Регистрация внутрикавернозного давления на модели крысы с повреждением кавернозного нерва

Краткое содержание

Этот протокол описывает разработку стабильной модели радикальной простатэктомии с двусторонним повреждением кавернозного нерва, связанной с эректильной дисфункцией и измерением внутрикавернозного давления.

Аннотация

Модель двустороннего повреждения кавернозного нерва (КН) крысы широко использовалась для моделирования клинического повреждения кавернозного нерва, связанного с эректильной дисфункцией (ЭД), для оценки эффекта клинических терапевтических методов. Тем не менее, методы построения модели травмы КН несовершенны и разнообразны в области исследований ОНП. Именно травма ЦН является наиболее часто используемым методом в последние годы. Целью данного исследования является подробное описание процедуры построения модели двусторонней травмы ЦНС крысы и измерения регистрации внутрикавернозного давления (ВЧД), что позволяет получить надежную и воспроизводимую модель травмы крысы. В данной работе успешно разработан метод травмы ЦН при раздавливании гемостата с использованием иглы шприца в качестве жесткой опоры и гемостата с резиновой втулкой. Кроме того, этот метод позволяет сделать вывод о том, что напряжение 1,0 В, частота 20 Гц и ширина импульса 5 мс являются оптимизированными параметрами стимуляции для регистрации ВЧД в модели двусторонней травмы ЦН.

Введение

ЭД является одним из распространенных заболеваний у взрослых мужчин. По оценкам, к 2025 году число пациентов с ЭД в мире достигнет 322 миллионов^1. Одно многоцентровое обширное выборочное обследование в Китае показывает, что доля ЭД, вызванной операциями на органах малого таза или травмами, составляет около 8%². Несмотря на постоянное совершенствование хирургических техник и хирургических инструментов, заболеваемость ЭД все еще остается высокой. Считается, что развитие и прогрессирование ЭД после нервосберегающей радикальной простатэктомии (РП) способствует повреждению кавернозного нерва, приводящему к атрофии гладкой мускулатуры кавернозного тела, апоптозу эндотелиальных клеток и патологическому ремоделированию ^3,4.

Для изучения механизма гемодинамики и гистопатологических изменений повреждения ЦН, связанного с ЭД, было разработано и оценено несколько различных типов животных моделей повреждения ЦН, включая грызунов, собак, кошек и обезьян ^5,6,7. Основываясь на преимуществах в затратах и воспроизводимости, двусторонняя модель травмы ЦНС на крысе стала наиболее распространенной моделью для оценки ЭД после радикальной хирургии таза⁸. Тем не менее, в многочисленных литературных работах сообщалось о различных формах повреждения нервов, принципиальные различия которых заключаются в подходах к повреждению нервов (раздавливание, замораживание, пересечение и иссечение)^9,10,11. Кроме того, разнообразие подходов к повреждению нервов может привести к несогласованности параметров регистрации внутрикавернозного давления (ВЧД) в модели крысы, что определяет точность и оценку ВЧД⁸. Тем не менее, стандартизированного метода индуцирования повреждения нерва и регистрации ВЧД модели пока не существует.

Таким образом, данное исследование направлено на построение более надежной и воспроизводимой модели двусторонней травмы крысы при ЦН. Этот метод дает подробное описание процедуры построения модели и измерения ВЧД, что может быть полезно для изучения механизмов ЭД и разработки эффективных методов лечения в будущем.

Протокол

В этом исследовании использовались пятнадцать взрослых самцов крыс породы Спрэг-Доули (в возрасте 3 месяцев) весом от 300 до 350 г. Все процедуры на животных проводились в соответствии с Рекомендациями NIH по уходу и использованию лабораторных животных и с одобрения Комитета по уходу за животными и их использованию в пятой аффилированной больнице Университета Сунь Ятсена. Животные были размещены в комфортабельном помещении с контролируемой температурой и освещением.

1. Материалы подготовки к хирургической процедуре

1. Подготовьте следующие инструменты: скальпель, тканевые ножницы, нитевые ножницы, изгибающие щипцы, тканевые щипцы, микрохирургические щипцы, кровоостанавливающие щипцы от комаров Хартмана, стерильные хирургические листы, держатель микроигл, крысиные абдоминальные ретракторы, а также систему сбора и обработки биологических сигналов (см. Таблицу материалов).
   1. Перед операцией простерилизовать все хирургические инструменты. Используйте спиртовые салфетки (70% этанол) для очистки области операции.
      ПРИМЕЧАНИЕ: Хирургические инструменты должны быть стерилизованы путем погружения спиртом в течение ночи.
2. Подготовьте систему регистрации давления
   1. Подсоедините шприц объемом 10 мл, содержащий гепариновый физиологический раствор, и иглу для подкожных инъекций 25 G к 3-ходовому запорному крану с трубкой (длиной 20 см). Промойте стерилизованную трубку стерильным гепариновым раствором (200 Ед/мл).
      ПРИМЕЧАНИЕ: Заполнение пробирки гепариновым физиологическим раствором позволяет избежать попадания пузырьков воздуха в систему.
3. Поднимите иглу 25 G на 20 см (как раз на длину трубки) над рабочей площадкой животного. Затем проверьте точность измерения системы регистрации давления с помощью промывки или постукивания.

2. Подготовка животного

1. Обезболивание крыс путем внутрибрюшинного введения пентобарбитала натрия (60 мг/кг) (см. Таблицу материалов).
   Примечание: Для подтверждения достаточной глубины анестезии была проведена оценка ритма спонтанного дыхания и рефлексов крысы путем защемления задней лапы.
2. Наносите мазь на двусторонние глаза, чтобы избежать сухости роговицы.
3. После подтверждения правильной анестезии побрейте нижнюю половину живота, шею и промежность с помощью электробритвы. Положите крысу в лежачем положении на грелку (37 °C). Надевайте медицинские перчатки для поддержания стерильных условий во время хирургических процедур.

3. Изоляция ЦНС и процедура травмирования

1. С помощью скальпеля сделайте 4-сантиметровый разрез через кожу по нижней, средней линии живота. Чтобы полностью обнажить мочевой пузырь и простату, используйте тканевые ножницы и тканевые щипцы, чтобы сделать надлежащий разрез через подкожную фасцию, мышечную ткань и брюшину.
2. Используйте абдоминальный ретрактор крысы для увеличения карты операционного поля. Используйте впитывающие ватные палочки, чтобы отделить простату от прилегающих тканей, таких как связки.
   ПРИМЕЧАНИЕ: Большой тазовый ганглий (МПГ) и КН могут быть обнаружены в одной из двух дорсолатеральных областей предстательной железы.
3. С помощью угловых микроножниц надрежьте фасцию, расположенную над CN на 1-6 мм дистальнее MPG. Затем наложите шов 9-0 под ЦН с помощью микрохирургических щипцов.
4. Поместите иглу шприца (25 G) под ЦН, на 5 мм дистальнее МПГ. Затем поставьте гемостат в светлую структуру сэндвича «наконечник гемостата-игла шприца-нерв-наконечник гемостата» (рисунок 1 и рисунок 2).
   ПРИМЕЧАНИЕ: Игла шприца должна быть отшлифована.
5. Нанесите гемостат с полным закрытием кончика на расстоянии 5 мм от ганглия на 1 мин, затем извлеките гемостат и иглу шприца (рис. 2).
6. Слегка приподнимите нерв с помощью шва 9-0 и поместите крючки биполярного электрода (см. Таблицу материалов) вокруг CN на 2-4 мм дистальнее MPG (Рисунок 3).
   ПРИМЕЧАНИЕ: Две пары MPG и CN работали одинаково.

4. Катетеризация кавернозного тела и стимуляция КН для измерения ВЧД

1. Промойте трубку стерильным гепариновым физиологическим раствором (200 Ед/мл) перед введением его в кавернозное тело.
2. Удерживайте иглу 25 G и держите направление вставки параллельно ходу кавернозного тела (Рисунок 3).
   ПРИМЕЧАНИЕ: Белочная оболочка должна быть растянута для облегчения введения.
3. Введите иглу 25 G на 6 мм в кавернозное тело (рисунок 3). Промойте трубку и слегка надавите на кавернозное тело, чтобы оценить чувствительность датчика (Рисунок 4). Чтобы предотвратить случайное падение, зафиксируйте трубу на рабочем столе скотчем.
4. Для стимуляции КН используют следующие параметры: напряжение 1,0 В, частота 20 Гц, длительность импульса 5 мс. Применяйте 1 минуту стимуляции с 5 минутами отдыха между следующей стимуляцией.
   ПРИМЕЧАНИЕ: Поверните 3-позиционный запорный кран в сторону канала датчика давления при начале измерения.

5. Послеоперационный уход

1. Положите крыс на подогретую подушку (37 °C) и внимательно следите за ними для восстановления после анестезии.
2. Для послеоперационного контроля боли дайте нестероидные противовоспалительные препараты (такие как карпрофен, 0,5 мг/кг, подкожное введение) (см. Таблицу материалов), когда крысы полностью выздоровеют.
3. Переместите крыс в асептическую клетку и наблюдайте за ними в течение 2 дней, чтобы оценить состояние питания послеоперационной раны, психическое состояние и инфекцию.

Результаты

В ходе хирургической процедуры была получена типичная кривая ответа ВЧД с использованием этого протокола с рекомендуемыми настройками стимуляции. Кривая реакции ВЧД мгновенно повышается при стимуляции нерва и снижается при прекращении стимуляции (Рисунок 5). Перед измерением ВЧД важно исследовать интракавернозную линию давления, что влияет на оценку повышенных значений ВЧД (рис. 4).

Как показано на

Обсуждение

ЭД является тяжелым осложнением операции на органах малого таза или травмы. Несмотря на проведение нервосберегающей операции, частота возникновения ЭД при радикальной простатэктомии (^{РП) составляет} примерно 14-90%. Из-за проблемной регенерации травмы КН клинический лечебный эффект менее чем удовлетворительный. Таким образом, стабильная животная модель травмы ЦНС для изучения методов лечения ЭД имеет важное значение. Quinlan et al. впервые сообщили о модели травмы ...

Материалы

Список материалов, использованных в этой статье

Имя	Компания	Каталожный номер	Комментарии
Игла 25 г	Бионаука по бакалаврству	367391
Абдоминальный ретрактор	RWD Life Science	R22009-01
Площадка для работы с животными	Предоставлено Ключевой лабораторией биомедицинской визуализации провинции Гуандун	NA
Изгибающие щипцы	RWD Life Science	F12011-10
Биологическая система приёма и обработки сигналов	Techman Software	BL-420S
Биполярный электрод	Techman Software	AC0047
Карпрофен	Сигма-Олдрич	MFCD00079028
Гемостатические щипцы для комаров HARTMAN	RWD Life Science	F22002-10
Гепарин	Шанхайская биохимическая технология Аладдина	2608411
Держатель для игл для микро	RWD Life Science	F31047-12
Микрохирургические щипцы	RWD Life Science	F11001-11
Скальпель	RWD Life Science	S32003-12
Пентобарбитал натрия	Ключевая лаборатория биомедицинской визуализации провинции Гуандун	NA
Спраг и Ндаш; Крыса Доули	Гуандунский медицинский центр лабораторных животных	GDMLAC-035
Ножницы для нити	RWD Life Science	S15001-11
Тканевые щипцы	RWD Life Science	F13019-12
Тканевые ножницы	RWD Life Science	S13029-14