Методическая статья

Детектирование взаимодействия белка CD40 с умбеллифероном с помощью дифференциальной сканирующей флуоресценции

DOI:

10.3791/66610

⸱

1 марта 2024 г.

 ,  ,  ,  , 
1Department of Tibetan Medicine, University of Tibetan Medicine, 2Innovative Institute of Chinese Medicine and Pharmacy / Academy for Interdiscipline, Chengdu University of Traditional Chinese Medicine

* These authors contributed equally

В этой статье

Краткое содержание

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Этот протокол описывает уникальный метод обнаружения связи между соединениями и молекулами белка, обеспечивающий преимущества минимальной потери образца белка и высокой точности данных.

Аннотация

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Исследование взаимодействий между различными молекулами является важнейшим аспектом понимания патогенеза заболевания и скрининга мишеней для лекарств. Умбеллиферон, активный ингредиент тибетской медицины Vicatia thibetica, проявляет иммуномодулирующее действие с неизвестным механизмом. Белок CD40 является ключевой мишенью в иммунном ответе. Таким образом, в данном исследовании используется принцип технологии дифференциальной сканирующей флуоресценции для анализа взаимодействий между белком CD40 и умбеллифероном с использованием флуоресцентных ферментных маркеров. Первоначально экспериментально была проверена стабильность белка флуоресцентного оранжевого красителя, и определен оптимальный коэффициент разбавления 1:500. Впоследствии было замечено, что значение температуры плавления (Tm) белка CD40 имеет тенденцию к снижению с увеличением концентрации. Интересно, что взаимодействие между белком CD40 и умбеллифероном повышает термическую стабильность белка CD40. Это исследование представляет собой первую попытку обнаружить связывающий потенциал низкомолекулярных соединений и белков с помощью флуоресцентных микропланшетов и флуоресцентных красителей. Метод характеризуется высокой чувствительностью и точностью, обещая достижения в области стабильности белка, структуры белка и белок-лигандных взаимодействий, что облегчает дальнейшие исследования и разведку.

Введение

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Vicatia thibetica H. Boissieu, растение из семейства зонтичных, широко используется в тибетской медицине и представляет собой один из основных компонентов пяти основных ингредиентов (Polygonatum sibiricum Delar. ex Redoute, Asparagus cochinchinensis (Lour.) Merr, Vicatia thibetica H. Boissieu, Oxybaphus himalaicus Edgew., и Gymnadenia conopsea (L.) R. Br.) 1. В основном распространен на юго-западе Китая, таких как северо-запад Юньнани, западная Сычуань, Тибет и другие районы, его высушенный корень служит местным заменителем дягиля1. Корень, известный своим ароматом, часто используется в качестве приправы к тушеному мясу, а листья, называемые тибетским сельдереем, способствуют приготовлению восхитительных блюд. Таким образом, Vicatia thibetica имеет значение не только как уникальное лекарственное растение, но и как источник пищи в Тибете.

Как отечественные, так и международные исследования показывают, что Vicatia thibetica обладает восстанавливающими кровь и тонизирующими свойствами ци (силы или энергии), полезными для регулирования менструации. Он используется для устранения симптомов нерегулярной менструальной дисменореи, вызванной сердцебиением и дефицитом крови, проявляя фармакологические эффекты, такие как антиоксидантная регуляция иммунитета организма2. Спиртовой экстракт Vicatia thibetica продемонстрировал способность восстанавливать массу тела и индекс органов у мышей с ослабленным иммунитетом, индуцированный циклофосфамидом. Кроме того, он повышает активность супероксиддисмутазы в сыворотке крови и снижает содержание малонового диальдегида, что свидетельствует об улучшении антиоксидантной способности и балансирующем эффекте на перекисное окисление липидов 2,3. Одновременно он увеличивает количество клеток крови и гемоглобина, что не только объективно отражает кроветворную функцию организма, но и играет важнейшую роль в иммунной системе 2,3.

Умбеллиферон, характеризующийся игольчатыми кристаллами и горьковатым вкусом, обладает небольшой молекулярной массой, летуч и может перегоняться паром. Он легко сублимируется, имеет низкую растворимость в воде и высокую растворимость в органических веществах. Являясь одним из основных химических компонентов Vicatia thibetica, умбеллиферон проявляет иммуномодулирующее действие на клеточный иммунитет, гуморальный иммунитет и неспецифический иммунитетв моделях иммуносупрессии с гидрокортизоном 4,5.

Молекула клеточной поверхности CD40, член суперсемейства рецепторов фактора некроза опухоли, широко экспрессируется в иммунных клетках6. Его гомологичный лиганд, CD154, также известный как CD40L, представляет собой трансмембранный белок II типа, экспрессируемый активированными Т-лимфоцитами. Активация CD40 обладает способностью повышать экспрессию костимулирующих молекул на поверхности дендритных клеток (ДК) и моноцитов. Этот процесс способствует презентации антигена молекул главного комплекса гистосовместимости (МНС) и дополнительно активирует CD8+ Т-клетки7.

Макрофаги играют решающую роль в формировании и регуляции опухолевого микроокружения, а активация CD40 может усиливать ремоделирование опухолевого микроокружения макрофагами8. Активация сигнала CD40 существенно влияет на пролиферацию и активацию В-клеток. В-клетки при активации CD40 могут функционировать как эффективные антигенпрезентирующие клетки. Они представляют антигены, генерируют активность эффекторных Т-клеток и тем самым способствуют противоопухолевым эффектам9. Кроме того, активация CD40 в опухолевых клетках может индуцировать апоптоз и ингибировать рост опухоли10. CD40 в первую очередь преобразует сигналы, контролируя активность нерецепторных тирозинкиназ, включая Lyn, Fyn, Syk и другие. Кроме того, он обладает способностью стимулировать белки Bcl-xL, Cdk4 и Cdk6, активировать факторы транскрипции Rel/NF-kB и фосфорилировать CG-2 и PI3K10.

Метод дифференциальной сканирующей флуоресценции (DSF) широко используется для оценки влияния различных условий окружающей среды, таких как состав буфера, температура и низкомолекулярные лиганды, на термическую стабильность белковых структур. Обычно используемый краситель для DSF представляет собой оранжевый, экологически чувствительный, гидрофобный краситель. В нормальных условиях структура белка сворачивается, скрывая его гидрофобный сегмент внутри. По мере повышения температуры гидрофобная область белка становится более открытой, что приводит к постепенному разрушению естественной структуры белка. Краситель избирательно связывается с этой открытой частью белка, усиливая его флуоресценцию. Затем значения Tm рассчитываются путем мониторинга изменений в детектировании флуоресцентного сигнала11. В определенной степени изменения значений Tm могут измерять сдвиги в стабильности белка из-за мутаций, изменений в буферах или связывания лигандов. Кроме того, это может указывать на структурные изменения в процессе сворачивания белка12. Такой подход обеспечивает точные данные, широкий температурный диапазон, высокую чувствительность и минимальные потери пробы белка13.

В данном исследовании определение флуоресценции проводилось с использованием флуоресцентного микропланшетного ридера вместо флуоресцентного аппарата количественной полимеразной цепной реакции (ПЦР). Эта модификация позволяет обнаруживать DSF в лабораториях, где отсутствует флуоресцентный инструмент для количественной ПЦР, что делает метод менее сложным и сокращает количество этапов, необходимых для настройки прибора, тем самым упрощая экспериментальный процесс. Однако у такого подхода есть определенные недостатки. По мере того как сложность снижается, процедура становится более громоздкой. Необходимо ручное обнаружение флуоресценции при различных температурах, а автоматический и непрерывный сбор флуоресценции из системы не может быть достигнут. Таким образом, в этом исследовании использовался метод DSF для изучения взаимодействия между белком CD40 и умбеллифероном, что позволило получить новое представление о молекулярных механизмах тибетской медицины.

Протокол

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Раствор соединения, раствор белка и краситель вводили в раствор PBS. Впоследствии образцы подвергали постепенному нагреву с помощью цифровой нагревательной сухой ванны, а термическую стабильность белков оценивали путем измерения изменения интенсивности флуоресценции в сложной системе. Подробные шаги описаны ниже, а на рисунке 1 показан обзор протокола.

1. Приготовление раствора

  1. Приготовьте 1 мМ раствор умбеллиферона, добавив 0,1 мг умбеллиферона к 616,75 мкл раствора ДМСО (см. Таблицу материалов).
  2. Приготовьте раствор белка CD40 в концентрации 200 мкг/мл, добавив 0,1 мг CD40 в 500 мкл раствора ddH2O (см. Таблицу материалов).
  3. Приготовьте 500-кратный раствор оранжевого красителя, добавив 1 мкл 5000-кратного оранжевого красителя к 9 мкл фосфатно-солевого буфера (PBS) (см. Таблицу материалов).
    ПРИМЕЧАНИЕ: Выполняйте вышеуказанные операции на льду, а поскольку пипетка имеет минимальный диапазон 0,1 мкл, первоначально разбавьте оранжевый белок-краситель в 10 раз, чтобы облегчить последующее использование.

2. Тестирование производительности красителя

  1. Добавьте 500-кратный оранжевый краситель в раствор PBS и разбавьте его до получения красителя: соотношения PBS 1:500, 1:1000, 1:2000 и 1:4000.
    ПРИМЕЧАНИЕ: Убедитесь, что конечная концентрация ДМСО не превышает 2% (v/v).
  2. Включите люминесцентный считыватель микропланшетов и разогрейте его в течение 10 минут.
  3. Откройте компьютер и программное обеспечение для сбора данных в последовательном порядке (см. Таблицу материалов).
  4. Нажмите « Прибор», выберите соответствующую модель флуоресцентного микропланшета и нажмите «ОК» в программном обеспечении для сбора данных.
    ПРИМЕЧАНИЕ: Подождите, пока флуоресцентный микропланшет завершит предварительный нагрев и отобразит температуру на панели, прежде чем открывать программное обеспечение для сбора данных, чтобы обеспечить успешное соединение между прибором и программным обеспечением.
  5. Нажмите « Настройки сбора » и выберите «Флуоресценция» в программном обеспечении для сбора данных.
  6. Отредактируйте программу в интерфейсе Длины волн: Lm1 = 470 нм, 570 нм, а затем нажмите OK.
    ПРИМЕЧАНИЕ: Оранжевый краситель может возбуждаться ультрафиолетовым светом на длине волны 300 нм или видимым светом на длине волны 470 нм, а излучение может быть измерено на длине волны 570 нм.
  7. Добавьте различные концентрации оранжевого красителя (1:500, 1:1000, 1:2000 и 1:4000) и PBS в 96-луночные планшеты со скоростью 100 μл/лунку.
    ПРИМЕЧАНИЕ: Растворите раствор в ДМСО перед добавлением его в PBS и тщательно окуните его в вихревую концентрацию при 2000 x g в процессе приготовления, чтобы обеспечить полное растворение из-за склонности красителя к выпадению в осадок.
  8. Поместите 96-луночный планшет в каскад обнаружения прибора, нажмите кнопку « Прочесть » в программном обеспечении для сбора данных и измерьте флуоресценцию каждой концентрации красителя 13 раз при комнатной температуре с интервалом в 2 минуты каждый раз.
  9. Нажимайте кнопку «Экспорт » после каждого определения, выберите «Экспорт в XML XLS TXT», выберите «Все пластины», затем выберите «Пластина в выходном формате» и, наконец, нажмите « ОК», чтобы сохранить данные в папке в формате «XLS» для дальнейшего анализа.
    ПРИМЕЧАНИЕ: Эти шаги помогают определить влияние непрерывного измерения на автофлуоресценцию оранжевого красителя при комнатной температуре и определить оптимальную концентрацию окрашивания.
  10. Включите цифровой нагрев встряхивающей сухой бани, установите температуру нагрева 35 °C, а время нагрева 2 минуты.
  11. Приготовьте оптимальное соотношение разбавления красителя в микроцентрифужной пробирке объемом 1,5 мл и поместите ее в сухую ванну с цифровым нагревом на 2 минуты.
  12. Добавьте раствор PBS и раствор окрашивания, нагретый до 35 °C, в планшет на 96 лунок в объеме 100 μл на лунку.
  13. Поместите 96-луночный планшет в ступень обнаружения прибора и нажмите кнопку « Чтение » в программном обеспечении для сбора данных.
  14. Установите температуру нагрева на 40 °C и время нагрева на 2 минуты.
  15. Направьте раствор красителя из 96-луночного планшета обратно в микроцентрифужную пробирку объемом 1,5 мл и нагрейте его в приборе в течение 2 минут.
  16. Повторите операции шагов 2.12-2.15 и шага 2.9, чтобы проверить абсорбцию раствора красителя при 35 °C, 40 °C, 45 °C, 50 °C, 55 °C, 60 °C, 65 °C, 70 °C, 75 °C, 80 °C, 85 °C, 90 °C и 95 °C соответственно.
    ПРИМЕЧАНИЕ: Эти шаги помогают определить стабильность автофлуоресценции оранжевого красителя при непрерывном нагревании при градиенте от 35 °C до 95 °C. Очень важно работать быстро, чтобы избежать резких перепадов температуры или добавления неправильной жидкости, которые могут привести к ошибкам эксперимента.

3. Определение температуры плавления (Tm) белка

  1. Смешайте белок CD40 и оранжевый краситель с раствором PBS для достижения конечных концентраций 5 г/мл, 10 г/мл, 15 г/мл, 20 г/мл и 1:500 соответственно.
  2. Повторите операции, описанные в шагах 2.2-2.6 и шагах 2.10-2.16, чтобы оценить абсорбцию раствора белка CD40 при температурах 35 °C, 40 °C, 45 °C, 50 °C, 55 °C, 60 °C, 65 °C, 70 °C, 75 °C, 80 °C, 85 °C, 90 °C и 95 °C соответственно.
  3. Повторите шаг 2.9 для сохранения и анализа данных, а затем рассчитали значение Tm с помощью программного обеспечения для анализа данных (см. Таблицу материалов).
  4. Добавьте белок CD40, умбеллиферон и оранжевый краситель в раствор PBS для получения конечных концентраций 5 мкг/мл, 10 мкг/мл, 15 мкг/мл, 20 мкг/мл, 10 мкМ и 1:500 соответственно.
    ПРИМЕЧАНИЕ: Энергичное вихревое воздействие во время приготовления раствора необходимо для обеспечения равномерного распределения красителя, белка CD40 и зонмелиферона в PBS.
  5. Повторите операции шагов 3.2-3.3 для измерения абсорбционной способности раствора комплексов CD40-umbelliferone при температурах 35 °С, 40 °С, 45 °С, 50 °С, 55 °С, 60 °С, 65 °С, 70 °С, 75 °С, 80 °С, 95 °С и 95 °С соответственно.
    Примечание: Эти этапы были проведены для определения значений Tm белка CD40 и комплексов CD40-умбеллиферона с целью определения оптимальной концентрации связывания белка CD40 с умбеллифероном.

Результаты

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Оранжевый краситель стабильно проявлял стабильное возбуждение флуоресценции при Ex = 470 нм и Em = 570 нм, как при комнатной, так и при повышенных температурах. Был определен оптимальный коэффициент разрежения 1:500 (рис. 2А, В). Определение значения Tm оказалось сложной задачей, когда концентрация белка CD40 была ниже 15 мкг/мл (рис. 3A, B). Однако при концентрации 15 мкг/мл было обнаружено стабильное значение Tm на уровне 51,82 °C, которое снижалось до 45,79 °C с увеличением концентрации белка CD40 (рис. 3C, D).

Как показано на рисунке 3, очевидно, что связывание белка CD40 с умбеллифероном влияет на значение Tm белка CD40. В частности, значения Tm белка CD40 в концентрациях 15 мкг/мл и 20 мкг/мл, а также 10 мкМ умбеллиферона увеличивались до 62,08 °C и 65,27 °C соответственно.

figure-results-1
Рисунок 1: Обзор протокола. Блок-схема процесса регистрации связывающей способности белка CD40 к умбеллиферону на основе принципа DSF с использованием флуоресцентного микропланшетного ридера. Пожалуйста, нажмите здесь, чтобы просмотреть увеличенную версию этой цифры.

figure-results-2
Рисунок 2: Скрининг коэффициентов разбавления оранжевых красителей и тесты на стабильность. (A) Флуоресцентная стабильность красителей с различными коэффициентами разбавления при комнатной температуре. (B) Флуоресцентная стабильность красителей с коэффициентом разбавления 1:500 при 35-95°С. Полосы погрешностей обозначают среднее значение ± SEM, n = 4. Пожалуйста, нажмите здесь, чтобы просмотреть увеличенную версию этой цифры.

figure-results-3
Рисунок 3: Графики результатов использования флуоресцентного микропланшетного ридера для регистрации связывающей способности белка CD40 к умбеллиферону в соответствии с принципом DSF. (A-D) Tm профили 5 мкг/мл, 10 мкг/мл, 15 мкг/мл, 20 мкг/мл белка CD40 и CD40 + 10 мкМ умбеллиферона, соответственно. Полосы погрешностей обозначают среднее значение ± SEM, n = 4. Пожалуйста, нажмите здесь, чтобы просмотреть увеличенную версию этой цифры.

Обсуждение

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

DSF, также известный как анализ теплового сдвига или термический флуоресцентный анализ, представляет собой метод, используемый для обнаружения процесса термической денатурации белков в образцах путем мониторинга изменений сигнала флуоресценции испытуемого образца или красителя во время медленного, запрограммированного повышения температуры. Первоначально созданный Pantoliano14, DSF служит высокопроизводительным методом. Основная процедура заключается в повышении температуры на нагреваемой пластине, управляемой компьютером, излучении возбуждающего света с помощью длинноволновой ультрафиолетовой лампы и захвате изменений интенсивности флуоресцентного сигнала в результате связывания флуоресцентных красителей с белками с помощью фазообразующей камеры устройства с зарядовой связью.

Значение Tm, важнейший показатель, характеризующий структуру белков более высокого уровня, представляет собой температуру, соответствующую половине денатурации белкового препарата при повышении температуры. Более высокие значения Tm предполагают более высокую потребность в температуре для денатурации белка, что указывает на более стабильную структуру белка. В настоящее время признанным методом определения значений Tm является дифференциальная сканирующая калориметрия (ДСК), которая была начата в 1960-х годах. ДСК измеряет разницу в мощности, подаваемой на испытуемый объект и эталонный объект в зависимости от температуры при запрограммированном контроле температуры, чтобы получить количество поглощенного и разряженного тепла. Он является золотым стандартом для анализа термической стабильности16,17.

DSF получила широкое распространение благодаря трем преимуществам по сравнению с DSC: (1) Меньший расход образца: для DSC обычно требуется объем образца 400 μL, в то время как для DSF требуется всего 20-25 μL. (2) Больший диапазон концентраций: DSC обычно требует концентрации белка 0,2-2 мг/мл для получения значительного пика денатурации, в то время как DSF может анализировать образцы в диапазоне 0,005-200 мг/мл. (3) Более высокая пропускная способность: DSC может анализировать только один образец за раз, в то время как DSF может одновременно сканировать до 96 или более образцов18. Благодаря этим преимуществам, DSF широко используется для изучения стабильности белка, структуры и конформации белка, белково-лигандных взаимодействий, а также эффектов белковых стабилизаторов, ингибиторов, кофакторов и многого другого.

В дополнение к DSF и DSC существует несколько других методов молекулярного взаимодействия. Поверхностный плазмонный резонанс (SPR) — это оптическое явление, происходящее на границе раздела двух сред и может индуцироваться фотонами или электронами. Он включает в себя полное отражение, когда свет излучается из оптически плотной среды в оптически разреженную среду. Угол, под которым возникает поверхностный плазмонный резонанс, известен как угол SPR. Биосенсоры SPR используют изменения углов SPR для мониторинга межмолекулярных взаимодействий в режиме реального времени 19,20. Микромасштабный термофорез (МСТ) — это метод анализа биомолекулярных взаимодействий путем обнаружения изменений в размере, заряде и гидратационном слое биомолекул, вызванных связыванием. Он регистрирует изменения флуоресценции в области, облучаемой инфракрасным лазером внутри образца до, во время и после включения лазера, что позволяет проводить относительно быстрые определения21. Биослойная интерферометрия (BLI) измеряет поверхностные реакции датчика, отслеживая изменения смещения в спектре интерферометрии. В экспериментах BLI одна молекула иммобилизуется на поверхности погружного датчика, чтобы обнаружить другую молекулу, которая может с ней связаться. Взаимодействие связывания индуцирует интерференционное смещение, и мониторинг этого изменения смещения в режиме реального времени дает кривую связывания22. Изотермическая титровационная калориметрия (ИТК) количественно определяет биомолекулярные взаимодействия путем непосредственного измерения тепла, выделяемого или поглощаемого во время биомолекулярного связывания. Он предоставляет исчерпывающую термодинамическую информацию о молекулярных взаимодействиях23. По сравнению с этими технологиями молекулярного взаимодействия, DSF предъявляет более низкие требования к инструментам, расходным материалам и методам работы. Он может эффективно обнаруживать взаимодействия между соединениями и белками в большинстве лабораторий.

Принцип работы технологии DSF относительно прост. Первоначально образцы белого вещества, реакционные буферы, флуоресцентные красители и лиганды-кандидаты объединяются в реакционную систему. Затем эта система переносится на флуоресцентный прибор для ПЦР, где настраиваются условия нагрева и обнаружения для определения флуоресценции24,25. Наиболее часто используемым белком-красителем для ДСФ в настоящее время является оранжевый краситель, а инструментом для детектирования обычно является флуоресцентный количественный ПЦР26. Однако из-за того, что длина волны возбуждения оранжевого красителя составляет 470 нм, а длина волны излучения — 570 нм, не все инструменты для флуоресцентной количественной ПЦР на рынке идеально подходят. Таким образом, в этом исследовании используется флуоресцентный считыватель микропланшетов в качестве нового инструмента обнаружения для изучения белок-лигандных взаимодействий.

Этот подход имеет два основных преимущества по сравнению с использованием флуоресцентного количественного ПЦР-инструмента. Во-первых, диапазон длин волн флуоресцентного ферментного маркера может быть настроен, что делает его более совместимым с диапазоном длин волн красителя и обеспечивает более точное обнаружение флуоресценции. Во-вторых, программа флуоресцентного количественного ПЦР-прибора не может быть остановлена после запуска, что затрудняет устранение любых проблем в процессе нагрева. В отличие от этого, флуоресцентный считыватель микропланшетов позволяет устранить помехи путем итеративного изменения соотношения системы и условий обнаружения на протяжении всего процесса обнаружения. Тем не менее, использование флуоресцентного считывателя микропланшетов для DSF также имеет определенные недостатки, в частности, относительно большое количество требуемого образца, обычно от 50 до 200 μл, в то время как при традиционном DSF обычно используется 20-25 μл образца.

В данной статье была проведена валидация DSF на основе флуоресцентного микропланшетного ридера для детектирования Tm с использованием белка CD40 и умбеллиферона в диапазоне концентраций 5-20 мкг/мл. Полученные результаты продемонстрировали высокую специфичность и точность метода, подтвердив его пригодность для детектирования Tm. Последующее сравнение результатов обнаружения Tm при различных концентрациях образцов выявило тенденцию к снижению значения Tm белка CD40 по мере увеличения концентрации, что свидетельствует о потенциальном влиянии концентрации на обнаружение Tm (рис. 3). Кроме того, в исследовании было обнаружено увеличение значения Tm белка CD40 после добавления умбеллиферона в систему по сравнению с тем, что было до добавления. Это указывает на то, что умбеллиферон обладает способностью связываться с белком CD40, что приводит к повышению термической стабильности белка CD40 при их комбинации (рис. 3).

Критическими шагами в протоколе были определены шаги с 2.7 по 2.16, успешное завершение которых напрямую влияет на последующее обнаружение флуоресценции белков. Таким образом, в этом исследовании был разработан новый метод обнаружения DSF, основанный на принципах технологии DSF, используя в качестве примера белок CD40 и зонтик. Метод эффективно анализировал силу связывания между белками и лигандами с помощью флуоресцентного считывателя микропланшетов. Кроме того, этот метод может быть расширен для анализа стабильности белка и исследования структуры белка, углубляя применение технологии DSF в изучении клеточных сигнальных путей и изучении патогенеза заболеваний.

Раскрытие информации

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Авторам нечего раскрывать.

Благодарности

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Выражаем искреннюю признательность за финансовую поддержку, полученную в рамках проекта «Строительство коннотации» 14-го пятилетнего плана Университета тибетской медицины (2022ZYYGH12), открытых предметов 2022 года Ключевой лаборатории тибетской медицины и базового образования Министерства образования в Университете тибетской медицины (ZYYJC-22-04), Ключевой программы исследований и разработок Нинся (2023BEG02012), и Проект содействия научным исследованиям Синлинь Университета традиционной китайской медицины Чэнду (XKTD2022013).

Материалы

Список материалов, использованных в этой статье
ИмяКомпанияКаталожный номерКомментарии
Белок CD40MedChemExpressHY-P75408
DMSOBoster Biological Technology Co., LtdPYG0040
многофункциональный считыватель микропланшетов FlexStation 3Shanghai Meigu Molecular Instruments Co., LTDFlexStation 3
OriginPro 8 программное обеспечениеOriginLab Corporationv8.0724(B724)
Фосфатный буферный физиологический раствор ( 1x)Gibco8120485
SoftMax Pro 7.1Shanghai Meigu Molecular Instruments Co., LTDSoftMax Pro 7.1
SSYPRO оранжевый красительSigmaS5942
UmbelliferoneShanghai Yuanye Biotechnology Co.В21854

Ссылки

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,
  1. Cairang, N. Study on the standardization of clinical application of Tibetan medicine "five roots". Guid J Trad Chin Med Pharm. 28 (11), 133136(2022).
  2. Li, L., et al. Effects of Xigui extract on immunosuppressive mice induced by cyclophosphamide. Chin J Hosp Pharm. 37 (03), 244-247 (2017).
  3. Lu, H., et al. Effects of Vicatia thibertica de boiss on immunologic and hematopoietic function of mice. J Dali Univ. 2 (02), 6-10 (2017).
  4. Dong, S., Zhang, X., Hu, Y., Gong, X., Yang, H. Chemical constituents, quality control and pharmacology research progress of Xigui. Chin J Ethnomed Ethnopharm. 27 (13), 40-42 (2018).
  5. Lu, Z., Zhang, L. Effects of total flavone extract from Shuiqin (Oenanthe Javanica) on immune function of immunosuppression mice. Chin J Trad Med Sci Technol. 23 (04), 423-425 (2016).
  6. Vonderheide, R. H. CD40 agonist antibodies in cancer immunotherapy. Annu Rev Med. 71, 47-58 (2020).
  7. Grewal, I. S., Flavell, R. A. CD40 and CD154 in cell-mediated immunity. Annu Rev Immunol. 16, 111-135 (1998).
  8. Long, K. B., et al. IFNγ and CCL2 cooperate to redirect tumor-infiltrating monocytes to degrade fibrosis and enhance chemotherapy efficacy in pancreatic carcinoma. Cancer Discov. 6 (4), 400-413 (2016).
  9. He, Y., et al. The roles of regulatory B cells in cancer. J Immunol Res. 2014, 215471(2014).
  10. Eliopoulos, A. G., et al. CD40 induces apoptosis in carcinoma cells through activation of cytotoxic ligands of the tumor necrosis factor superfamily. Mol Cell Biol. 20 (15), 5503-5515 (2000).
  11. Niesen, F. H., Berglund, H., Vedadi, M. The use of differential scanning fluorimetry to detect ligand interactions that promote protein stability. Nat Protoc. 2 (9), 2212-2221 (2007).
  12. Rosa, N., et al. Meltdown: A Tool to help in the interpretation of thermal melt curves acquired by differential scanning fluorimetry. J Biomol Screen. 20 (7), 898-905 (2015).
  13. Hellman, L. M., et al. Differential scanning fluorimetry based assessments of the thermal and kinetic stability of peptide-MHC complexes. J Immunol Methods. 432, 95-101 (2016).
  14. Pantoliano, M. W., et al. High-density miniaturized thermal shift assays as a general strategy for drug discovery. J Biomol Screen. 6 (6), 429-440 (2001).
  15. Gorny, H., et al. Combining nano-differential scanning fluorimetry and microscale thermophoresis to investigate VDAC1 interaction with small molecules. J EnzymeInhib Med Chem. 38 (1), 2121821(2023).
  16. Freire, E. Thermal denaturation methods in the study of protein folding. Methods Enzymol. 259, 144-168 (1995).
  17. Phiri, M. J., Mofokeng, J. P., Phiri, M. M., Mngomezulu, M., Tywabi-Ngeva, Z. Chemical, thermal and morphological properties of polybutylene succinate-waste pineapple leaf fibres composites. Heliyon. 9 (11), 21238(2023).
  18. Zhou, C., Yu, M., Li, W. Comparation of three measuring methods for thermodynamic stability of protein. Anal Test Technol Instruments. 27 (04), 252-259 (2021).
  19. Hou, Y., et al. Salidroside intensifies mitochondrial function of CoCl2-damaged HT22 cells by stimulating PI3K-AKT-MAPK signaling pathway. Phytomedicine. 109, 154568(2023).
  20. Wang, X., et al. Salidroside, a phenyl ethanol glycoside from Rhodiola crenulata, orchestrates hypoxic mitochondrial dynamics homeostasis by stimulating Sirt1/p53/Drp1 signaling. J Ethnopharmacol. 293, 115278(2022).
  21. Magnez, R., Bailly, C., Thuru, X. Microscale thermophoresis as a tool to study protein interactions and their implication in human diseases. Int J Mol Sci. 23 (14), 7672(2022).
  22. Kamat, V., Rafique, A. Designing binding kinetic assay on the bio-layer interferometry (BLI) biosensor to characterize antibody-antigen interactions. Anal Biochem. 536, 16-31 (2017).
  23. Freyer, M. W., Lewis, E. A. Isothermal titration calorimetry: experimental design, data analysis, and probing macromolecule/ligand binding and kinetic interactions. Methods Cell Biol. 84, 79-113 (2008).
  24. Sharma, R., et al. Atosiban and Rutin exhibit anti-mycobacterial activity - An integrated computational and biophysical insight toward drug repurposing strategy against Mycobacterium tuberculosis targeting its essential enzyme HemD. Int J Biol Macromol. 253, 127208(2023).
  25. Grädler, U., et al. Biophysical and structural characterization of the impacts of MET phosphorylation on tepotinib binding. J Biol Chem. 299 (11), 105328(2023).
  26. Xu, Y., et al. Differential scanning fluorimetry and its application in the study of protein. Chemistry of Life. 38 (03), 351-357 (2018).

Перепечатки и разрешения

Запросить разрешение на повторное использование текста или иллюстраций этой статьи JoVE

Запросить разрешение

Теги

Похожие статьи