Для просмотра этого контента требуется подписка на JoVE. Войдите или начните свой бесплатный пробный период.

Методическая статья

Применение акупотомии на модели остеоартроза коленного сустава у кроликов

2.3K просмотров

⸱

DOI:

10.3791/65584

⸱

20 октября 2023 г.

В этой статье

Краткое содержание

В этом протоколе была подготовлена модель остеоартроза коленного сустава с использованием модифицированного метода Видемана, а также подробно описаны процедуры операции и меры предосторожности при акупотомии. Эффективность акупотомии была продемонстрирована путем тестирования механических свойств четырехглавой мышцы бедра и сухожилия, а также механических и морфологических свойств хряща.

Аннотация

Артроз коленного сустава (КОА) является одним из наиболее часто встречающихся заболеваний в ортопедическом отделении, которое серьезно снижает качество жизни людей с КОА. Среди нескольких патогенных факторов биомеханический дисбаланс коленного сустава является одной из основных причин КОА. Акупотомологи считают, что восстановление механического баланса коленного сустава является ключом к лечению КОА. Клинические исследования показали, что акупотомия может эффективно уменьшить боль и улучшить подвижность коленного сустава за счет уменьшения адгезии, контрактуры мягких тканей и точек концентрации напряжения в мышцах и сухожилиях вокруг коленного сустава.

В этом протоколе мы использовали модифицированный метод Видемана для создания модели КОА путем иммобилизации левой задней конечности в прямом положении. Мы подробно описали метод операции и меры предосторожности, связанные с акупотомией, и оценили эффективность акупотомии в сочетании с теорией «Модуляция мышц и сухожилий для лечения заболеваний костей» путем выявления механических свойств четырехглавой мышцы бедра и сухожилия, а также механики и морфологии хряща. Результаты показывают, что акупотомия оказывает защитное действие на хрящ, регулируя механические свойства мягких тканей вокруг коленного сустава, улучшая стрессовую среду хряща и задерживая дегенерацию хряща.

Введение

Остеоартроз коленного сустава (КОА) является наиболее частой формой остеоартрита, часто распознаваемой как заболевание всего сустава, характеризующееся дегенерацией суставного хряща, которая клинически проявляется болью, отеком и ограничением движений пораженных суставов1. Согласно последним эпидемиологическим статистическим данным, к 2020 году КОА затронул 654,1 миллиона человек во всем мире в возрасте 40 лет и старше. Распространенность и заболеваемость КОА возрастают с возрастом, являются самыми высокими среди людей среднего и пожилого возраста и чаще поражают женщин, чем мужчин2. Распространенность КОА, вероятно, будет расти из-за старения населения и эпидемии ожирения во всем мире, что представляет собой растущую угрозу глобальному общественному здравоохранению. Возраст, пол, ожирение, травмы и другие сложные факторы риска, связанные с КОА, напрямую влияют на нестабильность коленного сустава, что делает биомеханический дисбаланс в коленных суставах одной из основных причин КОА3.

В нормальных физиологических условиях коленный сустав находится в состоянии механического равновесия, обеспечивающего равномерное распределение механических нагрузок в суставе по хрящу. Любой механический дисбаланс в коленном суставе может привести к аномальной нагрузке на хрящ, что приводит к дегенерации хряща и возникновению КОА4. Мышечно-сухожильная система является основной динамической системой, поддерживающей механическое равновесие коленного сустава. Скоординированное движение мышце-сухожильной системы разгибателей и сгибателей может равномерно распределять нагрузку, создаваемую движением на поверхности хряща, избегая метаболического дисбаланса локальных хрящевых напряжений, выходящих за рамки его физиологической нагрузки, что приводит к потере хряща5. Снижение мышечной силы является основной причиной нарушения внутримышечных движений и повреждения хряща, которые могут возникнуть до симптоматического КОА.

КОА также может индуцировать артрогенное мышечное торможение (ОИМ), проявляющееся в виде мышечной слабости и снижения мышечной силы вокруг коленного сустава6. Среди этих мышц группа четырехглавой мышцы бедра функционирует как единственный разгибатель коленного сустава, важная структура для поддержания стабильности коленного сустава. Исследования показали, что уменьшение площади поперечного сечения квадрицепсов и мышечной силы значимо и положительно коррелирует с прогрессированием КОА7. Снижение силы квадрицепсов влияет на походку, устойчивость коленей, паттерны движений и многие другие функции. Кроме того, снижение мышечной силы ухудшает функцию сухожилий, что проявляется в снижении жесткости сухожилий, модуля упругости и других биомеханических свойств8. При длительном растяжении в мышцах и сухожилиях коленного сустава могут возникать такие изменения, как спайка и контрактура, что приводит к нарушению их механических свойств, вызывает нестабильность сустава и, в конечном счете, формирует порочный круг патологических изменений КОА. Поэтому для лечения КОА крайне важно улучшить механические свойства мышечно-сухожильной системы и восстановить механический баланс суставов.

Среди причин КОА биомеханический дисбаланс является основным фактором, вызывающим боль в колене, дисфункцию, воспалительные поражения и дегенерацию хряща9. Поэтому ключом к лечению КОА является восстановление биомеханического баланса коленного сустава. Акупотомологи считают, что этиология и патогенез КОА – это «механический дисбаланс». Когда механические характеристики мягких тканей вокруг колена аномально изменяются, коленный сустав теряет свой механический баланс, а аномальная механическая стрессовая среда сустава ускоряет дегенерацию, вызывая воспалительную стимуляцию, которая еще больше усугубляет спайки мягких тканей, контрактуры и дальнейшее снижение стабильности сустава. Этот порочный круг в конечном итоге перерастает в КОА. Ослабляя спайки и контрактуры мягких тканей, а также снижая концентрацию напряжения в мышцах и сухожилиях, акупотомия в сочетании с теорией «Модуляция мышц и сухожилий для лечения заболеваний костей» улучшает механику мягких тканей и «модулирует мышцы и сухожилия», что уравновешивает механическую нагрузку на сустав, эффективно облегчая дегенерацию хряща и «леча заболевания костей»10. С точки зрения выбора модели животного, исходя из цели данного исследования, была подготовлена модель КОА по модифицированному методу иммобилизации разгибания левой задней конечности по методу Видемана.

В данной работе подробно описано создание модели КОА с использованием модифицированного метода иммобилизации разгибания левой задней конечности по методу Видемана, а также метод операции и меры предосторожности при акупотомии. Мы демонстрируем эффективность акупотомии, проверяя механические свойства четырехглавой мышцы бедра и сухожилия и выявляя изменения напряжения и морфологии суставного хряща.

Доступ ограничен. Войдите в систему или начните пробный период, чтобы просмотреть этот контент.

Протокол

Все эксперименты на животных были рассмотрены и одобрены Комитетом по этике животных Пекинского университета китайской медицины (No. BUCM-4-2022010101-1097). В этом протоколе 24 6-недельных новозеландских кролика-самцов содержались в определенных условиях, а именно при температуре 20-25 °C, влажности 50-60% и циркадном цикле 12 часов света и 12 часов в темноте, со свободным доступом к обычному рациону чау-чау. Кроликов обезболивали и приносили в жертву, сочетая глубокую анестезию и воздушную эмболизацию. Боль является одним из типичных патологических признаков КОА, а также является одним из ключевых показателей, используемых для оценки животных моделей КОА и методов вмешательства, поэтому анальгетики при подготовке модели не используются.

1. Модель кролика КОА

  1. Обезболивайте кроликов 3% пентобарбиталом натрия (30 мг/кг) внутривенно по краю уха. Чтобы подтвердить надлежащий уровень анестезии, обратите внимание на значительно ослабленный или отсутствующий роговичный рефлекс и отсутствие боли при пережатии кожи гемостатическими щипцами. Во время анестезии каждые 15 минут добавляйте 2-3 капли смазки в глаза кроликам, чтобы предотвратить пересыхание глаз кроликов.
  2. После анестезии зафиксируйте каждого кролика в положении лежа на спине, вытянув левую заднюю конечность в полностью выпрямленное положение.
  3. Зафиксируйте левую заднюю конечность каждого кролика в вытянутом положении.
    1. В качестве первого слоя используйте медицинский пластырь, чтобы покрыть кожу кролика от паха до голеностопного сустава.
    2. В качестве второго слоя намотайте поверх медицинской ленты двусторонний поролоновый скотч шириной 36 мм, а затем намотайте полимерную повязку от паха до голеностопного сустава. Убедитесь, что коленный сустав выпрямлен на 180°, а голеностопный сустав согнут на 60°.
    3. В качестве третьего слоя иммобилизуйте суставы небольшими шинами спереди и сзади коленного и голеностопного суставов, а внешний слой оберните стальной сеткой для защиты от укусов. Подставьте кроликам пальцы ног, чтобы проверить, нормально ли кровообращение.
  4. Обездвиживайте животных в течение 6 недель, чтобы установить модель КОА (рис. 1).
    ПРИМЕЧАНИЕ: 1) Во время подготовки модели проверяйте пресс-формы через день. Если какие-либо формы ослаблены или отслоились, обезболивайте кроликов и повторно иммобилизуйте левые задние конечности в вытянутом положении. 2) Постелите на дно клеток защитные коврики, чтобы конечности кроликов не застряли и не нанесли травмы.

2. Акупотомическое вмешательство

ПРИМЕЧАНИЕ: Перед началом акупотомического вмешательства обезболивайте кроликов 3% пентобарбиталом натрия (30 мг/кг) путем внутривенной инъекции через ушной край.

  1. Определите точки лечения.
    1. Сбривают шерсть коленного сустава левой задней конечности кролика.
    2. Пальпируйте вставку сухожилия медиальной бедренной мышцы коленного сустава кролика, вставку сухожилия прямой бедренной кости, вставку сухожилия двуглавой мышцы бедра и синовиальную сумку гусиной лапки. Отметьте патологические уплотнения локальных мышц стерильным кожным маркером. Продезинфицируйте коленный сустав три раза, чередуя приемы медицинского йодофора и 75% медицинского спирта.
  2. Операция акупотомии
    1. Держите акупотомическое лезвие параллельно направлению движения, параллельно сухожилию и продольной оси конечности.
    2. Большим пальцем левой руки надавите на кожу, входящую в точку маркера, и двигайтесь вбок так, чтобы кровеносные сосуды и нервы были разделены на вентральной стороне большого пальца.
    3. Держа рукоятку для акупотомии в правой руке, быстро надавите с небольшим усилием, чтобы лезвие для акупотомии мгновенно прошло через кожу. Медленно продвигайте акупотомическое лезвие к локальным мышечным уплотнениям и делайте продольные надрезы и махи в стороны.
    4. После завершения операции акупотомии еще раз продезинфицируйте коленный сустав и наложите пластырь.
  3. Выполняйте эту операцию один раз в неделю в течение 4 недель (рисунок 2).
    ПРИМЕЧАНИЕ: 1) Если в месте прикрепления сухожилия medialis, vastus lateralis, прямой мышцы бедра, двуглавой мышцы бедра или ансериновой сумки нет уплотнения или пуповидной ткани, следует использовать иглу для акупотомии, чтобы освободить их сухожильные вставки напрямую. 2) Во время акупотомического вмешательства не иммобилизуйте левые задние конечности кроликов в группе акупотомии и модельной группе в положении разгибания.

3. Модуль упругости четырехглавой мышцы бедра

ПРИМЕЧАНИЕ: 1) В этом эксперименте использовался ультразвуковой диагностический прибор для эластографии сдвиговой волны (SWE) в реальном времени для измерения модуля упругости четырехглавой мышцы бедра in vivo в каждой группе кроликов. 2) Тестер должен быть опытным сонографистом в ультразвуковом обнаружении. При измерении ультразвуковой датчик следует аккуратно помещать на поверхность кожи квадрицепсов, чтобы избежать локального мышечного напряжения. Измерения нужно проводить, когда животное находится в спокойном состоянии, без борьбы и активности. Если животное активно, подождите, пока оно успокоится, прежде чем проводить тест.

  1. Сбрейте шерсть, чтобы обнажить кожу в области квадрицепсов левой задней конечности.
  2. Используйте обычное двумерное ультразвуковое исследование для определения местоположения четырехглавой мышцы живота и определения области интереса (ROI), установленной на глубине 1-2 см.
  3. Запустите режим SWE для проверки.
    1. Равномерно установите область интереса на круглую область диаметром 2 мм и область интереса на глубину ~0,5-1 см от поверхности кожи.
    2. Используйте ультразвуковой диагностический прибор для генерации импульса силы акустического излучения для стимуляции мышечной ткани и получения тканевой эластографии.
    3. Подождите 2–3 секунды, пока изображение стабилизируется, а затем заморозьте изображение. Активируйте функцию Q-BOX прибора, чтобы измерить модуль Юнга четырехглавой мышцы.
    4. Подождите, пока система автоматически рассчитает максимальное, минимальное и среднее значения (единица измерения: KPa) модуля Юнга ROI. Выберите три ROI на одной глубине для трех измерений и возьмите среднее значение для статистического анализа.
      ПРИМЕЧАНИЕ: Тестер должен быть опытным сонографистом в ультразвуковом обнаружении. При измерении ультразвуковой датчик следует аккуратно помещать на поверхность кожи квадрицепсов, чтобы избежать локального мышечного напряжения. Измерения нужно проводить, когда животное находится в спокойном состоянии, без борьбы и активности. Если животное активно, подождите, пока оно успокоится, прежде чем проводить тест.

4. Измерение силы сокращения четырехглавой мышцы бедра

ПРИМЕЧАНИЕ: После измерения силы сокращения четырехглавой мышцы бедра кроликов усыпляли с помощью воздушной эмболии под наркозом.

  1. Обезболивайте кроликов 3% пентобарбиталом натрия (30 мг/кг) внутривенно по краю уха. Чтобы убедиться в том, что был достигнут надлежащий уровень анестезии, обратите внимание на значительно ослабленный или отсутствующий роговичный рефлекс и отсутствие боли при зажиме кожи гемостатическими щипцами. Во время анестезии каждые 15 минут добавляйте 2-3 капли смазки в глаза кроликам, чтобы предотвратить пересыхание глаз кроликов.
  2. Обнажите четырехглавые мышцы и прикрепите датчик напряжения.
    1. Срежьте кожу ниже коленной чашечки, по продольной оси конечности вверх до основания бедра, и продолжайте разрезать кожу вверх на 3-4 см. Осторожно снимите кожу и фасцию и обнажите мышцу. Разрежьте связку надколенника и аккуратно отделите квадрицепсы от подвздошного соединения, сохраняя квадрицепсы в соединении с подвздошной мышцей.
    2. Наложите хирургические швы на сухожильное соединение между коленной чашечкой и четырехглавой мышцей. Растяните мышцу на всю длину в естественном состоянии, а затем прикрепите ее к датчику напряжения. Держите линию лигирования на мышце на прямой линии с линией лигирования на датчике силы.
    3. Закрепите датчик натяжения на кронштейне. Подсоедините линию сбора сигналов на преобразователе напряжения к процессору системы сбора биосигналов.
  3. Измерьте сократительную производительность четырехглавой мышцы.
    1. Вставляйте электроды параллельно четырехглавой мышце живота и избегайте любого контакта между электродами.
    2. Нажмите кнопку осциллографа. Отрегулируйте положение датчика силы на кронштейне, чтобы поддерживать базовую линию на нуле. Выберите параметры стимуляции стимулятора с шириной волны 5 мс и задержкой 10 мс.
    3. Сначала используйте один стимул и постепенно регулируйте интенсивность стимула от нуля с шагом 0,1 В каждый раз. Наблюдайте за изменениями кривой сокращения мышц и амплитуды сокращений до тех пор, пока не будет определена максимальная амплитуда одиночного сокращения (Pt) квадрицепсов. Запишите его для последующей статистики.
    4. Используйте кластерный стимул и используйте амплитуду стимула, которая индуцирует максимальную амплитуду однократного сокращения, в качестве базового уровня, чтобы непрерывно стимулировать мышцу и постепенно увеличивать частоту стимулов. Наблюдайте за изменениями кривой сокращения мышц до тех пор, пока не будет определена максимальная амплитуда сокращения (Pt) квадрицепсов. Запишите его для последующей статистики.
      ПРИМЕЧАНИЕ: 1) После каждого мышечного сокращения мышце следует дать 30 секунд для расслабления, при этом мышечный буферный раствор непрерывно капает на мышцу. 2) Во время операции судите об анестезиологическом статусе, наблюдая за рефлексом век кроликов, ритмом дыхания, расслаблением мышц и реакцией на пощипывание кожи.

5. Механические характеристики сухожилия четырехглавой мышцы бедра

  1. Предварительная обработка: В день испытания измерьте длину, ширину и толщину сухожилия четырехглавой мышцы бедра штангенциркулем и установите специальный противоскользящий зажим в машину для усталостных испытаний. Повторная загрузка и выгрузка 15 раз для предварительной обработки.
  2. Тест на релаксацию напряжений: используйте датчик в диапазоне от 0 Н до 100 Н, растягивайте его со скоростью 5 мм/мин, пока он не достигнет необходимой длины, а затем начните сбор данных. Установите время сбора данных компьютера от t (0), собирая данные каждые 0,1 с, продолжительностью 1 800 с. После достижения заданного времени запишите данные и кривые.
  3. Испытание на растяжение: используйте датчик в диапазоне от 0 Н до 100 Н и растягивайте его со скоростью 5 мм/мин до максимальной нагрузки, пока образец не будет разорван. После испытания рассчитайте максимальное перемещение, предельную нагрузку и жесткость образца.

6. Контактное поверхностное давление сустава и давление на единицу площади хряща

  1. Зафиксируйте образцы бедренной и большеберцовой костей с обеих сторон в прямом положении на приспособлении и выполните испытание на преднатяг. Измерьте приблизительный диапазон коленного сустава, нарежьте чувствительную к давлению бумагу такой же формы и запечатайте ее полиэтиленовой пленкой.
  2. Поместите запечатанную бумагу, чувствительную к давлению, между большеберцовым и бедренным суставами и проведите испытание коленного сустава давлением 5 мм/мин и максимальным давлением 50 Н. Поддерживайте давление в течение 2 минут, пока оно не достигнет 50 Н, когда чувствительная к давлению бумага стабильно окрасится.
  3. Через 2 минуты снимите чувствительную к давлению бумагу, закрепите цветную поверхность на листе бумаги формата А4 и сделайте снимки с отложенным масштабом.
  4. Загрузите изображение на компьютер. Используйте справочное программное обеспечение для измерения площади и многосегментного измерения для нерегулярных фигур. Измерьте давление на внутреннюю и внешнюю стороны суставов бедренной и большеберцовой костей и запишите результаты.

7. Окрашивание хряща коленного сустава Safranin O/Fast Green

  1. После окончания акупотомического вмешательства берут ткани хрящево-субхондрального костного комплекса и встраивают их в парафин. Нарежьте подготовленную ткань восковыми блоками и подготовьте предметные стекла. Депарафинизируйте подготовленные тканевые предметные стекла раствором для депарафинизации окружающей среды (I) и раствором для депарафинизации окружающей среды (II) в течение 15 мин каждый; затем последовательно погружают их в ксилол и безводный этанол (1:1), безводный этанол (I), 95% этанол, 85% этанол и 75% этанол по 2-5 мин на каждом этапе; И, наконец, замочите их в дистиллированной воде на 15 минут.
  2. Выполните окрашивание.
    1. Прокрасьте предметные стекла раствором Fast Green в течение 1 минуты. Во время этого процесса выньте предметные стекла из раствора и наблюдайте за ними под микроскопом до тех пор, пока ткань не окрасится в темно-зеленый цвет.
    2. Разделение цвета: Смойте излишки раствора Fast Green сверхчистой водой. Быстро замочите предметные стекла в 1% растворе уксусной кислоты на 5 - 10 секунд.  Снова промойте предметное стекло сверхчистой водой.
    3. Окрашивайте предметные стекла в растворе сафранина О в течение 10-15 мин, пока хрящ не окрасится в красный цвет.
  3. Обезвоживайте и осветляйте ткани, запечатывайте предметные стекла и наблюдайте за ними под микроскопом.
    1. Замочите предметные стекла в 75% этаноле, 85% этаноле, 95% этаноле и 100% этаноле в течение 3–5 секунд подряд.
    2. Окуните предметные стекла в раствор для депарафинизации окружающей среды (I) и раствор для депарафинизации окружающей среды (II) на 10 минут последовательно. Выньте предметные стекла и капните нейтральную смолистую среду на переднюю часть предметных стекол, избегая ткани. Положите край покровного стекла на предметное стекло, а затем медленно опустите его, чтобы покрыть нейтральный бальзам. Удалите воздух и избегайте пузырьков воздуха. Сотрите излишки ксилола и нейтрального бальзама и оставьте на ночь при комнатной температуре.
    3. Рассматривайте предметные стекла под микроскопом и получайте изображения. Для каждой группы выберите шесть образцов коленного хряща кролика и случайным образом выберите четыре разных поля просмотра для каждого образца для оценки. Оценивают гистологию хряща каждой группы по методу Манкина (табл. 1).

8. Статистический анализ

  1. Выражайте данные в виде среднего значения ± стандартного отклонения (figure-protocol-1 ± с).
  2. Выполните односторонний дисперсионный анализ (ANOVA) и тест ЛСД для определения статистической значимости сравнений нескольких групп.
  3. Считать различия статистически значимыми, когда P < 0,05.

Доступ ограничен. Войдите в систему или начните пробный период, чтобы просмотреть этот контент.

Результаты

Экспериментальные результаты механических свойств четырехглавой мышцы бедра и сухожилия
Для оценки влияния акупотомологии на механические свойства четырехглавой мышцы бедра у кроликов с КОА использовали упругую ультразвуковую визуализацию сдвиговой волной в реальном времени и датчик мышечного напряжения соответственно. По сравнению с контрольной группой, модуль Юнга четырехглавой мышцы бедра в группе КОА был снижен (P < 0,05). По сравнению с группой КОА модуль Юнга в группе акупотомии был ...

Доступ ограничен. Войдите в систему или начните пробный период, чтобы просмотреть этот контент.

Обсуждение

Подходящая модель животного является одним из ключевых факторов для достижения экспериментальных целей и прояснения конкретного научного вопроса. Это исследование было основано на теориях «Цзунцзинь, контролирующего кости и смазывающего суставы» и «механического дисбаланса» в акупотомологии, с целью объяснить научную коннотацию, лежащую в основе лечения КОА путем «модуляции мышц и сухожилий для лечения заболеваний костей» в терапии акупотомии. Другими словами, акупотомия улучшает аномальную механическую среду хряща, регу...

Доступ ограничен. Войдите в систему или начните пробный период, чтобы просмотреть этот контент.

Раскрытие информации

У авторов нет конфликта интересов, который можно было бы раскрыть.

Благодарности

Работа выполнена при поддержке Национального фонда естественных наук Китая (No82074523,82104996).

Доступ ограничен. Войдите в систему или начните пробный период, чтобы просмотреть этот контент.

Материалы

Список материалов, использованных в этой статье
ИмяКомпанияКаталожный номерКомментарии
АкупотомияBeijing Zhuoyue Huayou Medical Devices Co., Ltd.0,4 x 40 мм
Connect Литая ортопедическая литьевая лентаSuzhou Connect Medical Technology Co., Ltd.KCP0615,0 см x 360 см
Двухсторонняя пенопластовая лентаDeli Group Co., Ltd.NO.3041636 мм x 5 ярдов x 2,5 мм
Решение для депарафинизации окружающей средыWuhan Servicebio Technology Co., Ltd.G1128
Абсолютный этанолBeijing Hengkangda Medicine Co., Ltd.
Быстрое зеленое решениеWuhan Servicebio Technology Co., Ltd.G1031
Fast grenn FCFSigma, Америка2353-45-9
Машина для усталостных испытанийBOSE, АмерикаBose Electro Force 3300
Четырехканальный физиологический регистраторChengdu Instrumeny FrctoryRM-6420
FPD-305EFuji, Япония
FPD-306EFuji, Япония
Раствор гематоксилинаWuhan Servicebio Technology Co., Ltd.G1005
Медицинский йодофор дезинфицирующее средствоShan Dong Lircon Medical Technology Co., Ltd.
Медицинская лентаShandong Rongjian Sanitary Products Co., Ltd.2004021,5 x 500 см
Датчик мышечного напряжения Chengdu Instrumeny FrctoryJH-2204005, 50 г
PrescaleFuji, Япония
Ультразвуковой диагностический прибор SWE в реальном времениSuperSonic Imagine SA, ФранцияSuperSonic Imagine AixPlorer
Rhamsan gumWuhan Servicebio Technology Co., Ltd.
Safranine O Sigma, Америка477-73-6
Safranine O solutionWuhan Servicebio Technology Co., Ltd.G1015
Статистический пакет для социальных наук (SPSS)IBM, Америка
WG10004160

Ссылки

  1. Roseti, L., Desando, G., Cavallo, C., Petretta, M., Grigolo, B. Articular cartilage regeneration in osteoarthritis. Cells. 8 (11), 1305(2019).
  2. Cui, A. Y., et al. Global, regional prevalence, incidence and risk factors of knee osteoarthritis in population-based studies. EClinicalMedicine. 29-30, 100587(2020).
  3. Miyauchi, A., et al. Alleviation of murine osteoarthritis by deletion of the focal adhesion mechanosensitive adapter, Hic-5. Sci Rep. 9 (1), 15770(2019).
  4. Wright, T. Biomechanical factors in osteoarthritis: the effects of joint instability. HSS J. 8 (1), 15-17 (2012).
  5. Patsika, G., Kellis, E., Kofotolis, N., Salonikidis, K., Amiridis, I. G. Synergetic and antagonist muscle strength and activity in women with knee osteoarthritis. J Geriatr Phys Ther. 37 (1), 17-23 (2014).
  6. Blalock, D., Miller, A., Tilley, M., Wang, J. X. Joint instability and osteoarthritis. Clin Med Insights. Arthritis and Musculoskelet Disord. 8, 15-23 (2015).
  7. Henriksen, M., Christensen, R., Danneskiold-Samsøe, B., Bliddal, H. Changes in lower extremity muscle mass and muscle strength after weight loss in obese patients with knee osteoarthritis: a prospective cohort study. Arthritis Rheum. 64 (2), 438-442 (2012).
  8. Schwartz, A. G., Lipner, J. H., Pasteris, J. D., Genin, G. M., Thomopoulos, S. Muscle loading is necessary for the formation of a functional tendon enthesis. Bone. 55 (1), 44-51 (2013).
  9. Felson, D. T. Osteoarthritis as a disease of mechanics. Osteoarthr Cartil. 21 (1), 10-15 (2013).
  10. Ma, S. N., et al. Effect of acupotomy on FAK-PI3K signaling pathways in KOA rabbit articular cartilages. Evid Based Complement Alternat Med. 2017, 4535326(2017).
  11. Yu, P., et al. Research progress of experimental animal models of knee osteoarthritis. China Medical Herald. 16 (27), 41-44 (2019).
  12. Li, L. H., et al. Research progress of rabbit knee osteoarthritis model. Journal of Jiangxi University of Chinese Medicine. 31 (4), 108-113 (2019).
  13. Zhang, W., Gao, Y., Guo, C. Q., Khattab, I. Z. A., Mokhtari, F. Effect of acupotomy versus electroacupuncture on ethology and morphology in a rabbit model of knee osteoarthritis. J Tradit Chin Med. 39 (2), 229-236 (2019).
  14. An, X. Y., et al. Chondroprotective effects of combination therapy of acupotomy and human adipose mesenchymal stem cells in knee osteoarthritis rabbits via the GSK3 beta-cyclin D1-CDK4/CDK6 signaling pathway. Aging Dis. 11 (5), 1116-1132 (2020).
  15. Guo, C. Q., Liu, N. G. Analysis on the distribution features of Ashi points in Jingjin disorders. Journal of Basic Chinese Medicine. 17 (8), 899-900 (2011).
  16. Guo, C. Q., et al. Effects of acupotomy therapy on tenderness point around knee joint in patients with knee osteoarthritis: a randomized controlled clinical trial. Journal of Chengdu University of Traditional Chinese Medicine. 33 (3), 3-5 (2010).
  17. Zhao, Y., Dong, F. H., Zhang, K. Analysis of soft tissues mechanical changes and treatment of meridian tendon pain. Beijing Journal of Traditional Chinese Medicine. (9), 705-707 (2008).
  18. Zhang, L. P., Cheng, F., Liu, D. Y., Zhu, L. G. Application progress of biomechanics in knee osteoarthritis. Chinese Archives of Traditional Chinese Medicine. 34 (7), 1644-1647 (2016).
  19. Thomas, A. C., Sowers, M., Karvonen-Gutierrez, C., Palmieri-Smith, R. M. Lack of quadriceps dysfunction in women with early knee osteoarthritis. J Orthop Res. 28 (5), 595-599 (2010).
  20. Li, L., et al. Effects of unloaded muscle atrophy on contractile characteristics of hind-limb skeletal muscles in mice. Space Med Med Eng. 25 (5), 322-325 (2012).

Доступ ограничен. Войдите в систему или начните пробный период, чтобы просмотреть этот контент.

Перепечатки и разрешения

Теги

Лечение методом акупотомиимодель остеоартрита коленного сустава у кроликовбиомеханические свойствазащита хрящачетырехглавая мышца бедрамеханика сухожилийгистология хрящамышечное сокращениеокрашивание тканей