В этой статье мы рассказываем о недорогом и воспроизводимом методе, демонстрирующем мембранный транспорт гистидина в кишечнике козы. Этот процесс происходит за счет совместного транспортирования ионов гистидина и натрия под действием градиента натрия через мембрану энтероцитов. Этот метод использует педагогику эмпирического обучения для лучшего понимания движения растворенных веществ через биологические мембраны.
Методическая статья
Демонстрация мембранного транспорта гистидина с использованием инвертированных мешков в козьем кишечнике: экспериментальный педагогический инструмент для студентов бакалавриата
В этой статье
Краткое содержание
Аннотация
Гистидин является незаменимой аминокислотой, которая также является предшественником метаболитов, участвующих в иммунной системе, легочной вентиляции и сосудистом кровообращении. Абсорбция гистидина с пищей в значительной степени зависит от транспорта нейтральных аминокислот, связанного с натрием, транспортером нейтральных аминокислот Броуда (B0AT), присутствующим на апикальной мембране энтероцита. Здесь мы демонстрируем абсорбцию гистидина кишечными ворсинчатыми энтероцитами из просвета с использованием перевернутых мешочков тощей кишки козы. Тощищие мешочки, подвергшиеся воздействию различных концентраций натрия и гистидина, были проанализированы для определения концентрации гистидина внутри мешков в зависимости от времени. Результаты показывают активное всасывание гистидина. Увеличение концентрации соли приводило к более высокой абсорбции гистидина, что свидетельствует о симпорте абсорбции натрия и гистидина в инвертированных кишечных мешочках коз. Этот протокол может быть применен для визуализации подвижности аминокислот или других метаболитов в кишечнике с соответствующими модификациями. Мы предлагаем этот эксперимент в качестве экспериментального педагогического инструмента, который может помочь студентам бакалавриата понять концепцию мембранного транспорта.
Введение
Биологические клетки окружены мембранным липидным бислоем, который отделяет внутриклеточный цитозоль от внеклеточного содержимого. Мембрана служит полупроницаемым барьером, регулирующим движение растворенных веществ1. На транспорт через биологические мембраны влияет коэффициент проницаемости растворенного вещества, который зависит от нескольких факторов, в том числе от концентрации и заряда растворенного вещества. В целом, растворенные вещества перемещаются через мембрану с помощью трех механизмов (рис. 1): пассивная диффузия, облегченная диффузия и активный транспорт2. Простая диффузия — это процесс, при котором растворимые, незаряженные и неполярные растворенные вещества пропускают градиент своей концентрации вниз по полупроницаемой мембране (рис. 1A). Мембранные белки не участвуют в этом процессе, поскольку он включает в себя перемещение растворенных веществ из области с более высокой концентрацией в область с более низкой концентрацией. Скорость диффузии основана на законе Фика3. С другой стороны, облегченная диффузия представляет собой белок-зависимый транспорт, при котором мембрана позволяет только селективным растворенным веществам проходить по градиенту концентрации без затрат энергии (рис. 1B). Этот вид транспорта специфичен и отличается от простой диффузии проявлением кинетики насыщения.
Активный транспорт представляет собой белок-зависимый транспорт молекул против градиента их концентрации, т.е. из области более низкой концентрации в область более высокой концентрации с использованием АТФ или ионных градиентов (рис. 1В). Когда транспортер гидролизует АТФ, этот транспорт называется первичным активным транспортом (рис. 1C; левая панель). Другой формой активного транспорта является вторичный активный транспорт (рис. 1C; правая панель). При вторичном активном транспорте растворенные вещества перемещаются на основе электрохимического градиента. Это происходит, когда белок-транспортер связывает движение иона (обычно Na+) вниз по градиенту концентрации с движением другой молекулы или иона против градиента концентрации. Этот вид движения растворенного вещества может быть совместным транспортом (Symport), при котором растворенное вещество и ион движутся в одном направлении, или обменом (Antiport), в этом случае растворенное вещество и ион движутся в противоположных направлениях.
Пищевые аминокислоты и моносахариды из пищевых источников всасываются в тонком кишечнике. Тонкую кишку можно функционально разделить на три сегмента: двенадцатиперстную кишку, тощую кишку и подвздошную кишку (рис. 2). Всасывание растворенного вещества происходит по всему тонкому кишечнику, при этом максимальная абсорбция происходит в тощей кишке и на проксимальном конце подвздошной кишки. Кишечные энтероциты представляют собой поляризованные клетки, а плотные соединения, соединяющие две соседние клетки, создают два отдельных мембранных участка - базолатеральный и апикальный (рис. 2). Абсорбция люминальных растворенных веществ, образующихся в процессе пищеварения, происходит на участке апикальной мембраны4.
Транспорт гистидина в кишечных энтероцитах на апикальной мембране является примером вторичного активного симпорта, который зависит от натрия. На базолатеральном конце гистидин, поступающий в энтероцит, движется вниз по градиенту концентрации в печеночный портальный круг кровообращения. Внутриклеточные концентрации натрия в энтероците поддерживаются на уровне 12 ммоль/л1, что ниже внеклеточных/люминальных концентраций, что обусловлено активным выкачиванием натрия из клетки Na+ К+АТФазой, расположенной на базолатеральной мембране (рис. 3). На апикальной мембране энтероцитовB 0AT и натрий-нейтральный транспортер аминокислот (SNAT) 5 являются основными транспортерами, которые транспортируют не только гистидин, но и аминокислоты, такие как аспарагин и глутамин, в натрий-зависимом котранспорте 5,6. Другой транспортный белок, называемый Large Amino Acid Transporter (LAT)1, присутствующий на базолатеральной мембране энтероцитов, транспортирует через мембрану крупные нейтральные аминокислоты, такие как лейцин, триптофан, тирозин и фенилаланин.
С целью обучения концепции мембранного транспорта в сочетании с такими методами, как спектрофотометрия и рутинные биохимические анализы с помощью педагогики эмпирического обучения, крайне важно разработать методологии, которые могут не только продемонстрировать эту концепцию в простых для понимания терминах, но и обеспечить совместное обучение для студентов бакалавриата. В настоящее время у студентов есть ограниченные ресурсы для практического участия в изучении таких концепций биохимии. В этой статье мы представляем простой протокол для демонстрации транспорта гистидина через мембрану кишечника козы, который легко воспроизвести в студенческих лабораториях и который может быть адаптирован для оценки транспорта других метаболитов. Что еще более важно, метод использует недорогие материалы в студенческой лаборатории, тем самым обеспечивая экспериментальное обучение даже в самых простых лабораторных условиях.
Протокол
Весь протокол со всеми этапами представлен в виде схематической диаграммы на рисунке 4. Метод адаптирован из предыдущего исследования с использованием кишечника крысы8. Эксперимент проводился в соответствии с институциональными рекомендациями. Образцы, использованные в этом исследовании, были приобретены у коммерческого поставщика.
ВНИМАНИЕ: Во время эксперимента надевайте перчатки.
1. Подготовка перевернутых тощищих мешочков
- Предварительно обработайте и очистите козью тощую кишку.
- Приобретите внутренности только что принесенной в жертву здоровой козы у лицензированного продавца.
- Поместите внутренности в достаточное количество фосфатного буферного раствора (PBS), чтобы они были полностью погружены для очистки.
- Отделите тонкую кишку от толстой, и убедитесь, что наружная соединительная ткань удалена с помощью ножниц.
- Аккуратно промойте тонкую кишку 1x PBS с помощью шприца объемом 10 мл, обеспечивая удаление непереваренного пищевого материала для получения полого мешка тонкой кишки. Повторите этот процесс не менее трех раз для эффективной очистки.
ПРИМЕЧАНИЕ: Избегайте чрезмерного использования игл во время промывки. Применение силы может привести к проколу стенок кишечника и, таким образом, повредить кишечные энтероциты. - Измерьте полную длину тонкой кишки с помощью линейки, чтобы получить три части: двенадцатиперстную кишку (1/4 тонкой кишки) и оставшуюся часть, равномерно разделенную на тощую и подвздошную кишку.
- Продолжите эксперимент, используя часть тощей кишки.
- Подготовьте перевернутую тощую кишку.
- Очистите тощую кишку, удалив всю соединительную ткань с помощью лезвия.
- Разрежьте тощую кишку на порции длиной 12-15 см, промойте 1x PBS и поместите в чашку Петри, содержащую PBS.
- Переверните части тощей кишки с помощью стеклянного стержня, чтобы часть ворсинок была обнажена снаружи.
ВНИМАНИЕ: Избегайте использования стеклянного стержня с острыми краями. При этом диаметр стеклянного стержня не должен быть больше диаметра мешочка.
ПРИМЕЧАНИЕ: На этом этапе можно визуализировать ворсинки под световым микроскопом (Рисунок 4). - Аккуратно промойте перевернутые части тощей кишки 1x PBS.
- Проверьте наличие утечек с боков перевернутой тощей кишки.
- Вывернутые части тощей кишки разрежьте на мешочки длиной 5 см.
- Завяжите один конец шпагатом и повторно проверьте на наличие визуальных утечек на завязанном конце, заполнив мешочки PBS.
- Другой конец завяжите так, чтобы получился пустой перевернутый мешок с ворсинками на внешней поверхности.
- Повторно проверьте наличие внешних утечек, похлопав перевернутый мешок по фильтровальной бумаге.
- Уравновесьте перевернутые мешочки в 1x PBS.
- Продолжайте эксперимент в тот же день или храните мешочки на ночь при температуре 1x PBS при температуре 4 °C.
2. Экспериментальная установка для транспорта гистидина
- Соберите два комплекта из трех пробирок по 50 мл в соответствии с различными концентрациями хлорида натрия, как указано в таблице 1.
- Опустите подготовленные кишечные мешочки в указанные пробирки на 30 мин и 60 мин для каждого из наборов.
- По истечении назначенного времени слейте раствор внутрь мешочка в отдельную микроцентрифужную пробирку объемом 1,5 мл и определите объем.
- Аспирируйте жидкость внутри мешочка с помощью шприца объемом 2 мл. В качестве альтернативы развяжите один конец мешочка и соберите содержимое в свежую пробирку объемом 1,5 мл.
- Анализ 0,1 мл собранных образцов для оценки гистидина и расчет концентрации по стандартному графику.
3. Оценка гистидина по реакции Паули
- Подготовьте стандартную кривую для гистидина.
- Готовят растворы с различными концентрациями гистидина, как указано в таблице 2 , используя исходные растворы гистидина (5 мМ) и воды.
- Добавьте в каждую пробирку сульфаниловую кислоту (0,5 мл) и нитрат натрия (0,5 мл).
- Инкубируйте пробирки в течение 5 минут при комнатной температуре, затем добавьте по 1 мл карбоната натрия и этанола в каждую пробирку.
- Инкубируйте пробирки в течение 20 минут при комнатной температуре (~20 °C) и обратите внимание на поглощение на длине волны 490 нм.
- Постройте стандартную кривую зависимости абсорбции от концентрации гистидина.
ПРИМЕЧАНИЕ: Этот тест на гистидин основан на свойстве гистидина образовывать диазосоединение (Рисунок 5).
Результаты
Экспериментальный процесс демонстрации кишечной подвижности гистидина путем абсорбции гистидина кишечными ворсинками в просвет вывернутых мешочков проиллюстрирован на рисунках 4, в таблице 1 и таблице 2. Были выполнены три независимые экспериментальные установки, репрезентативные данные представлены на рисунке 6.
В заданных условиях эксперимента оценка гистидина с помощью реакции Паули следовала закону Ламберта Бира до 300 мкМ (рис. 6А). Этот тест на гистидин основан на связи между аминокислотами и ионом диазония в реагенте. Реактив Паули имеет сульфаниловую кислоту, растворенную в концентрированной соляной кислоте. Эта кислота подвергается диазотизации в присутствии нитрата натрия и HCl. -фенилдиазосульфонат соли диазония реагирует с молекулами гистидина в щелочных условиях с образованием комплекса от темно-красного/оранжевого до желтого цвета, который может быть спектрофотометрически прочитан с длиной волны 490 нм (рис. Можно отметить, что этот тест проводится гистидином и тирозином. Тест, используемый в данном исследовании, представляет собой несколько модифицированную версию исходной реакции, в которой нитрат натрия используется непосредственно при комнатной температуре (~20 °C), а не нитрит натрия в охлажденных условиях9.
Положительная реакция Поли, наблюдаемая при использовании образца, извлеченного из внутренних перевернутых мешочков, иллюстрирует всасывание гистидина через кишечные ворсинки. На рисунке 6B показана корреляция между поглощением гистидина и концентрации натрия в энтероцитах тощей кишки. Увеличение абсорбции гистидина при увеличении времени инкубации с 30 до 60 мин свидетельствует о вторичном активном транспорте.
Рисунок 1: Различные типы мембранного транспорта. Схема, показывающая различные виды мембранных транспортных систем. (А) Пассивная диффузия. (B) Облегчение распространения. (C) Первичный активный транспорт (слева) и вторичный активный транспорт (справа). Пожалуйста, нажмите здесь, чтобы просмотреть увеличенную версию этой цифры.
Рисунок 2: Организация энтероцитов в кишечных ворсинках. На этом рисунке основное внимание уделяется тонкой кишке и иллюстрируются три отдельные части: двенадцатиперстная кишка, тощая кишка и подвздошная кишка. Тонкая кишка также имеет некоторые пальцеобразные выступы, называемые ворсинками, которые увеличивают площадь поверхности для всасывания проглоченной пищи. Микроворсинки имеют клетки, называемые энтероцитами, которые содержат специфические транспортеры для усвоения аминокислот. Плотные соединения препятствуют перемещению растворенных веществ между клетками. Пожалуйста, нажмите здесь, чтобы просмотреть увеличенную версию этой цифры.
Рисунок 3: Энтероцит с транспортерами аминокислот. На карикатуре изображен один энтероцит, показывающий апикальный и базолатеральный концы. Апикальный конец содержит транспортеры, такие как белки B0AT и SNAT5, а базолатеральная мембрана содержит транспортер LAT1. Вместе эти белки отвечают за поглощение гистидина из просвета кишечника в портальный кровоток. Пожалуйста, нажмите здесь, чтобы просмотреть увеличенную версию этой цифры.
Рисунок 4: Схематическое изображение протокола, демонстрирующего мембранный транспорт гистидина с использованием инвертированных мешочков кишечника козы. Козьи кишки были заготовлены, предварительно обработаны и очищены в соответствии с описанием. Вкратце тощую кишку вырезали, и подготавливали перевернутые мешочки. Эти мешочки были использованы для постановки эксперимента по количественной оценке поглощения гистидина в различных концентрациях соли. Ворсинки рассматривались при 400-кратном увеличении с помощью светового микроскопа. Подробная процедура изложена в тексте. Пожалуйста, нажмите здесь, чтобы просмотреть увеличенную версию этой цифры.
Рисунок 5: Реакция на метод Поли. Тест Паули предполагает образование ионов диазония в реагенте, содержащем сульфаниловую кислоту в концентрированной соляной кислоте. В щелочных условиях гистидин вступает в реакцию с солью диазония, в результате чего образуется соединение красного цвета, абсорбцию которого можно измерить на длине волны 490 нм с помощью спектрофотометра. Пожалуйста, нажмите здесь, чтобы просмотреть увеличенную версию этой цифры.
Рисунок 6: Оценка гистидина по методу Паули. (А) Стандартная кривая для гистидина. Различные концентрации гистидина в диапазоне от 0 до 300 мкМ подвергали реакции Паули, и образовавшийся комплекс измеряли на длине волны 490 нм. (В) Мониторинг транспортировки гистидина в кишечных мешочках осуществлялся в течение 30 мин и 60 мин в присутствии 150 мМ (твердо черный) и 200 мМ раствора NaCl (твердый серый). Концентрацию гистидина внутри перевернутых мешочков оценивали с помощью стандартной кривой (рис. 6А). Значения указываются относительно контроля (0 мМ NaCl). Были выполнены три технических тиража, и представлены репрезентативные данные. Пожалуйста, нажмите здесь, чтобы просмотреть увеличенную версию этой цифры.
Таблица 1: Экспериментальная установка для определения перистальтики гистидина в кишечнике. В этой таблице показана инкубация кишечных мешков в различных концентрациях хлорида натрия в течение двух временных точек. Пожалуйста, нажмите здесь, чтобы скачать эту таблицу.
Таблица 2: Составление стандартной кривой для гистидина. В этой таблице показаны различные этапы и компоненты реакции Паули с известными концентрациями гистидина в диапазоне от 0 до 300 мкМ. Пожалуйста, нажмите здесь, чтобы скачать эту таблицу.
Обсуждение
Мембранный транспорт является одним из самых фундаментальных понятий, которые преподаются студентам бакалавриата по всем основным дисциплинам биологических наук, как фундаментальным, так и прикладным. Традиционно движение по мембранам визуализировалось с помощью метаболитов, меченных радиоактивными изотопами. Однако эти методы чрезвычайно опасны и неприменимы для преподавания или обучения. В то время как эмпирическое обучение является лучшим педагогическим методом для понимания таких сложных концепций, это проблема, которая еще больше усугубляется отсутствием инфраструктуры, дорогими флуоресцентными красителями/метаболитами и, что самое главное, запретом на эксперименты по вскрытию животных. Таким образом, существует потребность в разработке инструментов и альтернативных методов, которые были бы не только безопасными, но и недорогими и осуществимыми в лабораторных условиях бакалавриата. Здесь был разработан новый метод обучения мембранному транспорту для студентов бакалавриата. Представленный протокол, адаптированный из Agar et al. 19548, демонстрирует однонаправленный активный мембранный транспорт гистидина через клетки кишечника козы. Это исследование было предпринято для демонстрации использования анализа на основе колориметрии для визуализации абсорбции гистидина через кишечные мембраны. Она проста, воспроизводима и понятна студентам и может быть выполнена в любых лабораторных условиях.
Модель перевернутого кишечного мешка была впервые разработана Уилсоном и Уайзманом10, которая позже была усовершенствована для повышения жизнеспособности тканей. Механизмы и кинетика абсорбции лекарственного средства были выяснены с использованием инвертированных мешочков кишечника11. К преимуществам данной модели можно отнести большую площадь для поглощения; Однако жизнеспособность тканей является одним из ограничивающих параметров. Сообщалось, что кишечная ткань остается жизнеспособной и метаболически активной в физиологических условиях в течение ~2 ч11. Еще одним потенциальным предостережением этого подхода, которое необходимо учитывать, является невозможность удаления слизистой оболочки мышц и сероза из препаратов инвертированного мешка. Связывание определенных соединений с мышечным слоем может ограничивать или недооценивать транспорт этих соединений. Несмотря на то, что модель перевернутого кишечного мешка является чувствительной и специфичной, на результаты может повлиять множество факторов. К таким факторам относятся возраст, пол, вид, диета и состояние болезни животного, а также сегмент кишечника, используемый для анализа (подвздошная кишка, тощая кишка, двенадцатиперстная кишка и толстая кишка). Факторы окружающей среды, такие как pH, аэрация и температура, также влияют на результаты12.
Показано, что задержка забора из кишечника и состояние животного (живого/мертвого) влияет на активный транспорт в дуоденальных сегментах кишечника крысы. Сбор урожая у животных, находящихся под наркозом, обеспечивает минимальные временные задержки, что позволяет избежать порчи транспортера13. Однако, в связи с запретом на вскрытие животных в университетах, в нашей экспериментальной установке использовались кишки только что умерщвленных животных. В то время как этот протокол может быть успешно использован для установления качественного поглощения метаболита энтероцитами, его использование в исследованиях, связанных с кинетикой мембранного транспорта, ограничено. Наиболее важным этапом этого протокола является успешная подготовка герметичных инвертированных кишечных мешков с жизнеспособными энтероцитами. Хрупкая природа и жизнеспособность ворсинок и энтероцитов представляют собой сложную задачу, которую можно преодолеть с помощью практики. Кроме того, учитывая, что исходный материал не происходит от какой-либо инбредной сингенной популяции животных, изменчивость результатов между экспериментами является существенным недостатком. Это можно преодолеть с помощью использования нескольких реплик от одного и того же животного. Учитывая эти соображения, метод, представленный в данном исследовании, следует использовать исключительно в качестве педагогического инструмента в практической подготовке студентов.
Описанный протокол был успешно использован для демонстрации транспорта гистидина. Однонаправленное поглощение натрия и гистидина в перевернутые мешочки указывает на тип сиконка вторичного активного транспорта. Кишечная абсорбция нейтральных аминокислот происходит в соответствии с векторной кинетикой, которая зависит от градиента концентрации, задаваемого АТФазой Na+ K+. Аналогичная установка поддерживает внутриклеточный отрицательный мембранный потенциал и внеклеточную концентрацию натрия на уровне 150 мМ. Оба эти фактора стимулируют активный транспорт нейтральных аминокислот с помощью B0AT на апикальном конце и последующее перемещение из энтероцита на базолатеральном конце с помощью LAT1. Интересно, что при более высоких концентрациях солей (200 мМ) не наблюдалось существенной разницы в поглощении в зависимости от времени. На данный момент мы не можем комментировать причину такого наблюдения; однако та же экспериментальная установка может быть расширена за счет включения множественных концентраций натрия с переменными временными точками и контроля с 150 мМ холина хлорида для демонстрации зависимого от натрия транспорта и возможного вклада за счет насыщения.
В принципе, перевернутые мешочки тощей кишки козы/свиньи/крысы/мыши могут быть использованы для демонстрации кишечной абсорбции различных пищевых метаболитов, при условии проведения биохимического анализа для оценки. Кроме того, можно проанализировать влияние других компонентов, которые потенциально могут препятствовать всассыванию в кишечнике или ингибиторам мембранного транспорта. Инвертированные мешочки были эффективно использованы в качестве инструмента в фармацевтических исследованиях для изучения абсорбции лекарств in vitro , кишечного метаболизма лекарств и роли транспортера в абсорбции лекарств. Наконец, этот метод является примером демонстрации мембранного транспорта ex vivo и основан не на бесклеточном экстракте (in vitro), а на образце ткани. Тем не менее, это преимущество компенсируется наличием неинфицированных кишечника коз, свиней и крыс, что может быть ограничивающим фактором.
Среди многих педагогических инструментов, доступных учителю для улучшения процесса обучения, эмпирическое обучение или «обучение на практике» является философией и методологией обучения, которая является наиболее прогрессивным и эффективным методом обучения, предоставляющим студентам возможность получить целостное понимание тем лекций. Эмпирическое обучение обеспечивает практическое участие студентов, а также инструктора, который обеспечивает поддержку и наставничество во время этого активного процесса обучения14. Он служит отличной альтернативой традиционному теоретическому обучению в классе, особенно в некоторых тяжелых и интегративных концепциях, таких как мембранный транспорт, которые студентам часто трудно представить. Такие упражнения также будут способствовать интерактивному и совместному обучению как со стороны коллег, так и со стороны наставников. Данная инициатива является шагом вперед в направлении создания и обеспечения возможности получения не только информативного, но и запоминающегося опыта обучения, который может быть преобразующим для студента, значительно влияя на общий опыт обучения.
Раскрытие информации
Авторы не имеют конкурирующих финансовых интересов или иного конфликта интересов.
Благодарности
Это исследование было поддержано кафедрой биохимии Колледжа Шри Венкатешвара Делийского университета. Авторы благодарят сотрудников лаборатории за поддержку.
Материалы
| Имя | Компания | Каталожный номер | Комментарии |
|---|---|---|---|
| 1,5 мл Микроцентрифужные пробирки | TARSONS | 500020 | |
| 10 мл Пробирки | BOROSIL | 9800U04 | |
| 50 мл Стерильные пробирки | TARSONS | 546041 | |
| 500 мл Стакан | BOROSIL | 10044977 | |
| 500 мл Коническая колба | BOROSIL | 691467 | |
| D-глюкозой | SRL | 42738 | |
| Цифровой спектрофотометр | SYSTRONICS | 2710 | |
| Этанол | EMSURE 1009831000 | ||
| Пипетки | THERMOFISHER | 4642090 | |
| Стержень для стеклянной мешалки | BOROSIL | 9850107 | |
| L-гистидином | SRL | 17849 | |
| NaCl | SRL | 41721 | |
| Нитриловые перчатки | KIMTECH | 112-4847 | |
| Чашка Петри | TARSONS | 460090 | |
| Фосфат буферизованный физиологический раствор (ph 7.4) | SRL | 95131 | |
| Наконечники для пипеток | ABDOS | P10102 | |
| Карбонат натрия | SRL | 89382 | |
| Нитрат натрия | SRL | 44618 | |
| Двухосновной фосфат натрия (безводный) | SRL | 53046 | |
| Фосфат натрия одноосновной (безводный) | SRL | 22249 | |
| Сульфаниловая кислота | SRL | 15354 |
Ссылки
- Nelson, D. L., Cox, M. M. Lehninger Principles of Biochemistry. 7th Edition. , W.H. Freeman and Company. (2017).
- Stillwell, W. Membrane Transport. An Introduction to Biological Membranes. , Elsevier Science. (2013).
- Fick, A. V. On liquid diffusion. The London, Edinburgh, and Dublin Philosophical Magazine and Journal of Science. 10 (63), 30-39 (1855).
- Sherwood, L. Introduction to Human Physiology. , Brooks/Cole Cengage Learning. (2013).
- Bröer, S. Intestinal amino acid transport and metabolic health. Annu Rev Nutr. 43, 73-99 (2023).
- Avissar, N. E., Ryan, C. K., Ganapathy, V., Sax, H. C. Na+-dependent neutral amino acid transporter ATB0 is a rabbit epithelial cell brush-border protein. Am J Physiol Cell Physiol. 281 (3), C963-C971 (2001).
- Bröer, S. Amino acid transport across mammalian intestinal and renal epithelia. Physiol Rev. 88 (1), 249-286 (2008).
- Agar, W. T., Hird, F. J. R., Sidhu, G. S. The uptake of amino acids by the intestine. BBA - Biochim Biophys Acta. 14 (1), 80-84 (1954).
- Pauly, H. Über die Konstitution des Histidins. I. Mitteilung. Biological Chemistry. 42 (5-6), 508-518 (1904).
- Wilson, T. H., Wiseman, G. The use of sacs of everted small intestine for the study of the transference of substances from the mucosal to the serosal surface. J Physiol. 123 (1), 116-125 (1954).
- Barthe, L., Woodley, J. F., Kenworthy, S., Houin, G. An improved everted gut sac as a simple and accurate technique to measure paracellular transport across the small intestine. Eur J Drug Metab Pharmacokinet. 23 (2), 313-323 (1998).
- Alam, M. A., Al-Jenoobi, F. I., Al-Mohizea, A. M. Everted gut sac model as a tool in pharmaceutical research: Limitations and applications. J Pharm Pharmacol. 64 (3), 326-336 (2012).
- Pento, J. T., Mousissian, G. K. Time-dependent deterioration of active transport in duodenal segments of rat intestine. J Pharmacol Methods. 20 (1), 9-14 (1988).
- Williams, L., Sembiante, S. F. Experiential learning in U.S. undergraduate teacher preparation programs: A review of the literature. Teach Teach Educ. 112, 103630(2022).
Перепечатки и разрешения
Запросить разрешение на повторное использование текста или иллюстраций этой статьи JoVE
Запросить разрешение