Методическая статья

Достижения в области наноразмерной инфракрасной спектроскопии для исследования многофазных полимерных систем

DOI:

10.3791/65357

⸱

23 июня 2023 г.

 , 
1Nanoscience Technology Center, Physics Department, University of Central Florida, 2Physics Department, University of Central Florida

В этой статье

Краткое содержание

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

В этом протоколе описывается применение атомно-силовой микроскопии и наноразмерной инфракрасной спектроскопии для оценки производительности фототермической наноразмерной инфракрасной спектроскопии при характеризации трехмерных многополимерных образцов.

Аннотация

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Многофазные полимерные системы охватывают локальные домены с размерами, которые могут варьироваться от нескольких десятков нанометров до нескольких микрометров. Их состав обычно оценивается с помощью инфракрасной спектроскопии, которая дает среднее значение отпечатков различных материалов, содержащихся в исследуемом объеме. Однако такой подход не дает никаких подробностей о расположении фаз в материале. Межфазные области между двумя полимерными фазами, часто в наноразмерном диапазоне, также труднодоступны. Фототермическая наноразмерная инфракрасная спектроскопия отслеживает локальный отклик материалов, возбуждаемых инфракрасным светом, с помощью чувствительного зонда атомно-силового микроскопа (АСМ). В то время как этот метод подходит для исследования небольших объектов, таких как отдельные белки на нетронутых золотых поверхностях, характеристика трехмерных многокомпонентных материалов более труднодоступна. Это связано с относительно большим объемом материала, подверженного фототермическому расширению, определяемому лазерной фокусировкой на образце и тепловыми свойствами полимерных составляющих, по сравнению с наноразмерной областью, исследуемой зондом АСМ. Используя гранулу полистирола (ПС) и пленку из поливинилового спирта (ПВА), мы оцениваем пространственный след фототермической наноразмерной инфракрасной спектроскопии для анализа поверхности в зависимости от положения ПС в пленке ПВА. Исследовано влияние положения признака на наноразмерные инфракрасные изображения, получены спектры. Представлены некоторые перспективы будущих достижений в области фототермической наноразмерной инфракрасной спектроскопии с учетом характеризации сложных систем со встроенными полимерными структурами.

Введение

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Атомно-силовая микроскопия (АСМ) стала незаменимой для получения изображений и определения морфологии широкого спектра образцов с наноразмерным разрешением 1,2,3. При измерении прогиба кантилевера АСМ в результате взаимодействия острого наконечника с поверхностью образца разработаны протоколы наноразмерной функциональной визуализации для измерения локальной жесткости и адгезии зонда с образцом 4,5. Для анализа мягких конденсированных сред и полимеров очень востребованы АСМ-измерения, изучающие наномеханические и нанохимические свойства локальных доменов 6,7,8. До появления наноразмерной инфракрасной (наноИК) спектроскопии зонды АСМ подвергались химической модификации для оценки наличия различных доменов на силовой кривой АСМ и вычета характера взаимодействия зонда с образцом. Например, этот подход был использован для выявления трансформации микродоменов поли(трет-бутилакрилата) на поверхности тонких пленок полистирол-блок-поли(трет-бутилакрилат)блок-сополимера, обработанных циклогексаном, на уровне 9 с длиной волны ниже50 нм.

Комбинация инфракрасного (ИК) света с АСМ оказала значительное влияние на науку о полимерах6. Традиционная ИК-спектроскопия является широко используемым методом для изучения химической структуры полимерных материалов10,11, но она не дает информации об отдельных фазах и межфазном поведении, так как области слишком малы по сравнению с размером ИК-пучка, используемого для зондирования образца. Эта проблема характерна и для ИК-микроспектроскопии, так как она ограничена оптическим дифракционным пределом6. Такие измерения усредняют вклад всей области, возбуждаемой ИК-светом; Сигналы, возникающие в результате присутствия наноразмерных фаз внутри исследуемой области, либо демонстрируют сложные отпечатки пальцев, которые должны быть деконволюционированы во время постобработки, либо теряются из-за уровня сигнала ниже детектируемого уровня. Следовательно, необходимо разработать инструменты, способные к наноразмерному пространственному разрешению и высокой ИК-чувствительности для исследования наноразмерных химических свойств в сложных средах.

Были разработаны схемы достижения наноИК-спектроскопии, сначала с использованием металлического зонда АСМ в качестве наноантенны12,13, а в последнее время с использованием способности кантилевера АСМ отслеживать изменения в фототепловом расширении, возникающие при ИК-освещении образца 12,14,15. В последнем используется импульсный перестраиваемый ИК-источник света, настроенный на полосу поглощения зондируемого материала, что заставляет образец поглощать излучение и подвергаться фототермическому расширению. Такой подход хорошо подходит для органических и полимерных материалов. Импульсное возбуждение позволяет обнаружить эффект кантилевером АСМ в контакте с поверхностью образца в виде осцилляции. Амплитуда одного из контактных резонансов системы, наблюдаемых в частотном спектре, затем контролируется как функция длины волны освещения, которая составляет спектр поглощения наноИК материала под зондомАСМ 15. Пространственное разрешение наноИК-визуализации и спектроскопии ограничено различными эффектами фототермического расширения материала. Было оценено, что фототермическая наноИК-спектроскопия с использованием контактного режима АСМ может приобретать спектральные свойства колебательного поглощения материалов с пространственным разрешением масштаба ниже 50 нм14, при этом недавние работы продемонстрировали обнаружение мономеров и димеров α-синуклеина 16,17. Однако количественные исследования эффективности наноИК-измерений на гетерогенных полимерных материалах, собранных в различных конфигурациях, например, в случае поглотителей конечных размеров, встроенных в объем различных полимерных пленок, остаются ограниченными.

Целью данной статьи является создание полимерной сборки со встроенным элементом известной размерности для оценки чувствительности фототеплового расширения и пространственного разрешения наноИК при анализе поверхности. Протокол охватывает приготовление тонкой пленки полимера поливинилового спирта (ПВА) на кремниевой подложке и размещение трехмерного гранулы полистирола (ПС) на пленку ПВА или встроенную в нее, что представляет собой формирование модельной системы. НаноИК-визуализация и спектроскопия описываются в контексте оценки сигналов, генерируемых одним и тем же шариком PS, расположенным на пленке PVA или под ней. Оценено влияние положения валика на наноИК-сигналы. Обсуждаются методы оценки пространственного следа шарика в наноИК-карте, а также рассматриваются эффекты нескольких параметров.

Доступ ограничен. Войдите в систему или начните пробный период, чтобы просмотреть этот контент.

Протокол

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

1. Приготовление раствора поливинилового спирта (ПВА)

  1. Измерьте воду и гранулы полимера ПВА (см. Таблицу материалов), чтобы создать раствор объемом 10 мл при соотношении ПВА и воды 20% по весу.
  2. Нагрейте воду в стеклянной посуде над конфоркой, установленной до 100 °C.
  3. Поместите гранулы полимера ПВА в нагретую воду. Вставьте магнитную мешалку.
  4. Уменьшите огонь до 80 °C и помешивайте до полного растворения ПВА.
  5. Накройте стеклянную посуду сверху, чтобы предотвратить загрязнение.
  6. После полного растворения поместите 20% раствор ПВА в соответствующий контейнер для хранения при комнатной температуре.

2. Приготовление кремниевых пластин с покрытием из кремния (Si) с ПВА-покрытием

  1. Разрежьте кремниевую (Si) пластину (см. Таблицу материалов) на квадраты ~10 x 10 мм2 .
  2. Очистите кремниевую подложку изопропиловым спиртом и дайте ей высохнуть.
  3. Поместите чистую кремниевую пластину на патрон машины для нанесения покрытий (см. Таблицу материалов).
    1. Каплями налейте примерно 10 мкл раствора ПВА на центр кремниевой подложки. Старайтесь не допускать образования пузырей.
    2. Покройте кремниевую подложку однородной пленкой ПВА методом центрифугирования в течение 30 с при 1 500 оборотах в минуту (об/мин).
      ПРИМЕЧАНИЕ: Заданный объем жидкости и параметры отжима создают равномерный слой ПВА по всей поверхности подложки достаточной толщины, чтобы предотвратить быстрое высыхание между отжимом покрытия и размещением шариков PS на поверхности ПВС на следующем этапе.
  4. Извлеките образец из установки для нанесения покрытий и поместите его в чистый контейнер для образцов, чтобы предотвратить загрязнение, прежде чем переносить гранулы полистирола.

3. Размещение гранул полистирола на поверхность, покрытую ПВА

  1. Очистите кремниевую подложку изопропиловым спиртом и дайте ей высохнуть.
  2. С помощью пипетки поместите 1 мкл гранул полистирола, взвешенных в воде, на центр подложки.
  3. Дайте воде испариться, поместив образец в отсек для хранения, содержащий осушитель бентонитовой глины.
    ПРИМЕЧАНИЕ: На этом этапе образец сохраняется за счет снижения воздействия влаги.
  4. Поместите подложку с покрытием ПВА (шаг 2.4) и подложку с высушенными гранулами полистирола (шаг 3.3) под оптический микроскоп. В зависимости от их размера, одна бусина будет видна в простой бинокль или потребует большего оптического увеличения.
  5. Аккуратно ослабьте бусины с помощью ультратонкого пинцета (см. Таблицу материалов). С помощью тонкой кисти для волос соберите несколько свободных бусин и слегка постучите волосками кисти по свежепокрытой ПВА пластине. Многократные взмахи должны позволить шарикам скапливаться в волосках кисти. Постучите по верхней части волосков кисти, чтобы потревожить порошок гранул PS, чтобы выпустить шарики на липкую поверхность ПВА.
    ПРИМЕЧАНИЕ: Важно, чтобы кисть была качественной и чистой, чтобы избежать попадания волокон и загрязнений на поверхность пленки ПВА. На этом этапе важно быстро двигаться, чтобы ПВА не высохла полностью.
  6. Повторяйте этот шаг до тех пор, пока оптическая микроскопия не подтвердит, что отдельные шарики полистирола прилипают к поверхности ПВА.
  7. Храните образец в чистом контейнере. Дайте образцу полностью высохнуть.
    ПРИМЕЧАНИЕ: Образцу следует дать полностью остыть и высохнуть, прежде чем выполнять дальнейшие попытки анализа. Измерения высоты АСМ или измерения поверхности с помощью профилографа позволяют оценить толщину последовательных пленок ПВА.

4. Загрузка образца для АСМ характеризации

ПРИМЕЧАНИЕ: Описанный протокол основан на стандартных операционных процедурах платформы nanoIR2 (см. Таблицу материалов), но должен быть адаптирован в соответствии с моделью АСМ, используемой для измерения.

  1. Установите образец шарика ПВА и ПС на столик АСМ с помощью металлического диска АСМ и клейких язычков так, чтобы образец был надежно прикреплен к держателю образца.
  2. Установите наноИК-зонд (например, FORTGG) на держатель датчика АСМ.
    ПРИМЕЧАНИЕ: Кантилевер AFM имеет длину 225 мкм, ширину 27 мкм и толщину 2,7 мкм с радиусом наконечника менее 10 нм. Кантилевер покрыт золотой пленкой толщиной 45 нм с обеих сторон, чтобы ограничить его реакцию на верхнее ИК-излучение образца (см. таблицу материалов). Для измерений наноИК-спектроскопии предпочтительно использовать кантилевер, который перед использованием хранился в среде, свободной от полидиметилсилоксана.
  3. Выровняйте считывающий лазер на свободном конце консольного луча, повернув ручки лазерной юстировки (регулировка положения лазера по осям X и Y и регулировка положения детектора по вертикали).
    1. Максимизируйте СУММ-сигнал детектора.
    2. Отрегулируйте положение детектора, повернув ручку отклонения так, чтобы лазер был выровнен по центру позиционно-чувствительного детектора системы считывания АСМ, что соответствует сигналу вертикального отклонения ~0 В.
  4. Нажмите на иконку Load в панели управления AFM " Probe ".
    1. Следуйте инструкциям на экране мастера. С помощью стрелок фокусировки определите фокальную плоскость консоли наноИК. Используйте элементы управления смещением по оси XY, чтобы расположить консоль в центре экрана (выровняв по белому кресту).
    2. Далее нажимаем на стрелки фокуса , чтобы найти фокальную плоскость поверхности образца.
    3. Используйте оптический вид системы и элементы управления перемещением по оси XY, чтобы расположить консольный наконечник над интересующим вас валиком и нажмите кнопку Далее.
    4. На экране включения установите «зазор» на 50 мкм и нажмите «Только приближение».
  5. Запустите процедуру Engage , чтобы приблизиться к наконечнику для визуализации.

5. Создание топографических и наноИК изображений мультиполимерного образца

  1. Получение топографических изображений в стандартном «Контактном режиме». После того, как положение консоли по отношению к валику PS установлено, начните заход на посадку, щелкнув значок зацепления на панели управления AFM "Probe". Заданное значение дифференциала прогиба 0,2 В используется для всего исследования, что соответствует силе ~100 нН.
    В панели управления АСМ «Сканирование» установите частоту сканирования 0,8 Гц, размер сканирования (высоту и ширину), а также количество точек на строке и количество строк на изображении , которое будет использоваться для визуализации (здесь использовалось 512 x 512). Нажмите на кнопку Сканировать, чтобы получить изображение топографии.
    ПРИМЕЧАНИЕ: Калибровка кантилевера18 производится путем определения чувствительности к прогибу (в нм/В) по наклону кривой прогиб-расстояние, полученной при взаимодействии кантилевера с сапфировой подложкой (дополнительный рисунок 1A). Жесткость кантилевера определяется по тепловой настройке19 (дополнительный рисунок 1B). Резонанс кантилевера настраивается с помощью функции Лоренца. Жесткость кантилевера (в Н/м) определяется с помощью теоремы figure-protocol-1о равнораспределении , где KB– постоянная Больцмана, T – температура (T = 295K), а P – площадь спектра мощности тепловых флуктуаций кантилевера, определяемая интегрированием лоренцевой аппроксимации данных тепловой настройки20.
  2. Для наноИК-измерений расположите зонд АСМ на интересующем объекте, идентифицированном на топографическом изображении.
    1. Выберите значок камертона на панели управления nanoIR, чтобы определить частоты контактного резонанса кантилевера. Установите волновое число освещенности, которое будет возбуждать фототепловое расширение в материале. Установите диапазон частоты лазерных импульсов для развертки и установите рабочий цикл наноИК-лазера. Выберите «Получить » в «Окне настройки лазерного импульса».
    2. Выберите второй контактный резонанс системы зонд-образец для наноИК-измерений, расположив маркерную полосу (зеленая вертикальная линия) на пике второго контактного резонанса.
      ПРИМЕЧАНИЕ: Выбор режима контактного резонанса может варьироваться в зависимости от типа кантилевера и образца.
    3. Нажмите кнопку Optimize (Оптимизировать ), чтобы выровнять центр фокальной области ИК-лазера с положением консольного наконечника. Юстировка выполняется по выбранному волновому числу ИК-подсветки, соответствующему полосе поглощения исследуемого материала. Консоль расположена в центре лазерного следа (дополнительный рисунок 2).
      ПРИМЕЧАНИЕ: Юстировка может варьироваться для различных волновых чисел в зависимости от модели лазера.
    4. Получите фон ИК-лазерной подсветки. Он заключается в измерении выходного сигнала ИК-квантового каскадного лазера (ККЛ) в диапазоне длин волн излучения при выбранной частоте импульса (дополнительный рисунок 3). Это важно для коррекции фона наноИК-спектров.
    5. Получите спектр nanoIR, выбрав диапазон волновых чисел (здесь Start и Stop установлены на 1,530 см-1 и 1,800 см-1 соответственно), размер шага (2 см-1) и количество средних , используемых для измерения. Выполните фоновую коррекцию отображаемых спектров путем деления измеренной фототепловой амплитуды на ослабленный фон, которая заключается в умножении фона, собранного на шаге 5.2.4, на процент мощности, выбранный для измерения.
  3. Для наноИК-визуализации выберите интересующую область для визуализации.
    1. Включите автоматическую настройку контура фазовой автоподстройки (ФАПЧ) в «Окне настройки лазерного импульса» (доступ к которому можно получить по значку камертона ).
    2. Отрегулируйте минимальную и максимальную частоту, чтобы создать диапазон развертки с центром во втором резонансном режиме на общей панели управления.
    3. Обнулите фазу, щелкнув по нулю на панели управления ФАПЧ, а затем нажмите OK в окне «Настройка лазерных импульсов».
    4. Выберите ИК-визуализация включена, установив флажок в поле на панели управления nanoIR.
    5. На панели управления "Imaging View" выберите Height (Imaging View 1), Amplitude 2 (Imaging View 2) и Phase 2 (Imaging View 3) для получения топографических и химических изображений образца. Задайте направление сбора данных Трассировка (или Повторная трассировка). Линейная аппроксимация Линия часто требуется для наблюдения за топографическим изображением получаемого образца. Для параметра «Подгонка захвата» должно быть установлено значение «Нет».
      ПРИМЕЧАНИЕ: Настройки сканирования, такие как направление сканирования или используемая цветовая палитра, могут быть изменены по мере необходимости.
    6. В панели управления AFM «Сканирование» выберите значок «Сканировать ».
    7. Чтобы сохранить изображение, выберите значок « Сейчас » или «Конец кадра » на панели управления «Захват».
  4. Чтобы экспортировать данные, щелкните правой кнопкой мыши имя файла изображения или спектра в списках данных. Нажмите кнопку Экспорт и выберите формат файла для экспорта. Сохраните файл в нужной папке компьютера.

Доступ ограничен. Войдите в систему или начните пробный период, чтобы просмотреть этот контент.

Результаты

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Шарики PS ((C8H8)n) наносили на чистую кремниевую подложку (рис. 1A) и на ПВС ((CH2CHOH)n) (рис. 1B,C). Из-за плохой адгезии шарика к кремнию для этого образца не удалось получить наноИК-изображение в контактном режиме. Вместо этого, используя оптический вид образца в наноИК-диапазоне, зонд АСМ с позолоченным покрытием был включен в контакт с шариком PS в контактном режиме с расчетным усилие...

Доступ ограничен. Войдите в систему или начните пробный период, чтобы просмотреть этот контент.

Обсуждение

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

АСМ в сочетании с наноИК-спектроскопией может предоставлять наноразмерную химическую информацию с помощью кантилевера в контактном режиме и импульсного перестраиваемого ИК-источника света. Модельные системы, такие как встраивание абсорбера с конечными размерами в объем полимерного материала, важны для улучшения понимания механизмов формирования изображения и определения производительности инструмента. В случае представленной здесь конфигурации PS/PVA была проведена оптимизация для получения стабильного валика PS, располо...

Доступ ограничен. Войдите в систему или начните пробный период, чтобы просмотреть этот контент.

Раскрытие информации

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Авторам нечего раскрывать.

Благодарности

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Работа выполнена при поддержке Национального научного фонда (NSF CHE-1847830).

Доступ ограничен. Войдите в систему или начните пробный период, чтобы просмотреть этот контент.

Материалы

Список материалов, использованных в этой статье
ИмяКомпанияКаталожный номерКомментарии
10|0 2200 Золотой таклон круглыйZem
5357-8NM ПинцетPelco
Клейкие вкладкиTed Pella16079
AFM металлические диски для образцовTed Pella16208
БинокулярныйAmScope
для наноинфракрасных измеренийAppNanoFORTGG
Чашки для клеточных культурGreiner bio-one GmbH
Влагопоглотитель
Плавающий оптический столNewportRS 4000
Плита с конфоркойVWR
Изопропанол 
KimwipesKIMTECH
Magnetic stir bar
Микрочастицы на основе размера полистирола: 5 & микро; mSIGMA-ALDRICH79633
nanoIR2 микроскопBrukerКонтактный режим NanoIR2
Азотный бакВоздух
чашки ПетриGreiner bio-one GmbH
Поливиниловый спиртSIGMA-ALDRICH363170этот полимер был гидролизован всего на 87%-89%, что объясняет наличие остаточного C=O при 1730 см-1
Quantum Cascade LaserDaylight Solutions1550-1800 см-1 диапазон
Кремниевая пластинаMEMC St. Peters#901319343000
Spin coaterOscilla
кантилевер

Ссылки

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,
  1. Dufrêne, Y. F., Viljoen, A., Mignolet, J., Mathelié-Guinlet, M. AFM in cellular and molecular microbiology. Cellular Microbiology. 23 (7), e13324(2021).
  2. Sharma, A., Rout, C. S. Probe-based techniques for 2D layered materials. Advanced Analytical Techniques for Characterization of 2D Materials. , AIP Publishing. Melville, New York. 1-14 (2022).
  3. Zhong, J., Yan, J. Seeing is believing: atomic force microscopy imaging for nanomaterial research. RSC Advances. 6 (2), 1103-1121 (2016).
  4. Olubowale, O. H., et al. 34;May the force be with you!" Force-volume mapping with atomic force microscopy. ACS Omega. 6 (40), 25860-25875 (2021).
  5. Dokukin, M. E., Sokolov, I. Quantitative mapping of the elastic modulus of soft materials with HarmoniX and PeakForce QNM AFM modes. Langmuir. 28 (46), 16060-16071 (2012).
  6. Nguyen-Tri, P., et al. Recent applications of advanced atomic force microscopy in polymer science: a review. Polymers. 12 (5), 1142(2020).
  7. Vitry, P., et al. Mode-synthesizing atomic force microscopy for 3D reconstruction of embedded low-density dielectric nanostructures. Nano Research. 8 (7), 2199-2205 (2015).
  8. Coste, R., Pernes, M., Tetard, L., Molinari, M., Chabbert, B. Effect of the interplay of composition and environmental humidity on the nanomechanical properties of hemp fibers. ACS Sustainable Chemistry & Engineering. 8 (16), 6381-6390 (2020).
  9. Schönherr, H., Feng, C. L., Tomczak, N., Vancso, G. J. Compositional mapping of polymer surfaces by chemical force microscopy down to the nanometer scale: reactions in block copolymer microdomains. Macromolecular Symposia. 230 (1), Weinheim. 149-157 (2005).
  10. Holland-Moritz, K., Siesler, H. W. Infrared spectroscopy of polymers. Applied Spectroscopy Reviews. 11 (1), 1-55 (1976).
  11. Bhargava, R., Wang, S. Q., Koenig, J. L. FTIR microscpectrscopy of polymeric systems. Liquid Chromatography/FTIR Microspectroscopy/Microwave Assisted Synthesis. , Springer Berlin. Heidelberg Berlin. Heidelberg. 137-191 (2003).
  12. Rao, V. J., et al. AFM-IR and IR-SNOM for the characterization of small molecule organic semiconductors. The Journal of Physical Chemistry C. 124 (9), 5331-5344 (2020).
  13. Wang, H., Wang, L., Xu, X. G. Scattering-type scanning near-field optical microscopy with low-repetition-rate pulsed light source through phase-domain sampling. Nature Communications. 7 (1), 13212(2016).
  14. Dazzi, A., Prater, C. B. AFM-IR: Technology and applications in nanoscale infrared spectroscopy and chemical imaging. Chemical Reviews. 117 (7), 5146-5173 (2017).
  15. Mathurin, J., et al. Photothermal AFM-IR spectroscopy and imaging: Status, challenges, and trends. Journal of Applied Physics. 131 (1), 010901(2022).
  16. Miller, A., et al. Enhanced surface nanoanalytics of transient biomolecular processes. Science Advances. 9 (2), 3151(2023).
  17. Emin, D., et al. Small soluble α-synuclein aggregates are the toxic species in Parkinson's disease. Nature Communications. 13 (1), 5512(2022).
  18. Jardine, K., Dove, A., Tetard, L. AFM force measurements to explore grain contacts with relevance for planetary materials. The Planetary Science Journal. 3 (12), 273(2022).
  19. Sader, J. E., Chon, J. W. M., Mulvaney, P. Calibration of rectangular atomic force microscope cantilevers. Review of Scientific Instruments. 70 (10), 3967-3969 (1999).
  20. Higgins, M. J., et al. Noninvasive determination of optical lever sensitivity in atomic force microscopy. Review of Scientific Instruments. 77 (1), 013701(2006).
  21. Smith, B. The infrared spectra of polymers III: hydrocarbon polymers. Spectroscopy. 36 (11), 22-25 (2021).
  22. Korbag, I., Mohamed Saleh, S. Studies on the formation of intermolecular interactions and structural characterization of polyvinyl alcohol/lignin film. International Journal of Environmental Studies. 73 (2), 226-235 (2016).
  23. Tetard, L., Passian, A., Farahi, R. H., Thundat, T., Davison, B. H. Opto-nanomechanical spectroscopic material characterization. Nature Nanotechnology. 10 (10), 870-877 (2015).
  24. Bai, Y., Yin, J., Cheng, J. -X. Bond-selective imaging by optically sensing the mid-infrared photothermal effect. Science Advances. 7 (20), (2021).

Доступ ограничен. Войдите в систему или начните пробный период, чтобы просмотреть этот контент.

Перепечатки и разрешения

Запросить разрешение на повторное использование текста или иллюстраций этой статьи JoVE

Запросить разрешение

Теги

Похожие статьи