Методическая статья

Эффективная нейронная дифференциация с использованием одноклеточной культуры эмбриональных стволовых клеток человека

DOI:

10.3791/60571

⸱

18 января 2020 г.

 ,  , 
1Immunity, Inflammation and Disease Laboratory, National Institute of Environmental Health Sciences, National Institutes of Health, 2NIH Stem Cell Unit, National Institute of Neurological Disorders and Stroke, National Institutes of Health

В этой статье

Краткое содержание

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Здесь представлен протокол для генерации одноклеточной культуры эмбриональных стволовых клеток человека и их последующей дифференциации в нервные клетки-прародители. Протокол прост, надежен, масштабируем и подходит для скрининга лекарственных средств и применения регенеративной медицины.

Аннотация

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Дифференциация эмбриональных стволовых клеток человека (HESCs) в пробирке изменила способность изучать развитие человека как на биологическом, так и на молекулярном уровнях и предоставила клетки для использования в регенеративных целях. Стандартные подходы к культуре hESC с использованием культуры типа колонии для поддержания недифференцированных HESCs и эмбрионального тела (EB) и образования розетки для дифференциации в различные слои зародыша являются неэффективными и отнимают много времени. Здесь представлен одноклеточный метод культуры с использованием hESCs вместо культуры колонии типа. Этот метод позволяет сохранить характерные особенности недифференцированных HESCs, в том числе выражение маркеров hESC на уровнях, сопоставимых с уровнем of colony type hESC. Кроме того, протокол представляет собой эффективный метод генерации нейронных клеток-прародителей (NPC) из одноклеточного типа hESCs, который производит NPC в течение 1 недели. Эти клетки очень выразить несколько генов NPC маркер и может дифференцировать в различные типы нервных клеток, в том числе дофаминергических нейронов и астроцитов. Эта одноклеточная система культуры для HESCs будет полезна в исследовании молекулярных механизмов этих процессов, исследований некоторых заболеваний и экранов обнаружения лекарств.

Введение

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Человеческие эмбриональные стволовые клетки (HESCs) имеют потенциал, чтобы дифференцироваться в три первичных слоя зародыша, которые затем дифференцироваться в различные многопотентные линии клеток-прародителей. Эти линии впоследствии приводят к появлению всех типов клеток в организме человека. Системы культуры In vitro hESC изменили способность изучать эмбриональное развитие человека и послужили ценным инструментом для получения новых сведений о том, как эти процессы регулируются на биологическом и молекулярном уровнях. Аналогичным образом, исследования индуцированных плюрипотентных стволовых клеток (iPSCs), полученных в результате перепрограммирования соматических клеток, изолированных от пациентов с человеком, дают новое представление о различных заболеваниях. Кроме того, прародитель и дифференцированные клетки, полученные из HESCs может быть полезным для исследований, связанных с терапией стволовыми клетками и скринингом лекарственных средств1,2,3,4.

hESCs можно навести для того чтобы продифференцировать в нервные клетки прародителя (NPC), которые multipotential клетки с обширной емкостью самообновления. Впоследствии эти клетки могут быть дифференцированы в нейроны, астроциты и олигодендроциты5,6. NPC также предлагают клеточной системы для in vitro исследований биологии нейроразвития и различных неврологических заболеваний. Тем не менее, современные методы культуры типа колонии, включающие hESCs и их дифференциацию в NPC, неэффективны и часто связаны с кокультурой, а также эмбриональным телом(EB) и образованием розетки5,7,8. Эти протоколы демонстрируют более низкие показатели выживаемости и спонтанную дифференциацию и отнимают больше времени.

Представлено здесь улучшенная и надежная система культуры, которая легко масштабируема и использует высокую плотность одноклеточного типа культуры hESCs10. Включение ингибитора Roh-kinase (ROCK) способствовало значительному повышению эффективности выживания при культуре одноклеточного типа hESC10,11,12,13,14. В этой системе культуры, hESCs можно легко поддерживать и расширить. Кроме того, Протокол представляет собой эффективный метод для генерации NPCs из одноклеточного типа культуры hESCs, который позволяет производство высоко чистых NPCs. Ингибирование BMP / TGF/активирующих сигнальных путей с ингибиторами ALK эффективно индуцировать дифференциацию одноклеточного типа hESCs в NPCs15,16, которые затем могут быть индуцированы в функциональную линию.

Таким образом, протокол культуры одноклеточного типа с использованием hESCs предлагает привлекательную модель для изучения дифференциации этих клеток на различные линии, включая NPC. Этот протокол легко масштабируемый и поэтому подходит для генерации клеток для исследований, связанных с регенеративной терапией и скринингом лекарств.

Доступ ограничен. Войдите в систему или начните пробный период, чтобы просмотреть этот контент.

Протокол

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

1. Подготовка hESC-квалифицированных Подвал Мембрана Матрица покрытием пластин

  1. Медленно оттаивать hESC-квалифицированных подвал мембранной матрицы (см. Таблица материалов) решение на 4 кв, по крайней мере 2-3 ч или на ночь, чтобы избежать образования геля.
  2. Для подготовки подвальных мембранных матричных пластин, разбавить матрицу в холодной DMEM/F12 до 2% конечной концентрации. Хорошо перемешайте и покройте каждую скважину из 6 колодца с 1 мл разбавленного матричного раствора.
  3. Инкубировать подвальные мембранные матричные пластины с покрытием при комнатной температуре (RT) не менее 3 ч или при температуре 4 градусов цельсия на ночь.
    ПРИМЕЧАНИЕ: Пластины с мембранной матрицей подвала могут храниться при 4 градусах По Цельсию в течение 1 недели, прежде чем матричная раствор будет удалена и пластины используются.

2. Адаптация еэск типа Колонии к одноклеточной культуре hESC

  1. Для прохождения фидер-свободных культур колонии типа H9 (WA09) hESCs, выращенных на подвальной мембранной матрице, аспирировать среду из скважин(Рисунок 1A)9.
  2. Вымойте 1x с 1 мл DPBS. Добавьте 1 мл раствора диспаса (1 U/mL) на скважину и инкубировать при 37 градусах По Цельсия в течение 20 мин.
  3. Удалить диспазировать, мыть клетки 1x осторожно с 2 мл DMEM / F12, удалить среду, и добавить 2 мл DMEM / F12 к каждой пластине.
  4. Аккуратно отсоедините колонии, аккуратно поднимаясь вверх и вниз и переведивайте в трубку 15 мл.
  5. Centrifuge гранулы в течение 2 мин на 370 х г и аспирации среды.
  6. Чтобы разобщить клеточные гранулы на одиночные клетки, добавьте 2 мл раствора отслоения клеток (концентрация 1x, см. Таблица материалов)и инкубировать при 37 градусах По цельсии в течение 10 мин.
  7. Центрифуги клетки в течение 2 мин на 370 х г и удалить отслоение раствора.
  8. Добавьте свежий mTeSR1 человека ESC среды и разъединить клетки в одиночные клетки, нежный pipetting вверх и вниз.
  9. Чтобы адаптировать колоний типа hESCs к одноклеточной культуре типа, пластины примерно 1,5-2,0 х 106 hESCs в каждый колодец подвала мембраны матрицы покрытием 6 хорошо пластины в 2 мл mTeSR1, содержащий 10 мкм ROCK ингибитор для 24 ч (Рисунок 1A).
  10. После 24 ч замените среду hESC на свежий mTeSR1 без ингибитора ROCK и позвольте hESC расти как одноклеточный тип в течение 3 дней. Изменение среды ежедневно.
  11. На 4-й день, когда культуры достигают почти 100% стопроцентности, разъединяют клетки в решении отряда, затем переплывающиеся, как описано в шаге 2.6.
    ПРИМЕЧАНИЕ: Ингибитор ROCK улучшает выживаемость клеток в течение первоначального 24 ч одноклеточного типа культуры hESC.

3. Эмбрибидное формирование тела и дифференциация на три слоя зародыша(рисунок 2)

  1. Чтобы сформировать ЭБ, сначала повторно новьпетить клетки в 3 мл mTeSR1 среды с 10 мкм ROCK ингибитор в течение первых 24 ч, а затем инкубировать на ночь в 60 мм низких блюд крепления в 37 C инкубатор, чтобы агрегировать.
  2. После 24 ч небольшие ЭБ переносятся на трубку 15 мл. Пусть EBs осесть на дно трубки и осторожно удалить среду с пипеткой. Передача EBs в EB-среде (нокаут-DMEM дополнены 20% нокаут омолаживающей замены сыворотки, 1x глутамин дополнение »см. Таблица материалов, 1% NEAA (несущественные аминокислоты; см. Таблица Материалов,и 0,2% -меркаптоэтанол) и позволяют им расширить в блюдах с низким креплением в течение 7 дней. Среда может быть изменена через день, как описано выше(Рисунок 2A).
  3. На 7-й день соберите EBs из посуды и перенесите их в трубку 15 мл. Аккуратно удалите среду с помощью пипетки и перенесите ЭБ в мембранную матриму с покрытием под 6 скважин.
  4. Разрешить EBs прикрепить к пластине и инкубировать в течение 12 дней в среде EB, в течение которого они будут дифференцироваться в три слоя зародыша(Рисунок 2B). Изменение среды через день.
    ПРИМЕЧАНИЕ: Во время агрегации клеток, низкая привязанность блюдо помогает избежать вложения EB.

4. Дифференциация одноклеточных hESCs типа в NPC(рисунок 3)

  1. Чтобы вызвать дифференциацию NPC, разъедините одноклеточный тип hESC с 1 мл отслоения раствора (1x) и инкубировать в течение 10 мин при 37 градусах Цельсия.
  2. Центрифугклетки в течение 2 мин при 370 х г и удалите отслоение раствора супернатанта. Добавьте 1 мл DMEM/F12 и отдохните клетки нежным пипеттингом.
  3. Клетки плиты на подвальной мембранной матричной матричной пластине с 6-й пластиной при плотности 2 х 105 клеток/колодца в 2 мл mTeSR1, содержащей 10 ингибитор омрок.
  4. После 24 ч замените культурную среду нейронной индукцией (DMEM с 1% B27 минус витамином А), дополненной 1 мкм дорсоморфином и 5 мкм SB431542.
  5. Изменение среды через день в течение первых 4 дней нервной индукции, а затем каждый день до достижения слияния в день 7(Рисунок 3B).
    ПРИМЕЧАНИЕ: (1) Дорсоморфин ингибирует путь БМП, ориентируясь на ALK2,3,6 рецепторов, а также подавляет AMPK; SB431542 является ингибитором пути TGF/Activin, нацелившись на ALK5,7. (2) Тот же протокол был протестирован с другой линией ESC (WA01), которая дала аналогичные результаты, как WA0916. (3) Мы обычно использовали Matrigel для матрицы мембраны подвала; однако, клетки могут быть культивированы на Geltrex, а затем дифференцированы в NPCs с очень похожими результатами, как указано выражением нескольких маркеров NPC (Рисунок 4D, E). Обработка Geltrex так же, как Matrigel (см. раздел 1).

5. Расширение и криоконсервация NPC

  1. После 7 дней нейроиндукции, разъединить клетки с 1 мл отслоения раствора (1x) и инкубировать в течение 10 минут при 37 градусов по Цельсию.
  2. Центрифугклетки в течение 2 мин при 370 х г и удалите отслоение раствора супернатанта. Добавьте 1 мл среды расширения NPC (см. Таблицу Материалов)и resuspend клетки нежным pipetting.
  3. Плита 1 х 105 клеток в 2 мл NPC расширение среды на подвале мембраны матрицы покрытием 6 хорошо пластин.
  4. Прохождение NPCs несколько раз, по мере необходимости, когда культуры достигают почти 90% выпуклость. В течение первых 3-4 проходов, добавить 10 мкм ROCK ингибитор в течение первоначального 24 ч, чтобы предотвратить гибель клеток. После этих проходов, клетки могут быть пройдена и культивируется без ингибитора ROCK. Изменение среды через день во время расширения.
  5. Криоконсервация NpCs, когда культуры достигают неустойчивости.
    1. Для криоконсервации, разъединяют клетки в 1 мл отслоения раствора (1x) в течение 5 мин при 37 градусах Цельсия, затем центрифуга подвески в течение 2 мин при 370 х г, чтобы удалить решение отслоения.
    2. Добавьте решение для замораживания ячеек (см. Таблица материалов),чтобы разрозненные NPC на 1 х 106 ячеек/мл и распределите 1 мл aliquots для криовиалов.
    3. Поместите криовиалы в замораживающий контейнер и храните их на ночь в морозильной камере -80 градусов.
  6. Храните криовиалы в жидком азоте.

6. Приготовление поли-L-орнитина (PLO) и ламинина с покрытием пластин

  1. Для приготовления пластин с покрытием ооп. /ламинина разбавьте раствор оспы в PBS или воду до конечной концентрации 10 мкг/мл. Хорошо перемешать и покрыть каждую скважину 6-й пластины 1 мл разбавленного раствора ООП.
  2. Инкубировать не менее 2 ч при 37 градусах цельсия или на ночь при 4 градусах Цельсия.
  3. Вымойте каждый хорошо с PBS.
  4. Разбавить раствор бульона ламинина в холодной PBS или воде при 10 мкг/мл. Хорошо перемешайте раствор ламинина. Снимите PBS и сразу же покрыть каждый хорошо с 1 мл раствора ламинина. Держите тарелки при 4 градусах по Цельсию и используйте в течение 1 недели. Вымойте с PBS и сразу же добавить культуры среды.
    ПРИМЕЧАНИЕ: Не позволяйте Plo / ламинин покрытием пластины высохнуть.

7. Дифференциация NPCs, полученных hESC, в дофаминергические нейроны(рисунок 6A)

  1. Пластины NPCs в PLO / ламинин покрытием блюд в NPC расширение среды при плотности около 50%.
  2. После 24 ч, изменить среднюю до DA1 среды (нейробазальная среда, содержащая 2 мМ глутамин дополнения, 1x NEAA, 1x B27, 200 нг/мл SHH, и 100 нг /мл FGF8) и изменить среду через день.
  3. Проход культур, когда они достигают сфлюкс. Диссоциативные клетки с 1 мл отслоения раствора (1x) и инкубировать в течение 10 мин при 37 градусах Цельсия.
  4. Центрифугклетки в течение 2 мин при 370 х г и удалите отслоение раствора супернатанта. Добавьте 1 мл среды DA1 и переприостановите клетки нежным пипеткой.
  5. Плита 1 х 105 клеток в 2 мл среды DA1 на Plo/laminin покрытием 6 хорошо пластин.
  6. После 10 дней, изменение на DA2 среды (нейробазальная среда, содержащая 2 мМ глутамин дополнение, 1x NEAA, 1x B27, 200 мКм аскорбиновой кислоты, 20 нг/мл BDNF, и 20 нг /мл GNDF) и изменить среду через день в течение дополнительных 20 дней (Рисунок 6A).
    ПРИМЕЧАНИЕ: Добавить свежую аскорбиновую кислоту ежедневно в среду DA2. В течение первых 14 дней, дифференцированные клетки должны быть переданы, когда они достигают 90% confluency, но не после этого.

8. Дифференциация НСПК, полученных из ЭСК, на астроциты

  1. Клетки нейронных прародителей плиты на пластинах, покрытых Plo/laminin покрытием, в среде расширения NPC при плотности около 50%.
  2. После 24 ч, изменить средний среды для астроцитов (DMEM / F12 среды в том числе 1:100 N2, 1:100 B27, 200 нг /мЛ IGF, 10 нг /мЛ активицин A, 10 нг/мл ерегулин No-1, и 8 нг/мл bFGF) и изменить
  3. Проход культур, когда они достигают сфлюкс. Диссоциативные клетки с 1 мл отслоения раствора (1x) и инкубировать в течение 10 мин при 37 градусах Цельсия.
  4. Центрифугклетки в течение 2 мин при 370 х г и удалите отслоение раствора супернатанта. Добавьте 1 мл астроцита среднего и resuspend клетки нежным пипеттингом.
  5. Плита 1 х 105 клеток в 2 мл астроцитов среды на Plo / ламинин покрытием 6 хорошо блюда.
  6. Разрешить дифференциацию, чтобы продолжить в общей сложности 5-6 недель(рисунок 6B).

9. Иммунофлуоресценция окрашивание

  1. Культурные клетки в 35 мм, как описано выше для каждого типа клеток. Усилите среду и добавьте 1 мл 4% раствора PFA на блюдо и инкубировать в течение 20 минут на RT.
  2. Вымойте 2x в течение 5 мин с PBS.
    ПРИМЕЧАНИЕ: После того, как клетки фиксируются, пластины ассеа могут быть запечатаны парафильмом и храниться при 4 градусах Цельсия. Пятно с антителами в течение 1 недели после фиксации.
  3. Добавьте 300 кл блокирующего раствора (козьей или ослиной сыворотки в PBS) на блюдо и инкубировать на RT в течение 30-60 мин.
  4. Вымойте блюдо 2x с PBS в течение 5 мин.
  5. Добавьте 300 л первичного антитела(таблица 1)раствора (разбавленного в блокирующем растворе) и инкубировать на РТ в течение 1,5 л или на ночь при 4 градусах Цельсия.
  6. Вымойте 2x с PBS в течение 10 мин.
  7. Добавьте 300 л л флуоресцентных конъюгированных вторичных антител(таблица 1) в блокирующий раствор и инкубировать в темноте в течение 1 ч на RT.
  8. Вымойте клетки 2x в течение 10 минут с PBS.
  9. Добавьте hoechst окрашивая разрешение (1 мкм окончательная концентрация в PBS) к пятнам ядер. Инкубировать клетки в темноте в течение 5 мин на RT.
  10. Вымойте клетки 1x с PBS в течение 5 мин, а затем добавить 500 ЗлЛ PBS. Держите блюда в темноте, а затем наблюдать флуоресценцию с конфокальный микроскоп(Рисунок 2B, Рисунок 5C, Рисунок 6A, и Рисунок 7B).

Доступ ограничен. Войдите в систему или начните пробный период, чтобы просмотреть этот контент.

Результаты

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Представлено здесь улучшенный протокол для обслуживания и расширения одноклеточного типа культуры hESCs и их эффективной дифференциации в нейронные клетки-прародители, которые впоследствии дифференцируется в различные вниз по течению нейронных линий, включая дофаминергические нейроны и астроциты.

Репрезентативные контрастные изображения показывают морфологию клеток на разных этапах во время адаптации hESCs типа колонии к одноклеточной культуре типа(рисунок 1

Доступ ограничен. Войдите в систему или начните пробный период, чтобы просмотреть этот контент.

Обсуждение

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Важными критериями скрининга и терапии стволовыми клетками являются масштабируемые и эффективные методы дифференциации ГСС на различные линии и генерации достаточного количества дифференцированных клеток. Различные одноклеточные методы прохождения были опубликованы, в которых клетки культивируются в присутствии ингибитора ROCK или других малых молекул для улучшения выживания, но конечными продуктами этих методов культуры являются колонии типа hESCs17,18,

Доступ ограничен. Войдите в систему или начните пробный период, чтобы просмотреть этот контент.

Раскрытие информации

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Авторы не заявляют о конфликте интересов.

Благодарности

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Мы благодарим д-ра Карла Д. Бортнера (NIEHS) за его помощь в анализе FACS. Это исследование было поддержано Внештремальной исследовательской программой Национального института экологических наук, Национальных институтов здравоохранения, No01-ES-101585 в AMJ.

Доступ ограничен. Войдите в систему или начните пробный период, чтобы просмотреть этот контент.

Материалы

Список материалов, использованных в этой статье
ИмяКомпанияКаталожный номерКомментарии
35 мм m-чашкиibidi81156Чашка для клеточных культур
6-луночные планшетыCorning3516
AccutaseInnovative Cell TechnologiesAT104-500Раствор для отсоединения клеток
Activin AR& D system338-AC-050
Аскорбиновая кислотаSigma AldrichA4403
B27 добавкаThermo Fisher17504044
B27 добавка (-Vit A)Thermo Fisher12587010
BDNFПрикладные биологические материалыZ100065
центрифуга bFGFPeprotech100-18C
DAMON/ICE428-6759
CO2-инкубаторThermo Fisher4110
Corning hESC-qulified Matrix (Magrigel)Corning354277Basement membrane matrix (используется для большей части протокола здесь)
Cryostor CS 10Stemcell Technologies7930Раствор для замораживания клеток
DispaseStemcell Technologies7923
DMEMThermo Fisher10569-010
DMEM/F12Thermo Fisher10565-018
ДорсоморфинТокрис3093
EGFPeprotechAF-100-16A
Фетальная сыворотка крупного рогатого скотаFisher ScientificSH3007003HI
FGF8Прикладные биологические материалыZ101705
GDNFApplied Biological MaterialsZ101057
Geltrex matrixThermo FisherA1569601Basement Membrane matrix
GlutaMaxThermo Fisher35050061Добавка с глютамином, 100X
H9 (WA09) линия эмбриональных стволовых клеток человека WiCellWA09
Heregulin b-1Peprotech100-3
IGFPeprotech100-11
Knockout DMEMThermo Fisher10829018
Knockout Замена сывороткиThermo Fisher10828028
LamininSigma AldrichL2020
mTeSR1Stemcell Technologies85850hESC питательная среда
N2 добавкаThermo Fisher17502001
NEAAThermo Fisher11140050
НейробазалThermo Fisher21103049
поли-L-орнитинSigma AldrichP3655
ROCK ингибиторTocris1254
SB431542Tocris1614
SHHПрикладные биологические материалыZ200617
Stemdiff Neural Progenitor средаStemcell Technologies5833NPC среда для расширения

Ссылки

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,
  1. Thomson, J. A., et al. Embryonic stem cell lines derived from human blastocysts. Science. 282 (5391), 1145-1147 (1998).
  2. Rosler, E. S., et al. Long-term culture of human embryonic stem cells in feeder-free conditions. Developmental Dynamics. 229 (2), 259-274 (2004).
  3. Mallon, B. S., Park, K. Y., Chen, K. G., Hamilton, R. S., McKay, R. D. Toward xeno-free culture of human embryonic stem cells. The International Journal of Biochemistry & Cell Biology. 38 (7), 1063-1075 (2006).
  4. Hoffman, L. M., Carpenter, M. K. Characterization and culture of human embryonic stem cells. Nature Biotechnology. 23 (6), 699-708 (2005).
  5. Yan, Y., et al. Efficient and rapid derivation of primitive neural stem cells and generation of brain subtype neurons from human pluripotent stem cells. Stem Cells Translational Medicine. 2 (11), 862-870 (2013).
  6. Goncalves, J. T., Schafer, S. T., Gage, F. H. Adult Neurogenesis in the Hippocampus: From Stem Cells to Behavior. Cell. 167 (4), 897-914 (2016).
  7. Watanabe, K., et al. A ROCK inhibitor permits survival of dissociated human embryonic stem cells. Nature Biotechnology. 25 (6), 681-686 (2007).
  8. International Stem Cell Initiative. Characterization of human embryonic stem cell lines by the International Stem Cell Initiative. Nature Biotechnology. 25 (7), 803-816 (2007).
  9. Hartung, O., Huo, H., Daley, G. Q., Schlaeger, T. M. Clump passaging and expansion of human embryonic and induced pluripotent stem cells on mouse embryonic fibroblast feeder cells. Current Protocols in Stem Cell Biology. 14 (1), Chapter 1 Unit 1C 10(2010).
  10. Chen, K. G., et al. Non-colony type monolayer culture of human embryonic stem cells. Stem Cell Research. 9 (3), 237-248 (2012).
  11. Chen, G., Hou, Z., Gulbranson, D. R., Thomson, J. A. Actin-myosin contractility is responsible for the reduced viability of dissociated human embryonic stem cells. Cell Stem Cell. 7 (2), 240-248 (2010).
  12. Li, X., Krawetz, R., Liu, S., Meng, G., Rancourt, D. E. ROCK inhibitor improves survival of cryopreserved serum/feeder-free single human embryonic stem cells. Human Reproduction. 24 (3), 580-589 (2009).
  13. Ohgushi, M., et al. Molecular pathway and cell state responsible for dissociation-induced apoptosis in human pluripotent stem cells. Cell Stem Cell. 7 (2), 225-239 (2010).
  14. Pakzad, M., et al. Presence of a ROCK inhibitor in extracellular matrix supports more undifferentiated growth of feeder-free human embryonic and induced pluripotent stem cells upon passaging. Stem Cell Reviews and Reports. 6 (1), 96-107 (2010).
  15. Chambers, S. M., et al. Highly efficient neural conversion of human ES and iPS cells by dual inhibition of SMAD signaling. Nature Biotechnology. 27 (3), 275-280 (2009).
  16. Jeon, K., et al. GLIS3 Transcriptionally Activates WNT Genes to Promote Differentiation of Human Embryonic Stem Cells into Posterior Neural Progenitors. Stem Cells. 37 (2), 202-215 (2019).
  17. Emre, N., et al. The ROCK inhibitor Y-27632 improves recovery of human embryonic stem cells after fluorescence-activated cell sorting with multiple cell surface markers. PLoS ONE. 5 (8), e12148(2010).
  18. Hanna, J., et al. Human embryonic stem cells with biological and epigenetic characteristics similar to those of mouse ESCs. Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America. 107 (20), 9222-9227 (2010).
  19. Saha, K., et al. Surface-engineered substrates for improved human pluripotent stem cell culture under fully defined conditions. Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America. 108 (46), 18714-18719 (2011).
  20. Tsutsui, H., et al. An optimized small molecule inhibitor cocktail supports long-term maintenance of human embryonic stem cells. Nature Communications. 2, 167(2011).
  21. Xu, Y., et al. Revealing a core signaling regulatory mechanism for pluripotent stem cell survival and self-renewal by small molecules. Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America. 107 (18), 8129-8134 (2010).
  22. Ungrin, M. D., Joshi, C., Nica, A., Bauwens, C., Zandstra, P. W. Reproducible, ultra high-throughput formation of multicellular organization from single cell suspension-derived human embryonic stem cell aggregates. PLoS ONE. 3 (2), e1565(2008).
  23. Kim, D. S., et al. Highly pure and expandable PSA-NCAM-positive neural precursors from human ESC and iPSC-derived neural rosettes. PLoS ONE. 7 (7), e39715(2012).
  24. Sun, Y., Hu, J., Zhou, L., Pollard, S. M., Smith, A. Interplay between FGF2 and BMP controls the self-renewal, dormancy and differentiation of rat neural stem cells. Journal of Cell Science. 124 (Pt 11), 1867-1877 (2011).
  25. Zhou, J. M., Chu, J. X., Chen, X. J. An improved protocol that induces human embryonic stem cells to differentiate into neural cells in vitro. Cell Biology International. 32 (1), 80-85 (2008).
  26. Smith, J. R., et al. Inhibition of Activin/Nodal signaling promotes specification of human embryonic stem cells into neuroectoderm. Developmental Biology. 313 (1), 107-117 (2008).

Доступ ограничен. Войдите в систему или начните пробный период, чтобы просмотреть этот контент.

Перепечатки и разрешения

Запросить разрешение на повторное использование текста или иллюстраций этой статьи JoVE

Запросить разрешение

Теги

Human Embryonic Stem CellsSingle Cell CultureNeural Progenitor CellsEmbryoid Body FormationROCK InhibitorNeural Induction MediumDopaminergic NeuronsAstrocyte DifferentiationFACS AnalysisQuantitative PCR

Похожие статьи