Методическая статья

Метод забора крови через стену для минимизации нарушений сна в клинических условиях

DOI:

10.3791/67530

⸱

13 июня 2025 г.

 ,  ,  ,  ,  ,  ,  , 
1Human Performance Clinical Research Laboratory, Department of Health and Exercise Science, Colorado State University, 2Anschutz Health and Wellness Center, University of Colorado Anschutz Medical Campus

* These authors contributed equally

В этой статье

Краткое содержание

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

В этой статье мы представляем малоинвазивный метод забора крови во время сна в клинических условиях.

Аннотация

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Физиологические ритмы, в том числе суточные и циркадные, играют решающую роль в здоровье, при этом нарушения все чаще связаны с сердечно-сосудистыми заболеваниями и диабетом 2 типа. Эти ритмы тесно связаны с циклами сна и бодрствования, поскольку изменения во времени или продолжительности сна могут изменить суточные и циркадные ритмы, тем самым нарушая физиологический гомеостаз. Дополнительные факторы, такие как время поведения, такого как прием пищи и/или физическая активность, могут модулировать 24-часовые ритмы таким образом, чтобы поддерживать здоровье или повышать риск хронических заболеваний.

Несмотря на растущее признание важности биологических ритмов, получение серийных образцов крови, необходимых для выяснения закономерностей в циркулирующих факторах, остается серьезной проблемой в клинических исследованиях. Обычные методы забора крови могут нарушать сон, потенциально изменяя сон и биологические ритмы и, следовательно, влияя на интересующие переменные. Это подчеркивает необходимость минимально инвазивных подходов, которые позволяют оценивать 24-часовые биологические процессы без нарушения сна или биологических ритмов.

Для решения этих проблем многие клинические и исследовательские группы используют метод, известный как метод забора крови «сквозь стену». В этом подходе используется удлиненная трубка, подключенная к постоянному катетеру, продетая через стену или перегородку в место за пределами комнаты участника. Позволяя собирать кровь без необходимости входить в комнату, этот метод сводит к минимуму сбои, тем самым сохраняя целостность 24-часовых профилей интересующих циркулирующих переменных и минимально беспокоя сон.

В этой статье мы подробно описываем метод забора крови через стену и демонстрируем его осуществимость и эффективность при сборе образцов крови во время запланированного сна. Представлены репрезентативные данные клинического исследования, а также обсуждены дополнительные соображения, в том числе влияние сложного забора крови на архитектуру сна.

Введение

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Суточные и циркадные ритмы — это биологические циклы, участвующие в регуляции физиологических, метаболических и поведенческих процессов в течение 24 часов. Суточные ритмы — это биологические паттерны, которые следуют циклу дня и ночи и управляются экологическими или поведенческими сигналами. В противоположность этому, циркадные ритмы в биологии близки к 24-часовым циклам, управляемым внутренней сетью молекулярных часов, не зависящих от внешних сигналов (примечание: подробное объяснение циркадных часов выходит за рамки данной статьи; заинтересованные читатели могут обратиться к Cox et al.1 за дополнительной информацией и Broussard et al.2 за обсуждением клинических циркадных протоколов). Как суточные, так и циркадные ритмы играют решающую роль в здоровье, при этом нарушения связаны с повышенным риском развития сердечно-сосудистых заболеваний и диабета 2 типа 3,4. Это понимание основано на десятилетиях исследований, связанных с измерениями временных рядов в контролируемых лабораторных условиях. Результаты таких исследований помогли провести различие между эндогенными циркадными влияниями и внешними воздействиями окружающей среды или поведения на биологические процессы и их ролью в поддержании физиологического гомеостаза 2,5. Эта работа заложила основу для более поздних трансляционных исследований, изучающих влияние сна и циркадного ритма поведения на исходы, связанные со здоровьем 6,7,8,9.

Гормоны и метаболические факторы демонстрируют отчетливые 24-часовые колебания. Мелатонин, например, повышается в течение биологической ночи и остается низким в течение биологическихсуток10. Напротив, ритм кортизола характеризуется подавлением в течение ранней части биологической ночи, за которым следует всплеск перед пробуждением11, который изменяется во время лишениясна12. Тиреотропный гормон (ТТГ) повышается в биологический вечер и подавляется во время сна13. Ритм ТТГ нарушается во время лишения сна, что приводит к повышению уровня ТТГ в течение биологическойночи14. Ритмические паттерны некоторых других циркулирующих факторов также подвержены влиянию циклов сна и бодрствования. Например, секреция гормона роста (ГР) тесно связана с медленным сном (СРС), с выраженным выбросом вскоре после начала сна, особенно у мужчин15 лет. Кроме того, секреция ГР в сочетании с повышенным содержанием глюкагона во время сна помогает приспособиться к длительному ночным голоданию и приводит к снижению утилизации глюкозы для поддержания стабильного уровня глюкозы в крови и предотвращения гипогликемии. Подобно ГР, пролактин резко повышается после начала сна и достигает пика в середине периода сна, причем аналогичное повышение происходит во время дневного сна17,18. Дополнительные циркулирующие факторы, которые демонстрируют 24-часовые ритмы, включают адренокортикотропный гормон, лютеинизирующий гормон, глюкозу и инсулин (более полное резюме см. в Hanlon et al.5).

Многие циркулирующие факторы, участвующие в чувстве голода, регуляции аппетита и энергетическом балансе, также демонстрируют колебания в течение 24-часового периода. Грелин, который стимулирует голод, достигает пика перед едой и снижается во время ночного сна, в то время как лептин, гормон сытости, повышается ночью, вероятно, подавляя голод во время ночногоголодания. Другие метаболические сигналы, такие как свободные жирные кислоты, эндоканнабиноиды и пептиды насыщения, такие как GLP-1 и PYY, демонстрируют вариации, на которые влияют как сон, так и режим питания 19,20,21,22.

Взятые вместе, описанные выше колебания иллюстрируют сложное взаимодействие между сном, циркадными процессами и физиологическим гомеостазом, которое можно полностью оценить только путем профилирования 24-часовых циркуляционных паттернов соответствующих физиологических переменных.

Выяснение 24-часовых ритмов циркулирующих факторов имеет важное значение для понимания ежедневных колебаний физиологической функции, а также того, как сон и нарушение циркадных ритмов влияют на здоровье. Тем не менее, традиционные методы забора крови могут вмешиваться в те самыепроцессы, которые управляют и регулируют эти ритмы, подчеркивая необходимость минимально инвазивных подходов, которые позволяют получить точное представление о 24-часовых профилях.

Таким образом, цель данной статьи состоит в том, чтобы достаточно подробно описать шаги, связанные с надежным получением частых образцов крови в течение 24 ч от участников исследования на людях с использованием метода забора крови через стену. Описанная методика, используемая многими лабораториями сна и циркадных исследований 20,24,25,26,27,28,29,30,31,32,33,34,35,36, решает технические проблемы, связанные со сбором образцов крови во время сна. В следующих разделах описывается сама техника с дополнительной видеодемонстрацией. Кроме того, представлены репрезентативные данные клинического исследования с использованием этого метода. Наконец, статья завершается обсуждением ограничений, подводных камней и важных соображений использования метода в клинических исследованиях.

Доступ ограничен. Войдите в систему или начните пробный период, чтобы просмотреть этот контент.

Протокол

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Методы, описанные в этой статье, используются в протоколах, которые в настоящее время одобрены Институциональным наблюдательным советом Университета штата Колорадо и Колорадским многоинституциональным наблюдательным советом. Репрезентативные данные были получены из таких исследований, на участие в которых было получено письменное информированное согласие. Все используемые расходные материалы и оборудование перечислены в Таблице материалов. Дополнительные соображения по методу представлены в обсуждении.

1. Настройка и установка удлинительной линии

ПРИМЕЧАНИЕ: Перед любой клинической процедурой необходимо провести соответствующую гигиену рук с использованием раствора с минимальным содержанием изопропилового спирта 70%. Средства индивидуальной защиты (СИЗ), включая, помимо прочего, перчатки, лабораторные халаты и обувь с закрытым носком, необходимо носить постоянно.

  1. Настройка для отбора проб через стену (рис. 1)
    1. За пределами комнаты участника установите станцию забора крови со следующими принадлежностями: одноразовая абсорбирующая прокладка, 3-ходовой клапан с запорным краном, удлинительная линия 120, шприц для промывки солевым раствором объемом 10 мл, подогретый шприц с солевым раствором объемом 10 мл в согревающем устройстве, шприц объемом 5 мл для отходов, шприц объемом 3 мл для забора крови (размер может варьироваться в зависимости от объема забора крови), и контейнер для биологически опасных отходов. Все расходные материалы указаны в Таблице материалов.
  2. Подсоедините удлинительную линию для отбора проб через стену.
    1. На одноразовой впитывающей прокладке прикрепите 3-позиционный запорный кран к внутренней стороне замка Люэра удлинительной линии.
      ПРИМЕЧАНИЕ: Убедитесь, что открытый конец запорного крана не касается каких-либо поверхностей (включая руки в перчатках). В случае загрязнения замените запорный кран для обеспечения стерильности.
    2. Поместите промывку с солевым раствором объемом 10 мл и шприц для отбора проб объемом 3 мл (со сломанной защитной пленкой) на запорный кран.
      ПРИМЕЧАНИЕ: После того, как запорный кран прикреплен к удлинительной линии, 2 оставшихся места крепления запорного крана идентичны; Таким образом, шприцы для промывки физиологического раствора и образцы могут быть размещены на любом оставшемся креплении запорного крана. Разрыв пломбы относится к оттягиванию поршня шприца назад для отпускания до того, как шприц будет прикреплен к участнику, гарантируя, что острое отрицательное давление от разрыва пломбы не приведет к повреждению кровеносного сосуда.
    3. Поверните язычок OFF запорного крана так, чтобы удлинительная линия была замкнута для шприца для образца объемом 3 мл. Это откроет запорный кран для промывки 10 мл физиологического раствора.
    4. Протолкните физиологический раствор через удлинительную линию. Когда физраствор достигнет конца линии, осторожно снимите колпачок и дайте физраствору капнуть в чашку и/или на абсорбирующую прокладку, чтобы убедиться, что линия полностью заполнена физиологическим раствором. Снова прикрепите колпачок к концу загрунтованной удлинительной линии.
    5. Поверните язычок OFF запорного крана так, чтобы линия была замкнута для обоих шприцев. Оставьте шприцы прикрепленными к запорному крану.
      ПРИМЕЧАНИЕ: Максимальный объем в линии составляет 3,4 мл.
    6. Подайте закрытый конец удлинительной линии через настенное отверстие в комнату участника. Убедитесь, что колпачок остается на месте, чтобы линия оставалась стерильной.
    7. Переместитесь в комнату участника, чтобы прикрепить выносную линию к участнику. Очистите дистальный конец удлинительной линии и место крепления набора для внутривенного вливания (подключенного к участнику) стерильной спиртовой салфеткой.
    8. Снимите колпачок с удлинительного троса и прикрепите его к комплекту удлинителя для внутривенного вливания (подключенному к участнику).
    9. После того, как удлинительная линия будет подключена к капельнице, вернитесь в прихожую.
      1. Снимите и выбросьте использованный солевой смыв из запорного крана и прикрепите подогретый солевой раствор объемом 10 мл. Поверните язычок OFF на запорном кране, чтобы закрыть линию к шприцу для образца. Это откроет запорный кран для нового 10 мл солевого раствора.
      2. Введите физиологический раствор в удлинительную линию, чтобы убедиться в отсутствии утечек и отсутствии внутривенных вливаний. Поверните язычок OFF запорного крана так, чтобы линия была замкнута для обоих шприцев.
        ПРИМЕЧАНИЕ: Солевой раствор для промывания не должен превышать температуру человеческого тела (37 °C / 98,6 °F). Проверьте температуру солевого раствора с помощью термометра, помещенного в согревающее устройство. Для промывания всей линии необходимо минимум 4,4 мл физиологического раствора, так как объем в удлинительной линии составляет 3,4 мл+, а объем в наборе для внутривенного расширения составляет 1 мл.
    10. Продолжайте медленно нажимать на промывку физиологического раствора, поворачивая язычок OFF запорного крана, чтобы закрыть линию к обоим шприцам. Это позволит поддерживать давление в разгибательной магистрали и свести к минимуму обратный ток крови.
    11. После того, как разгибательная линия будет успешно установлена, вернитесь в комнату участника, чтобы обернуть набор внутривенных разгибателей самоприлипающим эластичным бинтом, чтобы он не растягивался во время сна. Закрепите удлинительную веревку на каркасе кровати с помощью ленты.
    12. Обсудите с участником его предпочтения в отношении сна (например, спать на боку, на спине и т. д.) и предоставьте дополнительные трубки, чтобы обеспечить свободу движений во время сна. Попросите участника проверить амплитуду движений.
      ПРИМЕЧАНИЕ: Важно напомнить участнику, что он должен обратиться за помощью к персоналу, чтобы отсоединить удлинительную линию, чтобы воспользоваться туалетом.

2. Забор крови через удлинительную линию

  1. Забор образца крови.
    1. Перед забором крови убедитесь, что удлинительная линия все еще заполнена физиологическим раствором, и убедитесь, что язычок OFF запорного крана скручен таким образом, что линия закрыта для обоих шприцев.
      1. Если кровь видна в удлинительной линии, промойте не менее 4,4 мл подогретого физиологического раствора, чтобы очистить кровь от крови с удлинительной линии и внутривенного набора.
    2. Присоедините один шприц объемом 5 мл (отработанный шприц) и один шприц объемом 3 мл (шприц для образца) к запорному крану. Поверните язычок OFF на запорном кране, чтобы открыть удлинительную линию к шприцу объемом 5 мл (отработанный шприц).
      ПРИМЕЧАНИЕ: Перед сбором образца крови необходимо извлечь и выбросить «отработанный» шприц, который состоит из физиологического раствора в удлинительной линии и набора для внутривенного введения.
    3. Используйте шприц объемом 5 мл до тех пор, пока в него не начнет поступать цельная кровь (после попадания не менее 4,4 мл отходов).
      ПРИМЕЧАНИЕ: Цвет жидкости в отработанном шприце сначала будет прозрачным, затем розовым и, наконец, темно-красным, как только удлинительная линия будет заполнена цельной кровью.
    4. Как только цельная кровь станет видна в шприце объемом 5 мл, поверните язычок OFF запорного крана, чтобы замкнуть трубопровод к отработанному шприцу объемом 5 мл.
    5. Наберите нужное количество крови с помощью шприца объемом 3 мл. Поверните язычок OFF на запорном кране, чтобы закрыть удлинительную линию к обоим шприцам.
      ПРИМЕЧАНИЕ: Кровь не должна оставаться в разгибательной линии дольше 5 минут, чтобы снизить риск свертывания. Если забор крови происходит медленно, можно использовать несколько шприцев для забора образцов меньшего размера, чтобы уменьшить давление на вену. Установите таймер для определения продолжительности забора крови. Через 5 минут промойте линию, чтобы предотвратить свертывание крови. Может быть предпринята попытка проведения нового розыгрыша, или розыгрыш может быть пропущен. В то время как некоторые протоколы включают в себя методы сохранения крови, такие как повторное введение отработанного шприца для минимизации кровопотери, этот протокол не реализует такие меры.
    6. Извлеките отработанный шприц объемом 5 мл и замените его теплым солевым раствором для промывки.
    7. Поверните язычок OFF на запорном кране, чтобы закрыть линию к пустому шприцу объемом 3 мл. Это откроет линию для промывки солевым раствором.
    8. Вдавите до 10 мл подогретого физиологического раствора, следя за тем, чтобы в разгибательной линии не оставалось крови.
    9. Поверните язычок OFF на запорном кране, чтобы закрыть линию к обоим шприцам.
      1. Продолжайте медленно нажимать на промывку физиологического раствора, поворачивая язычок OFF запорного крана, чтобы закрыть линию к обоим шприцам. Это позволит поддерживать давление в разгибательной магистрали и свести к минимуму обратный ток крови.
      2. Используйте оставшийся в шприце физиологический раствор, чтобы промыть его через запорный кран в пустой шприц объемом 3 мл. Очистите запорный кран от физиологического раствора, вынув шприц с физиологическим раствором и потянув назад за шприц объемом 3 мл, чтобы удалить остатки жидкости из запорного крана.
    10. Замените все шприцы, чтобы подготовиться к следующему розыгрышу.
      ПРИМЕЧАНИЕ: Не оставляйте порты запорного крана без прикрепленных шприцев, так как это нарушит стерильность.

Доступ ограничен. Войдите в систему или начните пробный период, чтобы просмотреть этот контент.

Результаты

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

24-часовой прием мелатонина с использованием сквозного забора крови во время сна
Описанный выше метод позволяет оценить 24-часовые паттерны циркулирующих факторов, которые в противном случае были бы пропущены в одной временной выборке. Мелатонин, гормон, который часто измеряется путем забора крови через стенку, служит наиболее широко распространенным суррогатом для оценки ритма центральных циркадных часов, которые находятся в супрахиазматическом ядре (СХЯ) переднего г...

Доступ ограничен. Войдите в систему или начните пробный период, чтобы просмотреть этот контент.

Обсуждение

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Представленный здесь метод забора крови через стену широко используется в исследованиях сна и циркадных ритмов для сбора крови во время сна с минимальным беспокойством участников. Описанные процедуры, включая подготовку, настройку и использование удлинительной линии, имеют широкое применение как в клинических, так и в исследовательских условиях. Используя эту методику, исследователи могут успешно получать образцы крови в течение 24 часов, в том числе во время запланированного сна. Кроме ...

Доступ ограничен. Войдите в систему или начните пробный период, чтобы просмотреть этот контент.

Раскрытие информации

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Раскрывать авторам нечего.

Благодарности

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Это исследование было частично поддержано T32HL149646 к GSM и R01DK125653 и R01HL168081 к JLB. Мы также хотели бы поблагодарить Стефани Лэнг, BSN, профессиональную медсестру-исследователя из Института клинических и трансляционных наук Колорадо (CCTSI) и Центра клинических трансляционных исследований Университета Колорадо Anschutz Medical Campus, за обзор методов, а также за предоставление идей и правок в окончательной версии этой рукописи.

Доступ ограничен. Войдите в систему или начните пробный период, чтобы просмотреть этот контент.

Материалы

Список материалов, использованных в этой статье
ИмяКомпанияКаталожный номерКомментарии
9-дюймовый стандартный IV удлинитель с объёмом грунта 1 мл, съемный разъём SmartSite без иглы, затворный зажим и вращающийся мужской замок LuerMedlineIME22059EH
0,9% инъекция хлорида натрия USP 10 мл в промывочный шприц ZR на 10 млExcelsior MedicalEMZE010001
Подготовка для алкоголяMedlineMDS090737
BD Insyte Autoguard Winged 20 G катетерMedline381534
Шприц BD Plastipak 3 млFischer Scientific309657
CoFlexNLMedline5200CP
IV удлинительный набор 192 дюйма, малокалиберная трубаОтделение интенсивной терапии (ICU Medical)B2202Для заказа принадлежностей необходимо создать учетную запись в отделении интенсивной терапии
Нетканые марлевые губкиMedlineNON25223
TegadermMedline1624W
Ultra(TM) трёхпозиционный замок с поворотным мужским люромMedlineMX2311L

Ссылки

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,
  1. Cox, K. H., Takahashi, J. S. Circadian clock genes and the transcriptional architecture of the clock mechanism. J Mol Endocrinol. 63 (4), R93-R102 (2019).
  2. Broussard, J. L., et al. Biological Timekeeping: Clocks, Rhythms and Behaviour. , Springer. India. (2017).
  3. Chellappa, S. L., Vujovic, N., Williams, J. S., Scheer, F. Impact of circadian disruption on cardiovascular function and disease. Trends Endocrinol Metab. 30 (10), 767-779 (2019).
  4. Broussard, J. L., Van Cauter, E. Disturbances of sleep and circadian rhythms: novel risk factors for obesity. Curr Opin Endocrinol Diabetes Obes. 23 (5), 353-359 (2016).
  5. Hanlon, E., Van Cauter, E. V., Tasali, E., Broussard, J. Endocrine Physiology in Relation to Sleep and Sleep Disturbances. Principles and Pract Sleep Medicine. , Elsevier Saunders, MO. (2021).
  6. Prasad, M., et al. A smartphone intervention to promote time restricted eating reduces body weight and blood pressure in adults with overweight and obesity: a pilot study. Nutrients. 13 (7), 2148(2021).
  7. Procopio, S. B., Esser, K. A. Clockwork conditioning: aligning the skeletal muscle clock with time-of-day exercise for cardiometabolic health. J Mol Cell Cardiol. 198, 36-44 (2025).
  8. Holtman, S., et al. Changes in circadian timing following a one-week in-home sleep extension manipulation in habitually short-sleeping adolescents. Sleep. 48 (2), zsae273(2024).
  9. Chellappa, S. L., et al. Daytime eating prevents internal circadian misalignment and glucose intolerance in night work. Sci Adv. 7, eabg9910(2021).
  10. Skene, D. J., Arendt, J. Human circadian rhythms: physiological and therapeutic relevance of light and melatonin. Ann Clin Biochem. 43 (Pt 5), 344-353 (2006).
  11. Powell, D. J., Schlotz, W. Daily life stress and the cortisol awakening response: testing the anticipation hypothesis. PLoS One. 7 (12), e52067(2012).
  12. Wright, K. P., et al. Influence of sleep deprivation and circadian misalignment on cortisol, inflammatory markers, and cytokine balance. Brain Behav Immun. 47, 24-34 (2015).
  13. Ikegami, K., Refetoff, S., Van Cauter, E., Yoshimura, T. Interconnection between circadian clocks and thyroid function. Nat Rev Endocrinol. 15 (10), 590-600 (2019).
  14. Kessler, L., Nedeltcheva, A., Imperial, J., Penev, P. D. Changes in serum TSH and free T4 during human sleep restriction. Sleep. 33 (8), 1115-1118 (2010).
  15. Van Cauter, E., Plat, L. Physiology of growth hormone secretion during sleep. J Pediatr. 128 (5 Pt 2), S32-S37 (1996).
  16. Morselli, L., Leproult, R., Balbo, M., Spiegel, K. Role of sleep duration in the regulation of glucose metabolism and appetite. Best Pract Res Clin Endocrinol Metab. 24 (5), 687-702 (2010).
  17. Kapcala, L. P., et al. Twenty-four-hour prolactin secretory patterns in women with galactorrhea, normal menses, normal random prolactin levels and abnormal sellar tomograms. J Endocrinol Invest. 7 (5), 455-460 (1984).
  18. Sassin, J. F., Frantz, A. G., Kapen, S., Weitzman, E. D. The nocturnal rise of human prolactin is dependent on sleep. J Clin Endocrinol Metab. 37 (3), 436-440 (1973).
  19. Chaput, J. -P., et al. The role of insufficient sleep and circadian misalignment in obesity. Nat Rev Endocrinol. 19 (2), 82-97 (2023).
  20. Broussard, J. L., et al. Sleep restriction increases free fatty acids in healthy men. Diabetologia. 58 (4), 791-798 (2015).
  21. Vaughn, L. K., et al. Endocannabinoid signalling: has it got rhythm. Br J Pharmacol. 160 (3), 530-543 (2010).
  22. Lindgren, O., et al. Differential islet and incretin hormone responses in morning versus afternoon after standardized meal in healthy men. J Clin Endocrinol Metab. 94 (8), 2887-2892 (2009).
  23. Wesselius, H. M., et al. Quality and quantity of sleep and factors associated with sleep disturbance in hospitalized patients. JAMA Intern Med. 178 (9), 1201-1208 (2018).
  24. Markwald, R. R., et al. Impact of insufficient sleep on total daily energy expenditure, food intake, and weight gain. Proc Natl Acad Sci U S A. 110 (14), 5695-5700 (2013).
  25. McHill, A. W., et al. Impact of circadian misalignment on energy metabolism during simulated nightshift work. Proc Natl Acad Sci U S A. 111 (48), 17302-17307 (2014).
  26. Depner, C. M., Melanson, E. L., McHill, A. W., Wright, K. P. Jr Mistimed food intake and sleep alters 24-hour time-of-day patterns of the human plasma proteome. Proc Natl Acad Sci U S A. 115 (23), E5390-E5399 (2018).
  27. Mullington, J. M., et al. Sleep loss reduces diurnal rhythm amplitude of leptin in healthy men. J Neuroendocrinol. 15 (9), 851-854 (2003).
  28. Ona, E., et al. A technique for improved blood sampling during sleep studies. Psychophysiology. 31 (6), 609-610 (1994).
  29. Schlierf, G., Dorow, E. Diurnal patterns of triglycerides, free fatty acids, blood sugar, and insulin during carbohydrate-induction in man and their modification by nocturnal suppression of lipolysis. J Clin Invest. 52 (3), 732-740 (1973).
  30. Schlierf, G., Reinheimer, W., Stossberg, V. Diurnal patterns of plasma triglycerides and free fatty acids in normal subjects and in patients with endogenous (type IV) hyperlipoproteinemia. Nutr Metab. 13 (2), 80-91 (1971).
  31. Swanson, C. M., et al. turnover markers after sleep restriction and circadian disruption: a mechanism for sleep-related bone loss in humans. J Clin Endocrinol Metab. 102 (10), 3722-3730 (2017).
  32. Van Cauter, E., et al. Modulation of glucose regulation and insulin secretion by circadian rhythmicity and sleep. J Clin Invest. 88 (3), 934-942 (1991).
  33. Rynders, C. A., Morton, S. J., Bessesen, D. H., Wright, K. P. Jr, Broussard, J. L. Circadian rhythm of substrate oxidation and hormonal regulators of energy balance. Obesity (Silver Spring). 28 (Suppl 1), S104-S113 (2020).
  34. Thosar, S. S., et al. Circadian rhythm of vascular function in midlife adults. Arterioscler Thromb Vasc Biol. 39 (6), 1203-1211 (2019).
  35. Thosar, S. S., et al. Morning impairment in vascular function is unrelated to overnight sleep or the inactivity that accompanies sleep. Am J Physiol Regul Integr Comp Physiol. 315 (5), R986-R993 (2018).
  36. Dimsdale, J. E., Coy, T., Ziegler, M. G., Ancoli-Israel, S., Clausen, J. The effect of sleep apnea on plasma and urinary catecholamines. Sleep. 18 (5), 377-381 (1995).
  37. Klerman, E. B., Gershengorn, H. B., Duffy, J. F., Kronauer, R. E. Comparisons of the variability of three markers of the human circadian pacemaker. J Biol Rhythms. 17 (2), 181-193 (2002).
  38. Benloucif, S., et al. Measuring melatonin in humans. J Clin Sleep Med. 4 (1), 66-69 (2008).
  39. Lammers, W. J., Badia, P., Hughes, R., Harsh, J. Temperature, time-of-night of testing, and responsiveness to stimuli presented while sleeping. Psychophysiology. 28 (4), 463-467 (1991).
  40. Alikhan, R., Forster, R., Cohen, A. T. Heparin for the prevention of venous thromboembolism in acutely ill medical patients (excluding stroke and myocardial infarction). Cochrane Database Syst Rev. 2014 (5), CD003747(2014).
  41. Roth, B., Ekelund, M., Fan, B. G., Ekstrom, U., Nilsson-Ehle, P. Effects of heparin and low molecular weight heparin on lipid transport during parenteral feeding in the rat. Acta Anaesthesiol Scand. 40 (1), 102-111 (1996).
  42. Weintraub, M., et al. Continuous intravenous heparin administration in humans causes a decrease in serum lipolytic activity and accumulation of chylomicrons in circulation. J Lipid Res. 35 (2), 229-238 (1994).
  43. Schallom, M. E., Prentice, D., Sona, C., Micek, S. T., Skrupky, L. P. Heparin or 0.9% sodium chloride to maintain central venous catheter patency: a randomized trial. Crit Care Med. 40 (6), 1820-1826 (2012).
  44. Rahman, S. A., Wright, K. P. Jr, Lockley, S. W., Czeisler, C. A., Gronfier, C. Characterizing the temporal dynamics of melatonin and cortisol changes in response to nocturnal light exposure. Sci Rep. 9 (1), 19720(2019).

Доступ ограничен. Войдите в систему или начните пробный период, чтобы просмотреть этот контент.

Перепечатки и разрешения

Запросить разрешение на повторное использование текста или иллюстраций этой статьи JoVE

Запросить разрешение

Теги

dwelling

Похожие статьи