Для просмотра этого контента требуется подписка на JoVE. Войдите или начните свой бесплатный пробный период.

Методическая статья

Изучение стратегии комбинации двух трав для лечения поврежденных клеток PC12

1.7K просмотров

⸱

DOI:

10.3791/64721

⸱

18 ноября 2022 г.

 ,  ,  ,  ,  , 
1School of Pharmacy, Chengdu Medical College

* These authors contributed equally

В этой статье

Краткое содержание

Этот протокол обеспечивает комбинированную стратегию двух трав для лечения поврежденных клеток PC12. Протокол предоставляет справочник для оптимизации наилучшего режима применения традиционной китайской медицины (ТКМ).

Аннотация

Учитывая преимущества комбинации традиционной китайской медицины (ТКМ) в лечении ишемии головного мозга, мы изучили различия в эффективности и механизме между комбинацией препарата и комбинацией компонентов, чтобы изучить стратегию комбинации двух трав для лечения поврежденных клеток PC12. Хлорид кобальта (CoCl2) в сочетании с безглюсодержащей средой использовали для индуцирования окислительного повреждения клеток PC12. Затем оптимальная комбинация инъекций Astragalus mongholicus (Ast) и Erigeron breviscapus (Eri) была выбрана и объединена в соответствии с методами унифицированного проектирования после скрининга их безопасной и эффективной концентрации на клетках PC12. Кроме того, проверенная комбинация компонентов содержит 10 мкМ астрагалозида А, 40 мкМ скутелларина и 75 мкМ хлорогеновой кислоты в двух травах. Затем MTT, Annexin V-FITC/PI, иммунофлуоресцентный и вестерн-блот-анализ использовались для оценки эффективности и механизма комбинации препарата и комбинации компонентов на поврежденных клетках PC12. Результаты показали, что оптимальной комбинацией препаратов для клеточной про-выживаемости была инъекция Ast и капсула Eri с концентрацией 6:1,8 (мкМ). Комбинация компонентов (10 мкМ астрагалозида А, 40 мкМ скутелларина и 75 мкМ хлорогеновой кислоты) была более эффективной, чем комбинация препарата. Обе комбинации заметно снижают апоптотическую скорость, интенсивность флуоресценции каспазы-3 и уровень внутриклеточных активных форм кислорода (АФК); между тем, они повысили уровни экспрессии p-Akt/Akt, Bcl-2/Bax и Nrf2. Эти эффекты были более очевидны в комбинации компонентов. В заключение, обе комбинации могут ингибировать повреждение, вызванное CoCl2 в сочетании с безглюсодержащей средой на клетках PC12, тем самым способствуя выживанию клеток. Однако эффективность комбинации компонентов по сравнению с комбинацией препарата может быть обусловлена его более сильной регуляцией сигнального пути PI3K/Akt/Nrf2, связанного с окислительным стрессом и апоптозом.

Введение

Хроническая церебральная ишемия, вызванная церебральной гипоперфузией, является распространенным заболеванием у людей среднего и пожилого возраста1. Как долгосрочная оккультная болезнь ишемии, она может привести к прогрессирующей или стойкой неврологической дисфункции. К основным патологическим механизмам относятся клеточный апоптоз и окислительное повреждение, приводящее к прогрессирующей или стойкой неврологической дисфункции; это патологическая основа болезни Альцгеймера, сосудистой деменции и других заболеваний, и серьезно влияет на качество жизни пациентов. Однако в современной медицине до сих пор не хватает идеальных препаратов для лечения хронической ишемииголовного мозга 2. В то же время комбинация Astragalus mongholicus (Ast) и Erigeron breviscapus (Eri) широко используется в клинической практике традиционной китайской медицины (TCM)4. Комбинированная стратегия значительно улучшилась в содействии восстановлению нервной функции после ишемии головного мозга, что лучше, чем у одного препарата; однако существуют большие различия в соотношении доз в комбинации двух препаратов4. Эффективные компоненты и механизм действия четко не определены, что является ключевым вопросом, ограничивающим его клиническое применение.

Предыдущие исследования продемонстрировали синергетический эффект комбинации препарата Ast injection и Eri injection при лечении ишемии головного мозга у крыс. Он может повышать экспрессию белка p-Akt и понижать экспрессию Bcl-2 ассоциированного промотора смерти (BAD) белка 5,6, который является одним из белков семейства B-лимфобластомы 2 (Bcl-2) и оказывает влияние на стимулирование апоптоза. Однако материальная основа и механизм его синергетического эффекта не ясны. Кроме того, модель повреждения клеток PC12 была установлена с комбинированной средой без глюкозы CoCl2, а оптимальная комбинация компонентов в Ast и Eri была проверена и определена7.

В этом исследовании эффективные дозы Ast и Eri проверяются с использованием поврежденной модели клеток PC12. Оптимальная комбинация двух препаратов проверяется с использованием этой модели в сочетании с методом однородного проектирования. Клеточная модель используется для дальнейшей оценки разницы в эффектах и механизмах комбинации препарата и комбинации компонентов в поврежденных клетках PC12. Эта стратегия направлена на изучение защитного эффекта и регуляторного механизма двух типов комбинаций на поврежденных клетках PC12 через сигнальный путь PI3K / Akt / Nrf2 для определения наилучшего комбинированного режима. Это исследование является справочным материалом для оптимизации наилучшего режима применения ТКМ.

Доступ ограничен. Войдите в систему или начните пробный период, чтобы просмотреть этот контент.

Протокол

1. Приготовление реагента

  1. Приготовьте полную среду, добавив 90 мл среды с высоким содержанием сахара DMEM, 10 мл фетальной бычьей сыворотки (FBS) и 1 мл раствора пенициллина-стрептомицина в 125 мл стерильной культуральной колбы. Перемешайте полную среду и храните при температуре 4 °C в закрытых условиях.
  2. Приготовьте раствор CoCl2 , добавив 0,02 г порошка CoCl2 (точно взвешенного) в 10 мл среды без сахара DMEM (полностью растворенной) для получения 8,4 мМ запасного раствора. Отфильтруйте раствор бактериальным фильтром 0,22 мкм, запечатайте его и храните при температуре 4 °C вдали от света.
    ПРИМЕЧАНИЕ: CoCl2 нестабилен и должен храниться в герметичном контейнере, защищенном от света; срок действия раствора CoCl2 составляет 7 дней.
  3. Приготовьте раствор буферной соли Tris-Hcl (TBST).
    1. Точно взвесьте 8 г хлорида натрия, 0,2 г хлорида калия и 3 г трис-основания. Добавьте их в стакан объемом 1 л, а затем добавьте 1000 мл воды обратного осмоса, чтобы растворить смесь.
    2. Отрегулируйте рН до 7,4, добавьте 1 мл Tween 20 и тщательно перемешайте для получения раствора TBST.
      ПРИМЕЧАНИЕ: Tween 20 действует как поверхностно-активное вещество для снижения неспецифического связывания антител с антигенами и лучше всего работает при концентрации 0,1%.
  4. Готовят раствор МТТ (3-(4,5-диметилтиазол-2)-2,5-дифенилтетразолия бромидной соли) путем взвешивания 0,1 г порошка МТТ в 20 мл раствора PBS для получения исходного раствора 5 мг/мл. Отфильтруйте раствор бактериальным фильтром 0,22 мкм, запечатайте его и храните при температуре 4 °C вдали от света, помещенного в режим ожидания.
    ПРИМЕЧАНИЕ: Порошок МТТ нестабилен и легко впитывает влагу, поэтому его следует хранить в закрытом и сухом месте вдали от света. Срок действия решения MTT истекает через 7 дней. МТТ обладает канцерогенным действием, поэтому избегайте прямого контакта с кожей.
  5. Приготовьте раствор капсулы Эри, удалив оболочку капсулы и точно взвесив 0,18 г содержимого в 10 мл среды без сахара DMEM, чтобы приготовить 100 мкМ запасного раствора (в зависимости от концентрации скутелларина). Отфильтруйте раствор бактериальным фильтром 0,2 мкм, запечатайте его и храните в герметичном контейнере при 4 °C.
    ПРИМЕЧАНИЕ: Скутелларин является основным активным ингредиентом в Erigeron breviscapus. Концентрация скутелларина в капсулах была определена методом ВЭЖХ-УФ как составляющая 2,56 мг/г, т.е. 5,54 мкмоль/г8. Концентрация препарата рассчитывается исходя из концентрации скутелларина. Это удобно для оценки фармакологической активности препарата и компонента.
  6. Готовят раствор АСТ для инъекций, добавляя 5 мл инъекционного и 5 мл безсахарной ДМЭМ-среды в 15 мл стерильной центрифужной трубки для приготовления исходного раствора 60 мкМ (в зависимости от концентрации астрагалозида А). Отфильтруйте раствор через бактериальный фильтр 0,2 мкм и храните его в герметичном контейнере при 4 °C.
    ПРИМЕЧАНИЕ: Объем инъекции составляет 10 мл каждый, а концентрация астрагалозида А в инъекции была определена ВЭЖХ-ЭЛСР как 0,094 мг/мл (т.е. 120 мкМ)9. Подготовка должна проводиться в шкафу биобезопасности и эксплуатироваться светонепроницаемым способом во всем. Объем раствора для инъекций и среды без сахара следует измерять точно и хорошо перемешивать.
  7. Готовят раствор астрагалозида А путем точного взвешивания 7,85 мг стандарта астрагалозида А и полного растворения его в 2 мл диметилсульфоксида (ДМСО) для получения исходного раствора 5000 мкМ. Отфильтруйте его бактериальным фильтром 0,22 мкм и храните его герметично при 4 °C.
    ПРИМЕЧАНИЕ: Порошок астрагалозида А нерастворим в среде без сахара. При приготовлении раствора растворите его с соответствующим количеством ДМСО, чтобы сохранить конечную экспериментальную концентрацию ДМСО ниже 0,1%, чтобы обеспечить отсутствие цитотоксичности.
  8. Приготовьте раствор скутелларина, взвесив 11,56 мг стандартного скутелларина точно и полностью растворив его 5 мл безсахарной среды DMEM для приготовления 5000 мкМ запасного раствора. Отфильтруйте его бактериальным фильтром 0,22 мкм и храните его герметично при 4 °C.
  9. Приготовьте раствор хлорогеновой кислоты, точно взвесив 8,86 мг хлорогеновой кислоты и полностью растворив его 5 мл безсахарной DMEM-среды для приготовления исходного раствора 5000 мкМ. Отфильтруйте его бактериальным фильтром 0,22 мкм и храните его герметично при 4 °C.
    ПРИМЕЧАНИЕ: Порошок хлорогеновой кислоты нестабилен и легко впитывает воду. Он должен быть запечатан и храниться при 4 °C вдали от света; время воздействия должно быть сведено к минимуму во время взвешивания.

2. Анализ жизнеспособности клеток

  1. Получить клетки PC12 и культивировать их в DMEM с добавлением 10% FBS, 100 Ед/мл пенициллина и 100 мкг/мл стрептомицина.
    ПРИМЕЧАНИЕ: В этом исследовании клетки получены из Китайской академии наук. Клетки PC12 являются адгезивными клетками, которые имеют общие характеристики нейроэндокринных клеток и широко используются в нейрофизиологии и нейрофармакологии.
  2. Культивируйте клетки при 37 °C в инкубаторе, дополненном 5% CO2 , и субкультурируйте их каждые 2-3 дня. Используйте клетки в проходах 4-8 для всех экспериментов.
  3. Клеточная культура
    1. Обработайте клетки PC12 в логарифмической фазе роста (70%-80% клеточного слияния) 1 мл трипсина (0,25%) и наблюдайте за клетками под микроскопом. Когда клетки станут круглыми, остановите переваривание трипсина, добавив 3 мл полной среды.
    2. Переложите ячейки в стерильную центрифужную трубку объемом 15 мл и центрифугируйте ячейки при 840 х г в течение 5 мин. Выбросьте супернатант, повторно суспендируйте с полной средой и перенесите клеточную суспензию в микроцентрифужную трубку объемом 1,5 мл. Затем подсчитайте количество клеток с помощью проточного цитометра.
      1. Запустите программное обеспечение для проточной цитометрии, выберите соответствующее кратное разбавление клеточного раствора в параметре подсчета и нажмите на диаграмму плотности после загрузки образца ячейки из микроцентрифужной трубки объемом 1,5 мл.
      2. Обведите популяцию ячеек в стороне от осей X и Y, щелкните правой кнопкой мыши таблицу данных под рисунком и выберите X, Y, Count и Abs Count. Данные в разделе Abs Count в таблице данных дают результат подсчета ячеек.
    3. Отрегулируйте концентрацию в клетках до 1 х 105 клеток/мл, инокулируйте 100 мкл/лунку в 96-луночных пластинах и культивируйте при 37 °C и 5% CO2 в инкубаторе в течение 24 ч.
  4. Скрининг безопасных концентраций двух препаратов на нормальных клетках PC12
    1. Культивируйте клетки, как описано в шагах 2.1-2.2. Откажитесь от надосадочного вещества и обработайте нормальные клетки различными конечными концентрациями инъекции Ast (4, 8, 12, 16, 20 и 24 мкМ) и капсулы Eri (0,625, 1,25, 2,5, 5, 10 и 20 мкМ). Обрабатывают шесть реплицированных лунок каждой группы в течение 24 ч.
      ПРИМЕЧАНИЕ: Препараты добавляют в среду для достижения конечной концентрации лекарственного средства (упомянутой на этапе 2.4.1), а затем к каждой лунке добавляют равный объем среды. При аспирации надосадочного вещества наконечник пипетки следует аккуратно прижимать к стенке скважины, чтобы избежать контакта с ячейками на дне скважины. При добавлении различных растворов добавляйте их аккуратно и быстро по краям колодцев, а также обращайте внимание при смене головки пипетки, чтобы не влиять на результаты эксперимента.
    2. Откажитесь от надосадочного вещества, добавьте 120 мкл раствора МТТ (1 мг/мл) в каждую лунку и инкубируйте клетки в течение 4 ч при 37 °C.
    3. После инкубации снова выбросьте супернатант и добавьте 150 мкл ДМСО в каждую лунку. Встряхните пластину в течение 10 мин со скоростью 240 раз/мин (количество горизонтальных колебаний в минуту) с помощью вихревого генератора.
    4. Измерьте поглощение каждого образца при 490 нм с помощью считывателя микропластин. Рассчитайте жизнеспособность клетки (%), которая представляет собой абсорбцию обработанной группы/абсорбцию нормальной группы (контрольная) х 100.
      ПРИМЕЧАНИЕ: Убедитесь, что решение MTT находится в пределах срока действия; если цвет изменился (на темно-зеленый), его нельзя использовать. При тестировании абсорбции клеток следует установить пустой колодец (культуральная среда и МТТ, без клеток или лекарственных средств) для устранения помех других реагентов. В каждую лунку добавляют объем 150 мкл ДМСО и встряхивают в течение 10 мин, чтобы лучше растворить сине-фиолетовые кристаллы. Абсорбция должна быть обнаружена как можно скорее, чтобы обеспечить точность результатов.
  5. Скрининг эффективных концентраций двух препаратов на поврежденных клетках PC12
    1. Культивируйте клетки в течение 24 ч, как указано на этапах 2,1-2,2, отбросьте надосадочный агент, а затем обработайте клетки 20 мкл/лунку CoCl2 (0,4 мМ) в сочетании со средой без сахара.
    2. Одновременно обрабатывают клетки 100 мкл/лунку инъекции Ast (конечные концентрации 2, 6, 8, 10 и 12 мкМ) или 100 мкл капсулы Eri (конечные концентрации 1, 2, 3, 4 и 5 мкМ) при 37 °C в течение еще 24 ч. Добавьте 120 мкл/лунку полной среды в контрольную группу.
      ПРИМЕЧАНИЕ: CoCl2 индуцирует гипоксические состояния в клетках.
    3. Измерьте поглощение каждого образца с помощью метода МТТ и рассчитайте жизнеспособность клеток, как описано ранее на этапах 2.4.2 и 2.4.3.
  6. Скрининг оптимальной комбинации двух препаратов на основе метода однородного проектирования
    ПРИМЕЧАНИЕ: После получения эффективного диапазона концентраций препарата Астрагал для инъекций и капсулы бревискапа, для получения шести различных комбинаций двух лекарственных средств использовали таблицу единообразной конструкцииU 7 (74). Первая инъекция: капсула Эри: 1) 2: 2,6 мкМ, 2) 4: 5 мкМ, 3) 6: 1,8 мкМ, 4) 8: 4,2 мкМ, 5) 10: 1 мкМ и 6) 12: 3,4 мкМ.
    1. Культивируйте клетки, как описано выше на этапе 2.3.1, и обрабатывайте поврежденные клетки PC12 шестью пропорциями концентрации инъекции Ast: капсула Eri, как упоминалось выше.
    2. Обработайте клетки в течение 24 ч и рассчитайте жизнеспособность клеток, как описано ранее на этапах 2.4.2 и 2.4.3.
  7. Оценка защитного эффекта двух оптимальных комбинаций на поврежденные клетки PC12
    ПРИМЕЧАНИЕ: После получения оптимальной комбинации препаратов (инъекция АСТ: капсула Эри 6:1,8 мкМ) и оптимальной комбинации компонентов7 (10 мкМ астрагалозида А, 40 мкМ скутелларина и 75 мкМ хлорогеновой кислоты) проводится дальнейшая оценка для проверки их защитного действия на поврежденные клетки PC12.
    1. Культивируйте клетки, как описано выше на этапе 2.3.1, и обрабатывайте поврежденные клетки PC12 двумя типами комбинаций лекарственных средств, как обсуждалось в ПРИМЕЧАНИИ выше.
    2. Обработайте клетки в течение 24 ч и рассчитайте жизнеспособность клеток, как описано ранее на этапах 2.4.2 и 2.4.3.

3. Приложение V-FITC/PI анализ скорости апоптоза

  1. Засейте клетки PC12 в 12-луночную пластину в концентрации 1,3 х 105 клеток/лунку и культивируйте их при 37 °C в течение 24 ч.
  2. Группируйте клетки: контрольная группа, модельная группа и две комбинации препаратов. Добавить 1,2 мл/лунку полной среды в контрольную группу, добавить 1,2 мл/лунку среды, содержащей 0,4 мМ CoCl2 , в модельную группу и добавить 1,2 мл/лунку каждой из двух комбинаций, содержащих 0,4 мМ CoCl2. Инкубируют клетки при 37 °C еще 24 ч.
  3. После медикаментозного лечения обработайте клетки 250 мкл/лунку трипсина, перенесите клетки в центрифужную трубку объемом 15 мл и центрифугу при 840 хг в течение 5 мин при комнатной температуре (RT). Откажитесь от супернатанта и повторно суспендируйте гранулу в 500 мкл связывающего буфера.
    1. Инкубируйте клетки в темноте с 5 мкл аннексина V-FITC и 10 мкл йодида пропидия (PI) в течение 15 мин при RT, а затем проверьте наличие апоптоза с помощью проточной цитометрии. Установите три реплицированные скважины в каждой группе.
      ПРИМЕЧАНИЕ: Трипсин, используемый в этом испытании, не может содержать ЭДТА, поскольку ЭДТА является хелатирующим агентом ионов металлов, который конкурирует с аннексином V в связывании ионов кальция и влияет на сродство аннексина к ПИ. Когда происходит апоптоз, фосфосерин, первоначально на внутренней стороне клеточной мембраны, поворачивается наружу к поверхности клетки, а Annexin V-FITC избирательно связывается с фосфосерином вне мембраны, чтобы показать зеленую флуоресценцию.
    2. Нажмите кнопку Автоматическая компенсация в меню Пуск , выберите FITC, PE, PerCP и APC в канале Выбрать , а затем выберите Компенсация по адресу: Высота. Нажмите кнопку ОК в разделе Статистический элемент: Медиана. С помощью того же метода подсчета клеток, который описан на шаге 2.3.2, соберите образцы клеток, щелкните Карту плотности и обведите вокруг эффективной популяции клеток.
    3. С флуоресценцией FITC в качестве параметра оси X и другими параметрами флуоресценции в качестве параметра оси Y создайте карту плотности. Нажмите « Матрица компенсаций» в меню «Пуск» и «Коэффициент» в матрице переполнения. Для анализа скорости апоптоза отображается информация карты плотности.

4. Иммунофлуоресцентное обнаружение генерации каспазы-3

  1. Высевайте ячейки PC12 на крышки с плотностью 8 x 104 ячейки/крышку и поместите их в 24-луночные пластины при 37 °C в течение 24 ч. сгруппируйте ячейки, как указано выше на этапе 3.2; настройте три реплицированных обложек для каждой группы.
  2. После лечения препаратом дважды промойте крышки PBS (37 °C) в течение 5 мин каждый, зафиксируйте их 4% параформальдегидом в течение 15 мин и пермеабилизируйте 0,5% Triton X-100 в течение 20 мин при RT.
  3. Снова промыть клетки и заблокировать их 10% козьей сывороткой в течение 1 ч при РТ.
  4. Инкубировать каждый покров с 200 мкл первичного антитела каспазы-3 (ключевого исполнительного белка апоптоза), разбавленного в концентрации 1:250 в 1x TBST, на ночь при 4 °C. Промыть 1x TBST (три раза по 3 мин каждый) и инкубировать с 200 мкл вторичного антитела (разведение 1:300 в 1x TBST) в течение 1 ч при RT в темноте.
    ПРИМЕЧАНИЕ: Флуоресценция легко гасится; таким образом, после инкубации вторичного антитела слайды следует держать подальше от света. Первичные и вторичные антитела должны храниться на расстоянии 4 °C от света.
  5. Добавьте 300 мкл DAPI (0,5 мкг/мл) в крышки (для обнаружения ядер) в течение 10 минут и промывайте клетки три раза с 1x TBST в течение 5 минут каждая.
  6. Наблюдайте за обшивками под флуоресцентным микроскопом и делайте снимки10. Выполните статистический анализ интенсивности флуоресценции с помощью программного обеспечения для визуализации.
    ПРИМЕЧАНИЕ: Используемые слайды и крышки должны быть чистыми и стерильными. При окрашивании обращайте внимание на рН, концентрацию и температуру раствора красителя и избегайте закалки флуоресценцией. Люминесцентный микроскоп следует включить не менее чем за 15 минут до предварительного нагрева ртутной лампы и выключить на 30 минут, прежде чем снова включить. При получении изображений параметры экспозиции одного и того же красителя в одной и той же партии экспериментов должны быть согласованными для обеспечения точности результатов.

5. Иммунофлуоресцентный анализ уровня АФК

  1. Культивируйте и обрабатывайте клетки, как описано на этапе 4.1.
  2. После лечения препаратом промывайте каждый покров три раза PBS в течение 3 мин и инкубируйте с 400 мкл DCFH-DA (10 мкМ) при 37 °C в течение 20 мин.
    ПРИМЕЧАНИЕ: DCFH-DA является универсальным индикатором окислительного стресса. Обладает проницаемостью клеточной мембраны и отсутствием флуоресценции. Как только он попадает в клетку, он гидролизуется эстеразой с образованием 2',7'-дихлордигидрофлюоресцеина (DCFH), а затем быстро окисляется для получения сильного флуоресцентного продукта.
  3. Снова промыть клетки бессывороточным DMEM (дважды по 3 мин каждая) и сразу же наблюдать за крышкой после добавления флуоресцентного закалочного агента под флуоресцентным микроскопом. Рассчитайте относительную интенсивность флуоресценции с помощью программного обеспечения для визуализации.
    ПРИМЕЧАНИЕ: После загрузки зонда DCFH-DA обязательно очистите остаточный зонд, который не попадает в ячейку, иначе фон станет высоким.

6. Обнаружение вестерн-блоттинга экспрессии белка Nrf2, p-Akt, Akt, Bcl-2 и Bax 11,12

  1. Инокулируют клетки PC12 в 6-луночные пластины в концентрации 1 х 106 клеток/лунку и культивируют при 37 °C в течение 24 ч. Сгруппируйте и обработайте клетки, как указано выше на этапе 4.1, и установите три реплицируемые лунки в каждой группе.
  2. После лечения препаратом в течение 24 ч промыть клетки трижды PBS по 5 мин каждая и инкубировать на льду в течение 30 мин в подготовленном лизисном буфере. После лизиса центрифугируют клетки в течение 20 мин при 16 000 х г и 4 °C и собирают супернатанты.
  3. Определите концентрацию белка и отрегулируйте ее в соответствии с инструкциями с помощью анализа Брэдфорда. Разбавить образцы и денатурировать при 100 °C в течение 10 мин.
    ПРИМЕЧАНИЕ: Буфер лизиса состоит из ингибитора фосфатазы, ингибитора протеазы и лизата RIPA в объемном соотношении 1:1:50. В контрольной группе требуется 200 мкл/лунка лизисного буфера, а в других группах требуется 100 мкл/лунка лизисного буфера. Как правило, концентрации белка контрольной, модельной и двух типов комбинаций групп составляют 0,45 мг/мл, 0,25 мг/мл и 0,32-0,39 мг/мл соответственно; их концентрации белка после разведения нагрузочным буфером составляют соответственно 0,36, 0,2 и 0,256-0,312 мг/мл.
  4. Чтобы обнаружить белки с различной молекулярной массой, загрузите 25 мкг белка в каждую полосу, запустите 12% электрофорез SDS-PAGE и перенесите гель на мембраны PVDF.
    ПРИМЕЧАНИЕ: Во время приготовления геля SDS он должен быть полностью перемешан без пузырьков или нерастворимых частиц; в противном случае могут возникать неравномерные или нерегулярные полосы. При переносе мембран убедитесь, что между мембраной PVDF и гелем нет пузырьков; в противном случае на полосе появятся белые пятна. Кроме того, этот этап необходимо выполнять при низких температурах, а мешок со льдом следует менять каждые 30 минут.
  5. Блокируют мембраны с 5% обезжиренным молоком в течение 1,5 ч при РТ и инкубируют с 5 мл соответствующих первичных антител (Nrf2 1:1000, Akt 1:2000, p-Akt 1:2000, Bcl-2 1:5000 и Bax 1:1000) в течение 24 ч при 4 °C. Используйте β-актиновые (1:5000) антитела в качестве внутреннего контроля.
  6. Промыть мембраны TBST (три раза по 10 мин каждая), затем инкубировать с 5 мл вторичных HPR-конъюгированных антител (1:5000) при RT в течение 2 ч.
    ПРИМЕЧАНИЕ: Коэффициент разведения антител не должен быть произвольно изменен, а мембраны должны быть промыты TBST достаточно в строгом соответствии с требованиями, чтобы избежать слишком черного цвета фона полосы.
  7. Наконец, снова промыть мембрану TBST и обработать ее хемилюминесцентным субстратом HRP (в соответствии с инструкциями производителя) для обнаружения белковой полосы. Захват изображений с использованием системы визуализации хемилюминесценции и количественная оценка серых значений белков с помощью программного обеспечения для визуализации с β-актином в качестве сравнительного внутреннего контроля.

Доступ ограничен. Войдите в систему или начните пробный период, чтобы просмотреть этот контент.

Результаты

Скрининг оптимальной комбинации инъекций Ast и капсулы Eri показан на рисунке 1. Выживаемость клеток при инъекции Ast и капсуле Eri на нормальных клетках PC12 показана на рисунке 1A. Жизнеспособность клеток была ниже 95% при инъекции Ast при концентрациях более 12 мкМ (Фиг.1А) и капсуле Эри при концентрациях более 5 мкМ (Фиг.1А), что указывает на то, что максимальная нетоксичная концентрация составляла ...

Доступ ограничен. Войдите в систему или начните пробный период, чтобы просмотреть этот контент.

Обсуждение

До сих пор не хватает идеальных препаратов для лечения ишемии головного мозга в современной клинической практике2. Под руководством дополнения ци и активации метода кровообращения АСТ, Эри и другие препараты были использованы в комбинации в клинической практике ТКМ и достигли хороших комплексных преимуществ 13,14,15. Большое количество исследований показало, что АСТ может улучшить проницаемость гематоэнце...

Доступ ограничен. Войдите в систему или начните пробный период, чтобы просмотреть этот контент.

Раскрытие информации

Авторы заявляют об отсутствии конфликта интересов.

Благодарности

Это исследование финансировалось ключевыми научно-исследовательскими проектами Департамента науки и техники провинции Сычуань (2020YFS0325).

Доступ ограничен. Войдите в систему или начните пробный период, чтобы просмотреть этот контент.

Материалы

Список материалов, использованных в этой статье
ИмяКомпанияКаталожный номерКомментарии
Шкаф биобезопасности серии 1300 II классаThermo Fisher Scientific Instruments Company1374
3-(4,5-диметилтиазол-2-ил)-2,5-дифенилтетразолия бромидGuangzhou saiguo biotech Company1334GR001MTT
ACEA NovoExpress  1.4.0ACEA Biosciences,Inc-Akt
Wuhan Three Eagles Proteintech Group, Inc10176-2-AP
Аналитическая проточная цитометрияThermo Fisher Scientific Instruments Company62-2-1810-1027-0
Аннексин V-FITC набор для обнаружения апоптозаBeyotime Biotechnology CompanyC1062L
Инъекция астрагалаХэйлунцзян Чжэньбао Island Pharmaceutical CompanyA03190612144Ast инъекции
Астрагалозид AChongqing Gao Ren Biotechnology Company84687-43-4
BaxWuhan Three Eagles Proteintech Group, Inc60267-1-Ig
набор для количественного определения белка BCABeyotime Biotechnology CompanyP0012
Bcl-2Wuhan Three Eagles Proteintech Group, Inc26593-1-AP
Инкубаторы углекислого газаThermo Fisher Scientific Instruments Company0816-2014
Каспазы-3Wuhan Three Eagles Proteintech Group, Inc19677-1-AP
Хлорогеновая кислотаChongqing Gao Ren Biotechnology Company327-97-9
Гексагидрат хлорида кобальтаMerck Biotechnology, Inc.7791-13-1CoCl2
DiметилсульфоксидГуанчжоу сайго биотехнологическая компания2020112701DMSO
Динатрия гидрофосфат додекагидратChengdu Kolon Chemical Company2020090101
DMEM высокосахарная средаThermo scientific Hyclone2110050
DMEM бессахарная средаBeijing Solarbio life sciences Company
Светящаяся жидкость ECLLianshuo Biological CompanyWBKLS0500
Электронные весыHaozhuang Hengping Scientific Instrument Co., Ltd., Шанхай, КитайFA1204
Инструмент для электрофорезаBio-Rad Laboratories (Shanghai) Co., Ltd1658026
капсула Erigeron breviscapusYunnan Biogu Pharmaceutical CompanyZ53021671капсула
Eri Фетальная бычья сывороткаFour Seasons Институт биологической инженерии20210402FBS
Флуоресцентный микроскопOlympms CorporationIX71-F32PH
Gel ImagerBio-Rad Laboratories (Shanghai) Co., Ltd1708265
козье вторичное антитело против мышейWuhan Three Eagles Proteintech Group, IncSA00001-1
Вторичное антитело против кролика у козWuhan Three Eagles Proteintech Group, IncSA00001- 2
IBM SPSS Statistics version 26.0International Business Machines Corporation,США-ImageJ
1.8.0National Institutes of Health,программное обеспечение для США-визуализации
Immunol  флуоресценция  набор для окрашиванияBeyotime Biotechnology CompanyP0196
KClChengdu Kolon Chemical Company2021070901
маркерThermo Fisher Scientific Instruments Company26616
Считыватель микропланшетовPerkin Elmer Corporate Management (Shanghai) Co.
Инвертированный микроскоп MoticNanda Scientific Instruments Co.
NaClChengdu Kolon Chemical Company2014081301
Обезжиренное молокоBeyotime Biotechnology CompanyP0216
Nrf2Wuhan Three Eagles Proteintech Group, Inc16396-1-AP
P-AktWuhan Three Eagles Proteintech Group, Inc66444-1-Ig
PC12 клеткиКитайская академия наук
Пенициллин-стрептомицинраствор Thermo scientific ГиклонSV30010
смесь ингибиторов протеазы фосфатазыBeyotime Biotechnology CompanyP1045
Дигидрофосфат калияChengdu Kolon Chemical Company2015082901
набор для анализа активных форм кислородаBeyotime Biotechnology CompanyS0033S
RI-PA лизис растворBeyotime Biotechnology CompanyP0013B
ScutellarinChongqing Gao Ren Biotechnology Company27740-01-8
SDS-PAGE буфер для загрузки образцов, 5xBeyotime Biotechnology CompanyP0015L
Стерильные фильтрующие наконечники (0,22 &; m)Merck Biotechnology, Inc.
Трис-базаГуанчжоу сайго биотехнологическая компания1115GR500 ТБС
ТрипсинThermo Scientific HycloneJ190013
Tween-20Chengdu Kolon Chemical Company2021051301
вихревой осцилляторOHAUS International Co., Ltd., Шанхай, КитайVXMNAL
&бета;-актинWuhan Three Eagles Proteintech Group, Inc66009-1-ig
2029548HH35L2018296AE2000LEDCBP60430SLGP033RB

Ссылки

  1. Mendelevich, E. G. Chronic cerebral ischemia, and dizziness. Zhurnal Nevrologii i Psikhiatrii Imeni SS Korsakova. 122 (3), 22-26 (2022).
  2. Gao, L. Expert consensus on the diagnosis and treatment of chronic cerebral ischemia with integrated traditional Chinese and western medicine. Chinese Journal of Integrated Traditional and Western Medicine. 38 (10), 1161-1167 (2018).
  3. Luyu, S., Heng, L., Dengke, L. Combined treatment of 45 cases of cerebral infarction with Astragalus and Dengzhan Xixin injection. Jilin Journal of Traditional Chinese Medicine. 27 (4), 23-24 (2007).
  4. Bei, N., et al. Clinical study of Dengzhanxixin injection combined with Astragalus injection in the treatment of acute ischemic stroke. Journal of Basic Chinese Medicine. 21 (9), 1123-1127 (2015).
  5. Tian, F., et al. Optimal ratio of Astragalus injection combined with Dengzhan Xixin injection against cerebral ischemia-reperfusion injury in rats by baseline equal-ratio increase-decrease design method. China Pharmacy. 30 (14), 1885-1889 (2019).
  6. Li, J., et al. Protective effect and mechanism of Astragalus combined with Erigeron breviscapusin the best proportion on cerebral ischemia rats. Pharmacology and Clinics of Chinese Materia Medica. 35 (2), 104-108 (2019).
  7. Yan, Y., et al. Study on the oxidative damage of PC12 cells with hypoxia and hypoglycemia based on the combination of Astragalus and Dengzhan Asarum based on the Nrf2/HO-1 pathway. Pharmacology and Clinics of Chinese Materia Medica. 38 (2), 159-164 (2022).
  8. Chinese Pharmacopoeia, Dengzhan Asarum Granules. Volume I. , Available from: https://db.ouryao.com/yd2020/view.php?id=f27dcefa69 924(2020).
  9. Chinese Pharmacopoeia, Astragalus granules. Volume I. , Available from: https://db.ouryao.com/yd2020/view.php?id=fbcd0a8bf8 1592(2020).
  10. Liu, X., et al. N-linoleyltyrosine protects PC12 cells against oxidative damage via autophagy: Possible involvement of CB1 receptor regulation. International Journal of Molecular Medicine. 46 (5), 1827-1837 (2020).
  11. Fan, Y., et al. Gab1 regulates SDF-1-induced progression via inhibition of apoptosis pathway induced by PI3K/AKT/Bcl-2/BAX pathway in human chondrosarcoma. Tumor Biology. 37 (1), 1141-1149 (2016).
  12. Meng, M., Zhang, L., Ai, D., Wu, H., Peng, W. β-Asarone ameliorates β-Amyloid-induced neurotoxicity in PC12 cells by activating P13K/Akt/Nrf2 signaling pathway. Frontiers in Pharmacology. 12, 659955(2021).
  13. Li, J., Chen, H. Advances in the treatment of chronic cerebral ischemia with traditional Chinese and western medicine. Xinjiang Journal of Traditional Chinese Medicine. 39 (3), 115-118 (2021).
  14. Yu, M., Zhan, Q., Xu, X. Discussion on the therapeutic value of traditional Chinese medicine on cognitive dysfunction caused by chronic cerebral ischemia. Chinese Medicine Modern Distance Education of China. 11 (19), 155-157 (2013).
  15. Wang, M., Liu, J., Yao, M., Ren, J. Advances in research on pharmacological and neuroprotective effects of traditional Chinese medicine after cerebral ischemia. China Journal of Chinese Materia Medica. 45 (3), 513-517 (2020).
  16. Wang, N., Sun, H., Ma, X. Effects of different doses of astragalus injection on neurological rehabilitation of stroke patients. Chinese Journal of Clinical Rational Drug Use. 9 (13), 67-69 (2016).
  17. Sun, Y. Q. Effects of astragalus injection on apoptosis after cerebral ischemia-reperfusion in rats. Hebei Medicine. 22 (7), 1147-1149 (2016).
  18. Yang, L., et al. Dengzhan Xixin injection derived from a traditional Chinese herb Erigeron breviscapusameliorates cerebral ischemia/reperfusion injury in rats via modulation of mitophagy and mitochondrial apoptosis. Journal of Ethnopharmacology. 288, 114988(2022).
  19. Liao, Y., Ni, X., Zhan, C., Cai, Y. Clinical research progress of Dengzhanhua preparation in prevention and treatment of ischemic stroke and transient ischemic attack. Guangdong Medical Journal. 41 (9), 963-967 (2020).
  20. Li, C., Li, J., Xu, G., Sun, H. Influence of chronic ethanol consumption on apoptosis and autophagy following transient focal cerebral ischemia in male mice. Scientific Reports. 10 (1), 6164(2020).
  21. El Khashab, I. H., Abdelsalam, R. M., Elbrairy, A. I., Attia, A. S. Chrysin attenuates global cerebral ischemic reperfusion injury via suppression of oxidative stress, inflammation and apoptosis. Biomedicine Pharmacotherapy. 112, 108619(2019).
  22. Su, X., He, S., Chen, Z., Xie, X. Effect of breviscapine aglycone on PI 3 K/Akt conduction pathway in neonatal rats with hypoxic-ischemic brain injury. Journal of Armed Police Logistics College (Medical Edition). 27 (2), 93-96 (2018).
  23. Wang, X., Shi, C., Pan, H., Meng, X., Ji, F. MicroRNA-22 exerts its neuroprotective and angiogenic functions via regulating PI3K/Akt signaling pathway in cerebral ischemia-reperfusion rats). Journal of Neural Transmission. 127 (1), 35-44 (2020).
  24. Luca, M., Luca, A., Calandra, C. The role of oxidative damage in the pathogenesis and progression of alzheimer's disease and vascular dementia. Oxidative Medicine and Cellular Longevity. 2015, 504678(2015).
  25. Wang, Z., et al. Lupeol alleviates cerebral ischemia-reperfusion injury in correlation with modulation of PI3K/Akt pathway. Neuropsychiatric Disease and Treatment. 16 (8), 1381-1390 (2020).
  26. Li, H., et al. Neuroprotective effect of phosphocreatine on oxidative stress and mitochondrial dysfunction induced apoptosis in vitro and in vivo: Involvement of dual PI3K/Akt and Nrf2/HO-1 pathways. Free Radical Biology and Medicine. 120, 228-238 (2018).
  27. Muñoz-Sánchez, J., Chánez-Cárdenas, M. E. The use of cobalt chloride as a chemical hypoxia model. Journal of Applied Toxicology. 39 (4), 556-570 (2019).
  28. Tang, Y., et al. Salidroside attenuates CoCl2-simulated hypoxia injury in PC12 cells partly by mitochondrial protection. European Journal of Pharmacology. 912 (10), 174617(2021).
  29. Yin, L., et al. Neuroprotective potency of Tofu bio-processed using Actinomucor elegans against hypoxic injury induced by cobalt chloride in PC12 cells. Molecules. 26 (10), 2983(2021).

Доступ ограничен. Войдите в систему или начните пробный период, чтобы просмотреть этот контент.

Перепечатки и разрешения

Теги

Astragalus MongholicusErigeron BreviscapusPI3K Akt Nrf2
Изучение стратегии комбинации двух трав для лечения поврежденных клеток PC12
Свяжитесь с нами
Рекомендовать библиотеке

Конфиденциальность

Условия эксплуатации

Политика

Авторские права © 2026 MyJoVE Corporation. Все права защищены.