Для просмотра этого контента требуется подписка на JoVE. Войдите или начните свой бесплатный пробный период.

Методическая статья

Сочетание визуализации и электрофизиологии для визуализации и регистрации распространяющейся деполяризации у мышей

1.3K просмотров

⸱

DOI:

10.3791/67032

⸱

4 октября 2024 г.

 ,  ,  ,  ,  ,  ,  ,  ,  , 
1Department of Neurosciences and The Center for Brain Recovery and Repair, University of New Mexico School of Medicine

* These authors contributed equally

В этой статье

Краткое содержание

Этот протокол демонстрирует комбинацию визуализации и электрофизиологии для надежного обнаружения распространяющейся деполяризации у взрослых мышей после легкой черепно-мозговой травмы.

Аннотация

Распространяющиеся деполяризации (SD) - это массовые события в мозге, которые часто остаются незамеченными из-за их медленного распространения через серое вещество. Поскольку обнаружение SD может быть труднодостижимым, его оптимально подтверждать с помощью нескольких методов. Этот протокол описывает методы объединения визуализации и электрофизиологии для обнаружения SD таким образом, чтобы большинство лабораторий могли надежно и легко внедрить. СД возникают после черепно-мозговых травм, инсульта, субарахноидальных кровоизлияний, ишемии и мигренозной ауры. Исторически сложилось так, что SD регистрировались с помощью усилителей постоянного тока, которые могут решить проблему медленного внеклеточного сдвига и снижения высокочастотной активности. Тем не менее, усилители постоянного тока практически невозможно использовать для хронической записи in vivo. В этом протоколе используется общий усилитель переменного тока для записи электрофизиологии in vivo для подтверждения высокочастотной депрессии, наряду с неинвазивной визуализацией, необходимой для обнаружения распространяющейся волны SD. Эти методы могут быть надежно приняты и/или модифицированы для большинства экспериментальных подходов для подтверждения наличия или отсутствия СД после черепно-мозговой травмы.

Введение

Распространяющаяся деполяризация (SD) связана с различными неврологическими состояниями, включая черепно-мозговую травму (ЧМТ), инсульт, субарахноидальные кровоизлияния, ишемию и мигрень aura1. SD были вовлечены в прогрессирование повреждения тканей при инсультах и ЧМТ2. Точный механизм, лежащий в основе прогрессирования потери тканей, остается неясным3,4. Тем не менее, SD возникают, когда метаболические потребности нейронов не удовлетворяются достаточным количеством кислорода и глюкозы, поскольку функция АТФ-зависимого натрий-калийного насоса становится недостаточной для поддержания ионных градиентов. Чтобы понять роль SD в потере тканей, необходимы точные методы их измерения и изучения, что имеет решающее значение для продвижения научных знаний. СД являются значительными неврологическими событиями, которые часто могут оставаться незамеченными из-за экспериментального дизайна и/или ограничений инструментария.

Роль распространяющихся деполяризаций (SD) в прогрессировании травмы в настоящее время выясняется, но их роль в легких черепно-мозговых травмах (mTBI) остается неясной. Недавние исследования с использованием методов, описанных в этой рукописи, показали, что SD инициируются в моделях мышей с закрытым черепом mTBI, даже когда нет явного повреждения тканей или кровотечения 5, 6. Эти исследования показывают, что СД могут способствовать развитию острых неврологических нарушений и нейровоспаления. Кроме того, наличие индуцированных mTBI SD тесно связано с острым поведенческим дефицитом6,7. Таким образом, вполне вероятно, что СД инициируются во всех моделях ЧМТ, но их роль остается трудно установить без подтверждения. Подтверждение наличия УР имеет решающее значение для точной оценки исходов ЧМТ.

Распространяющиеся деполяризации (SD) идентифицируются значительным падением внеклеточного потенциала, известным как "сдвиг постоянного тока", и снижением высокочастотной активности8. "Сдвиг постоянного тока" обычно занимает секунды для разрешения (~10 с)9. Для захвата «сдвига постоянного тока» требуется усилитель постоянного тока и электроды с серебряной проволокой. Тем не менее, электрофизиология in vivo обычно выполняется с помощью усилителей переменного тока, которые предназначены для фильтрации низкочастотных событий для уменьшения артефактов движения. К сожалению, эта низкочастотная фильтрация также устраняет «сдвиг постоянного тока». Кроме того, серебро токсично и не подходит для хронической записи. Обычно используемые усилители переменного тока могут обнаруживать снижение высокочастотной активности, но без сопутствующего «сдвига постоянного тока» подтвердить наличие SD является сложной задачей.

Распространяющиеся деполяризации (SD) также могут быть обнаружены с помощью различных методов визуализации. Чаще всего SD визуализируются с помощью лазерной спекл-контрастной визуализации, которая измеряет мозговой кровоток через интактный череп10. СД существенно влияют на сосудистую сеть головного мозга и кровоток. У большинства видов, кроме мышей, SD вызывают распространяющуюся волну гиперперфузии, которая распространяется вместе с передним краем класса SD11. SD также можно визуализировать с помощью флуоресцентных индикаторов кальция или глутамата12, хотя для этого требуется загрузка ткани красителями или генетически закодированными флуоресцентными индикаторами12,13. Интересно, что SD можно наблюдать невооруженным глазом благодаря собственным оптическим сигналам (iOS), связанным с SD14. iOS — это сложные сигналы, состоящие из автофлуоресцентных молекул, таких как NAD(P)H и FADH15,16, отек тканей17, а также потенциальные изменения мозгового кровотока. Несмотря на свою сложность, сигналы iOS надежны и могут быть захвачены мышами дикого типа 18. Этот протокол описывает метод визуализации iOS, поскольку этот метод может быть реализован в любой лаборатории без необходимости использования специализированных вирусов или трансгенных животных.

Общая цель этого метода - экспериментально подтвердить наличие или отсутствие распространяющейся деполяризации (SD) после легкой черепно-мозговой травмы (mTBI) с использованием одновременной визуализации и электрофизиологии. Электрофизиология in vivo, поддерживаемая передовыми усилителями, является широко используемым методом. Тем не менее, эти усилители не могут обнаружить характерный сдвиг постоянного тока. Поэтому методы визуализации, описанные в этом протоколе, используются для уверенного подтверждения наличия или отсутствия SD. Преимущество объединения визуализации и электрофизиологии заключается в том, что визуализация может обнаружить распространение SD, в то время как электрофизиология может идентифицировать связанную с этим высокочастотную депрессию.

В целом, этот метод подходит для исследования наличия распространяющихся деполяризаций (SDs) после черепно-мозговой травмы (ЧМТ). Его применение может улучшить понимание функции корковой сети после ЧМТ и СД. Этот протокол может быть адаптирован от модели закрытого удара черепа к другим моделям, таким как контролируемое кортикальное воздействие, перкуссия жидкости или падение веса. Внедрение этого протокола в нескольких лабораториях может пролить свет на роль СД при различной степени тяжести ЧМТ. Можно использовать любую установленную модель ЧМТ с последующими процедурами визуализации и электрофизиологии iOS, описанными в этом протоколе.

Доступ ограничен. Войдите в систему или начните пробный период, чтобы просмотреть этот контент.

Протокол

Все процедуры были выполнены в соответствии с Комитетом по уходу за животными и их использованию (IACUC) в Университете Нью-Мексико. Мыши C57BL/6J были получены из коммерческого источника. Использовалось равное количество самцов и самок мышей в возрасте от 8 до 14 недель. Все мыши весили примерно 20 г. Подробная информация о животных, реагентах и оборудовании, использованных в этом исследовании, приведена в Таблице материалов. Дополнительный файл 1 содержит список сокращений.

1. Подготовка черепа к визуализации и электрофизиологии

  1. Обезболите животное в индукционной коробке изофлурана с 2%-3% изофлураном в 100% кислороде, обеспечивая надлежащую глубину анестезии без вздрагивания от щипки лапы.
  2. Вводите предоперационные анальгетики (бупренорфин с медленным высвобождением, 3,25 мг/кг, SQ) перед помещением животного в стереотаксическую рамку и поддерживайте анестезию (2% изофлуран).
  3. Добавьте офтальмологическую мазь и поддерживайте температуру тела животного с помощью грелки, которая имеет обратную связь по температуре тела.
  4. Сбрейте волосы над черепом, где будет разрез, вниз по средней линии от глазной щели к лямбде.
  5. Перед стерилизацией кожи удалите подстриженные волосы с помощью антисептического и дезинфицирующего скраба и раствора. В завершение добавьте 70% этанола и повторите три раза, чтобы обеспечить стерильность места операции.
  6. Используя лезвие скальпеля #10, сделайте разрез по средней линии от рострального к каудальному, сразу после чего нанесите на разрез медицинский цианоакрилатный клей. Раздвиньте кожу в сторону, чтобы обнажить череп.
  7. Добавьте еще одну-две капли цианоакрилатного клея на череп, чтобы добавить дополнительную защиту черепу.
    ПРИМЕЧАНИЕ: Нанесение клея чувствительно ко времени, так как череп начинает становиться непрозрачным при воздействии воздуха дольше 10 секунд. Это затруднит визуализацию SD с помощью методов визуализации.
  8. Пока клей высыхает, используйте стерильные хирургические ножницы, чтобы увеличить размер разреза над мозжечком. После того, как клей схватится, приступайте к имплантации винтовых электродов черепа.
    1. Стерилизуйте винты черепа с помощью стерилизатора с шариками в течение 20-30 с до имплантации.
    2. Винты с черепом должны быть размещены в области, удаленной от места инициации SD, чтобы сохранить открытое визуальное окно.
      ПРИМЕЧАНИЕ: Для хронических записей в первичной зрительной коре используются три винта в виде черепа. Первый винт размещается примерно на расстоянии y = -6,00 мм от брегмы, в мозжечке, выполняя роль электрода сравнения. Записывающие электроды расположены на расстоянии y = -2,79 мм от брегмы и x = ±2,5 мм от средней линии, в левом и правом полушариях.
    3. С помощью сверла размером 0,8 мм просверлите направляющие отверстия в черепе. Чтобы гарантировать отсутствие повреждения подлежащих тканей, идеальным является -0,5 мм в z. Используйте винты #00-90, которые предварительно припаяны к золотым контактам с проволокой из нержавеющей стали.
    4. Поверните винты вниз в череп.1.5-2 полных оборота винт пройдет через череп и войдет в контакт с кортикальной поверхностью.
    5. Намотайте лишнюю проволоку на винт, чтобы дать небольшой провисание проволоке для размещения на сцене позже.
    6. Используя те же процедуры, установите другие винты с черепом.
    7. Как только все винты будут на месте, вставьте все золотые контакты в нужный разъем для головного монтажа. Удерживайте разъем на месте с помощью стереотаксического рычага и держите контакты разъема близко над головками винтов, следя за тем, чтобы провода не соприкасались.
    8. Запечатайте всю область цианоакрилатным клеем, следя за тем, чтобы не повредить область визуализации перед винтами черепа.
    9. Нанесите стоматологический цемент вокруг основания золотых штифтов, следя за тем, чтобы золотые штифты от винтов черепа не были соединены с золотыми штифтами в головном столике.
    10. Дайте стоматологическому цементу застыть, прежде чем снимать соединитель для верхней части.
    11. Извлеките животное из стереотаксической рамы и поместите его обратно в домашнюю клетку для восстановления. Соблюдайте стандартный послеоперационный уход и держите животных на грелке во время восстановления после анестезии.
      ПРИМЕЧАНИЕ: После операции животные содержались в одном помещении и ежедневно контролировались на предмет боли. Следуйте местным рекомендациям по обезболиванию. При использовании бупренорфина с медленным высвобождением следите за болью и потенциально давайте дополнительную дозу через 72 ч.
  9. Удалите все предметы, которые могут зацепиться за электроды, включая корпус и обогащение. Используйте стандартные постельные принадлежности с свободным доступом к еде и воде.
    ПРИМЕЧАНИЕ: Предоставьте двухдневный восстановительный период между операцией и записью.

2. Обнаружение распространяющихся деполяризаций с помощью визуализации собственного оптического сигнала (iOS) и электрофизиологии AC

  1. Обезболивайте животных 2% изофлураном в 100% кислороде.
    ПРИМЕЧАНИЕ: Визуализационная часть этой процедуры должна занимать ~5 минут, а количество воздействия изофлурана должно быть постоянным.
  2. Поместите животное в стереотаксическую рамку. Через носовой обтекатель поддерживайте 1%-2% изофлурана в кислороде.
    ПРИМЕЧАНИЕ: Крайне важно поддерживать надлежащую глубину анестезии, так как известно, что изофлуран снижает SD. Рекомендуется поддерживать 60-70 вдохов/мин на протяжении всего эксперимента.
  3. Поместите животное под камеру и убедитесь, что камера сфокусирована на поверхности коры головного мозга, отрегулировав кольцо фокусировки.
  4. Нанесите минеральное масло на область визуализации для повышения прозрачности.
  5. Включите компьютеры, светодиодную панель, электрофизиологическое оборудование><. ПРИМЕЧАНИЕ: Светодиодная панель лучше всего работает при размещении перед животным для освещения окна визуализации при выключенном верхнем свете. Свет был установлен на ~2,400 люкс (95% мощности) с настройкой холодной температуры 4000K.
  6. Настройка загрузки для iOS с помощью Micro-Manager19,20,21,22.
    1. Нажмите кнопку Live, чтобы просмотреть мышь под камерой, и отцентрируйте череп животного под камерой. Закройте окно "Live".
    2. Нажмите Multi-D acq.
    3. В окне «Многомерная съемка» выберите нужные временные точки.
      ПРИМЕЧАНИЕ: Рекомендуется подсчет 750 изображений с интервалом 250 мс.
    4. Сохраняйте изображения в нужном пути к файлу и префиксе имени.
  7. Подсоедините золотые контакты от животного к разъему для головы, а затем к сцене.
  8. Настройка нагрузки для программного обеспечения Intan.
    1. Нажмите на иконку «Выбрать формат файла» и во всплывающем окне выберите «Формат типа одного файла на сигнал». Это позволит сохранить файл в качестве ".dat" для дальнейшего использования в MATLAB.
    2. На вкладке BW в разделе Hardware Bandwidth (Аппаратная полоса пропускания) выберите полосу пропускания усилителя 0,13–500 Гц.
    3. В разделе Выбор фильтра дисплея выберите WIDE, чтобы охватить максимально широкий диапазон сигналов.
    4. Чтобы выбрать нужный путь к файлу для сохранения, нажмите на иконку «Выбрать имя файла».
  9. Выполните удар с помощью электромагнитного импактора.
    ПРИМЕЧАНИЕ: Скорость удара составляет 4 м/с и отклонение 5 мм.
    1. Включите импактор и убедитесь, что наконечник втягивается и выдвигается соответствующим образом, щелкнув 3-позиционным переключателем, чтобы втянуть наконечник и вытянуть наконечник. Наконечник должен быть вытянут перед тем, как поместить животное под наконечник.
    2. Быстро двигаясь, уложите животное на поролоновую подстилку и сдвиньте подстилку под кончик.
    3. Выровняйте кончик ударного элемента по средней линии и на расстоянии 1 мм ростраль брегмы.
    4. Опустите кончик ударного элемента так, чтобы он плотно касался макушки головы животного.
      ПРИМЕЧАНИЕ: Не надавливайте кончиком вниз на голову.
    5. Нажмите на рычаг, чтобы втянуть наконечник ударного элемента, а затем вручную опустите его на 5 мм перед активацией ударного рычага.
    6. Немедленно снимите животное с поролонового слоя и поместите животное под камеру для получения изображения в течение 5 секунд, так как SD инициируется от удара.
  10. Запустите изображение iOS, нажав кнопку «Получить!» в окне «Многомерное сканирование». Изображение за 4 минуты для захвата всего SD.
  11. Начните запись электрофизиологии, нажав на значок «Запись» в программном обеспечении Inteltan.
  12. Снимите животное с поролоновой прокладки и дайте животному восстановиться на открытой арене или в домашней клетке.
    ПРИМЕЧАНИЕ: Рекомендуется записывать электрофизиологию в течение не менее 1 часа, чтобы позволить функции корковой сети восстановиться.
  13. По завершении записи отключите животное от головного пульта и разъема и поместите животное обратно в клетку.
    ПРИМЕЧАНИЕ: Рекомендуется оставлять 24 часа между каждым ударом и сеансом записи. Животное может оставаться в своей домашней клетке в течение всего времени вне сессий записи.

3. Визуализация и количественная оценка изображений iOS

  1. В ImageJ19,20,21,22, откройте стек изображений, нажав на последовательность Файл > Импорт > Изображение.
  2. Вручную прокручивайте изображения, чтобы убедиться в отсутствии движения или каких-либо других артефактов.
  3. Чтобы построить график SD, создайте ROI, нарисовав квадрат с помощью курсора.
    ПРИМЕЧАНИЕ: Рекомендуется использовать квадрат размером 30 x 30 пикселей. Можно использовать любую форму или размер, но убедитесь, что размер ROI не меняется у разных животных.
  4. Создайте график, щелкнув по Image > Stacks > Plot Z-axis Profile. На только что созданном графике нажмите на кнопку «Живая». Вернитесь к стеку изображений SD и перемещайте ROI, пока на графике не появится кривая SD. График должен выглядеть как волна Грех с последующим последующим падением ниже базовой линии и медленным возвращением к исходной линии в течение нескольких минут.
    ПРИМЕЧАНИЕ: Графики могут быть выражены в виде условных единиц измерения (AU) или в процентах от базовой линии с использованием первых нескольких изображений в качестве базового среднего значения.
  5. На сгенерированном графике нажмите «Список», чтобы создать список значений, которые могут быть построены в другом программном обеспечении для создания графиков или Matlab.
  6. Для визуализации превратите изображение в оттенках серого в таблицу подстановки в ImageJ по изображению > таблицах подстановки > Fire.

4. Электрофизиологический анализ

ПРИМЕЧАНИЕ: Рекомендуется активно использовать опыт лаборатории Бузсаки и их код, сгенерированный MATLAB, для визуализации и анализа данных электрофизиологии. Для анализа потребуется скачать MATLAB с кодом активации учреждения и zip-файл «Buzcode» лаборатории Бузсаки через GitHub (https://github.com/buzsakilab/buzcode).

  1. В программе электрофизиологии Intan убедитесь, что экспортированные исходные данные сохранены в формате ".dat><". ПРИМЕЧАНИЕ: Matlab можно установить с веб-сайта MathWorks. Институциональный или индивидуальный код активации необходим для покупки и использования Matlab. Для выполнения этого анализа необходим некоторый предварительный опыт работы с кодом в Matlab.
  2. Используйте функцию bz_LoadBinary кода Бузаки для загрузки данных в Matlab.
    ПРИМЕЧАНИЕ: Пример "'data' = bz_LoadBinary ("полный путь к файлу данных", 'частота', частота дискретизации, nChannels, количество каналов);
  3. Отфильтруйте шум переменного тока с помощью режекторного фильтра с центром в частоте 60 Гц.<бр/> ПРИМЕЧАНИЕ: Пример notch_freq = 60; [b,a] = iirnotch(notch_freq/(sampling_frequency/2), notch_bandwidth/(sampling_frequency/2)); filtered_data = filtfilt(b, a, data);
  4. Изолируйте высокочастотную активность с помощью полосового фильтра с диапазоном 0,5-100 Гц, в соответствии с рекомендациями группы COSBID по анализу и визуализации распространяющихся деполяризаций (SD).
  5. Рассчитайте спектрограмму мощности с помощью команды pspectrum в MatLab.
  6. Для визуализации постройте высокочастотную и мощностную спектрограмму на одной временной шкале и в одном столбце.
    ПРИМЕЧАНИЕ: Судя по графикам, произойдет расширение высокочастотной депрессии и потеря мощности.

Доступ ограничен. Войдите в систему или начните пробный период, чтобы просмотреть этот контент.

Результаты

Рисунок 1 представляет собой графическую схему экспериментальной установки. Регистрационные винты в черепе расположены в первичной зрительной коре, при этом один электрод-винт в черепе помещен в червя раздела мозжечка в качестве заземляющего электрода. Винты в черепе и золотые штифты закреплены на черепе с помощью цианоакрилатного клея и стоматологического цемента. Крайне важно ограничить нанесение стоматологического цемента каудальной частью черепа, чтобы оставить место для нанесения удара ...

Доступ ограничен. Войдите в систему или начните пробный период, чтобы просмотреть этот контент.

Обсуждение

Распространяющаяся деполяризация имеет решающее значение в различных моделях заболеваний, включая черепно-мозговую травму (ЧМТ), инсульт и мигрень1. Точное выявление СД имеет важное значение для понимания их роли в остром поведенческом дефиците и/или активации нейроиммунной системы после легких черепно-мозговых травм (ЧМТ)23,24. Чтобы снизить риск пропуска SD при использовании одного метода, необходим многометодный подход для эффективной в...

Доступ ограничен. Войдите в систему или начните пробный период, чтобы просмотреть этот контент.

Благодарности

Эта работа была поддержана грантами NIGMS P20GM109089 и Министерства обороны PR200891.

Доступ ограничен. Войдите в систему или начните пробный период, чтобы просмотреть этот контент.

Материалы

Список материалов, использованных в этой статье
ИмяКомпанияКаталожный номерКомментарии
#00-90 x .118 ШурупUS Micro Винт00.90-118-M-SS-P, Amazon
диаметр 0.8 ммсверло для печатных платWYTP21, Amazon
16-AHeadstage Intan C3335
2,1 мм Микросверло с заусенцамиFine Science Tools19007-21
Усилитель переменного токаIntanRHD записывающая система
C57BL/6J мыши Лаборатория Джексона Jax#000664
CCD камераMightexTCE-1304-U
Удлинительный объективZeikos ZE-ETN
Ethiqa XR (бупренорфин с медленным высвобождением)Midwest Veterinary SupplyНомер продукта 267.10000.3
Золотой соединительный штифт (женский)A-M Systems520100
Золотой соединительный штифт (мужской)A-M Systems520200
ImageJ2/FijiImage JNA
Impactor OneLeica39463930
Светодиодная панель SuponL122t
MATLABMathWorksИнституциональный или индивидуальный код
Медицинский цианоакрилатный клейMasterBondMB287
Micro-Manager Камера Программное обеспечениеИзображение JNA
Дрелка/полировка для ногтейMakartt Дрель для ногтей Электрическая пилочка для ногтейJD700
Omnetic connectorsOmneticsA79014-001
RHX Программное обеспечение для сбора данныхIntanNA
Нержавеющая сталь непокрытый провод (0,005")A-M Systems792800
Стереотаксическая рамаKopf Intruments1923-B
Соски 'холодного отверждения' стоматологический цементA-M системы525000, 526000
XLR объектив камерыNikonNIKKOR 50 mm f/1.8-16
активации

Ссылки

  1. Pietrobon, D., Moskowitz, M. Chaos and commotion in the wake of cortical spreading depression and spreading depolarizations. Nat Rev Neurosci. 15 (6), 379-393 (2014).
  2. Hartings, J. A., et al. Repetitive cortical spreading depolarizations in a case of severe brain trauma. Neurological Res. 30 (8), 876-882 (2008).
  3. Andrew, R. D., et al. Questioning glutamate excitotoxicity in acute brain damage: The importance of spreading depolarization. Neurocrit Care. 37, 11-30 (2022).
  4. Andrew, R. D., et al. Thecritical role of spreading depolarizations in early brain injury: Consensus and contention. Neurocrit Care. 37, 83-101 (2022).
  5. Pacheco, J., et al. Spreading depolarizations are associated with concussion-like behavior. eNeuro. 6 (6), (2019).
  6. Bouley, J., Chung, D. Y., Ayata, C. Y., Brown, R. H., Henninger, N. Cortical spreading depression denotes concussion injury. J Neurotrauma. 35, 1-10 (2018).
  7. Pinkowski, N. J., et al. Spreading depolarizations contribute to the acute behavior deficits associated with a mild traumatic brain injury in mice. J Neurotrauma. 41 (1-2), 271-291 (2023).
  8. Dreier, J. P., et al. Recording, analysis, and interpretation of spreading depolarizations in neurointensive care: Review and recommendations of the COSBID research group. J Cereb Blood Flow and Metab. 37 (5), 1595-1625 (2017).
  9. Herreras, O., Somjen, G. G. Analysis of potential shifts associated with recurrent spreading depression and prolonged unstable spreading depression induced by microdialysis of elevated K+ in hippocampus of anesthetized rats. Brain Res. 610 (2), 283-294 (1993).
  10. Boas, D. A., Dunn, A. K. Laser speckle contrast imaging in biomedical optics. J Biomed Opt. 15 (1), 011109(2014).
  11. Hadjikhani, N., et al. Mechanisms of migraine aura revealed by functional MRI in human visual cortex. PNAS. 98 (8), 4687-4692 (2001).
  12. Dietz, R. M., Weis, J. H., Shuttleworth, C. W. Contributions of Ca2+ and Zn2+ to spreading depression-like events and neuronal injury. J Neurochem. 109 (Suppl 1), 145-152 (2009).
  13. Reinhart, K. M., Shuttleworth, C. W. Ketamine reduces deleterious consequences of spreading depolarizations. Exp Neurol. 305, 121-128 (2018).
  14. Mané, M., Müller, M. Temporo-spectral imaging of intrinsic optical signals during hypoxia-induced spreading depression-like depolarization. PLoS One. 7 (8), (2012).
  15. Brennan, A. M., Connor, J. A., Shuttleworth, C. W. NAD(P)H fluorescence transients after synaptic activity in brain slices: predominant role of mitochondrial function. J Cereb Blood Flow and Metab. 26 (11), 1389-1406 (2006).
  16. Shuttleworth, C. W., Brennan, A. M., Connor, J. A NAD(P)H fluorescence imaging of postsynaptic neuronal activation in murine hippocampal slices. J Neurosci. 23 (8), 3196-3208 (2003).
  17. Sword, J., Croom, D., Wang, P. L., Thompson, R. J., Kirov, S. A. Neuronal pannexin-1 channels are not molecular routes of water influx during spreading depolarization-induced dendritic beading. J Cereb Blood Flow and Metab. 37 (5), 1626-1633 (2017).
  18. Chung, D. Y., et al. Real-time non-invasive in vivo visible light detection of cortical spreading depolarizations in mice. J Neurosci Methods. 309, 143-146 (2018).
  19. Schneider, C. A., Rasband, W. S., Eliceiri, K. W. NIH Image to ImageJ: 25 years of image analysis. Nat Methods. 9 (7), 671-675 (2012).
  20. Rueden, C. T., et al. ImageJ2: ImageJ for the next generation of scientific image data. BMC Bioinform. 18 (1), 1-26 (2017).
  21. Edelstein, A., Amodaj, N., Hoover, K., Vale, R., Stuurman, N. Computer control of microscopes using µManager. Curr Protoc Mol Biol. 14, (2010).
  22. Edelstein, A. D., et al. Advanced methods of microscope control using µManager software. J of Biol Methods. 1 (2), e10(2014).
  23. Soldozy, S., et al. Cortical spreading depression in the setting of traumatic brain injury. World Neurosurg. 134, 50-57 (2020).
  24. Zepeda, A., Arias, C., Sengpiel, F. Optical imaging of intrinsic signals: Recent developments in the methodology and its applications. J Neurosci Methods. 136 (1), 1-21 (2004).
  25. Steinzeig, A., Molotkov, D., Castrén, E. Chronic imaging through "transparent skull" in mice. PLoS One. 12 (8), (2017).
  26. Sword, J., Masuda, T., Croom, D., Kirov, S. A. Evolution of neuronal and astroglial disruption in the peri-contusional cortex of mice revealed by in vivo two-photon imaging. Brain. 136 (5), 1446-1461 (2013).
  27. Hudetz, A. G., Vizuete, J. A., Pillay, S. Differential effects of isoflurane on high-frequency and low-frequency oscillations in the cerebral cortex and hippocampus in freely moving rats. Anesthesiology. 114 (3), 1588-1595 (2011).
  28. Reinhart, K. M., Morton, R. A., Brennan, K. C., Carlson, A. P., Shuttleworth, C. W. Ketamine improves neuronal recovery following spreading depolarization in peri-infarct tissues. J Neurochem. 168 (5), 855-867 (2023).

Доступ ограничен. Войдите в систему или начните пробный период, чтобы просмотреть этот контент.

Перепечатки и разрешения

Теги

Электрофизиология in vivoметод внутренней оптической визуализациичерепно-мозговая травмамодели мозга мыширегистрация электрофизиологических показателейвизуализация коры головного мозгаподавление высокочастотной активностистереотаксическая операцияэлектромагнитный импактор
Сочетание визуализации и электрофизиологии для визуализации и регистрации распространяющейся деполяризации у мышей
Связаться с нами
Порекомендовать библиотеке

Конфиденциальность

Условия использования

Политики

© 2026 MyJoVE Corporation. Все права защищены.