Методическая статья

Количественная оценка церебральной перфузии с помощью лазерной спекл-визуализации и объема инфаркта с помощью МРТ в доклинической модели инсульта заднего кровообращения

DOI:

10.3791/61673

⸱

17 ноября 2020 г.

 ,  ,  ,  ,  ,  ,  ,  ,  , 
1Department of Neurological Surgery, The Ohio State University Medical Center, 2Department of Anatomy, The Ohio State University Medical Center, 3Department of Internal Medicine, The Ohio State University Medical Center, 4Department of Radiology, The Ohio State University Medical Center

В этой статье

Краткое содержание

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Собачья модель инсульта LVO была использована для разработки лазерной спекл-визуализации для мониторинга перфузии головного мозга в режиме реального времени.  Диффузионно-взвешенная МРТ была оптимизирована для визуализации объема инфаркта с использованием высокого b-значения, что позволяет ADC и MRA, коррелируя с DSA во время инсульта.  Наконец, реконструкции ADC коррелировали с гистологическими данными.

Аннотация

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Фон: Окклюзия базилярной артерии (БАО) является разновидностью инсульта заднего круга кровообращения, который приводит к смертности до 90%.  В настоящее время клиническим стандартом для диагностики ишемического инсульта являются компьютерная томография (КТ), КТ-ангиография и перфузия, а также магнитно-резонансная томография (МРТ). Отсутствуют доклинические модели на крупных животных, которые бы точно отражали клиническое заболевание, а также методы оценки бремени инсульта и оценки лечения.

Методика: Мы описали собачью модель инсульта окклюзии крупных сосудов (LVO) в заднем круге кровообращения и разработали протокол лазерной спекл-визуализации (LSI) для мониторинга изменений перфузии в режиме реального времени.  Затем мы использовали МРТ с высоким значением b-значения DWI (b=1800 с/мм2) для повышения чувствительности обнаружения. Мы также оценили способность магнитно-резонансной ангиографии (МРА) оценивать окклюзию артерий и коррелировать с ДСА. Наконец, мы верифицировали размер инфаркта по картированию коэффициента видимой диффузии (ADC) с гистологией.

Результаты: Введение тромбоэмболии окклюзировало базилярную артерию по данным DSA (n=7).   LSI коррелировала с DSA, демонстрируя снижение перфузии после начала инсульта, которое сохранялось на протяжении всего эксперимента, что позволило нам контролировать перфузию в режиме реального времени.  DWI с оптимизированным b-значением для собак проиллюстрировал объем удара и позволил нам получить изображения АЦП и магнитно-резонансной ангиографии (МРА). МРА, выполненная в конце эксперимента, коррелировала с ДСА, выполненной после окклюзии. Наконец, нагрузка на инсульт на МРТ коррелировала с гистологией.

Выводы: В наших исследованиях демонстрируется перфузионная визуализация в реальном времени с использованием LSI собачьей тромбоэмболической модели LVO инсульта заднего кровообращения, в которой используется мультимодальная визуализация, важная в диагностике и лечении ишемического инсульта.

Введение

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Распространенность инсульта во всем мире составляет почти 25,7 миллиона, большинство из которыхявляются ишемическими1.  Инсульт заднего круга кровообращения составляет 20% всех инсультов, из которых окклюзия базилярной артерии является наиболее тяжелой, приближаясь к 90%летальности1,2.  В 1995 году рекомбинантный тканевой активатор плазминогена (ртПА) стал первым средством острой терапии, разработанным для лечения ишемического инсульта у пациентов, которые обратились в течение 3 часов от начала инсульта3. В последнее время механическая тромбэктомия продемонстрировала эффективность в лечении острого ишемического инсульта у пациентов с окклюзией крупных сосудов (ЛВО), которая включает внутричерепную часть внутренней сонной артерии или первый сегмент передней и средней мозговых артерий4.  Ни одно из недавних клинических испытаний не включало инсульт заднего кровообращения, и его исходы остаются удручающими, несмотря на использование механической тромбэктомии при окклюзии базилярной артерии 5,6.

Достижения в области методов оценки у пациентов с инсультом оказывают влияние на прогнозирование шансов на функциональное восстановление и выживаемость7. Ранее были описаны доклинические модели инсульта заднего кровообращения 8,9,10, однако оценка бремени инсульта и реваскуляризации остается неоптимальной.  Более мелкие виды, такие как грызуны, имеют ряд преимуществ, включая простоту генетических манипуляций, недорогую покупку животных инизкие суточные расходы на жилье. Тем не менее, эксперименты на мелких животных иногда не в полной мере отражают сосудистую сеть крупных животных и человека, физиологические состояния или связанные с ними воспалительныереакции. Крупные животные более точно имитируют человеческий инсульт 2,7,13,14.  Кроме того, серийный забор крови может быть выполнен для анализа крови на тромботические и воспалительные маркеры.

В этом исследовании мы описываем собачью модель окклюзии базилярной артерии, верифицированную с помощью цифровой субтракционной ангиографии (DSA) с начала инсульта.  Мы используем лазерную спекл-перфузионную визуализацию (БИС) для мониторинга перфузии в режиме реального времени.  Затем мы используем новый алгоритм микрососудистого усиления, основанный на лазерной спекл-перфузионной визуализации (LSI), а также метод магнитно-резонансной томографии (МРТ) с высоким b-значением дляоптимизации визуализации инфаркта. Эти методы позволяют нам контролировать и количественно оценивать локальную и глобальную ишемию. Наконец, мы соотносим эти результаты визуализации с гистологией. Понимание прогноза и необходимость изучения инсульта заднего кровообращения в доклинических моделях имеет решающее значение для улучшения методов лечения.

Доступ ограничен. Войдите в систему или начните пробный период, чтобы просмотреть этот контент.

Протокол

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Все процедуры были выполнены в соответствии с Законом о защите животных и Руководством по уходу за лабораторными животными и их использованию (NRC 2011), утвержденными Комитетом по институциональному уходу за животными и их использованию (IACUC) Университета штата Огайо.

1. Шаг 1 Подготовка животных и хирургический протокол Использовалась собачья модель инсульта при окклюзии базилярной артерии (БАО), как описано ранее 9,10.

  1. Быстрые взрослые бигли (8-13 кг, 14-21 месяц) ночевка со свободным доступом к воде.
  2. Инъекция, перед анестезией, внутримышечное введение ацепромазина (0,2 мг/кг)
  3. Введите катетер 20 калибра в головную вену.
  4. Вызвать анестезию с помощью внутривенного введения кетамина (10 мг/кг) и мидазолама (0,025 мг/кг).
  5. После индукции анестетиком собак интубируют и проводят искусственную вентиляцию легких с использованием постоянной ингаляционной анестезии (2-3% изофлуран).
  6. Создайте краниотомическое окно размером 1 см2 для лазерной спекл-визуализации.
  7. Введите артериальную оболочку 7F в правую бедренную артерию для доступа и измерения артериального давления.
  8. Введите ангиокатетер 16 калибра в правую бедренную вену для забора крови.
  9. Подготовить тромбоэмбол (тромб) так, как описано ранее16. Вкратце наберите и смешайте 5 мл цельной крови собаки с 0,5 г сульфата бария (Ba2SO4) в пластиковой пробирке для сбора сыворотки крови, катая в течение 30 секунд. Перед введением катетера смесь спокойно отдохните в течение 60 минут при комнатной температуре.
  10. Начните запись исходной цифровой субтракционной ангиографии (DSA) до доступа к средней базилярной артерии. Продвигайте направляющий катетер 4F под рентгеноскопическим контролем, используя ретроградный трансаортальный доступ, в артериальную оболочку 7F, предварительно помещенную в правую бедренную артерию через позвоночную артерию к основанию базилярной артерии. Введите два миллилитра контрастного вещества с обычным физиологическим раствором для идентификации базилярной артерии.
  11. С помощью хирургического скальпеля резецировать сгусток на мелкие кусочки со слоями, богатыми фибрином и эритроцитами16 , загрузить в шприц объемом 3 мл и ввести через микрокатетер в середину базилярной артерии. Дайте сгустку стабилизироваться в течение 10 минут. Проведите последующую ангиограмму, чтобы подтвердить желаемое расположение тромба. Артериальная окклюзия может быть верифицирована с помощью DSA, а снижение церебральной перфузии — с помощью лазерной спекл-томографии (LSI).

2. Шаг 2: Лазерная спекл-визуализация

  1. Сфокусируйте камеру лазерной спекл-перфузионной визуализации (БИС) на краниальном окне. Сконфигурируйте систему камер с лазерной визуализацией (LSI) с высоким разрешением, как описано выше15.
  2. Запись перфузии с перерывами во время выполнения ангиограммы в нужные временные точки. Собирайте данные с поля зрения 1,5 см x 1,5 см с помощью лазеров с длиной волны 785 нм и мощностью 80 мВт с частотой дискретизации 60 Гц на рабочем расстоянии 10 см в этой модели собаки.
  3. На графиках перфузии в реальном времени выберите интересующее время (TOI), чтобы включить только более низкие пики, чтобы исключить артефакты, связанные с движением дыхания. Усреднение относительных единиц перфузии за период дискретизации 10 с использованием программного обеспечения PimSoft v1.4. Выполнение лазерного спекл-контрастного анализа (LASCA) в соответствии с предыдущим описанием15.
  4. Чтобы оптимизировать количественную оценку микроциркуляторного русла мозга в этой модели собаки, записывайте изображения с частотой 15 кадров в секунду и выполняйте вычисления интенсивности и дисперсии с пространственно-временным усреднением по области 5 x 5 пикселей с 5 кадрами. Общая частота кадров для данных об интенсивности и дисперсии составила 3 кадра в секунду. Выберите медианное значение перфузии для каждого пикселя, чтобы уменьшить влияние на среднее значение больших внезапных изменений в показаниях перфузии из-за движения от собачьего дыхания. Преобразуйте необработанные данные в двоичные файлы и обрабатывайте их в осмысленное изображение сосудистой сети. Используйте переработанный алгоритм LASCA (RT-LASCA) для использования дисперсии контрастных данных с течением времени для определения местоположения сосудистой сети, как описано ранее15.

3. Шаг 3 Магнитно-резонансная томография (МРТ) и магнитно-резонансная ангиография

  1. При желании проведите МРТ за день до операции для сравнения, затем повторите для подтверждения БАО и еще раз перед жертвой, если необходимо оценить терапевтическое лечение.
  2. Поместите постоянно находящиеся под наркозом клыки головой вперед в лежачее положение, как описано ранее в МРТ-сканере Siemens Prisma с напряженностью поля 3 Тесла и диаметром отверстия 60 см, включая 32-канальную катушку для головы, в качестве приемника с улучшенными характеристиками параллельной визуализации для получения изображений мозга17.
  3. Выполняйте сканирование с помощью локализатора, чтобы получить пилотные изображения мозга каждой собаки до начала анатомической визуализации.  Система, используемая для получения представленных данных, имеет встроенную систему визуализации, которая позволяет быстрее сканировать с оптимальным пространственным и временным разрешением. Градиенты 80 мТл/м позволяют получать высококачественные Т2-взвешенные, диффузионно-взвешенные изображения и МР-ангиограммы. Диффузионно-взвешенная визуализация (DWI) достаточно чувствительна и может показать больше анатомических подструктур, чем при использовании обычных методов структурной МРТ, таких как Т2-взвешенные изображения. В данном исследовании МРТ проводили через 4 ч после БАО.
  4. После правильной локализации выполните Т2-взвешенную градиентную эховизуализацию (Параметры: FOV = 130 мм, Размер матрицы = 320 x 320, Размер пикселя = 0,3 x 0,3 мм, Толщина среза = 3 мм, TR = 4 с, FA = 180 градусов, BW = 255 Гц/пиксель, NEX = 2, TE = 75 мс, Разрешение = 2,4615 пикселей на мм) с последующей визуализацией восстановления инверсии потока (FLAIR) для визуализации структуры анатомии мозга.
  5. Проведите магнитно-резонансную ангиографию (МРА) для визуализации анатомии сосудов и измерения кровообращения. Получите MRA головного мозга, покрывающего голову и шею, с помощью time-of-flight-3D (TOF) последовательности в поперечном виде (Параметры: FOV = 129x129 мм, Размер матрицы = 768 x 768, Размер пикселя = 0,3 x 0,3 мм, Толщина среза = 81,59 мм, TR = 25 мс, FA = 18 градусов, BW = 185 Гц/пиксель, NEX = 1, TE = 4,22 мс, Разрешение = 5,91 пикселей на мм). Выполняйте проекцию максимальной интенсивности (MIP) с помощью 3D-визуализации с цветовой кодировкой, чтобы максимизировать интенсивность сигнала в кровеносных сосудах.  После обработки были получены изображения DICOM, чтобы визуализировать кровеносные сосуды и подтвердить, что базилярная артерия была окклюзирована.

4. Шаг 4: Диффузионно-взвешенная визуализация и расчет объема штриха

  1. Выполните диффузионно-взвешенную последовательность визуализации для выявления острых ишемических инсультов (Параметры: FOV = 149 мм x 149 мм, Размер матрицы = 132 x0x0x 100, размер пикселя = 0,30 мм x 0,30 мм, толщина среза = 4 мм, TR = 4,6 с, FA = 90 градусов, BW = 255 Гц/пиксель, NEX = 1, TE = 86 мс, Разрешение = 0,93 пикселя на мм). Передача изображений DICOM для постобработки.
  2. Создание карт кажущейся диффузии (ADC) на основе изображений DWI и расчет объемов инфаркта с помощью программного обеспечения OsiriX MD v.5.0.
  3. Проследите полушария мозга и области инфаркта на каждом срезе и умножьте на толщину среза, чтобы получить объемы инфаркта.
  4. Преобразуйте абсолютный общий объем в 100 единиц, чтобы рассчитать процент объема хода каждого клыка.

5. Шаг 5: Гистология гематоксилина и эозина

  1. Во время жертвоприношения у собак под наркозом, соберите мозг и разрежьте острым скальпелем два медиальных среза толщиной 4 мм, один срез будет использован для окрашивания TTC ниже.
  2. Зафиксируйте секцию 4 мм в 10% формалине минимум на 7 дней, чтобы обеспечить проникновение по всей секции.
  3. Вживите неподвижный участок мозга в парафин в соответствии с нашим протоколом17.
  4. Обрежьте и выровняйте каждый парафиновый блок (несколько блоков могут храниться и обрабатываться одновременно).
  5. Разрежьте каждый парафиновый блок на 4 мкм и поместите разрезанную салфетку на предметное стекло размером 2 x 3 дюйма.
  6. Каждое предметное стекло обработать в Гематоксилине 560 в течение 8 мин, дифференцировать с 1% кислотным спиртом в течение 1с три раза с промыванием в водопроводной воде.
  7. Пропитайте каждую горку 1% гидроксидом аммония в течение 1 секунды и промойте в течение 2 секунд водой из-под крана.
  8. Обезвоживайте в 70% этаноле в течение 1 с двенадцать раз, окрашивая эозином в течение 1 минуты.
  9. Обезвоживайте 95% в течение 1 с двенадцать раз, а затем добавьте 100% этанол.
  10. Очистите ксилол и наклейте покровное стекло размером 2 x 3 дюйма с монтажным материалом, удаляя пузырьки воздуха.

6. Шаг 6: 2% 2,3,5-трифенилтетразолия хлорид окрашивание мозга

  1. Поместите вторую секцию диаметром 4 мм, которая была собрана, рядом с секцией H&E в заранее приготовленный раствор, содержащий 100 мл 2,3,5-трифенил-2H-тетразолия хлорида (TTC) в pH 7,4 PBS, нагретый до 37 °C в темноте.
  2. Выдерживайте в темноте при температуре 37 °C не менее 20 минут, осторожно переворачивая участок мозга каждые 5 минут.
  3. Когда сечение станет вишнево-красным с обеих сторон, удалите раствор TTC и замените его на 4% параформальдегид в PBS, pH 7,4, чтобы оптимизировать контраст на ночь.
  4. Когда контраст между белым и красным окрашиванием в мозге будет оптимальным (1-3 дня), поместите между прозрачными пластиковыми листами, высушите лишнюю жидкость и просканируйте с высоким разрешением.
  5. Проследите ишемические области и весь предметный стекал головного мозга, чтобы получить процент инфаркта в каждом отделе, как описано ранее17.

Доступ ограничен. Войдите в систему или начните пробный период, чтобы просмотреть этот контент.

Результаты

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Запись и визуализация лазерной спекл-перфузии: Запись перфузии проводилась непрерывно до транспортировки животного на МРТ, и снова при умерщвлении (Рисунок 1А). Данные показали, что церебральная перфузия снизилась на ~15% до 83 ± 10% в момент до окклюзии базилярной артерии (до БАО). Это номинальное снижение, вероятно, является результатом введения микрокатетера в дистальный отдел позвоночной артерии. После введения препарата тромбоэмбола перфузия после БАО снизилась в средне...

Доступ ограничен. Войдите в систему или начните пробный период, чтобы просмотреть этот контент.

Обсуждение

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Наиболее распространенными причинами инсульта заднего круга кровообращения являются эмболия, атеросклероз крупных артерий и заболевание мелких артерий5. Окклюзия базилярной артерии (БАО) представляет собой подгруппу инсультов заднего круга кровообращения, несущих значительную заболеваемость и смертность13. В этом контексте была использована собачья модель острого заднего инсульта, и мы разработали протокол LSI для мониторинга перфузии окклю...

Доступ ограничен. Войдите в систему или начните пробный период, чтобы просмотреть этот контент.

Раскрытие информации

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Авторам нечего раскрывать

Благодарности

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Эта работа была частично поддержана грантом #GRT00049047 Фонда образования и исследований Мэйфилда и премией Агентства по акселератору Департамента услуг штата Огайо #TECG20180269 SMN.

Доступ ограничен. Войдите в систему или начните пробный период, чтобы просмотреть этот контент.

Материалы

Список материалов, использованных в этой статье
ИмяКомпанияКаталожный номерКомментарии
2% 2,3,5-трифенилтетразолия хлорид (TTC в PBS, pH 7,4)Sigma AldrichT8877
EDTA K3 вакутайнерыBecton DickinsonBD455036
EosinSurgipath3801602
Формалин, нейтральный буферный, 10%Richard-Allan Scientific5701
Гематоксилин 560Surgipath3801570
Система позиционирования HUG-U-VAC  Программное обеспечение DRE Veterinary1320
LabChartADInstruments Inc.
Лазерная спекл-камера для визуализацииPerimed Inc., Джарфалла, ШвецияPeriCam PSI HR System
Литий-гепарин вакутайнер, 4,5%Becton DickinsonBD 368056
MatlabThe MathWorks, Inc., Natick, MA
OsiriX MD v.5.0 программное обеспечениеPixmeo Inc, Женева
Параформальдегид 4% в PBSAlfa Aesar
программное обеспечение PimSoft v1.4Perimed Inc.программное обеспечение, которое сопровождает оборудование
БИС Prisma Fit 3 тесла (3Т) магнитSiemen's Diagnostics
Гепарин натрия для инъекций (для покрытия газов крови шприц)NovaPlus402525D
AAJ61899AP

Ссылки

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,
  1. Donkor, E. S. Stroke in the 21(st) Century: A Snapshot of the Burden, Epidemiology, and Quality of Life. Stroke Research and Treatment. 2018, 3238165(2018).
  2. Kaiser, E. E., West, F. D. Large animal ischemic stroke models: replicating human stroke pathophysiology. Neural Regeneration Research. 15 (8), 1377-1387 (2020).
  3. National Institute of Neurological Disorders and Stroke rt-PA Stroke Study Group. Tissue plasminogen activator for acute ischemic stroke. New England Journal of Medicine. 333 (24), 1581-1587 (1995).
  4. Mokin, M., Rojas, H., Levy, E. I. Randomized trials of endovascular therapy for stroke--impact on stroke care. Nature Reviews Neurology. 12 (2), 86-94 (2016).
  5. Sparaco, M., Ciolli, L., Zini, A. Posterior circulation ischaemic stroke-a review part I: anatomy, aetiology and clinical presentations. Neurological Sciences. , (2019).
  6. Lekic, T., Ani, C. Posterior circulation stroke: animal models and mechanism of disease. Journal of Biomedicine and Biotechnology. 2012, 587590(2012).
  7. Vilahur, G., Padro, T., Badimon, L. Atherosclerosis and thrombosis: insights from large animal models. Journal of Biomedicine and Biotechnology. 2011, 907575(2011).
  8. Atchaneeyasakul, K., et al. Large animal canine endovascular ischemic stroke models: A review. Brain Research Bulletin. 127, 134-140 (2016).
  9. Qureshi, A. I., et al. Randomized comparison of intra-arterial and intravenous thrombolysis in a canine model of acute basilar artery thrombosis. Neuroradiology. 46 (12), 988-995 (2004).
  10. Boulos, A. S., et al. Tamoxifen as an effective neuroprotectant in an endovascular canine model of stroke. Journal of Neurosurgery. 114 (4), 1117-1126 (2011).
  11. Doyle, K. P., Buckwalter, M. S. A mouse model of permanent focal ischemia: distal middle cerebral artery occlusion. Methods in Molecular Biology. 1135, 103-110 (2014).
  12. Wen, Z., et al. The effect of anterior communicating artery flow on neurovascular injury and neurobehavioral outcomes in mice with recurrent stroke. Brain Research. , (2019).
  13. Demel, S. L., Broderick, J. P. Basilar Occlusion Syndromes: An Update. Neurohospitalist. 5 (3), 142-150 (2015).
  14. Cai, B., Wang, N. Large Animal Stroke Models vs. Rodent Stroke Models, Pros and Cons, and Combination. Acta Neurochirurgica Supplement. 121, 77-81 (2016).
  15. Gnyawali, S. C., et al. Retooling Laser Speckle Contrast Analysis Algorithm to Enhance Non-Invasive High Resolution Laser Speckle Functional Imaging of Cutaneous Microcirculation. Scientific Reports. 7, 41048(2017).
  16. Kan, I., et al. A novel method of thrombus preparation for use in a swine model for evaluation of thrombectomy devices. American Journal of Neuroradiology. 31 (9), 1741-1743 (2010).
  17. Huttinger, A. L., et al. Ferric Chloride-induced Canine Carotid Artery Thrombosis: A Large Animal Model of Vascular Injury. Journal of Visualized Experiments. (139), (2018).
  18. Siemonsen, S., et al. Elevated T2-values in MRI of stroke patients shortly after symptom onset do not predict irreversible tissue infarction. Brain. 135, Pt 6 1981-1989 (2012).
  19. Leiva-Salinas, C., Wintermark, M. Imaging of acute ischemic stroke. Neuroimaging Clinics of North America. 20 (4), 455-468 (2010).
  20. Ishikawa, C., Ito, D., Tanaka, N., Kitagawa, M. Use of three-dimensional time-of-flight magnetic resonance angiography at 1.5 Tesla to evaluate the intracranial arteries of 39 dogs with idiopathic epilepsy. American Journal of Veterinary Research. 80 (5), 480-489 (2019).
  21. Mohr, J. P., et al. Magnetic resonance versus computed tomographic imaging in acute stroke. Stroke. 26 (5), 807-812 (1995).
  22. Rosso, C., et al. Diffusion-weighted MRI in acute stroke within the first 6 hours: 1.5 or 3.0 Tesla. Neurology. 74 (24), 1946-1953 (2010).
  23. Cheng, Q., et al. High b value DWI in evaluation of the hyperacute cerebral ischemia at 3T: A comparative study in an embolic canine stroke model. Experimental and Therapeutic. 12 (2), 951-956 (2016).
  24. Xu, X. Q., et al. Use of FLAIR imaging to identify onset time of cerebral ischemia in a canine model. American Journal of Neuroradiology. 35 (2), 311-316 (2014).
  25. Rodriguez, D., Rylander, H., Vigen, K. K., Adams, W. M. Influence of field strength on intracranial vessel conspicuity in canine magnetic resonance angiography. Veterinary Radiology & Ultrasound. 50 (5), 477-482 (2009).
  26. Bosmans, H., Wilms, G., Dymarkowski, S., Marchal, G. Basic principles of MRA. European Journal of Radiology. 38 (1), 2-9 (2001).

Доступ ограничен. Войдите в систему или начните пробный период, чтобы просмотреть этот контент.

Перепечатки и разрешения

Запросить разрешение на повторное использование текста или иллюстраций этой статьи JoVE

Запросить разрешение

Теги

Magnetic Resonance ImagingBasilar Artery OcclusionLarge Vessel OcclusionDiffusion Weighted ImagingMagnetic Resonance AngiographyCanine Stroke Model
Видео скоро будет доступно

Похожие статьи