Для просмотра этого контента требуется подписка на JoVE. Войдите или начните свой бесплатный пробный период.

Методическая статья

Слепая эндотрахеальная инфтубация у неонатальных кроликов

5.2K просмотров

⸱

DOI:

10.3791/61874

⸱

26 февраля 2021 г.

 ,  ,  , 
1Department of Pediatric Critical Care, Hospital Sant Joan de Déu, Institut de Recerca Sant Joan de Déu, 2Vanderbilt University School of Medicine, 3Neonatology Department, Hospital Sant Joan de Déu, Institut de Recerca Sant Joan de Déu, Universidad de Barcelona, 4Department of Pediatric Cardiology, Hospital Sant Joan de Déu, Institut de Recerca Sant Joan de Déu, 5Department of Critical Care Medicine, University of Pittsburgh

В этой статье

Краткое содержание

Описываем методику эндотрахеальной интубации у новорожденных кроликов после катетеризации пищевода с помощью желудочной трубки.

Аннотация

Новорожденный кролик является полезной моделью животного для различных патологий и процедур. Управление воздушными судами кролика является сложным из-за его анатомических характеристик, что еще более осложняется в случае новорожденного. Из различных методов передового управления дыхательными путей, эндотрахеальная индубация менее агрессивна, чем трахеостома, и более осуществима, чем надготическое управление, учитывая отсутствие надготовных устройств такого небольшого размера. Поскольку визуализация прямого glottis очень трудно у животных такого размера, эта модель слепой инубации представлена в качестве эффективной альтернативы, особенно для экспериментов, требующих длительной анестезии. Используя этот метод, мы выполнили слепые intubations с 90% успеха.

Введение

Своеобразная анатомия дыхательной системы кролика усложняет эндотрахеаленную интубацию. Полость рта глубокая и узкая с ограниченным диапазоном отверстия рта и относительно большим языком, что затрудняет прямую визуализацию гортани даже при использованииларингоскопа 1,2. Кроме того, интубация новорожденного кролика, который в 10-20 раз меньше взрослого, является еще более сложной процедурой. В дополнение к этим анатомическим характеристикам, кролики склонны к ларингоспазм вторичной манипуляции дыхательных путей.

Несколько методов интубации были описаны в литературе, такие как ларингоскоп трахеи интубации, слепой интубации, отоскоп интубации, ретроградной интубации, эндоскоп интубации, трахеостомы и супраготического устройствавентиляции 3,4,5,6,7,8,9. Все эти методы были проведены успешно у взрослых кроликов; однако, немногие издания относительно выдвинутого управления дыхательных путей в newborn кролике10. Одно исследование описывает выполнение трахеостомии у животных этого возраста для оценки механики дыхания и объемов легких, хотя это агрессивный и необратимыйметод 11. Этот метод эндотрахеальной инотубации оказался эффективным и недорогим методом управления дыхательными путей у новорожденных кроликов.

Доступ ограничен. Войдите в систему или начните пробный период, чтобы просмотреть этот контент.

Протокол

Процедура интубации, изложенная ниже, была одобрена Комитетом по институциональному уходу и использованию животных Барселонского университета (CEEA 180/19)

1. Экспериментальная подготовка

  1. Получить следующие материалы: 2 мм диаметр поливинилхлорид (ПВХ) эндотрахеальной трубки, 6 французский (Fr) полиуретан кормления трубки, плоские и широкие миппы вскрытия кончика и стерильной смазки (Рисунок 1).
  2. Во время процессов интубации и хирургического вмешательства, поддерживать стерильные условия.

2. Анестезия

  1. Анестезировать животное с 5 мг/кг ксилазина и 25 мг/кг кетамина применяются вместе внутримышечно в vastus lateralis бедренной четырехглавой. Агонисты альфа-2, такие как декмедетомидин, также могут быть использованы вместо ксилазина.
  2. Разрешить 3-5 минут для лекарства, чтобы достичь эффекта.
  3. Readminister же дозы до глубокой анестезии достигается (отрицательные педали, palpebral и роговицы рефлексы). В идеале, кролик будет поддерживать спонтанное дыхание до инотубации.

3. Эндотрахеальная инотубация

  1. Поместите кролика на тепловое одеяло при 37 градусов по Цельсию. Поместите животное в спинную лежачесть с головой в гиперэкстензии. Выровнять голову как прямой и средней линии, как это возможно. Четырехсемейный рулон из стерильной марли, помещенной в спинную область шеи, может быть полезен для достижения по крайней мере 45 "расширения(рисунок 2).
  2. Используйте плоские и широкие миппы для вскрытия кончиков, чтобы открыть полость рта шириной около одного сантиметра. Используйте типсы с тупым и широким концом, чтобы избежать травмы рта.
  3. Измерьте расстояние между ртом и областью желудка (первое ребро). Ввести смазанный 6 французский (Fr) полиуретан желудочной трубки до предварительно измеренной отметки(рисунок 3-4).
  4. Перемести трубку для кормления влево и зафиксив клейкой лентой на хирургическое поле.
  5. Ввести 2 мм диаметром ПВХ эндотрахеальной трубки, покрытой стерильной смазкой до 3 см знака.
    1. Если есть какие-либо трудности в продвижении трубки, переместить его полностью и вновь нанести удар, пока не будет достигнуто гладкое скольжение. Риск травмы гортани и эпиглотти является значительным с несколькими попытками интубации. Зафиксируете трубку клейкой лентой на хирургическом поле(рисунок 5-6).
  6. Подключите эндотрахеаную трубку к аппарату искусственной вентиляции легких со следующими настройками: приливный объем - 10 мл/кг; частота дыхания: 40 вдохов/мин; FiO2 100%, PEEP 6.
  7. Подтвердите правильное положение трубки путем обнаружения CO2 в выдыхаемом воздухе (ETCO2),прямой визуализации грудного расширения и запотевания трубки. Мониторинг животного с помощью импульсной оксиметрии и окуляции легких также может быть полезным(рисунок 7).
  8. По завершении эксперимента используйте стандартизированный протокол эвтаназии, который состоит из внутривенного введения пентобарбитала 120-240 мг/кг. Повторите дозы до прекращения дыхания, рефлекторное отсутствие и аистола достигаются.
    ПРИМЕЧАНИЕ: В хирургических экспериментах, животное живо во время процесса вентиляции и, наконец, усыпан.

Доступ ограничен. Войдите в систему или начните пробный период, чтобы просмотреть этот контент.

Результаты

В лаборатории этот метод осуществляется медицинским персоналом с опытом экспериментов с новозеландскими кроликами и опытом в управлении педиатрическими воздушными судами. Процедура была выполнена одним исследователем в 10 животных с глобальным успехом 90%. Ранее другой исследователь практиковал оптимизацию как положения животного, так и правильной длины фиксации трубки. Ни одно из животных не было интубировано в пищевод. Только одна попытка (10%) не удалось из-за крайне небольшого размера...

Доступ ограничен. Войдите в систему или начните пробный период, чтобы просмотреть этот контент.

Обсуждение

Кролики широко использованы в экспериментах на животных из-за их наличия, высокой скорости воспроизводства с коротким временем межпоколенческих, и легкойобработки 2. В нашем центре мы используем 5-7-дневных новозеландских кроликов(Oryctolagus cuniculus) в качестве неонатальной модели для изучения неврологических последствий экстракорпоральной хирургии на развивающийся мозг. В результате, мы используем процедуры, которые требуют глубокой анестезии и должны использовать эндотрахеальной intu...

Доступ ограничен. Войдите в систему или начните пробный период, чтобы просмотреть этот контент.

Раскрытие информации

Авторов нечего раскрывать.

Благодарности

Эта работа была поддержана грантами Института Салуда Карлоса III (PFIS2017-0224), «Бека Руза» от Сосьедад Испании де Куидадос Intensivos Pedi'tricos и Программы медицинских ученых Вандербильта.

Авторы не участвовали в сборе, анализе или интерпретации данных.

Мы хотели бы поблагодарить Изабель Салас за помощь, оказанную в лаборатории для животных, а также г-на Карлеса Фабрегаса и г-жу Джемму Фернандес-Асенсио из аудиовизуальных технологий из больницы Сант Джоан де Деу за их техническую поддержку в области видеозаписи и производства.

Доступ ограничен. Войдите в систему или начните пробный период, чтобы просмотреть этот контент.

Материалы

Список материалов, использованных в этой статье
ИмяКомпанияКаталожный номерКомментарии
Эндотрахеальная трубка из поливинилхлорида (ПВХ) диаметром 2 ммVygon520.20
6 Французская полиуретановая питательная трубкаVygon310.06
Анестезия (кетамин и ксилазин)Многопараметрический
монитор Intellivue MP5Phillips
Плоские и широкие щипцы для рассечения кончикаLensforVisionAK005
Стерильная смазка (Silkospray)Rush
Ventilator Servo 900cMaquet

Ссылки

  1. Gilroy, B. A. Endotracheal intubation of rabbits and rodents. Journal of the American Veterinary Medical Association. 179 (11), 1295(1981).
  2. Graham, J. Common procedures in rabbits. The Veterinary Clinics of North America. Exotic Animal Practice. 9 (2), 367-388 (2006).
  3. Fick, T. E., Schalm, S. W. A simple technique for endotracheal intubation in rabbits. Laboratory Animals. 21 (3), 265-266 (1987).
  4. Conlon, K. C., et al. Atraumatic endotracheal intubation in small rabbits. Laboratory Animal Science. 40 (2), 221-222 (1990).
  5. Johnson, D. H. Endoscopic intubation of exotic companion mammals. The Veterinary Clinics of North America. Exotic Animal Practice. 13 (2), 273-289 (2010).
  6. Falcão, S. C., et al. Technique of blind tracheal intubation in rabbits (Oryctolagus cuniculi) supported by previous maneuver of esophageal cannulization. Acta Cirurgica Brasileira. 26 (5), 352-356 (2011).
  7. Miura, H., et al. Endotracheal intubation in rabbits. The Japanese Journal of Veterinary Anesthesiology. 19 (1), 25-29 (2012).
  8. Thompson, K. L., et al. Endotracheal Intubation of Rabbits Using a Polypropylene Guide Catheter. Journal of Visualized Experiments. (129), (2017).
  9. Comolli, J., et al. Comparison of endoscopic endotracheal intubation and the v-gel supraglottic airway device for spontaneously ventilating New Zealand white rabbits undergoing ovariohysterectomy. Veterinary Record. , 1-8 (2020).
  10. Hua, S., et al. Effects of different ventilation strategies on lung injury in newborn rabbits. Pediatric Pulmonology. 47 (11), 1103-1112 (2012).
  11. Kitchen, M. J., et al. The role of lung inflation and sodium transport in airway liquid clearance during lung aeration in newborn rabbits. Pediatric Research. 73 (4-1), 443-449 (2012).
  12. Boon, M. S., et al. Tubeless tracheotomy for survival airway surgery in the leporine model. The Laryngoscope. 125 (3), 680-684 (2015).
  13. Dion, G. R., et al. Morbidity and mortality associated with preclinical tracheostomy models. The Laryngoscope. 128 (2), 68-71 (2018).
  14. Phaneuf, L. R., et al. Tracheal injury after endotracheal intubation and anesthesia in rabbits. Journal of the American Association for Laboratory Animal Science. 45 (6), 67-72 (2006).

Доступ ограничен. Войдите в систему или начните пробный период, чтобы просмотреть этот контент.

Перепечатки и разрешения

Теги

Слепая интубацияноворожденный кроликуправление дыхательными путямиПВХ-эндотрахеальная трубкажелудочный зонддиссекционный пинцетксилазин-кетаминположение на спинечастота успеха
Слепая эндотрахеальная инфтубация у неонатальных кроликов
Связаться с нами
Порекомендовать библиотеке

Конфиденциальность

Условия использования

Политики

© 2026 MyJoVE Corporation. Все права защищены.