Наиболее важные шаги в протоколе касаются обеспечения того, чтобы стентор оставался в оптимальных условиях для возникновения схваток. Реакция на сокращение в анализе привыкания требует, чтобы стенторы были закреплены на поверхности с помощью их липкого удержания, поскольку они редко сжимаются, когда они свободно плавают. Однако нижняя поверхность 35-миллиметровой пластины Петри, используемой для экспериментов по привыканию, обычно не способствует анкеровке, если она не покрыта полиорнитином. Кроме того, стентор не может подвергаться какому-либо механическому возмущению в течение как минимум 2 ч до начала эксперимента по привыканию, потому что временная шкала забывания стентора составляет 2-6 ч3. Если Стентор получает механическую стимуляцию в течение 2 ч после начала эксперимента по привыканию, существует вероятность того, что эта предварительная стимуляция вызовет небольшой уровень привыкания до начала эксперимента, тем самым уменьшая вероятность сокращения после того, как устройство привыкания выдаст первый механический импульс. Наконец, на этапе анализа важно подсчитывать только количество стенторов , которые сокращаются после импульса, а не любые случайные спонтанные сокращения, которые происходят до доставки импульса, чтобы получить точное считывание доли клеток, которые сократились в ответ на механическую стимуляцию.
Протокол может быть легко модифицирован для изучения различных типов динамики привыкания путем изменения силы и частоты механических импульсов, подаваемых устройством привыкания. Это также дает возможность исследовать другие типы обучения, такие как сенсибилизация, которые могут происходить в Стенторе. Сам программный код платы микроконтроллера также может быть отрегулирован для подачи различных шаблонов механических нажатий на Stentor.
Одной из потенциальных проблем для устранения неполадок с помощью этого протокола является низкая частота закрепления стентора , которая может ограничить количество стенторов , которые можно наблюдать в эксперименте по привыканию. Частота анкеровки иногда снижается в культурах Стентора , которые недавно не были скормлены или загрязнены. Чтобы решить эту проблему, следует промыть свежую партию стентора , чтобы начать новую культуру и регулярно кормить их в соответствии с протоколом, описанным в Lin et al.10.
Этот протокол ограничен тем, что только одна пластина Stentor может быть проверена за один раз, что приводит к относительно низкой пропускной способности измерений. Кроме того, существующее программное обеспечение не позволяет автоматизировать анализ одноклеточных изображений. Таким образом, большинство полученных данных относятся к численности населения. Будущие модели устройства привыкания и инструментов анализа изображений могут способствовать высокопроизводительным экспериментам с одной ячейкой.
Привыкание в Стенторе было ранее изучено с использованием методов, описанных в Wood3, но этот новый протокол позволяет автоматизировать эксперименты. Автоматизация не только позволяет исследователю воспроизводимо доставлять механические импульсы заданной силы и частоты, но и облегчает долгосрочные эксперименты по привыканию, поскольку устройство можно оставить без присмотра в течение нескольких дней. Кроме того, использование шагового двигателя, а не соленоида, используемого в экспериментахВуда 3 , снижает риск размагничивания с течением времени, а также позволяет изменять силу стимула в течение одного эксперимента.
Изучение клеточной привыкания может выявить клинические идеи для таких состояний, как синдром дефицита внимания / гиперактивности (СДВГ) и синдром Туретта, при котором привыкание нарушено11. Механизмы привыкания стентора могут также открыть новые несинаптические парадигмы обучения, независимые от сложных клеточных схем. Наконец, понимание одноклеточного обучения может вдохновить методы перепрограммирования клеток в многоклеточных тканях - еще один потенциальный способ борьбы с болезнями.