Методическая статья

Эффективная трансфекция транскрибированной мРНК in vitro в культивируемых клетках с использованием наночастиц пептид-полоксамин

DOI:

10.3791/64288

⸱

17 августа 2022 г.

 ,  ,  ,  ,  ,  ,  ,  ,  ,  , 
1National Engineering Research Center of Immunological Products, Department of Microbiology and Biochemical Pharmacy, Third Military Medical University, 2Department of Pediatrics, Ludwig-Maximilians University of Munich, 3Department of Pharmacy, Southwest Hospital, Third Military Medical University

* These authors contributed equally

В этой статье

Краткое содержание

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Самособранная пептидно-полоксаминовая наночастица (PP-sNp) разработана с использованием микрофлюидного смесительного устройства для инкапсулирования и доставки in vitro транскрибированной матричной РНК. Описанная мРНК/PP-sNp может эффективно трансфектировать культивируемые клетки in vitro.

Аннотация

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Транскрибированные вакцины in vitro с матричной РНК (мРНК) продемонстрировали огромный потенциал в борьбе с пандемией коронавирусной болезни 2019 года (COVID-19). Эффективные и безопасные системы доставки должны быть включены в мРНК-вакцины из-за хрупких свойств мРНК. Самособранная система доставки генов пептидно-полоксаминовых наночастиц (PP-sNp) специально разработана для легочной доставки нуклеиновых кислот и демонстрирует многообещающие возможности в опосредовании успешной трансфекции мРНК. Здесь описан улучшенный метод получения PP-sNp, чтобы подробно рассказать о том, как PP-sNp инкапсулирует мРНК Metridia luciferase (MetLuc) и успешно трансфектирует культивируемые клетки. MetLuc-mRNA получают процессом транскрипции in vitro из линейного шаблона ДНК. PP-sNp получают путем смешивания синтетического пептида/ полокамина с раствором мРНК с использованием микрофлюидного миксера, что позволяет самостоятельно собирать PP-sNp. Заряд PP-sNp впоследствии оценивается путем измерения дзета-потенциала. Между тем, полидисперсность и гидродинамический размер наночастиц PP-sNp измеряют с помощью динамического рассеяния света. Наночастицы мРНК/PP-sNp трансфектируются в культивируемые клетки, а супернатанты из клеточной культуры анализируются на активность люциферазы. Репрезентативные результаты демонстрируют их способность к трансфекции in vitro. Этот протокол может пролить свет на разработку систем доставки мРНК-вакцин следующего поколения.

Введение

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Вакцинация была объявлена одним из наиболее эффективных медицинских вмешательств для снижения заболеваемости и смертности, вызванных инфекционнымизаболеваниями1. Важность вакцин была продемонстрирована со времен вспышки коронавирусной болезни 2019 года (COVID-19). В отличие от традиционной концепции инъекции инактивированных или ослабленных живыми патогенов, современные подходы к вакцинам, такие как вакцины на основе нуклеиновых кислот, концентрируются на сохранении иммуностимулирующих свойств патогенов-мишеней, избегая при этом потенциальных проблем безопасности, связанных с обычным цельным микробным вирусом или в вакцинах на основе бактерий. Вакцины на основе ДНК и РНК (т.е. транскрибированной матричной РНК in vitro, мРНК IVT) демонстрируют профилактический терапевтический потенциал против различных заболеваний, включая инфекционные заболевания и рак 2,3. В принципе, потенциал вакцин на основе нуклеиновых кислот связан с их производством, эффективностью и безопасностью4. Эти вакцины могут быть изготовлены бесклеточным способом, чтобы обеспечить экономически эффективное, масштабируемое и быстрое производство.

Одна вакцина на основе нуклеиновых кислот может кодировать несколько антигенов, что позволяет нацеливаться на многочисленные вирусные варианты или бактерии с уменьшенным количеством прививок и усиливать иммунный ответ против устойчивых патогенов 5,6. Кроме того, вакцины на основе нуклеиновых кислот могут имитировать естественный процесс инвазии вирусной или бактериальной инфекции, вызывая иммунные реакции, опосредованные как В-клетками, так и Т-клетками. В отличие от некоторых вакцин на основе вирусов или ДНК, вакцины на основе мРНК IVT предлагают огромное преимущество с точки зрения безопасности. Они могут быстро экспрессировать желаемый антиген в цитозоле и не интегрированы в геном хозяина, устраняя опасения по поводу вставочного мутагенеза7. IVT-мРНК автоматически разлагается после успешной трансляции, поэтому кинетику экспрессии белка можно легко контролировать 8,9. Катализируемые пандемией коронавируса тяжелого острого респираторного синдрома 2 (SARS-CoV-2), усилия компаний / учреждений по всему миру позволили выпустить на рынок многие типы вакцин. Технология вакцин на основе мРНК IVT демонстрирует большой потенциал и впервые продемонстрировала свой ранее ожидаемый успех благодаря своей быстрой конструкции и гибкой способности адаптироваться к любым целевым антигенам в течение нескольких месяцев. Успех мРНК-вакцин IVT против COVID-19 в клиническом применении не только открыл новую эру исследований и разработок мРНК-вакцины IVT, но и накопил ценный опыт для быстрой разработки эффективных вакцин для борьбы со вспышками инфекционных заболеваний10,11.

Несмотря на многообещающий потенциал мРНК-вакцин IVT, эффективная внутриклеточная доставка мРНК IVT к месту действия (т.е. цитоплазме) продолжает представлять собой серьезное препятствие12, особенно для тех, которые вводятся через дыхательные пути4. МРНК IVT по своей природе является нестабильной молекулой с чрезвычайно коротким периодом полураспада (~ 7 ч)13, что делает мРНК IVT очень склонной к деградации вездесущейРНКазой 14. Лимфоциты врожденной иммунной системы имеют тенденцию поглощать признанную мРНК IVT в случаях применения in vivo . Кроме того, высокая отрицательная плотность заряда и большая молекулярная масса (1x 10 4-1 x 106 Da) мРНК IVT ухудшают ее эффективное проникновение через анионный липидный бислой клеточных мембран15. Поэтому система доставки с определенными биофункциональными материалами необходима для ингибирования деградации молекул мРНК IVT и облегчения клеточного поглощения16.

За исключением нескольких исключительных случаев, когда голая мРНК IVT непосредственно использовалась для исследований in vivo, различные системы доставки используются для переноса мРНК IVT к терапевтическому участку действия17,18. Предыдущие исследования показали, что только несколько мРНК IVT обнаруживаются в цитозоле без помощи системы доставки19. Были разработаны многочисленные стратегии для улучшения доставки РНК с непрерывными усилиями в этой области, начиная от конденсации протамина до инкапсуляции липидов20. Липидные наночастицы (LNP) являются наиболее клинически продвинутыми среди средств доставки мРНК, о чем свидетельствует тот факт, что все одобренные вакцины мРНК COVID-19 для клинического использования используют системы доставки на основе LNP21. Однако LNP не могут опосредовать эффективную трансфекцию мРНК, когда препараты доставляются дыхательным путем22, что удивительно ограничивает применение этих составов в индуцировании иммунных реакций слизистой оболочки или решении заболеваний, связанных с легочной, таких как муковисцидоз или дефицит α1-антитрипсина. Поэтому для решения этой неудовлетворенной потребности требуется разработка новой системы доставки для облегчения эффективной доставки и трансфекции мРНК IVT в клетках, связанных с дыхательными путями.

Подтверждено, что система доставки пептид-полоксаминовых самособранных наночастиц (PP-sNp) может опосредуть эффективную трансфекцию нуклеиновых кислот в дыхательных путях мышей23. PP-sNp использует многофункциональный модульный подход к проектированию, который может интегрировать различные функциональные модули в наночастицы для быстрого скрининга и оптимизации23. Синтетические пептиды и электрически нейтральные амфифильные блок-сополимеры (полоксамин) в PP-sNp могут спонтанно взаимодействовать с мРНК IVT с образованием равномерно распределенных наночастиц с компактной структурой и гладкой поверхностью23. PP-sNp может улучшить эффект трансфекции генов молекул мРНК IVT в культивируемых клетках и дыхательных путях мышей23. В настоящем исследовании описан протокол генерации PP-sNp, содержащий мРНК IVT, который кодирует metridia luciferase (MetLuc-mRNA) (рисунок 1). В этом протоколе используется контролируемое и быстрое смешивание с помощью микрофлюидного смесительного устройства, которое использует конструкцию смешивания елочки в шахматном порядке. Процедура проста в выполнении и позволяет генерировать PP-sNp с более однородными размерами. Общей целью производства PP-sNp с использованием микрофлюидного миксера является создание PP-sNp для комплексообразования мРНК хорошо контролируемым образом, что позволяет эффективно и воспроизводимо трансфекцию клеток in vitro. Настоящий протокол описывает получение, сборку и характеристику PP-sNp, содержащего MetLuc-мРНК.

Доступ ограничен. Войдите в систему или начните пробный период, чтобы просмотреть этот контент.

Протокол

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

1. Транскрипция in vitro химически модифицированной мРНК

ПРИМЕЧАНИЕ: Необходимо использовать безнуклеазные трубки, реагенты, стеклянную посуду, наконечники пипеток и т. Д., Потому что РНКазы повсеместно распространены в окружающей среде, такой как лабораторные растворы, поверхности инструментов, волосы, кожа, пыль и т. Д. Тщательно очистите поверхности скамейки и пипетки перед использованием и наденьте перчатки, чтобы избежать загрязнения RNase.

  1. Выполните линеаризацию шаблона ДНК.
    1. Синтезируют открытую рамку считывания (ORF) люциферазы Metridia (MetLuc), окруженную промотором полимеразы T7, 5' нетранслированной областью (UTR), 3'UTR и поли (A) хвостами и клонируют его в вектор PUC57, который экспрессируется в бактериях (см. Таблицу материалов).
      ПРИМЕЧАНИЕ: Кодирующая последовательность шаблона ДНК приведена в дополнительном файле 1.
    2. Культивируйте бактерии, лизируйте бактерии и очищайте плазмидную ДНК соответствующей колонкой (см. набор для экстракции плазмидной ДНК в Таблице материалов).
    3. Выполняют одну реакцию 50 мкл, которая содержит 2 мкл BamHI, 2 мкл KpnI (см. Таблицу материалов) и 2 мкг плазмидной ДНК при 37 °C в течение 1 ч, и достигают линеаризации шаблона ДНК.
  2. Выполняйте транскрипцию in vitro для генерации неограниченной мРНК IVT.
    1. Выполняют синтез мРНК одной реакцией 20 мкл с использованием набора транскрипции Т7 и псевдоуридина (см. Таблицу материалов): 10 мкл (0,8-1 мкг) линеаризированного шаблона ДНК, 1,5 мкл (150 мМ) АТФ, псевдо-UTP, ГТФ и CTP, 2 мкл 10-кратного транскрипционного буфера, 1 мкл фермента Т7 и 1 мкл воды без нуклеазы (NF-воды). Тщательно перемешайте вышеупомянутые компоненты и инкубируйте при 37 °C в течение 3 ч.
  3. Удалите шаблон ДНК.
    1. Добавьте 1 мкл (1 ЕД) ДНКазы (без РНКазы) после процесса транскрипции и инкубируйте при 37 °C в течение 15 мин.
  4. Выполняют очистку мРНК без колпачка-IVT с использованием осаждения хлорида лития.
    1. Очищают мРНК без колпачка-IVT с помощью хлорида лития (см. Таблицу материалов) с рабочей концентрацией 10 мМ. Добавьте 50 мкл 10 мМ хлорида лития к 20 мкл раствора мРНК без колпачка IVT.
    2. Тщательно перемешайте весь объем и охладите при температуре −20 °C в течение 1 ч. Собирают мРНК без колпачка IVT в течение 12 мин при 12 000 х г, которая обычно производит 80-120 мкг мРНК без колпачка IVT из каждой отдельной реакции 20 мкл.
  5. Выполняют укупорку мРНК IVT.
    1. Выполните укупорку мРНК IVT с использованием системы укупорки колпачка 1 (см. Таблицу материалов). Вкратце удаляют вторичную структуру 50 мкг мРНК без колпачка IVT путем нагревания при 65 °C в течение 10 мин, затем связывают 5'-конец мРНК uncapped-IVT с колпачком 1, который получают путем модификации структуры колпачка m7G с использованием 2,5 мкл s-аденозилметионина (SAM) (20 мМ) и 4 мкл 2'-O-метилтрансферазы (100 ЕД) в реакции 100 мкл при 37 °C в течение 30-60 мин.
    2. Очистить 100 мкл закрытой мРНК IVT с использованием 250 мкл 10 мМ хлорида лития и разбавить в 50 мкл NF-воды.
  6. Определение чистоты и молекулярного размера мРНК с крышкой IVT.
    1. Измерьте концентрацию мРНК с крышкой IVT с помощью УФ-видимого спектрофотометра. Используя маркер РНК (см. Таблицу материалов), проанализируйте молекулярный размер мРНК capped-IVT в 1% формальдегидно-денатурирующем агарозном геле, содержащем 18% формальдегида (напряжение 120 В). Убедитесь, что мРНК без колпачка IVT и мРНК с крышкой IVT хранятся при температуре −80 °C.
      ПРИМЕЧАНИЕ: Считалось, что мРНК IVT имеет хорошую чистоту в соотношении A260/A280 1,8-2,1 и соотношении A260/A230 2,0 или немного выше.

2. Генерация мРНК IVT/PP-sNp

  1. Готовят исходный раствор полоксомина 704 (Т704) путем солюбилизации Т704 (см. Таблицу материалов) в NF-воде для получения исходного раствора 10 мг/мл. Хранить приготовленный раствор при температуре 4 °C.
    ПРИМЕЧАНИЕ: T704 содержит X-образную структуру, изготовленную из центральной группы этилендиамина, связанной с четырьмя цепями блоков поли(оксида пропилена) (PPO) и блоков поли(этиленоксида) (PEO)24. Молекулярная масса (Mw) T704 составляет 5500.
  2. Приготовьте раствор синтетического пептида (sPep, см. Таблицу материалов) путем солюбилизации sPep (последовательность: KETWWETWWTEWWTEWKKKKRRRRRKKKKGACSE
    RSMNFCG) в NF-воде для получения запасного раствора 2 мг/мл и хранения при 4 °C.
  3. Готовят раствор мРНК IVT путем размораживания мРНК IVT (этап 1) на льду и центрифугирования в течение 3 с при 300 х г при комнатной температуре перед открытием трубки. Раствор мРНК IVT разбавляют до 0,04 мкг/мкл NF-водой.
    ПРИМЕЧАНИЕ: Рекомендуется работать в шкафу биобезопасности, когда это возможно, с мРНК IVT.
  4. Готовят смесь раствора T704 и sPep путем разбавления раствора sPep до 0,555 мкг/мкл и раствора T704 до 8 мкг/мкл с NF-водой. Инкубировать смешанный раствор в течение 15 мин при комнатной температуре перед дальнейшим применением.
    ПРИМЕЧАНИЕ: Рассчитайте требуемый компонент sPep на основе желаемого соотношения N/P. Отношение N/P представляет собой общее число остатков азота (N) в пределах sPep к общему числу отрицательно заряженных фосфатных групп (P) в мРНК IVT. Рассчитайте требуемый T704 на основе соотношения масса/вес (w/w) между T704 и мРНК IVT. Необходимо, чтобы отношение N/P составляло 5, а отношение w/w составляло 100.
  5. Подготовьте препарат IVT mRNA/PP-sNp, следуя приведенным ниже шагам.
    1. Втяните раствор мРНК IVT (шаг 3) в шприц объемом 1 мл, обеспечив отсутствие воздушных зазоров или пузырьков в наконечнике шприца. Загрузите шприц в одну сторону картриджа рядом с вращающимся блоком.
    2. Заполните шприц объемом 1 мл раствором смеси T704 и sPep (шаг 4). Удалите все пузырьки или воздушные зазоры на кончике шприца и поместите шприц в другое входное отверстие насоса (см. Таблицу материалов).
    3. Установите насос с коэффициентом расхода 1:1 и общим расходом 4-10 мл/мин.
      ПРИМЕЧАНИЕ: Общий расход 6 мл/мин является оптимальным в исследованиях, представленных здесь.
    4. Поместите коническую трубку без РНКазы объемом 10 мл (см. Таблицу материалов) для сбора смешанного раствора IVT-мРНК/PP-sNp в конце пути потока смесительного устройства.
    5. Запустите насос, чтобы начать смешивание, убедившись, что параметры введены правильно. После того, как насос закончит работу в течение 6 с, соберите образец IVT-mRNA/PP-sNp из конической трубки.
      ПРИМЕЧАНИЕ: PP-sNp генерировали с помощью микрофлюидного смесителя (дополнительный рисунок 1). Устройство содержит насос постоянного потока, устройство связи, чип и неподвижное устройство. В процессе смешивания насос с постоянным потоком, подключенный к стружке, подает жидкость в стружку в соответствии с заданной скоростью потока. Подключенный насос постоянного потока может быть подключен к нескольким входным каналам микросхемы с одним выходным каналом. Компоненты устройства, включая чип, были получены из коммерческих источников и рационально собраны (см. Таблицу материалов). Параметры, такие как расход и объем раствора мРНК IVT и смешанного раствора T704-sPep, могут отличаться от параметров, отображаемых в текущем протоколе, если используется какая-то другая установка, и должны быть соответствующим образом оптимизированы.

3. Измерение гидродинамического диаметра и полидисперсности ИВТ-мРНК/ПП-sNp

  1. Разбавляют аликвоту раствора IVT мРНК/PP-sNp (стадия 2) NF-водой для получения конечного объема 1 мл.
  2. Измерьте гидродинамический размер и индекс полидисперсности (PDI) с помощью полумикрокуэты25. Добавьте раствор IVT mRNA/PP-sNp в кювету и поместите его в измеритель размера частиц (см. Таблицу материалов). Настройте стандартную операционную процедуру и нажмите кнопку Пуск , чтобы начать сбор данных.

4. Подготовка клеток к трансфекции

  1. Пластинчатые эпителиальные клетки бронхов человека (16HBE) и дендритная клеточная линия (DC2.4) в 96-луночных пластинах при плотности 3,5 х 104 клеток/лунка за 24 ч до трансфекции. Выращивайте клетки в культуральной среде, дополненной 10% инактивированной теплом фетальной бычьей сывороткой и 1% пенициллином/стрептомицином.
    ПРИМЕЧАНИЕ: Ячейки были получены из коммерческого источника (см. Таблицу материалов).
  2. Инкубируйте клетки в инкубаторе (37 °C и 5% CO2 атмосферы) в течение 24 ч, чтобы убедиться, что клетки на 60%-80% состоят из сливок перед трансфекцией.

5. Трансфекция культивируемых клеток

  1. После удаления питательной среды промыть покрытые клетки 0,2 мл/1x PBS.
  2. Добавьте 170 мкл безсывороточной питательной среды к каждой лунке, содержащей покрытые клеточные культуры.
  3. Добавьте препарат IVT mRNA/PP-sNp, содержащий 0,4 мкг мРНК MetLuc (полученный на стадии 2) по каплям с количеством 30 мкл/лунка.
  4. Инкубируют клетки с препаратом IVT mRNA/PP-sNp при 37 °C в увлажненной 5% обогащеннойCO2 атмосфере в течение 4 ч.
  5. Заменить трансфекционную среду 0,2 мл свежей питательной среды, дополненной 10% термоинактивированной фетальной бычьей сывороткой и 1% (v/v) пенициллином/стрептомицином.
    ПРИМЕЧАНИЕ: Фетальную бычью сыворотку нагревали при 56 °C в течение 30 мин для инактивации.
  6. Инкубируют трансфектированные клетки при 37 °C и в 5% обогащеннойCO2 атмосфере в течение 24 ч и собирают супернатанты для обнаружения из каждой скважины.

6. Анализ эффективности трансфекции клеток с использованием анализа Metridia luciferase (MetLuc)

  1. Проанализ супернатанта из каждой скважины на активность MetLuc с использованием субстрата целентеразина (см. Таблицу материалов), следуя приведенным ниже шагам.
    1. Готовят свежий пробирный раствор, добавляя 1x PBS к субстрату коэлентеразина (концентрация коэлентеразина составляет 15 мМ).
    2. Вихрь раствора целентеразина в течение 10 с для тщательного перемешивания.
    3. Добавьте 50 мкл надосадочного вещества (собранного на этапе 5) в 96-луночную пластину.
    4. Настройте считыватель микропластин (см. Таблицу материалов) со временем считывания 1000 мс перед добавлением 30 мкл раствора коэлентеразина (15 мМ) в каждую скважину вручную или путем автоматической закачки.
    5. Нажмите кнопку Начать , чтобы измерить сигнал люминесценции сразу после добавления раствора коэлентеразина к супернатанту.
      ПРИМЕЧАНИЕ: Сигнал люминесценции измеряется с помощью считывателя микропластин, а его активность выражается в относительных световых единицах. Значения, полученные из PBS-трансфектированных скважин, будут использоваться в качестве пустых элементов управления.

Доступ ограничен. Войдите в систему или начните пробный период, чтобы просмотреть этот контент.

Результаты

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Рекомбинантную плазмиду переваривали с образованием линеаризованного шаблона ДНК (рисунок 2А). Используя описанный протокол, набор транскрипции T7 in vitro может производить до 80-120 мкг неограниченной MetLuc-мРНК на реакцию 20 мкл и 50-60 мкг закрытой MetLuc-мРНК на реакцию 100 мкл. При анализе с помощью электрофореза интактная MetLuc-мРНК с высоким качеством должна показывать единую и четкую полосу, как показано на рисунке 2B. Загрязняющие вещества, ...

Доступ ограничен. Войдите в систему или начните пробный период, чтобы просмотреть этот контент.

Обсуждение

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Протокол, описанный здесь, не только позволяет экономически эффективно и быстро производить составы вакцины мРНК IVT с определенными свойствами, но также предлагает возможность настройки состава PP-sNp в соответствии с конкретными терапевтическими целями, такими как генная терапия. Чтобы обеспечить успешную генерацию IVT mRNA/PP-sNp, предлагается уделить дополнительное внимание некоторым критическим шагам. При работе с мРНК всегда помните, что условия, свободные от РНКазы, должны поддерживаться на протяжении всего процес...

Доступ ограничен. Войдите в систему или начните пробный период, чтобы просмотреть этот контент.

Раскрытие информации

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Авторам нечего раскрывать.

Благодарности

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Эта работа была поддержана Национальным фондом естественных наук Китая (NSFC, грант No 82041045 и 82173764), крупным проектом «Исследование системы технологий патогенеза и профилактики эпидемий» (2021YFC2302500) Министерства науки и технологий Китая, проектом «Чунцинские таланты: исключительные молодые таланты» (CQYC202005027) и Фондом естественных наук Чунцина (cstc2021jcyj-msxmX0136). Авторы благодарны доктору Сяоянь Дину за измерение гидродинамического диаметра (нм) и индекса полидисперсности (PDI).

Доступ ограничен. Войдите в систему или начните пробный период, чтобы просмотреть этот контент.

Материалы

Список материалов, использованных в этой статье
ИмяКомпанияКаталожный номерКомментарии
BamHITakara1010
cap 1 capping systemJinanM082
Дендритная клеточная линияSigmaSCC142
Последовательность ДНКGenescript
Эпителиальные клетки бронхов человекаSigmaSCC150
KpnITakara1068
LPBeyotimeC0533
Хлорид литияAPEXBioB6083
Malvern Zetasizer Nano ZS90MalvernNB007605
Микрофлюидный чипZHONGXINQIHENGСтандартный чип
Микропланшетные считывателиThermoFisherVarioskan lux
NanoDrop OneThermoFisherND-ONE-W (A30221)
Безнуклеазовая водаThermoFisherAM9932
OptiMEMGibco31985070
пенициллин-стрептомицинGibco15140122
псевдоуридинAPE× BioB7972
QIAprep Spin Miniprep KitQiagen27106
Quanti-LucInvivoGenRep-qlc2
RiboRuler High Range РНК-лестницаThermoFisherSM1821
РНКаза без РНКазы коническая трубкаBiosharpBS-100-M
RPMI Medium 1640ThermoFisherC11875500BT
Шприцевая помпаChemyxFusion 101
T7 Transcription KitJinanE131
PDMS

Ссылки

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,
  1. Fehervari, Z., Minton, K., Duarte, J. H. Nature milestones in vaccines. Springer Nature. , Available from: https://www.nature.com/collections/hcajdiajij (2020).
  2. Barbier, A. J., Jiang, A. Y., Zhang, P., Wooster, R., Anderson, D. G. The clinical progress of mRNA vaccines and immunotherapies. Nature Biotechnology. 40 (6), 840-854 (2022).
  3. Mulligan, M. J., et al. Phase I/II study of COVID-19 RNA vaccine BNT162b1 in adults. Nature. 586 (7830), 589-593 (2020).
  4. Tang, J., et al. Nanotechnologies in delivery of DNA and mRNA vaccines to the nasal and pulmonary mucosa. Nanomaterials. 12 (2), 226(2022).
  5. Freyn, A. W., et al. A multi-targeting, nucleoside-modified mRNA influenza virus vaccine provides broad protection in mice. Molecular Therapy. 28 (7), 1569-1584 (2020).
  6. Wu, K., et al. Variant SARS-CoV-2 mRNA vaccines confer broad neutralization as primary or booster series in mice. Vaccine. 39 (51), 7394-7400 (2021).
  7. Chaudhary, N., Weissman, D., Whitehead, K. A. mRNA vaccines for infectious diseases: Principles, delivery and clinical translation. Nature Reviews Drug Discovery. 20, 817-838 (2021).
  8. Kormann, M. S. D., et al. Expression of therapeutic proteins after delivery of chemically modified mRNA in mice. Nature Biotechnology. 29 (2), 154-157 (2011).
  9. Tavernier, G., et al. mRNA as gene therapeutic: How to control protein expression. Journal of Controlled Release. 150 (3), 238-247 (2011).
  10. Walsh, E. E., et al. Safety and immunogenicity of two RNA-based Covid-19 vaccine candidates. The New England Journal of Medicine. 383 (25), 2439-2450 (2020).
  11. Baden, L. R., et al. Efficacy and safety of the mRNA-1273 SARS-CoV-2 vaccine. The New England Journal of Medicine. 384 (5), 403-416 (2021).
  12. Guan, S., Rosenecker, J. Nanotechnologies in delivery of mRNA therapeutics using nonviral vector-based delivery systems. Gene Therapy. 24 (3), 133-143 (2017).
  13. Sharova, L. V., et al. Database for mRNA half-life of 19 977 genes obtained by DNA microarray analysis of pluripotent and differentiating mouse embryonic stem cells. DNA Research. 16 (1), 45-58 (2009).
  14. Houseley, J., Tollervey, D. The many pathways of RNA degradation. Cell. 136 (4), 763-776 (2009).
  15. Kowalski, P. S., Rudra, A., Miao, L., Anderson, D. G. Delivering the messenger: Advances in technologies for therapeutic mRNA delivery. Molecular Therapy. 27 (4), 710-728 (2019).
  16. Sahin, U., Karikó, K., Türeci, Ö MRNA-based therapeutics-developing a new class of drugs. Nature Reviews Drug Discovery. 13, 359-380 (2014).
  17. Hajj, K. A., Whitehead, K. A. Tools for translation: Non-viral materials for therapeutic mRNA delivery. Nature Reviews Materials. 2, 17056(2017).
  18. Deering, R. P., Kommareddy, S., Ulmer, J. B., Brito, L. A., Geall, A. J. Nucleic acid vaccines: Prospects for non-viral delivery of mRNA vaccines. Expert Opinion on Drug Delivery. 11 (6), 885-899 (2014).
  19. Wadhwa, A., Aljabbari, A., Lokras, A., Foged, C., Thakur, A. Opportunities and challenges in the delivery of mRNA-based vaccines. Pharmaceutics. 12 (2), 102(2020).
  20. Hou, X., Zaks, T., Langer, R., Dong, Y. Lipid nanoparticles for mRNA delivery. Nature Reviews Materials. 6 (12), 1078-1094 (2021).
  21. Sahin, U., et al. COVID-19 vaccine BNT162b1 elicits human antibody and T(H)1 T cell responses. Nature. 586 (7830), 594-599 (2020).
  22. Azzi, L., et al. Mucosal immune response in BNT162b2 COVID-19 vaccine recipients. EBioMedicine. 75, 103788(2022).
  23. Guan, S., et al. Self-assembled peptide-poloxamine nanoparticles enable in vitro and in vivo genome restoration for cystic fibrosis. Nature Nanotechnology. 14 (3), 287-297 (2019).
  24. Pitard, B., et al. Negatively charged self-assembling DNA/poloxamine nanospheres for in vivo gene transfer. Nucleic Acids Research. 32 (20), 159(2004).
  25. Hiroi, T., Shibayama, M. Measurement of particle size distribution in turbid solutions by dynamic light scattering microscopy. Journal of Visualized Experiments. (119), e54885(2017).
  26. Hassett, K. J., et al. Impact of lipid nanoparticle size on mRNA vaccine immunogenicity. Journal of Controlled Release. 335, 237-246 (2021).
  27. Suk, J. S., et al. The penetration of fresh undiluted sputum expectorated by cystic fibrosis patients by non-adhesive polymer nanoparticles. Biomaterials. 30 (13), 2591-2597 (2009).
  28. Kim, N., Duncan, G. A., Hanes, J., Suk, J. S. Barriers to inhaled gene therapy of obstructive lung diseases: A review. Journal of Controlled Release. 240, 465-488 (2016).
  29. Liu, Z., Fontana, F., Python, A., Hirvonen, J. T., Santos, H. A. Microfluidics for production of particles: Mechanism, methodology, and applications. Small. 16 (9), 1904673(2020).
  30. Guan, S., Darmstädter, M., Xu, C., Rosenecker, J. In vitro investigations on optimizing and nebulization of IVT-mRNA formulations for potential pulmonary-based alpha-1-antitrypsin deficiency treatment. Pharmaceutics. 13 (8), 1281(2021).
  31. Shepherd, S. J., Issadore, D., Mitchell, M. J. Microfluidic formulation of nanoparticles for biomedical applications. Biomaterials. 274, 120826(2021).
  32. Han, J., et al. A simple confined impingement jets mixer for flash nanoprecipitation. Journal of Pharmaceutical Sciences. 101 (10), 4018-4023 (2012).

Доступ ограничен. Войдите в систему или начните пробный период, чтобы просмотреть этот контент.

Перепечатки и разрешения

Запросить разрешение на повторное использование текста или иллюстраций этой статьи JoVE

Запросить разрешение

Теги

in vitroMetridia

Похожие статьи