$$\rightleftharpoonup{xx}$$
$$\longleftharp{xx}$$,
$$\longrightharp{xx}$$,
Клеточные мембраны избирательно проницаемые барьеры, состоящие изтысяч липидных типов 1,белков, углеводов и стерий, которые инкапсулируют и субдивидуируют все живые клетки. Понимание того, как их составы влияют на их функции и выявление того, как природные и синтетические молекулы взаимодействуют с, придерживаются, нарушают и транслокируют клеточные мембраны, являются, следовательно, важными областями исследований с широкими последствиями в биологии, медицине, химии, физике и инженерии материалов.
Эти цели для открытия непосредственно выгоду от проверенных методов для сборки, манипулирования и изучения модели мембран, в том числе липидных билейеров, собранных из синтетических или естественных липидов, которые имитируют состав, структуру и транспортные свойства своих клеточных аналогов. В последние годы, капельный интерфейс bilayer (DIB)метод 2,3,4 для построения планар липидного билейера между липидным покрытием капли воды в масле получилзначительное внимание 5,6,7,8,9,10,11 ,11,12,13,14,15,16,17,18,19,20,21,22,23, ипродемонстрировалпрактические преимущества по сравнению с другими подходами для формирования мембраны модели: метод DIB прост в работе, не требует сложной изготовления или подготовки (например, "Картина") субстрата для поддержки мембраны, последовательно дает мембраны с долговечность, позволяет проводить стандартные электрофизиологические измерения и упрощает формирование модельных мембран с асимметричными листовочными композициями3. Потому что билайер формируется спонтанно между каплями и каждой капли могут быть адаптированы в положении и макияж, Техника DIB также привлекла значительный интерес к разработке клеточных материальныхсистем,которые опираются на использование стимулов-реакционных мембран18,24,25,26,27,28,29, сбалансированнойразобщенностии транспортировки 14,30,31,итканевых материалов 17,23,32,33,34,35,36.
Большинство опубликованных экспериментов на модельных мембранах, в том числе с ДИБами, проводились при комнатной температуре (RT, 20-25 градусов по Цельсию) и с горсткой синтетических липидов (например, DOPC, DPhPC и т.д.). Эта практика ограничивает сферу биофизических вопросов, которые могут быть изучены в модельных мембранах, и, на основе наблюдения, она также может ограничить типы липидов, которые могут быть использованы для сборки DIBs. Например, синтетический липид, такой как DPPC, который имеет температуру плавления 42 градусов по Цельсию, не собирает плотно упакованные монослои или не формирует DIBs на RT37. Формирование DIB при комнатной температуре также оказалось трудным для натуральных экстрактов, таких как млекопитающие (например, общий липидный экстракт мозга, BTLE)38 или бактерии (например, общий липидный экстракт Escherichia coli, ETLE)37, которые содержат множество различных типов липидов и происходят из клеток, которые находятся при повышенных температурах (37 градусов по Цельсию). Таким образом, включение изучения различных композиций дает возможность понять мембранные процессы в биологически соответствующих условиях.
Повышение температуры масла может служить двум целям: это увеличивает кинетики сборки монослой и это может привести к липидов пройти плавления перехода для достижения жидкой неупорядоченой фазы. Оба последствия помощи в монослойнойсборки 39, предварительно необходимые для DIB. В дополнение к нагреванию для формирования билейера, охлаждение мембраны после образования может быть использовано для выявления термотропных переходов в одиночных липидныхбилейзеров 38, в том числе в естественных липидных смесей (например, BTLE), которые могут быть трудно обнаружить с помощью калорий. Помимо оценки термотропных переходов липидов, точное изменение температуры DIB может быть использовано для изучения температурных изменений вмембранной структуре 38 и изучения того, как липидный состав и текучесть влияют на кинетику мембранно-активных видов (например, порообразующих пептидов и трансмембранныхбелков 37),в том числе млекопитающих и бактериальных мембран модели при физиологически соответствующей температуре (37 С).
В этом случае будет объяснено описание того, как собрать модифицированный нефтяной резервуар DIB и работать контроллер обратной связи-температуры, позволяющий сборку монослой и образование двухслойных при температурах выше РТ. Отличается от предыдущегопротокола 40, явные детали включены в отношении интеграции приборов, необходимых для измерения и контроля температуры параллельно сборки и характеристики DIB в нефтяном резервуаре. Таким образом, эта процедура позволит пользователю применять этот метод для формирования и изучения DIB в различных температурах в различных научных контекстах. Кроме того, репрезентативные результаты дают конкретные примеры типов измеримых изменений как в структуре мембран, так и в ионные транспортные изменения, которые могут происходить по мере изменения температуры. Эти методы являются важным дополнением ко многим биофизическим исследованиям, которые могут быть разработаны и эффективно выполнены в DIBs, в том числе изучение кинетики мембранно-активных видов в различных мембранных композициях.