 мАч. Вмещает около 6 часов записи. Меньшие или большие батареи могут использоваться для уменьшения веса или увеличения времени записи.
Силиконовая трубка 0,64 ммA-M Systems806100
Нержавеющая сталь 1,5 ммA-M Systems846000
Бикарбонат судияSigma AldrichS9625
Кран #00-90947-1301
ВазелинЗдесь можно использовать любой тип мягкого нефтяного средства для защиты кожи.
0,7 мм с плоской головкой Нержавеющая сталь.Латунная пластина с плоским крестообразным шлицем 2x6M для лака для ногтей

Ссылки

  1. Jacobson, M., Gaze, R. M. Types of visual response from single units in the optic tectum and optic nerve of the goldfish. Quarterly Journal of Experimental Physiology and Cognate Medical Sciences. 49 (2), 199-209 (1964).
  2. Ben-Tov, M., Donchin, O., Ben-Shahar, O., Segev, R. Pop-out in visual search of moving targets in the archer fish. Nature Communications. 6, 6476(2015).
  3. Zottoli, S. J. Correlation of the startle reflex and Mauthner cell auditory responses in unrestrained goldfish. Journal of Experimental Biology. 66 (1), 243-254 (1977).
  4. Canfield, J. G., Rose, G. J. Activation of Mauthner neurons during prey capture. Journal of Comparative Physiology A. 172 (5), 611-618 (1993).
  5. Canfield, J. G., Mizumori, S. J. Methods for chronic neural recording in the telencephalon of freely behaving fish. Journal of Neuroscience Methods. 133 (1-2), 127-134 (2004).
  6. Orger, M. B., de Polavieja, G. G. Zebrafish behavior: opportunities and challenges. Annual Review of Neuroscience. 40, 125-147 (2017).
  7. Vanwalleghem, G. C., Ahrens, M. B., Scott, E. K. Integrative whole-brain neuroscience in larval zebrafish. Current Opinion in Neurobiology. 50, 136-145 (2018).
  8. Vinepinsky, E., Donchin, O., Segev, R. Wireless electrophysiology of the brain of freely swimming goldfish. Journal of Neuroscience Methods. 278, 76-86 (2017).
  9. Vandecasteele, M., et al. Large-scale recording of neurons by movable silicon probes in behaving rodents. JoVE (Journal of Visualized Experiments). (61), e3568(2012).
  10. Ferguson, J. E., Boldt, C., Redish, A. D. Creating low-impedance tetrodes by electroplating with additives. Sensors and Actuators A: Physical. 156 (2), 388-393 (2009).
  11. Arcot Desai, S., Rolston, J. D., Guo, L., Potter, S. M. Improving impedance of implantable microwire multi-electrode arrays by ultrasonic electroplating of durable platinum black. Frontiers in Neuroengineering. 3, 5(2010).
  12. Lewicki, M. S. A review of methods for spike sorting: the detection and classification of neural action potentials. Network: Computation in Neural Systems. 9 (4), R53-R78 (1998).
  13. Teixeira, F. B., Freitas, P., Pessoa, L. M., Campos, R. L., Ricardo, M. Evaluation of IEEE 802.11 underwater networks operating at 700 MHz, 2.4 GHz and 5 GHz. Proceedings of the 10th International Conference on Underwater Networks & Systems. , Arlington, VA. (2015).
  14. Sendra, S., Lloret, J., Rodrigues, J. J., Aguiar, J. M. Underwater wireless communications in freshwater at 2.4 GHz. IEEE Communications Letters. 17 (9), 1794-1797 (2013).
  15. Lloret, J., Sendra, S., Ardid, M., Rodrigues, J. J. Underwater wireless sensor communications in the 2.4 GHz ISM frequency band. Sensors. 12 (4), 4237-4264 (2012).
  16. Hoogerwerf, A. C., Wise, K. D. A three-dimensional microelectrode array for chronic neural recording. IEEE Transactions on Biomedical Engineering. 41 (12), 1136-1146 (1994).
  17. Harris, K. D., Quiroga, R. Q., Freeman, J., Smith, S. L. Improving data quality in neuronal population recordings. Nature Neuroscience. 19 (9), 1165(2016).

Доступ ограничен. Войдите в систему или начните пробный период, чтобы просмотреть этот контент.

Перепечатки и разрешения

Теги

Беспроводная электрофизиологическая запись нейронов movable Tetrodes в Свободно плавающих рыб
Свяжитесь с нами
Рекомендовать библиотеке

Конфиденциальность

Условия эксплуатации

Политика

Авторские права © 2026 MyJoVE Corporation. Все права защищены.