Для просмотра этого контента требуется подписка на JoVE. Войдите или начните свой бесплатный пробный период.

Методическая статья

Обеспечение быстрого восстановления легких в сочетании с нормотермической регионарной перфузией брюшной полости при контролируемом донорстве после смерти кровообращения

2.6K просмотров

⸱

DOI:

10.3791/63975

⸱

15 августа 2022 г.

В этой статье

Краткое содержание

Протокол сочетает в себе технику быстрого восстановления охлаждения легких с нормотермической регионарной перфузией брюшной полости для получения трансплантата брюшной полости у контролируемых доноров асистолии, что является безопасным и полезным методом расширения пула доноров.

Аннотация

Контролируемое донорство после смерти от кровообращения (cDCD) способствовало увеличению числа доноров во всем мире. Опыт, опубликованный в последние годы, подтверждает, что результаты после трансплантации легких от cDCD аналогичны результатам от доноров смерти мозга; Тем не менее, использование легких от доноров асистолии остается низким. Это может быть вызвано несколькими причинами: различная правовая база в разных странах и центрах с различными предсмертными вмешательствами, неадекватная помощь донорам легких перед закупкой или даже плохой опыт работы с процедурами и протоколами cDCD.

Первоначально метод быстрого восстановления широко использовался для забора органов грудной клетки и брюшной полости при цДКД, но в последнее десятилетие нормотермическая регионарная перфузия брюшной полости (ANRP) с помощью устройств экстракорпоральной мембранной оксигенации стала полезным методом восстановления кровотока к органам брюшной полости, что позволяет улучшить их качество и функциональную оценку до трансплантации. Это усложняет процедуру донорства и вызывает сомнения в повреждении трансплантатов из-за двойной температуры.

Целью данной статьи является описание протокола, основанного на опыте работы одного центра с донорами Маастрихта III, сочетающего охлаждение легких, быстрое восстановление грудной клетки и нормотермическую регионарную перфузию брюшной полости. Объясняются советы и рекомендации, посвященные предсмертным вмешательствам и методам процедуры заготовки легких. Это может помочь свести к минимуму нежелание специалистов использовать эту комбинированную технику и побудить другие донорские центры использовать ее, несмотря на возросшую сложность процедуры.

Введение

Донорство после смерти от кровообращения (DCD) началось в Испании с неконтролируемых доноров. В 1996 году был опубликован первый национальный консенсусный документ по DCD в качестве руководства по практике неконтролируемого донорствапосле смерти от кровообращения 1 (uDCD), также устанавливающий мораторий на контролируемое донорство после смерти от кровообращения (cDCD). В 2012 году был достигнут новый консенсус, заложивший основу и законодательную базу для практики как uDCD, так и cDCD2. В настоящее время Испания является одной из самых активных стран в области DCD, достигнув самого высокого уровня доноров после смерти от кровообращения в мире3. В 2021 году этот тип доноров составлял почти 35% от общего числа доноров в стране, при этом наблюдалось заметное снижение uDCD, и донорами были исключительно cDCD4.

Заготовка органов при cDCD обычно выполняется с использованием метода сверхбыстрого восстановления5. После констатации смерти и по истечении бесконтактного периода проводится быстрая стернотомия и лапаротомия. Брюшную аорту и легочную артерию канюлируют и промывают холодными перфузионными растворами для сохранения органов брюшной полости и грудной клетки, а перед извлечением проводят местное охлаждение6. В этой ситуации цДКД характеризуется непредсказуемыми последствиями теплой ишемии, после отмены поддерживающей жизнь терапии. Ишемическое повреждение в этот период агонической гипотензии и прогрессирующей гипоксии, за которым следует неконтактный период после остановки сердца, еще больше усугубляется более поздним периодом холодовой ишемии7. Эта комбинация теплой и холодной ишемии, по-видимому, вредна, особенно для трансплантатовбрюшной полости 8,9,10, что вызывает большее нежелание среди профессионалов использовать эти органы от доноров cDCD.

Чтобы свести к минимуму эти риски, с растущим интересом была разработана модель сохранения in situ, основанная на предыдущем опыте испанских команд, работающих в uCDC11. Использование систем экстракорпоральной мембранной оксигенации (ЭКМО) для восстановления кровотока после смерти и до восстановления трансплантата может обратить вспять метаболические отклонения, вызванные ишемией, и восстановить клеточную физиологию1, 2. Абдоминальная нормотермическая регионарная перфузия (ANRP) может улучшить качество ишемически поврежденных органов при cDCD13. Функция органа может быть оценена и улучшена, что позволяет лучше выбирать трансплантаты брюшной полости для трансплантации.

Недавний международный многоцентровый опыт свидетельствует о том, что ANRP по сравнению с методом быстрого восстановления (ОР) помогает преодолеть традиционные ограничения при цДКД, снижая частоту посттрансплантационных билиарных осложнений, способствуя успешной трансплантации более старой печени и улучшая выживаемость печеночного трансплантата14,15. В почках он, по-видимому, улучшает краткосрочные исходы с более низкой отсроченной функцией трансплантата и более высокими показателями выживаемости трансплантата в течение 1 года16. Обладая этими доказательствами, ANRP при cDCD получил преимущества по сравнению с методом быстрого восстановления для получения трансплантата брюшной полости и в настоящее время применяется в нескольких европейских странах и других частях мира17,18.

Однако использование легких доноров cDCD было быстро принято во всем мире. Функциональное время теплой ишемии легких до 60 мин, по-видимому, не влияет на выживаемость19. За последнее десятилетие несколько центров и многопрофильных учреждений сообщили о результатах трансплантации легких от cDCD, сопоставимых с результатами DBD20,21. Метод RR является обычным методом забора легких: легкие охлаждают местно и удаляют после промывания холодным консервационным раствором22.

О первых опытах сочетания ANRP и RR легких при cDCD сообщили две группы из Соединенного Королевства23,24. Спустя годы была опубликована вариация этой техники с добавлениемпредсмертных вмешательств 25. Результаты показывают, что этот метод двойной заготовки безопасен и эффективен как для брюшных, так и для грудных трансплантатов26. Очевидно, что процедура донорства усложняется. Она требует технологических и человеческих ресурсов, достаточных организационных возможностей, имеет более высокие экономические затраты. Все это может отбить у профессионалов желание начать программу. Цель этого исследования состоит в том, чтобы представить протокол, специально ориентированный на посмертные вмешательства, канюляцию и установку баллона для окклюзии аорты, с советами и рекомендациями, полученными из опыта, а также прокомментировать различные технические детали, которые следует учитывать при извлечении легких при использовании ARNP. В настоящее время в Центре доноры cDCD стали основным источником трансплантатов для трансплантации грудной и брюшной полости.

Доступ ограничен. Войдите в систему или начните пробный период, чтобы просмотреть этот контент.

Протокол

Эти вмешательства проводятся у постели больного в отделении интенсивной терапии (ОИТ). Этот протокол соответствует руководящим принципам комитета по этике Университетской больницы Маркиза де Вальдесильи и соответствует испанской правовой базе в отношении процедур донорства. Было получено информированное согласие от ближайших родственников на видеозапись процедур исследования. cDCD рассматривается у пациентов с катастрофическим повреждением головного мозга или терминальным сердцем или нейродегенеративным заболеванием, для которых было принято решение об отмене поддерживающей жизнь терапии (WSLT). Критерии исключения и оценка легких такие же, как и у доноров смерти мозга (табл. 1).

1. Предсмертные вмешательства у донора

  1. Гепаринизация: внутривенно вводят донору болюс 300-500 МЕ/кг гепарина.
  2. Канюляция
    ПРИМЕЧАНИЕ: Канюляция выполняется сердечно-сосудистым хирургом и является стерильной процедурой.
    1. Подготовьте стерильный инструментальный стол со всем необходимым оборудованием (набор ЭКМО и хирургические инструменты), а также электрокоагуляционную и аспирационную систему.
    2. Подготовьте операционное поле на выбранный пах с дезинфицирующим раствором и стерильными простынями.
    3. Сделайте продольный разрез 8-10 см лезвием No 23, остановив кровотечение с помощью электрокоагуляции и зажимов Liga. Отделите края раны ретрактором и приступайте к рассечению, чтобы обнажить бедренную артерию и вену. Обхватите оба сосуда сосудистыми петлями для остановки кровотечения.
    4. Выберите подходящие диаметры канюли в соответствии с размерами сосудов и достаточно большие, чтобы обеспечить достаточный поток для перфузии органов и предотвратить проблемы с низким потоком (обычно 21 французский).
    5. Канюляют бедренную вену, вводя сначала металлическую проволоку в качестве направляющей, а затем прогрессивные расширители, чтобы, наконец, ввести канюлю. Если наблюдается кровотечение, для контроля наложите шов на полипропиленовую кисетную нить peri cannula 4-0.
    6. Таким же образом поступают и с бедренной артерией, используя в этом случае двухпросветную канюлю.
    7. Отрежьте 10-сантиметровый кусочек входной линии ЭКМО. Вставьте прямой соединитель с замком Луера с трехходовым запорным краном, собранным на одном конце детали, и подсоедините другой конец детали к артериальной канюле (рис. 1).
    8. Очистите линии ЭКМО. Используйте ирригационную грушу с солевым раствором, чтобы заполнить линии при соединении с канюлями. Подсоедините выходную линию ЭКМО к венозной канюле и входную линию ЭКМО к прямому разъему с помощью предварительно собранного трехходового запорного крана к артериальной канюле. Трехходовой запорный кран можно использовать для продувки системы (рис. 2).
    9. Держите линии ЭКМО зажатыми. Закрепите обе канюли в паху шелковыми швами размера 1, чтобы избежать смещения во время переноса.
    10. Поместите контролируемую линию давления в канюлю бедренной артерии и в левую лучевую артерию донора.
  3. Установка баллона для окклюзии аорты
    1. Возьмем, за основу, расстояние между мечевидным отростком донора и дистальным концом артериальной канюли и определите длину вводимого катетера, чтобы достичь грудной нисходящей аорты. Установите контрольную метку в баллоне шелковым швом или маркером.
    2. Вводят проводник из металлической проволоки через свободный просвет канюли бедренной артерии. Продолжайте работу с катетером таким же образом, ориентируясь по металлической проволоке, и вводите его до указанной отметки.
    3. Подтвердите правильное положение окклюзионного баллона с помощью портативной рентгенографии грудной клетки или рентгеноскопии (проверьте рентгеноконтрастные следы катетера над диафрагмой).
    4. Проверьте правильность функции окклюзионного баллона, заполнив его 50-кубовым конусным шприцем физиологическим раствором всего на 4-5 секунд, подтвердив, что артериальное давление из бедренной канюли исчезает, а давление из левой лучевой артерии сохраняется (рис. 3).
    5. Когда бедренный пульс исчезает, запишите объем наполнения как минимальный объем, который будет использоваться для блокировки грудной аорты во время ARNP. Если в бедренной канюле обнаружен поток, еще раз проверьте правильность позиционирования или наполнения.

2. Отмена поддерживающей жизнь терапии (WLST) и констатация смерти

  1. Перевести донора, подключенного к системе ЭКМО, в операционную. Подготовьте и задрапируйте донора стерильным способом.
  2. Установите и подготовьте растворы и линии для сохранения легких и брюшной полости. Держите хирургическую бригаду вычищенной, стерильной и готовой в соседней операционной.
  3. Используйте хронометр для регистрации теплых ишемических периодов.
    ПРИМЕЧАНИЕ: Функциональное теплое ишемическое время (FWIT), определяемое как время от систолического артериального давления <60 мм рт.ст. до ANRP, начинается для трансплантатов брюшной полости и введения раствора для сохранения легких через легочную артерию для легких (включая 5-минутный период без прикосновения). Рассматриваются верхние пределы 30 мин для печени и поджелудочной железы и 60 мин для почек и легких.
  4. Разрешить родственникам находиться со своим близким человеком во время WLST до объявления смерти.
  5. Инициируйте WLST. Экстубация необязательна в соответствии с пожеланиями родственника. После объявления смерти выведите родственников из операционной.
  6. По истечении 5-минутного периода без прикосновения наполните баллон для окклюзии аорты заранее определенным минимальным объемом, обеспечивающим нисходящую блокаду грудной аорты.
  7. Если давление со стороны левой лучевой артерии исчезает, инициируйте ANRP. Давление из бедренной канюли превратится в непрерывный непульсирующий поток, обеспечиваемый ЭКМО.
  8. Если поток в радиальной линии увеличивается параллельно бедренному давлению, остановите ANRP и проверьте правильное положение и заполнение или зажмите грудную аорту еще через 5 минут без прикосновения, прежде чем восстанавливать ANRP. ANRP не начинается до тех пор, пока окклюзия аорты не будет полностью подтверждена.
    ПРИМЕЧАНИЕ: WLST может быть выполнен в операционной или в отделении интенсивной терапии по желанию родственников и близких. Если это выполняется в отделении интенсивной терапии, после 5-минутного периода без касания баллон заполняется и проверяется функция, инициируется ARNP, и донор переводится в операционную, где хирургическая бригада готова приступить к работе. При обнаружении неисправности окклюзионного баллона АРНП прекращают до тех пор, пока грудная аорта не будет пережата в операционной.

3. Техника восстановления и заготовки легких

ПРИМЕЧАНИЕ: Методы восстановления и заготовки легких выполняются торакальным хирургом и координатором трансплантации (рис. 4).

  1. Выполните срединную стернотомию: выполните срединный вертикальный разрез кожи от надгрудинной выемки до кончика мечевидного отростка. Расширьте разрез до грудной фасции и надкостницы грудины с помощью электрокоагуляции.
  2. Разделяют межключичную связку и создают плоскость путем рассечения пальцев позади грудины, как на уровне надгрудинной выемки, так и мечевидного отростка. Разделите грудину электропилой. Поместите грудный ретрактор и осторожно раскройте, освободив перикард от задней поверхности грудины. Контролируйте любую точку кровотечения с помощью электрокоагуляции.
  3. В то же время проводят повторную интубацию и вентиляцию донора со 100% кислородом и положительным давлением в конце выдоха 5 см H2O.
  4. Если бронхоскопия не была выполнена во время пребывания донора в отделении интенсивной терапии в качестве критического маневра ведения пациента, она может быть выполнена на этом этапе вторым хирургом торакальной бригады. Для бронхоскопии введите гибкий бронхоскоп через эндотрахеальную трубку и оцените анатомию, внешний вид слизистой оболочки и прозрачные выделения.
  5. Вскрывают обе плевральные полости продольными разрезами в плевре средостения.
  6. Если есть сомнения или проблемы по поводу адекватной блокады надаортальных сосудов с помощью окклюзионного баллона, втяните левое легкое медиально, чтобы обнажить и зажать грудную аорту как можно ниже под прямым зрением.
  7. Осмотрите легкие, выполнив визуальную и пальпаторную оценку. Осмотрите на наличие булл, ушибов, ателектаза, пневмонии и скрытых опухолей. Введите 1 л физиологического раствора с температурой 4 °C в обе плевральные полости.
  8. Уменьшите долю вдыхаемого кислорода до 50%. Вскрывают перикард с помощью перевернутого Т-образного разреза. Втяните латерально края перикарда с помощью шелковых швов 2-0, закрепленных на коже противомоскитными щипцами, чтобы обнажить структуры сердца.
  9. Наложите полипропиленовый кисетный шов 4-0 на главную легочную артерию ниже бифуркации. Выполните артериотомию с помощью лезвия No 11 и расширьте с помощью изогнутых щипцов от комаров.
  10. Канюляция легочной артерии (ПА) с помощью прямоугольной прямой канюли, зажатой на конце. Соедините канюлю легочной артерии с линией системы орошения, собрав прямой соединитель с замком Луера и трехходовым запорным краном. Подключите систему орошения к раствору для сохранения легких. Очистите линии.
  11. Начните промывать 50-60 мл/кг раствора для консервации холодным способом антестандартным способом. Начните промывать 500 мкг простагландина, разведенного в 100 мл физиологического раствора, одновременно через трехходовой запорный кран.
  12. Откройте придаток левого предсердия или левое предсердие напрямую, чтобы обеспечить свободный дренаж. При обнаружении участков ателектаза набирают их короткими инспираторными удержаниями при давлении 25-30 смН2О.
  13. После завершения консервации извлеките канюлю PA. Объявите остальной команде о намерении пережать полую вену и начать иссечение сердца.
  14. Перед пережатием полых вен донору вводят 1-1,2 л физиологического раствора, чтобы избежать снижения потока насоса из-за потери венозного возврата крови из грудной клетки.
  15. Поместите поперечный зажим в нижнюю полую вену, убедившись, что культи достаточно для печени. Перевязать и разделить нижнюю полую жилку шелковой нитью No 3.
  16. Свяжите и разделите верхнюю полую жилку от каудальной до азиготной шелковой нитью No 3. Закрепите дистальную культю зажимом.
  17. Оставьте зажимы в операционном поле, стараясь не снимать их случайно, так как в противном случае ANRP будет скомпрометирован. Иссеките остальную часть сердца стандартным способом.
  18. После иссечения сердца удалите легкие по той же процедуре, что и у доноров смерти мозга, как описано ниже.
    1. Разделить нижние легочные связки, открыть задний перикард и обнажить пищевод. Освободите задние средостения прикрепления легкого с помощью тупой диссекции, обеспечивая осторожный гемостаз.
    2. Рассеките легочные артерии от аорты. Изолируйте трахею над килем и проведите степлером ТА.
    3. Надуйте легкие до 50-60% дыхательного объема, прежде чем извлекать эндотрахеальную трубку и разделять трахею. Удалите все оставшиеся насадки и извлеките блок легких у донора.
  19. Тщательно проверьте грудную полость, чтобы обнаружить любую точку кровотечения, особенно перевязку азиготной вены и прижигание сосудов или капилляров из заднего средостения, паратрахеальных структур и окружающих тканей. Постоянная кровопотеря может уменьшить поток насоса.
  20. Перенесите блок легких на задний стол и приступайте к операции на скамье. Разделяют левое и правое легкое.
  21. С помощью катетера Фолея с раздутой луковицей на кончике последовательно через каждую легочную вену проводят ретроградную промывку 0,2-0,25 л раствора для консервации холода.
  22. Упакуйте каждое легкое в первый стерильный пакет, содержащий только раствор для холодной консервации, окруженный двумя другими пластиковыми пакетами, и храните в переносном холодильнике, содержащем ледяной физиологический раствор при температуре 4 ° C.
  23. Если показана система перфузии легких ex vivo , выполните следующие действия для подключения устройства к легочной артерии и трахее во время заготовки легких.
    1. Сохранить основной ствол легочной артерии, а не только ее бифуркацию при заготовке.
    2. Если это невозможно, возьмите кусочек аорты длиной 3-4 см, чтобы сзади сшить его с бифуркацией легочной артерии для замены ствола легочной артерии.
    3. Разделите трахею на четыре-пять колец над килем, чтобы иметь достаточную длину для интубации.
    4. Держите и храните легкие в блоке.

4. Абдоминальная нормотермическая регионарная перфузия

  1. Инициируйте ANRP после заполнения баллона для окклюзии аорты и проверки правильности функции.
  2. Установите следующие целевые точки мониторинга: расход насоса = 2-2,5 л/мин, постоянное давление 60-65 мм рт.ст. в канюле бедренной артерии, температура = 37 °C, pH = 7,35-7,45, гематокрит >25%.
  3. Возьмите образцы крови из канюли бедренной артерии с помощью шприца объемом 10 мл после начала ANRP и каждые 30 минут для биохимического анализа печени и почек, уровня лактата в сыворотке, артериального газа в крови и гематокрита. Поддерживайте ARNP не менее 90-120 минут.
  4. Откажитесь от печени, если значения аланинтрансаминазы (АЛТ) или аспартаттрансаминазы (АСТ) более чем в четыре раза превышают верхний предел нормы во время ANRP.

5. Восстановление печени и почек

ПРИМЕЧАНИЕ: Восстановление печени и почек выполняется хирургом печени и хирургом почек соответственно.

  1. Выполните срединную лапаротомию: выполните срединный вертикальный разрез кожи вдоль белой линии, от мечевидного отростка (присоединитесь к предыдущей стернотомии) до лобка, искривив разрез вокруг пупка. Используйте электрокоагуляцию для рассечения подкожно-жировой клетчатки и поверхностных фасциальных слоев вплоть до влагалища прямой мышцы живота.
  2. Рассекают передний и задний компоненты влагалища прямой мышцы живота и вскрывают брюшину, чтобы получить доступ к брюшной полости. Расширьте разрез, вставив пальцы в созданное отверстие, стараясь не травмировать нижележащие структуры. Поместите ретракторы, чтобы иметь адекватное воздействие на живот.
  3. Оцените макроскопическое качество органов брюшной полости, выполнив визуальную и пальпаторную оценку. Биопсия печени может быть взята, если есть какие-либо опасения, как в случае с донорами смерти мозга.
  4. Если химические показатели верны и макроскопический вид в норме, проверьте органы.
  5. Остановите устройство ЭКМО. Промойте консервационный раствор для органов брюшной полости через канюлю бедренной артерии и используйте венозную канюлю бедренной кости для обескровливания.
  6. Закупайте органы брюшной полости, пригодные для трансплантации, стандартным способом, как в DBD27,28.

Доступ ограничен. Войдите в систему или начните пробный период, чтобы просмотреть этот контент.

Результаты

Мы провели описательный анализ 30 трансплантаций легких, выполненных в университетской клинике Маркиза де Вальдесилья, с легкими, полученными от доноров cDCD за последние 2 года, 2020 и 2021 годы. Здесь представлены демографические характеристики доноров и реципиентов, технические данные, послеоперационные исходы и краткосрочные результаты. Эти результаты представлены в виде абсолютных чисел и процентов для категориальных переменных, а также в виде мер центральной тенденции и дисперсии для непрерывных переменных. Для про...

Доступ ограничен. Войдите в систему или начните пробный период, чтобы просмотреть этот контент.

Обсуждение

Хотя использование одновременной холодовой перфузии легких с ARNP при cDCD было впервые опубликовано в 2014 году, для этого было описано очень мало опытов25,26,29. Кроме того, в большинстве стран использование легких cDCD, независимо от используемого метода, остается низким.

Важнейшими шагами в рамках этого протокола являются использование предсмертных вмешательств; специфическая методология для обесп...

Доступ ограничен. Войдите в систему или начните пробный период, чтобы просмотреть этот контент.

Раскрытие информации

Авторы заявляют об отсутствии конфликта интересов.

Благодарности

Авторы выражают признательность всем участникам, участвующим в программе трансплантации легких в университетской больнице Маркиза де Вальдесилья.

Доступ ограничен. Войдите в систему или начните пробный период, чтобы просмотреть этот контент.

Материалы

Список материалов, использованных в этой статье
ИмяКомпанияКаталожный номерКомментарии
Флакон 5 мл Гепарин 1000 МКС/млROVIДля донорской гепаринизации
<СТРОНГ>ЭКМО НАБОР (МАТЕРИАЛЫ ДЛЯ КАНЮЛЯЦИИ)
Артериальные канюлиВЕКСЕН МЕДИЦИНСКИЙ137.15Артериальный катетерий пора лучевой артерии и бедренной канюли
Бинтовые ножницыSURGIMEDICBC-881RНожницы для разрезания ЭКМО
Bio-medicus Венозная канюля 21 Fr (7,0 мм) x 27,5 дюйма (69,9 см)MEDTRONIC96670-121Венозная канюля
Clhorhexidine solution 2%Дезинфицирующий раствор
Аппарат ЭКМО Maquet RotaflowMaquet, Rasttat, ГерманияСистема ЭКМО
Электрокоагуляционная ручкаDEXTROSW12200
EndoReturn Arterial Canjula Kit  21-23FEdwards LifesciencesER21B, ER23BАртериальная канюля с просветом к подключению ЭКМО и для введения баллона окклюзии аорты
Ethicon LigaClip med/short 20 титановый среднийETHICONMCS30Ligaclips для остановки кровотечения при рассечении паха
Ethicon LigaClip med/short 20 титановый маленькийETHICONMCS20Ligaclips для контроля кровотечения при рассечении
пахаНабор для введения Bio-medicus 180cmMEDTRONIC96551Набор для введения канюль ЭКМО, с катетером, металлическим проводником и расширителями
Груша для орошенияMEDLINEDYNDE 20125Груша для наполнения физиологическим раствором и продувки катетерами ЭКМО в месте соединения с канюлями
Конусный шприц Люэра 50ccCARDIONATUR60млШприц, наполненный физиологическим раствором для заполнения окклюзионного баллона
Mersilk No 1, LR-60 CONV , 75 смETHICONW562HШелковый изогнутый шов для фиксации канюль ЭКМО
Prolene 4/0ETHICONW8355полипропиленовый шов для кисетной нити в бедренных сосудах или сосудистых швов
Prolene 5/0 , 60 смETHICON8325полипропиленовый шов для сосудистого шва
Prolene 5/0, 90 смETHICON8720полипропиленовый шов для сосудистого шва
Баллонный катетер для стент-графта Reliant  12FMedtronic, ИрландияAB46Баллон для окклюзии аорты, вводимый через бедренную артерию. Используется в качестве эндозажима
Скальпельное лезвие No 11INTRAVEN150011
Лезвие Scapel No 23INTRAVEN150023
Силиконовая трубкаIBERHOSPITEX0027224-PСиликоновая трубка для подключения системы отсасывания
Sofsilk плетеный шелк No 1нити COVIDIENL-12Шелковая нить для перевязки или остановки кровотечения
Sofsilk плетеный шелк No 3 ПрядиCOVIDIENL-115Шелковая прядь для лигирования или остановки кровотечения
прямой соединитель 3/8"x3/8" с замком ЛюэраANDOCOR04CS0022Штучка для соединения артериальной канюли с линией ЭКМО и трехсторонним стоп-краном для линии давления и забора крови
Набор хирургических прокладокTEXPOL146500
Хирургический степлерCOVIDIEN8886803712Степлер для закрытия хирургической раны
Трехходовой стоп-кранBD CONNECTA394501Трехсторонний стоп-кран для соединения фартериальной канюли с давящей линией
Сосудистая петля большаяMEDLINEVLMAXRСосудистая петля для охвата бедренной артерии и вены для остановки кровотечения.
Сосудистая петля маленькаяMEDLINEVLMINRСосудистая петля для охвата бедренной артерии и вены для остановки кровотечения.
Аспирационный терминал Yankauer 50 ВDEXTROMEDICA349701Аспиратор для отсасывания во время хирургической диссекции
ХИРУРГИЧЕСКИЕ ИНСТРУМЕНТЫ ДЛЯ АННУЛЯЦИИ
Адсон ретрактор 20 см и 33 см
Аортальный зажим
Ножницы Бойда 18 см
Щипцы для рассечения без челюстей 21 см
Farabeuf ретрактор маленькие
ножницы Mayo прямые 14 см и 16 см
Metzembaum ножницы 18 см, 20 см и 23 см
Москитные щипцы прямые и изогнутые
Иглодержатель 18 см и 23 см
Рассечные щипцы 15 см
Ручка скальпеля No 23 и No 21,  21 см
Хирургический диссектор 23 см
МАТЕРИАЛЫ ДЛЯ ЗАГОТОВКИ ЛЕГКИХ
10 мл ШприцBD DISCARDIT309110
Алпростадил 500 мкг инъекционный растворPFIZERПростагландин вводится с раствором для консервации легких
Одноразовый картридж GIA Steril 6/CaMEDTRONIC1141634
Одноразовый степлер GIA 60/3.8 3/CaMEDTRONIC2802122Степлер для трахеи и бронкиального деления
Катетер Фолея 18 Ch FolysilFolysil, ColoplastAA6118Мочевой катетер, применяемый к канюлированным легочным венам для ретроградной перфузии
Раствор для сохранения легких Perfadex 1000 млMedisan, Uppsala, Sweden19811 ( коробка из 10 единиц)Раствор для сохранения легких
Mersilk No 1, LR-60 CONV , 75 смETHICONW562HШелковый изогнутый шов для швов перикарда
Детская венозная канюляSORIN GROUPV132-12Канюля используется для канюляции легочной артерии
Prolene 4/0ETHICONW8355полипропиленовый шов для кошельковой нити в легочной артерии
Лезвие скальпеля No 11INTRAVEN150011
Sofsilk плетеный шелк No 1 нитиCOVIDIENL-12Шелковая нить для фиксации артериальной канюли жгутом
Sofsilk плетеный шелк No 3 нитиCOVIDIENL-115Шелковая нить для перевязки сосудов
Стерильные мешкиДля хранения и хранения легких.
Соединитель Straigth 1,4"/1,4" с замком ЛюэраANDOCOR04CS0032Штучка для соединения артериальной канюли легочной артерии с линией консервации и трехходовым запорным краном для простагландина
Трехходовой запорный кранBD CONNECTA394501Трехходовой запорный кран для соединения фартериальной канюли с напорной линией
Uromatic набор для орошения с двойным отведениемMEDISAVETRC4007NИрригационная система для сохранения легких
Уроматический набор для орошения в одном отведенииMEDISAVETRC4002Ирригационная система для сохранения легких
ХИРУРГИЧЕСКИЕ ИНСТРУМЕНТЫ ДЛЯ ЗАКУПКИ ЛЕГКИХ
Аортальный поперечный зажим
Хирургическая пила
Cooley vascular
Зажим Щипцы рассекающие 18 см и 27,9 см
Стернальный ретрактор
Ножницы Metzembaum 20 см и 23 см
Щипцы от комаров изогнутые 12,5 см
Сосудистые зажимы
ХИРУРГИЧЕСКИЕ ИНСТРУМЕНТЫ ДЛЯ ОРГАНОВ БРЮШНОЙ ПОЛОСТИ PROCUREMENT
Adson шарнирные ретракторы
Allis щипцы 16 см
Аортальные поперечные зажимы
Boyd ножницы 17 см
Иглодержатель
Cooley Сосудистые зажимы
Щипцы Crile изогнутые 18 см
Ретрактор Дэвиса 24,5 см
Дебейки Рассекающие щипцы 19,7 см и 24,1 см
Сосудистые зажимы
Рассекающие щипцы 18 см и 27,9 см
Щипцы Дюваля 23 см
Ретракторы Фарабефа
Почечные лотки 300 cc и 500 cc
Щипцы Kocher стригт 18 см
Лангенбек ретракторы 21 см и 23 см
Ножницы Майо прямые и изогнутые, 17 см
Щипцы Mosquito прямые и изогнутые, 12,5 см
Иглодержатели 15 см, 18 см, 23 см и 23 см.
Щипцы для першения 16 см
Ножницы Поттса 19 см
Рочестерские щипцы изогнутые 24 см
Рочестерские щипцы прямые 24 см
Рассекционные щипцы Русса 15 см и 20 см
Ручки
для скальпелейВтягивающее устройство Зенна-Мюллера 16 см
на батарейкахFinochiettoCastroviejoДебейки

Ссылки

  1. Matesanz, R. Spanish National Consensus Document on the recovery of organs from non-heart beating donors. Nefrología. 16, 48-53 (1996).
  2. Donation after circulatory death in Spain: State of the art and recommendations. Consensus Document 2012, Organización Nacional de Trasplantes. , Available from: htpp://www.ont.es/infesp/DocumentoDeConsenso/DONACION%20EN%20ASISTOLIA%20EN%20ESPEÑA%20SITUACION%20ACTUAL%20Y%20RECOMENDACIONES.pdf (2017).
  3. Global Observatory on Donation and Transplantation. , Available from: htpp://www.transplant-observatory.org (2022).
  4. Organización Nacional de Trasplantes. Memoria de actividad donación y trasplante. Organización Nacional de Trasplantes. , Spain. (2020).
  5. Bellingham, J. M., et al. Donation after cardiac death: A 29-year experience. Surgery. 150 (4), 692-702 (2011).
  6. Algahim, M. F., Love, R. B. Donation after circulatory death: The current state and technical approaches to organ procurement. Current Opinion in Organ Transplantation. 20 (2), 127-133 (2015).
  7. Lepoittevin, M., et al. Preservation of organs to be transplanted: An essential step in the Transplant process. International Journal of Molecular Sciences. 23 (9), 4989(2022).
  8. Wadei, H. M., et al. Comparison of kidney function between donation after cardiac death and donation after brain death kidney transplantation. Transplantation. 96 (3), 274-281 (2013).
  9. Jay, C., et al. A comprehensive risk assessment of mortality following donation after cardiac death liver transplant-An analysis of the national registry. Journal of Hepatology. 55 (4), 808-813 (2011).
  10. O'Neill, S., Roebuck, A., Khoo, E., Wigmore, S. J., Harrison, E. M. A meta-analysis and meta-regression of outcomes including biliary complications in donation after cardiac death liver transplantation. Transplant International. 27 (11), 1159-1174 (2014).
  11. Fondevila, C., et al. Applicability and results of Maastricht type 2 donation after cardiac death liver transplantation. American Journal of Transplantation. 12 (1), 162-170 (2012).
  12. Hessheimer, A. J., Riquelme, F., Fudora-Suarez, Y., García Pérez, R., Fondevila, C. Normothermic perfusion and outcomes after liver transplantation. Transplantation Reviews. 33 (4), 200-208 (2019).
  13. Oniscu, G. C., et al. In situ normothermic regional perfusion for controlled donation after circulatory death- The United Kingdom Experience. American Journal of Transplantation. 14 (12), 2846-2854 (2014).
  14. Watson, C. J. E., et al. et al. In situ normothermic perfusion of livers in controlled circulatory death donation may prevent ischemic cholangiopahy and improve graft survival. American Journal of Transplantation. 19 (6), 1745-1758 (2019).
  15. Hessheimer, A. J., et al. Abdominal normothermic regional perfusion in controlled DCD liver transplantation: outcomes and risk factors for graft loss. American Journal of Transplantation. 22 (4), 1169-1181 (2022).
  16. Padilla, M., et al. Improved short-term outcomes of kidney transplants in controlled donation after the circulatory determination of death with the use of normothermic regional perfusion. American Journal of Transplantation. 21 (11), 3618-3628 (2021).
  17. Lomero, M., et al. Donation after circulatory death today: An updated overview of the European Landscape. Transplant International. 33 (1), 76-88 (2020).
  18. Dominguez-Gil, B., et al. Expanding controlled donation after the circulatory determination of death: Statement from an international collaborative. Intensive Care Medicine. 47 (3), 265-281 (2021).
  19. Levvey, B., et al. Influence of lung donor agonal and warm ischemic times on early mortality: Analyses from the ISHLT DCD Lung Transplant Registry. Journal of Heart and Lung Transplantation. 38 (1), 26-34 (2019).
  20. Van Raemdonck, D., et al. Donation after circulatory death in lung transplantation- Five-year follow-up form ISHLT Registry. Journal of Heart and Lung Transplantation. 38 (12), 1235-1245 (2019).
  21. Palleschi, A., et al. Lung transplantation from donation after controlled cardiocirculatory death. Systematic review and meta-analysis. Transplantation Reviews. 34 (1), 100513(2020).
  22. Keshavamurthy, S., Rodgers-Fishl, P. Donation after circulatory death (DCD)-Lung procurement. Indian Journal of Thoracic and Cardiovascular Surgery. 37, 425-432 (2021).
  23. Oniscu, G. C., Siddique, A., Dark, J. Dual temperature multiorgan recovery from a Maastricht category III donor after circulatory death. American Journal of Transplantation. 14 (9), 2181-2186 (2014).
  24. Perera, M. T., Clutton-Brock, T., Muiesan, P. One donor, two types of preservation: First description of a donation after circulatory death donor with normothermic abdominal perfusion and simultaneous cold perfusion of lungs. Liver Transplantation. 20 (8), 1012-1015 (2014).
  25. Miñambres, E., et al. Improving the outcomes of organs obtained from controlled donation after circulatory death donors using abdominal normothermic regional perfusion. American Journal of Transplantation. 17 (8), 2165-2172 (2017).
  26. Miñambres, E., et al. Combined lung and liver procurement in controlled donation after circulatory death using normothermic abdominal perfusion. Initial experience in two Spanish centers. American Journal of Transplantation. 20 (1), 231-240 (2020).
  27. He, B., Han, X., Fink, M. A. Procurement of Abdominal Organs in Multi-Organ Donation in Deceased Donor. Organ Donation and Transplantation - Current Status and Future Challenges. Tsoulfas, G. , IntechOpen. London, UK. (2018).
  28. Baranski, A. Surgical Technique of the Abdominal Organ Procurement. , Springer London. London, UK. (2009).
  29. Tanaka, S., et al. Effect on the donor lungs of using abdominal normothermic regional perfusion in controlled donation after circulatory death. European Journal of Cardiothoracic Surgery. 59 (2), 359-366 (2021).
  30. Wind, J., Faut, M., Van Smaalen, T. C., Van Heurn, E. L. Variability in protocols on donation after circulatory death in Europe. Critical Care. 17 (5), 217(2013).
  31. Perez-Villares, J. M., Rubio, J. J., Del Río, F., Miñambres, E. Validation of a new proposal to avoid donor resuscitation in controlled donation after circulatory death with normothermic regional perfusion. Resuscitation. 117, 46-49 (2017).
  32. Ausania, F., White, S. A., Pocock, P., Manas, M. Kidney damage during organ recovery in donation after circulatory death donors: Data from UK National Transplant Database. American Journal of Transplantation. 12 (4), 932-936 (2012).
  33. Ausania, F., White, S. A., Coctes, R., Hulme, W., Manas, D. M. Liver damage during organ donor procurement in donation after circulatory death compared with donation after brain death. British Journal of Surgery. 100 (3), 381-386 (2013).
  34. Palleschi, A., et al. Successful preservation and transplant of warm ischaemic lungs from controlled donors after circulatory death by prolonged in situ ventilation during normothermic regional perfusion of abdominal organs. Interactive Cardiovascular and Thoracic Surgery. 29 (5), 699-705 (2019).
  35. Caralt, M., et al. 34;Non-touch" vena cava technique as an improvement in combined lung and liver procurement in controlled donation after circulatory death. Transplantation Proceedings. 51 (1), 9-11 (2019).
  36. Miñambres, E., Rubio, J. J., Coll, E., Dominguez-Gil, B. Donation after circulatory death and its expansion in Spain. Current Opinion in Organ Transplantation. 23 (1), 120-129 (2021).
  37. Perez-Villares, J. M., et al. Mobile ECMO team for controlled donation after circulatory death. American Journal of Transplantation. 18 (5), 1293-1294 (2018).
  38. Rubio Muñoz, J. J., Domínguez-Gil, G., Miñambres García, E., del Rio Gallegos, F., Pérez-Villares, J. M. Papel de la perfusión normo térmica con oxigenación de membrana extracorpórea en la donación en asistolia controlada en España. Role of normothermic perfusion with ECMO in donation after controlled cardiac death in Spain. Medicina Intensiva. 46 (1), 31-41 (2021).
  39. Miñambres, E., et al. Spanish experience with heart transplants from controlled donation after the circulatory determination of death using thoraco-abdominal normothermic regional perfusion and cold storage. American Journal of Transplantation. 21 (4), 1597-1602 (2021).
  40. Messer, S., et al. Human heart transplantation from donation after circulatory-determined death donors using normothermic regional perfusion and cold storage. Journal of Heart and Lung Transplantation. 37 (7), 865-869 (2018).
  41. Suberviola, B., et al. Excellent long-term outcome with lungs obtained from uncontrolled donation after circulatory death. American Journal of Transplantation. 19 (4), 1195-1201 (2019).
  42. Actividad de donación y trasplante pulmonar España Organización Nacional de Trasplantes. , Spain. Available from: htpp://www.ont.es/infesp/Memorias/ACTIVIDAD%20DE%20DONACI%C3%93N%20Y%20TRANSPLANTE%20PULMONAR%20ESPA%C3%91A.pdf (2020).

Доступ ограничен. Войдите в систему или начните пробный период, чтобы просмотреть этот контент.

Перепечатки и разрешения

Теги

Забор легкихабдоминальная нормотермическая перфузияэкстракорпоральная мембранная оксигенацияокклюзионный баллон аортысохранение легкихканюляция легочной артерииишемическое повреждение трансплантата