Для просмотра этого контента требуется подписка на JoVE. Войдите или начните свой бесплатный пробный период.

Методическая статья

Определение четырех подтипов NK-клеток матки с помощью мультиплексного флуоресцентного иммуногистохимического окрашивания у женщин с повторной неудачей имплантации

2.4K просмотров

⸱

DOI:

10.3791/67284

⸱

25 октября 2024 г.

 ,  ,  ,  ,  ,  ,  , 
1Department of Obstetrics and Gynaecology, Faculty of Medicine, The Chinese University of Hong Kong, 2Department of Pathology, School of Clinical Medicine, The University of Hong Kong, Queen Mary Hospital, 3Reproduction and Development Laboratory, Li Ka Shing Institute of Health Sciences, The Chinese University of Hong Kong, 4School of Biomedical Sciences, Prince of Wales Hospital, The Chinese University of Hong Kong, 5Chinese University of Hong Kong - Sichuan University Joint Laboratory in Reproductive Medicine, The Chinese University of Hong Kong, 6Laboratory for Reproductive Immunology, Hospital of Obstetrics and Gynecology, Fudan University, 7NHC Key Lab of Reproduction Regulation, Shanghai Institute for Biomedical and Pharmaceutical Technologies, Fudan University, 8Shanghai Key Laboratory of Female Reproductive Endocrine Related Diseases, Hospital of Obstetrics and Gynecology, Fudan University

В этой статье

Краткое содержание

В этом исследовании представлен новаторский метод количественного определения субпопуляций естественных клеток-киллеров матки в течение окна имплантации с использованием передовых методов мультиплексного флуоресцентного иммуногистохимического окрашивания.

Аннотация

Иммуногистохимия (ИГХ) играет решающую роль в биологических исследованиях и клинической диагностике, являясь наиболее часто используемым методом идентификации и визуализации тканевых антигенов. Однако традиционные методы окрашивания ИГХ имеют ограничения в различении различных подтипов иммунных клеток. Эта проблема подтолкнула ученых к изучению новых технологий и методологий для точной идентификации и дифференцировки подтипов иммунных клеток. В последние годы появилась мультиплексная ИГХ, позволяющая одновременно обнаруживать несколько антигенов и визуализировать их в одном образце ткани. Естественные киллеры матки (uNK) играют ключевую роль в процессах беременности на ранних сроках, включая децидуализацию, ремоделирование спиральных артерий матки и имплантацию эмбрионов. Различные подтипы uNK-клеток выполняют различные функции, что позволяет им координировать различные биологические события для успешного развития эмбриона и наступления беременности. Таким образом, углубленные исследования подтипов uNK-клеток имеют важное значение для выяснения механизмов иммунной регуляции во время беременности. Такие исследования дают ценную информацию и новые подходы к лечению связанных с этим состояний, таких как бесплодие и рецидивирующая репродуктивная недостаточность. В данной работе представлен подробный протокол мультиплексного окрашивания ИГХ для изучения плотности четырех подтипов uNK-клеток в образцах эндометрия в период окна имплантации (WOI). Протокол включает в себя пробоподготовку, оптимизацию маркеров подтипов, микроскопическую визуализацию и анализ данных. Этот протокол мультиплексного окрашивания ИГХ обеспечивает высокую специфичность и чувствительность, позволяя одновременно обнаруживать различные подтипы uNK-клеток, тем самым предоставляя исследователям мощный инструмент для изучения тонкостей и механизмов иммунной регуляции во время беременности.

Введение

Первое документально подтвержденное живорождение после экстракорпорального оплодотворения и переноса эмбрионов (ЭКО-ЭТ) было зарегистрировано в 1978 году. На протяжении последних 40 лет наблюдается высокий спрос на помощь ЭКО-ЭТ среди бесплодных пар1. В 2021 году в Соединенных Штатах 238 126 пациентов инициировали в общей сложности 413 776 циклов ЭКО. Это на 25% больше, чем за 2 года до этого, и на 135% больше, чем в 2012 году. Этот всплеск в основном связан с растущей распространенностью бесплодия и задержкой планирования беременности. Достижения в области методов культивирования эмбрионов и протоколов суперовуляции привели к увеличению частоты живорождения за цикл ЭТ, достигая 30-50% у женщин моложе 40 лет и менее 30% у женщин старше 40 лет. Однако, несмотря на эти достижения, более половины перенесенных эмбрионов до сих пор не имплантируются. Повторная неудачная имплантация (РИФ), обычно определяемая как неудача после трех или более последовательных попыток переноса высококачественных эмбрионов, затрагивает 15% женщин, которые проходят ЭКО-ЭТ3. Пары с РИФ чрезвычайно уязвимы и более склонны к дорогостоящим и ненужным процедурам, которые могут подвергнуть их неоправданному риску4. Таким образом, понимание причин РИФ и улучшение имплантации эмбрионов имеет решающее значение для повышения успеха ЭКО-ЭТ, особенно для женщин с РИФ. Подготовка эндометрия имеет решающее значение для успешной имплантации эмбриона. Этот процесс характеризуется значительным накоплением естественных киллерных клеток матки (uNK), которые переходят от 30% от общего количества лимфоцитов в эндометрии в середине секреторной фазы к 70%-80% в децидуальной клетке на ранних сроках беременности5. Примечательно, что uNK-клетки отличаются от периферических NK-клеток, которые представляют собой цитотоксические лимфоциты, критически важные для врожденной иммунной системы, вызывающие гибель инфицированных клеток посредством лизиса или апоптоза. Хотя точные функции uNK-клеток еще не до конца изучены, несколько линий данных свидетельствуют о том, что они участвуют в ремоделировании ангиогенеза, инвазии трофобластаи развитии плода. Связь между процентным соотношением uNK-клеток над стромальными клетками и RIF привлекла большое внимание за последние 20 лет. Недавний метаанализ, который включал 8 исследований с участием 604 женщин, показал, что плотность клеток CD56+uNK во время среднелютеиновой фазы значительно увеличивается у женщин с РИФ по сравнениюс фертильной контрольной группой. Однако важно отметить, что характеристики uNK-клеток в среднелютеиновой фазе значительно отличаются от характеристик децидуальных NK-клеток (dNK). Хотя uNK-клетки могут в дальнейшем дифференцироваться в различные подмножества dNK-клеток после беременности, измерение uNK-клеток само по себе не дает точногопредставления dNK-клеток8. Клетки uNK подвергаются динамической дифференцировке и играют различные роли в менструальном цикле и процессах децидуализации, что делает их более сложными, чем можно идентифицировать только по CD56. Для достижения всестороннего понимания поведения uNK-клеток во время подготовки эндометрия требуется несколько маркеров. В нашем недавнем исследовании использовалось секвенирование РНК одиночных клеток для определения разнообразия uNK-клеток на протяжении менструальных циклов. Результаты, подтвержденные с помощью проточной цитометрии, показали наличие четырех различных подтипов uNK-клеток, каждый из которых демонстрирует динамические изменения в течение менструальногоцикла. Анализ обогащения генов и функциональное обогащение онтологии генов показывают, что эти подмножества uNK выполняют различные функции на разных этапах менструации. Тем не менее, проточная цитометрия не всегда доступна в клинических лабораториях, а немедленная обработка свежей ткани эндометрия для ферментного расщепления делает невозможным повторение экспериментальных этапов при ошибках.

Таким образом, целью данного исследования было изучение измерения этих четырех субпопуляций NK-клеток с использованием мультиплексного анализа окрашивания, который обеспечивает более практичный диагностический подход. При множественном окрашивании различные специфические антитела против каждой мишени связаны с различными флуорофорными метками, которые излучают свет с разной длиной волны при возбуждении определенной длиной волны света. По сравнению с традиционным методом окрашивания ИГХ, этот метод позволяет количественно сравнивать относительную распространенность и распределение нескольких мишеней в образце и предоставлять информацию о взаимодействии и колокализации различных мишеней, что позволяет нам идентифицировать различные подтипы uNK-клеток. Этот подход не только углубит наше понимание взаимосвязи между uNK-клетками и RIF, но и даст представление об исследовании других субпопуляций иммунных клеток при заболеваниях, связанных с эндометрием.

Доступ ограничен. Войдите в систему или начните пробный период, чтобы просмотреть этот контент.

Протокол

Исследование было одобрено Объединенным комитетом по этике клинических исследований Китайского университета Гонконга и Новых территорий Восточного кластера (CREC No 2022.581). Женщины с РИФ были набраны из Центра вспомогательных репродуктивных технологий, больницы принца Уэльского Китайского университета Гонконга. РИФ определяли как неспособность достичь клинической беременности после переноса не менее 4 эмбрионов хорошего качества в минимум 3 свежих или замороженных циклах у женщины в возрасте до 40лет10. Перед забором биопсии эндометрия от участниц было получено информированное согласие.

1. Получение и обработка образцов эндометрия

  1. Сроки забора образцов эндометрия
    1. Соберите образцы эндометрия в соответствии со строгим протоколом, чтобы обеспечить согласованность среди участников исследования. Пациенткам с естественным циклом следует проводить анализ мочи с9-го дня менструального цикла и проводить биопсию эндометрия на7-й день после всплеска ЛГ (ЛГ+7)11 . Пациенткам, проходящим циклы заместительной гормональной терапии (ЗГТ), назначать 6 мг эстрадиола валерата перорально ежедневно, начиная со 2-го дня менструального цикла.
    2. Оценивают толщину эндометрия с помощью УЗИ на 13 день менструального цикла. Когда толщина эндометрия достигает или превышает 8 мм, ввести прогестерон трансвагинально и провести биопсию эндометрия через 5 дней после введения прогестерона12.
  2. Забор и фиксация образца эндометрия: введение пробоотборника пипетки в полость матки, продвигая его к области дна; Применяют отсасывание, потянув вниз внутренний поршень, одновременно соскабливая поверхность эндометрия посредством вращательных и вертикальных движений внутри полости матки. Собранные экземпляры промыть обычным физиологическим раствором для устранения цервикальных и маточных выделений. Измерьте образцы и оцените размер. Образцы размером 3 мм х 15-25 мм немедленно погрузить в 10 мл 10% нейтрального буферизованного формалина и зафиксировать при комнатной температуре на 24-48 ч.
  3. Обезвоживание: После завершения фиксации образцы подвергаются последовательности обезвоживания, предназначенной для замены воды этанолом. Для этого погружают ткани в ванны с содержанием этанола на 70%, 80%, 90% и 100% для обеспечения полного обезвоживания. После окончательной ванны с этанолом очистите образцы в ксилоле, чтобы удалить остатки спирта и подготовить их к инфильтрации парафина.
  4. Закладка: После помещения ткани на дно формы расплавьте парафин и осторожно добавьте его к образцам, чтобы убедиться, что ткань эндометрия полностью инкапсулирована в парафиновую матрицу. Заполнив формы парафином, охладите их на морозильном столе, чтобы способствовать застыванию парафина. Как только парафиновые блоки затвердеют, хранить при комнатной температуре до тех пор, пока не потребуется дальнейшая обработка.
    ПРИМЕЧАНИЕ: Используемые формы были специально подобраны с учетом размера полученных образцов эндометрия, чтобы ткань эндометрия могла лежать ровно на дне без сгибания, обеспечивая тем самым оптимальную ориентацию для последующего секционирования и не создавая ненужных излишеств.
  5. Секционирование: Для подготовки к секционированию парафиновые блоки охлаждают при температуре 4 °C в течение 2 часов. Нарежьте образцы на срезы размером 4 мкм с помощью микротома, затем расплющите срезы на поверхности дистиллированной воды, нагретой до 42 °C, и закрепите их на клейких стеклянных предметных стеклах. Поместите ломтики в сушилку на ночь и храните при комнатной температуре перед использованием.

2. Оптимизация мультиплексных иммуногистохимических условий

  1. Валидация ИГХ: Для валидации параметров окрашивания ИГХ используйте систематический подход к точной настройке условий для извлечения антигена, концентрации антител и времени инкубации.
    1. В пределах рекомендованных производителем диапазонов разведения протестируйте 2-3 концентрации для каждого антитела. Оптимизируйте извлечение антигенов путем сравнения буферов при pH 6 и pH 9, а также оцените протоколы инкубации при комнатной температуре в течение 1,5 ч и в течение ночи при 4 °C.
    2. Тщательно оценивайте каждое состояние, уделяя особое внимание интенсивности окрашивания, специфичности и фоновому шуму. Выберите оптимальную комбинацию, которая обеспечит наиболее прозрачное, специфичное окрашивание с минимальным неспецифическим связыванием. Такая тщательная валидация обеспечила высочайшую точность и воспроизводимость протокола IHC.
  2. Моноплексное окрашивание с помощью усиления тирамидного сигнала (TSA): После определения оптимальных параметров окрашивания для отдельных антител оптимизируйте спаривание антител с различными красителями TSA. Сочетайте маркер с более высокой экспрессией с красителем с более низким уровнем интенсивности флуоресценции, или наоборот. Во время этой фазы внесите коррективы в концентрацию антител и время инкубации в соответствии с наблюдаемой силой сигнала флуоресценции. Если наблюдается значительное фоновое или неспецифическое окрашивание, смените парный краситель13.
  3. Мультиплексное окрашивание TSA: Для протокола мультиплексной иммуногистохимии (m-IHC) последовательный порядок окрашивания был тщательно определен в соответствии с установленными принципами. Чтобы процесс мультиплексирования отражал чувствительность и специфичность окрашивания по одной метке, в начале окрашиваемой последовательности отдают предпочтение антителам с более низкими уровнями экспрессии. Поместите антитела, требующие восстановления основания для извлечения антигена, в конце последовательности окрашивания, поскольку восстановление основания является надежным по сравнению с методами на основе кислот, которые в некоторых случаях могут усиливать неспецифические артефакты окрашивания.
  4. Используя результаты этапов 2.1 и 2.2, примите решение о том, какие антитела будут использоваться и на каком этапе, исходя из их потребностей в извлечении антигена и плотности экспрессии. Например, антитело CXCR4, которое требует восстановления основания для извлечения антигена, находится на заключительных стадиях окрашивания. И наоборот, антителу CD49a, которое характеризуется более низкой плотностью экспрессии, было отведено первое место в окрашивающей последовательности. Увеличьте шансы на успешное обнаружение и сведите к минимуму любые эффекты маскирования, которые могут возникнуть на более поздних этапах процедуры мультиплексирования.
  5. Для остальных антител протестируйте различные комбинации на этапе оптимизации, чтобы определить наиболее эффективную последовательность, которая уравновешивает как чувствительность, так и специфичность. Результаты этого сравнительного анализа будут определять окончательный состав мультиплексной панели, как подробно описано в таблице 1, гарантируя, что выбранная панель обеспечивает оптимальную производительность при минимизации фона.

3. Процесс m-IHC

  1. Депарафинизация, гидратация и фиксация: выпекать срезы тканей при температуре 60 °C в течение 2 ч, после чего следует последовательное погружение в ксилол I (10 мин), ксилол II (10 мин), 100% этанол (5 мин), 95% этанол (5 мин), 80% этанол (5 мин), 75% этанол (5 мин), ddH2O (2 мин в 3 раза), 10% нейтральный буферизованный формалин (не менее 20 мин), и ddH2O (2 минуты для 3x).
  2. Извлечение антигена: Добавьте 200 мл соответствующего буфера AR6 или AR9, как указано в таблице 1 для каждого антитела, в термостойкую кассету для извлечения антигена. Поместите срезы в соответствующий буфер для извлечения антигена и нагрейте в микроволновой печи на высокой мощности в течение примерно 2 минут до закипания. Затем плотно накройте кассету, нагрейте на низкой мощности в течение 15 минут и охладите до комнатной температуры. Промойте секции с помощью ddH,2O и PBST.
  3. Рисование гидрофобного барьера: После удаления излишков раствора с помощью абсорбирующей бумаги нарисуйте полный круг вокруг ткани с помощью гидрофобной барьерной ручки.
  4. Инактивация активности эндогенных ферментов: Срезы обработать 3% перекисью водорода и инкубировать в течение 8 мин при комнатной температуре. Постирайте с PBST 3 раза по 2 минуты каждый.
  5. Блокирование неспецифических участков: После сушки абсорбирующей бумагой нанесите блокирующий раствор (1x Разбавитель антител/блок) и инкубируйте в течение 10 минут при комнатной температуре.
  6. Инкубация с первичным антителом: После удаления блокирующего раствора нанесите 150 мкл первого первичного антитела, CD49a, на каждое предметное стекло в разведении 1:1000 в 1x Разбавитель антител. Инкубируйте в соответствии с предыдущей оптимизацией, приведенной в разделе 2. После инкубации промойте предметные стекла PBST 3x в течение 2 минут каждое. Для остальных антител см. Таблицу 1 для конкретных коэффициентов разведения.
  7. Инкубация с вторичным антителом: перед применением вторичного антитела используйте абсорбирующую бумагу для удаления лишней влаги, чтобы предотвратить разведение реагента. Добавьте 4-5 капель (примерно 150 мкл) вторичного антитела 1x Anti-Ms + Rb HRP на каждое предметное стекло, после чего проведите 10-минутную инкубацию при комнатной температуре. Выполните три промывки PBST в течение 2 минут после каждой после инкубации.
    ПРИМЕЧАНИЕ: Обратите внимание, что вторичное антитело 1x Anti-Ms + Rb HRP специфично для первичных антител кроликов и мышей.
  8. Усиление сигнала с помощью красителя TSA: После промокания избытка влаги разведите краситель TSA в соотношении 1:100 в разбавителе для усиления. Добавьте 150 мкл этого разбавленного раствора красителя TSA в каждое предметное стекло. Выдерживать 10 минут при комнатной температуре. Постирайте с PBST 3 раза по 2 минуты каждый.
  9. Повторите шаги 3.2 и 3.5-3.8 для процедуры TSA с использованием соответствующих антител и красителя.
  10. Окрашивание ядер: После окрашивания последнего антитела удалить несвязанные флуорофоры путем разогревания в микроволновой печи в 200 мл буфера AR6 в термостойкой кассете, кипячения в течение 2 мин, затем нагревания низкой мощности в течение 15 мин. Охладите образцы до комнатной температуры и промойте ddH,2O и PBST. Добавьте 150 μL рабочего раствора DAPI, разведенного в PBST (1:10) по каплям, инкубируйте в течение 10 минут при комнатной температуре и промойте 2 раза ddH2O.
  11. Монтаж: После полного высыхания секций на воздухе в темном месте в течение примерно 30 минут нанесите одну каплю (около 30 мкл) флуоресцентного монтажника с защитой от гашения и установите покровные стекла.
    ПРИМЕЧАНИЕ: Защищайте все операции от света после первого нанесения красителя TSA. Оперативное наблюдение и получение изображений были необходимы для предотвращения гашения флуоресценции после окрашивания.

4. Получение и анализ изображений

  1. Время экспозиции: Захватывайте изображения с помощью тепловизора, который наследует длины волн возбуждения и излучения, соответствующие флуорофорам. При настройке времени экспозиции проверяйте слайды с широким диапазоном выражений маркеров, чтобы обеспечить точность. Для каждой комбинации маркера/фильтра вручную сфокусируйтесь на разных областях слайда. Используйте функцию «Автоматическая экспозиция», чтобы установить время экспозиции.
  2. Выберите фильтры в соответствии с красителями TSA и изучите несколько слайдов, чтобы определить оптимальное время экспозиции для каждого канала. Применяйте эти настройки последовательно ко всем последующим снимкам, чтобы обеспечить сопоставимость на протяжении всего процесса создания изображений.
  3. Выбор областей захвата: Для обеспечения несмещенного отбора проб по срезам ткани и последовательного включения люминального эпителия в каждое анализируемое поле, случайным образом выбирают исходную область для получения изображения, при этом критическим критерием является наличие границы люминального эпителия.
  4. После захвата этого начального поля систематически выделяйте последующие области, перемещая одно поле влево или вправо от начальной точки (опуская одно поле между каждым захваченным изображением), сохраняя при этом границу люминального эпителия в кадре. Повторите этот процесс, чтобы захватить по крайней мере пять различных областей, каждая из которых содержит по меньшей мере часть люминального эпителия, чтобы поддерживать постоянную глубину анализа на протяжении14 часов. Этот подход был направлен на то, чтобы включить минимум около 10 000 стромальных клеток на всех захваченных полях для обеспечения всестороннего и репрезентативного сбора данных.
  5. Анализ изображений
    1. Подготовка изображения: Чтобы импортировать и проанализировать мультиспектральные изображения, сначала перейдите в раздел «Файл» > «Открыть изображение » в интерфейсе программного обеспечения, чтобы загрузить файлы и слайд автофлуоресценции (АФ). После загрузки изображений перейдите к восстановлению флуорофоров, нажав кнопку «Выбрать флуоры » и выбрав соответствующую спектральную библиотеку. После того, как все флуорофоры выбраны, нажмите OK , чтобы подтвердить выбор. Чтобы изолировать спектр АФ, используйте пипетку АФ для выборки репрезентативной области ткани из изображения АФ, стараясь исключить все пиксели, не относящиеся к тканям. После выборки нажмите «Подготовить изображение » или «Подготовить все » в левом нижнем углу интерфейса15.
    2. Сегментация тканей: Начните процесс сегментации путем ручного определения базовой линии из 3-5 областей для каждого типа ткани на изображении, включая эпителиальные области, содержащие эпителиальные клетки, стромальные области, содержащие стромальные клетки, и пустые области без клеточного содержимого. Если первоначальные результаты сегментации неудовлетворительны, вручную аннотируйте дополнительные области, чтобы улучшить обучающий набор данных, тем самым повысив точность и надежность последующих анализов. Такая динамическая настройка областей и параметров гарантирует, что программное обеспечение может автоматически идентифицировать похожие структуры на текущих и других импортированных изображениях с повышенной точностью.
      ПРИМЕЧАНИЕ: Первоначальная аннотация служит набором данных для обучения программного обеспечения для изучения характеристик каждого компонента ткани. Затем возможности сегментации программного обеспечения итеративно уточняются в зависимости от сложности и изменчивости ткани.
    3. Сегментация ячеек: Нажмите кнопку Сегментировать ячейки, чтобы начать сегментацию ячеек. В параметре «Сегментация клеток» выберите «Ядра и мембрана». Выберите DAPI для идентификации ядра клеток и отрегулируйте настройку интенсивности, чтобы обнаруживать все ядра клеток без фонового шума. Выберите сигналы CD16, CD49a и CD56, чтобы найти мембрану и использовать этот сигнал для помощи в расщеплении ядра. Используйте функцию расщепления ядерных компонентов, чтобы различать близко расположенные ядра.
      ПРИМЕЧАНИЕ: DAPI выделяет внутреннюю часть клеток. Функция расщепления ядерных компонентов помогает различать ядра клеток, когда они находятся близко друг к другу или выглядят слившимися. Этот шаг важен для получения надежного подсчета клеток и поддержания целостности анализа.
    4. Фенотипирование клеток: Используйте четыре различных маркера клеточной поверхности, включая CD56, CD49a, CXCR4 и CD16, для дифференцировки различных подтипов NK-клеток. В схеме фенотипирования обозначьте эти четыре маркера как фенотипы, которые необходимо продолжить. В разделе Представление ассоциаций назначьте определенные цвета каждому из фенотипов для идентификации. С помощью кнопки «Добавить» классифицируйте ячейки как положительно или отрицательно выражающие маркеры; Например, в фенотипе CD56 клетки могут быть помечены как CD56+ или CD56-. Вручную помечайте не менее пяти клеток для каждого фенотипа в процессе обучения. Выполните дополнительную ручную маркировку, если первоначальное обучение не дало эффективных результатов.
    5. После того, как конфигурация фенотипирования клеток задана, каждая клетка на изображении будет указывать, являются ли четыре поверхностных маркера положительно или отрицательно выраженными. Экспортируйте полученные данные в таблицу для дальнейшего анализа.
    6. Обработка данных: Импортируйте данные, полученные из всех изображений, в электронную таблицу для обработки. Вычислите проценты всех подтипов клеток uNK относительно общего количества клеток на изображении. Итоговое количество клеток представляет собой среднее количество клеток на нескольких изображениях, обеспечивая всесторонний обзор популяции различных подтипов uNK-клеток в выборке.

Доступ ограничен. Войдите в систему или начните пробный период, чтобы просмотреть этот контент.

Результаты

Для поддержания последовательности в сроках сбора образцов эндометрия у женщин, проходящих естественный цикл, был проведен анализ мочи для точного определения всплеска лютеинизирующего гормона (ЛГ), а биопсия эндометрия была проведена через 7 дней после всплеска ЛГ. Для женщин, проходящих циклы ЗГТ, образцы были назначены ровно через 5 дней после начала приема добавок прогестерона. Для количественного определения различных подтипов NK-клеток в эндометрии использовали окрашивание m-IHC. Схематическое описание эксперимента...

Доступ ограничен. Войдите в систему или начните пробный период, чтобы просмотреть этот контент.

Обсуждение

Имплантация эмбриона предполагает сложное взаимодействие между эмбрионом и эндометрием. Иммунологический статус гомеостаза эндометрия играет ключевую роль в определении рецептивности эндометрия. Во время WOI преобладающей популяцией лейкоцитов в эндометрии являются NK-клетки. Примерно 90% uNK-клеток демонстрируют высокую экспрессию CD56, но не имеют CD16. Тем не менее, незначительное подмножество uNK-клеток напоминает NK-клетки периферической крови, демонстрируя низкую экспрессию CD56, н...

Доступ ограничен. Войдите в систему или начните пробный период, чтобы просмотреть этот контент.

Раскрытие информации

Авторы заявляют, что у них нет никаких конфликтов интересов, которые они могли бы раскрыть.

Благодарности

Настоящее исследование было поддержано Фондом здравоохранения и медицинских исследований (10210956).

Доступ ограничен. Войдите в систему или начните пробный период, чтобы просмотреть этот контент.

Материалы

Список материалов, использованных в этой статье
ИмяКомпанияКаталожный номерКомментарии
CD49aNovus BiologicalsNBP2-76478Первичные антитела
CD56LeicaNCL-L-CD56-504Первичные антитела
CD16abcamab183354Первичные антитела
CXCR4R& DMAB172Первичные антитела
Разбавитель амплификацииAkoya Biosciencesсерии FP1498Буфер для разведения флуорофоров
Разбавители антител Разбавители антителAkoya BiosciencesARD1001EAРазбавить антитело
Цитратный буферный раствор, pH 6,0 /9,0(10x)Akoya BiosciencesA6001/A9001Раствор для извлечения антигена
inForm Программное обеспечение для расширенного анализа изображенийAkoya BiosciencesinForm 2.2.6Программное обеспечение для анализа данных
Mantra Рабочие станцииAkoya BiosciencesCLS140089Спектральная визуализация
СВЧинверторAkoya BiosciencesМикроволновая стриппинг
TSA 520Akoya BiosciencesFP1487001KПодходящие флуоресцентные реагенты на основе тирамида
TSA 620Akoya BiosciencesFP1495001KПодходящие флуоресцентные реактивы на основе тирамида
TSA 650Akoya BiosciencesFP1496001KПодходящие флуоресцентные реактивы на основе тирамида
TSA 570Akoya BiosciencesFP1488001KПодходящие флуоресцентные реактивы на основе тирамида
Слайды с покрытием из поли-L-лизинаFisher Technologies120-550-15Слайды для рутинного гистологического использования
PolyHRP широкого спектра действияPerkin ElmerARH1001EAвторичные антитела
Invitrogen™   Фторостант-Г&трейд; Монтажная средаThemoFisher Science495802установка
Spectral DAPIAkoya BiosciencesFP1490Aокрашивание нуклеиновых кислот
Программное обеспечение для поиска тканей

Ссылки

  1. De Geyter, C. Assisted reproductive technology: Impact on society and need for surveillance. Best Pract Res Clin Endocrinol Metab. 33 (1), 3-8 (2019).
  2. State-Specific Assisted Reproductive Technology Surveillance. CDC. , https://www.cdc.gov/art/state-specific-surveillance/2021/index.html (2024).
  3. Busnelli, A., et al. How common is real repeated implantation failure? An indirect estimate of the prevalence. Reprod Biomed Onl. 40 (1), 91-97 (2020).
  4. Ben Rafael, Z. Repeated implantation failure (RIF): an iatrogenic meaningless definition that generates unnecessary and costly use of add-on procedures. Human Reprod. 35 (7), 1479-1483 (2020).
  5. Hanna, J., et al. Decidual NK cells regulate key developmental processes at the human fetal-maternal interface. Nat Med. 12 (9), 1065-1074 (2006).
  6. Vento-Tormo, R., et al. Single-cell reconstruction of the early maternal-fetal interface in humans. Nature. 563 (7731), 347-353 (2018).
  7. Von Woon, E., et al. Number and function of uterine natural killer cells in recurrent miscarriage and implantation failure: a systematic review and meta-analysis. Human Reprod Update. 28 (4), 548-582 (2022).
  8. Manaster, I., et al. Endometrial NK cells are special immature cells that await pregnancy. J Immunol. 181 (3), 1869-1876 (2008).
  9. Lai, Z. Z., et al. Single-cell transcriptome profiling of the human endometrium of patients with recurrent implantation failure. Theranostics. 12 (15), 6527-6547 (2022).
  10. Coughlan, C., et al. Recurrent implantation failure: definition and management. Reprod BioMed Onl. 28 (1), 14-38 (2014).
  11. Chen, X., et al. Measurement of uterine natural killer cell percentage in the periimplantation endometrium from fertile women and women with recurrent reproductive failure: establishment of a reference range. Am J Obst Gyneco. 217 (6), 680.e1-680.e6 (2017).
  12. Yang, W. J., et al. A comparison of uterine natural killer cell density in the peri-implantation period between natural cycles and hormone replacement therapy cycles. Am J Reprod Immunol. 82 (3), e13156(2019).
  13. Syed, J., et al. Multiplex immunohistochemistry: The importance of staining order when producing a validated protocol. Immunother. 5 (2), 1-9 (2019).
  14. Lash, G. E., et al. Standardisation of uterine natural killer (uNK) cell measurements in the endometrium of women with recurrent reproductive failure. J Reprod Immunol. 116, 50-59 (2016).
  15. Mansfield, J. R., Gossage, K. W., Hoyt, C. C., Levenson, R. M. Autofluorescence removal, multiplexing, and automated analysis methods for in vivo fluorescence imaging. J Biomed Optics. 10 (4), 41207(2005).
  16. Hoyt, C. C. Multiplex immunofluorescence and multispectral imaging: Forming the basis of a clinical test platform for immuno-oncology. Front Mol Biosci. 8, 674747(2021).
  17. Von Woon, E., et al. Number and function of uterine natural killer cells in recurrent miscarriage and implantation failure: a systematic review and meta-analysis. Human Reprod Update. 28 (4), 548-582 (2022).
  18. Lee, J. Y., Lee, M., Lee, S. K. Role of endometrial immune cells in implantation. Clin Exp Reprod Med. 38 (3), 119-125 (2011).
  19. Gothe, J. P., de Mattos, A. C., Silveira, C. F., Malavazi, K. C. Exploring natural killer cell testing in embryo implantation and reproductive failure: An overview of techniques and controversies. Reprod Sci. 31 (3), 603-632 (2024).
  20. Russell, P., et al. The distribution of immune cells and macrophages in the endometrium of women with recurrent reproductive failure: I: Techniques. J Reprod Immunol. 91 (1), 90-102 (2011).
  21. Wang, W., Sung, N., Gilman-Sachs, A., Kwak-Kim, J. T. Helper (Th) cell profiles in pregnancy and recurrent pregnancy losses: Th1/Th2/Th9/Th17/Th22/Tfh cells. Front Immunol. 11, 2025(2020).
  22. Nagamatsu, T., Schust, D. J. The contribution of macrophages to normal and pathological pregnancies. Am J Reprod Immunol. 63 (6), 460-471 (2010).

Доступ ограничен. Войдите в систему или начните пробный период, чтобы просмотреть этот контент.

Перепечатки и разрешения

Больше статей

NK-клетки маткимультиплексная иммуногистохимияподтипы иммунных клетокфлуоресцентное окрашиваниеткань эндометрияфенотипирование клетокмаркер CD49aмаркер CXCR4сегментация тканей
Определение четырех подтипов NK-клеток матки с помощью мультиплексного флуоресцентного иммуногистохимического окрашивания у женщин с повторной неудачей имплантации
Связаться с нами
Порекомендовать библиотеке

Конфиденциальность

Условия использования

Политики

© 2026 MyJoVE Corporation. Все права защищены.