Для просмотра этого контента требуется подписка на JoVE. Войдите или начните свой бесплатный пробный период.

Методическая статья

Робастная дифференциация ИПСК человека в чистую популяцию адипоцитов для изучения адипоцит-ассоциированных заболеваний

4.2K просмотров

DOI:

10.3791/63311

9 февраля 2022 г.

В этой статье

Краткое содержание

Протокол позволяет генерировать чистую популяцию адипоцитов из индуцированных плюрипотентных стволовых клеток (ИПСК). Ретиноевая кислота используется для дифференцировки ИПСК в мезенхимальные стволовые клетки (МСК), которые используются для производства адипоцитов. Затем для получения чистых адипоцитов используется подход сортировки, основанный на окрашивании Нила в красный цвет.

Аннотация

Последние достижения в технологии индуцированных плюрипотентных стволовых клеток (iPSC) позволили генерировать различные типы клеток, включая адипоциты. Однако современные методы дифференцировки имеют низкую эффективность и не дают однородной популяции адипоцитов. Здесь мы обходим эту проблему, используя полностью транс-ретиноевый метод для получения мезенхимальных стволовых клеток (МСК) с высоким выходом. Регулируя пути, регулирующие пролиферацию, выживание и адгезию клеток, наша стратегия дифференцировки позволяет эффективно генерировать эмбриональные тела (БЭ), которые дифференцируются в чистую популяцию мультипотентных МСК. Большое количество МСК, генерируемых этим методом, является идеальным источником для генерации адипоцитов. Однако гетерогенность образца в результате дифференцировки адипоцитов остается проблемой. Поэтому мы использовали метод очистки липидсодержащих зрелых адипоцитов на основе нильского краса с помощью FACS. Эта стратегия сортировки позволила нам установить надежный способ моделирования метаболических нарушений, связанных с адипоцитами, с использованием пула адипоцитов с уменьшенной гетерогенностью образца и улучшенной функциональностью клеток.

Введение

Мезенхимальные стволовые клетки (МСК) действуют как эффективный транзиторный ресурс для производства клеток мезодермального происхождения, таких как адипоциты, остеоциты и хондроциты, которые в дальнейшем могут быть использованы для моделирования соответствующих генетических нарушений. Однако предыдущие подходы основывались на получении этих МСК из тканей взрослого человека 1, что создавало проблему получения их в больших количествах от доноров и ограничение их функциональной жизнеспособности в неоптимальных условиях культивирования in vitro 1,2. Эти препятствия породили большо....

Доступ ограничен. Войдите в систему или начните пробный период, чтобы просмотреть этот контент.

Протокол

Исследование было одобрено соответствующим институциональным комитетом по этике исследований и выполнено в соответствии с этическими стандартами, изложенными в Хельсинкской декларации 1964 года и ее более поздних поправках или сопоставимых этических стандартах. Протокол был одобрен Институциональным наблюдательным советом (IRB) HMC (No 16260/16) и QBRI (No 2016-003). Эта работа также оптимизирована для hESCs, таких как H1 и H9. Образцы крови были получены от здоровых людей с полного информированного согласия. ИПСК генерируются из мононуклеарных клеток периферической крови (PBMC) здоровых людей.

1. Культивирование и поддержание ИПСК

Доступ ограничен. Войдите в систему или начните пробный период, чтобы просмотреть этот контент.

Результаты

Схема и морфология клеток во время мезенхимальной дифференцировки: Дифференцировка ИПСК в МСК включает в себя различные стадии развития, охватывающие образование БЭ, дифференцировку МСК и экспансию МСК (рис. 1). На этих стадиях развития клетки приобретают различную морфологию из-за различных стимулирующих химических веществ, которым они подвергаются. После начала дифференцировки клетки покрываются суспензией и, как ожидается, будут круглыми, с определенными границами клеток, но при этом буду.......

Доступ ограничен. Войдите в систему или начните пробный период, чтобы просмотреть этот контент.

Обсуждение

Этот протокол имеет первостепенное значение из-за его способности обеспечивать высокую производительность и эффективность МСК. Это массовое производство МСК стало возможным благодаря переходной инкубации ЭБ, полученных из ИПСК, с 10 мкМ RA14,15. Транзиторная обработка 10 мкМ РА увеличила выход МСК в 11,2-1542 раза в14,15, причем этот протокол применим как к ИПСК, так и к ЧПСК. При такой дозе и продолжител.......

Доступ ограничен. Войдите в систему или начните пробный период, чтобы просмотреть этот контент.

Раскрытие информации

Авторы заявляют, что у них нет конкурирующих интересов.

Благодарности

Эта работа была профинансирована за счет гранта Катарского национального исследовательского фонда (QNRF) (грант No NPRP10-1221-160041). Марьям Агади получила стипендию GSRA от Катарского национального исследовательского фонда (QNRF).

....

Доступ ограничен. Войдите в систему или начните пробный период, чтобы просмотреть этот контент.

Материалы

Список материалов, использованных в этой статье
ИмяКомпанияКаталожный номерКомментарии
АдипонектинAbcamab22554Маркер созревания адипоцитов
анти-CD105BD Pharmingen560839маркер дифференцировки МСК
анти-CD14BD Pharmingen561712маркер дифференцировки МСК
анти-CD19BD Pharmingen555415маркер дифференцировки МСК
анти-CD34BD Pharmingen555824Маркер дифференцировки МСК
анти-CD44abcamab93758Маркер дифференцировки МСК
анти-CD45BD Pharmingen
560975
маркер дифференцировки МСК
анти-CD73BD Фарминген550256маркер дифференцировки МСК
анти-CD90BD Фарминген555596маркер дифференцировки МСК
bFGFНИР D233-FPПищевая добавка для культуральных сред MSC
C/EBPAAbcamab40761Маркер созревания адипоцитов
DexamethasoneTorics1126Добавка для дифференцировки адипоцитов
FABP4Abcamab93945Маркер созревания адипоцитов
Фетальная бычья сывороткаThermoFisher10082147MSC Питательная среда
GlutamaxThermoFisher35050-061Пищевая добавка для культуральных сред
MSC IBMXSigma AldrichI5879Пищевая добавка для дифференцировки адипоцитов
IndomethacinSigma AldrichI7378Добавка для дифференцировки адипоцитов
ИнсулинSigma Aldrich91077CДобавка для дифференцировки адипоцитов
Knockout DMEMThermoFisher12660012Базальная среда для приготовления матрицы
Низкая глюкоза DMEMThermoFisher11885084МСК питательная среда
MatrigelCorning 354230Матрица покрытия
MEM-альфаThermoFisher12561056Среда для дифференцировки адипоцитов
NileredSigma Aldrich19123Сортировочный маркер для адипоцитов
ПенициллинThermoFisher15140122МСК/Адипоцитарная медиадобавка
Фосфатно-солевой буферThermoFisher14190144промывочный буфер
Pierce™ 20X TBS BufferThermo Fisher28358промывочный буфер
PPARGКлеточная сигнальная технология2443маркер созревания адипоцитов
ReLeSRСтволовые клетки Технологии5872Диссоциационный реагент
Ретиноевая кислотаSigma AldrichR2625MSC Добавка дифференцировочной среды
Ингибиторпороды Tocris1254/10hPSC Питательная среда
РозиглатонSigma AldrichR2408Добавка дифференцировочной среды для адипоцитов
StemFlexThermoFisherA334901hPSC питательная среда
TritonThermo Fisher28314Реактив для пермебеализации
ТрипсинThermoFisher25200072Реактив диссоциации
Tween 20Sigma AldrichP7942Буфер для промывки

Ссылки

  1. Hass, R., Kasper, C., Bohm, S., Jacobs, R. Different populations and sources of human mesenchymal stem cells (MSC): A comparison of adult and neonatal tissue-derived MSC. Cell Communication and Signaling: CCS. 9, 12(2011).
  2. Wagner, W., et al.

Доступ ограничен. Войдите в систему или начните пробный период, чтобы просмотреть этот контент.

Перепечатки и разрешения

Теги

FACS