Методическая статья

Задача на мелкую моторику по изучению кинематики суставов в доклинической модели нейродегенеративного заболевания

DOI:

10.3791/68128

13 июня 2025 г.

В этой статье

Краткое содержание

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

В текущем исследовании описывается тест на мелкую моторику для изучения двигательного дефицита на моделях грызунов, включая крысу TgF344-AD, с использованием машинного обучения.

Аннотация

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Двигательная дисфункция является критическим, но часто недооцениваемым компонентом нейродегенеративных заболеваний, таких как болезнь Альцгеймера (БА) и связанные с ней деменции. Новое исследование показало, что задачи, связанные с мелкой моторикой, зрительно-пространственными способностями и исполнительной функцией у людей, могут иметь потенциал для раннего выявления заболеваний. Тем не менее, мало что известно о точных механизмах, с помощью которых эти задачи предсказывают когнитивное и функциональное снижение, связанное с болезнью Альцгеймера. В рамках текущего метода была создана задача на мелкую моторику, Kinematic Motor Ability Task (KINEMAT), для изучения изменений двигательных способностей при прогрессировании заболевания в доклинических моделях болезни Альцгеймера по сравнению с другими нейродегенеративными заболеваниями и нормальным старением с использованием бесплатного программного обеспечения машинного обучения с открытым исходным кодом. Здесь было установлено доказательство концепции с помощью разработки, тестирования и реализации задачи на мелкую моторику в пилотном исследовании крыс Fisher 344 CDF с двигательными нарушениями, вызванными гармалином, и без них. Дополнительная валидация с помощью модели крыс с болезнью Альцгеймера (TgF344-AD) еще раз продемонстрировала осуществимость модели и чувствительность к задаче. Крысы были обучены протягивать руку через небольшую щель в передней части камеры, чтобы достать сахарную гранулу из одной из трех чаш с разной сложностью. Извлечение гранул оценивалось с использованием одной из трех классификаций: успех (успешное схватывание и поедание сахарной гранулы), падение (хватает, но роняет угощение при захвате) или неудача (дотягивание, при котором гранула не достается, или гранулы выбиваются из миски при попытке схватить). Наблюдались значительные различия в моторных способностях между контрольной группой и крысами, получавшими гармалин, о чем свидетельствовало уменьшение общего охвата и повышенная вариабельность позы лапы. Крысы TgF344-AD также показали снижение общего охвата, а также снижение успеха во всех чашах. Подтверждая, что это задача мелкой моторики у грызунов, у него есть потенциал для изучения нормального старения и доклинических моделей нейродегенеративных заболеваний, включая болезнь Альцгеймера, по мере появления патологии и симптомов с течением времени.

Введение

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Было показано, что двигательная функция нарушена у людей с деменцией из-за болезни Альцгеймера (БА) или других подтипов (например, деменция с тельцами Леви). Сила хвата и скорость ходьбы позволяют различатьпожилых людей с когнитивными нарушениями и без них1,2, но не обязательно дифференцируют различные подтипы деменции (т.е. низкую специфичность)1,2. Таким образом, по-прежнему существует потребность в новых диагностических инструментах для ранней стадии деменции, возможно, в сочетании с машинным обучением, для оценки сложных моделей и взаимосвязей между поведениеми состоянием болезни. Животные модели ценны для изучения прогрессирования нейродегенеративных заболеваний, чтобы дать представление о раннем начале заболевания, поведенческих коррелятах и интеграции машинного обучения в аналитические конвейеры для различения тяжести и проявления 5,6,7.

Новые поведенческие методы у людей выявили задачи, которые задействуют мелкую моторику наряду с когнитивной обработкой, такие как зрительно-пространственные способности и исполнительные функции 8,9,10. Например, функциональное задание на верхние конечности может отслеживать паттерны нейродегенерации и отличать легкие когнитивные нарушения (ЛКН) от БА. В этой задаче люди перемещают сырую фасоль (по две за раз) из центральной домашней чашки в целевую чашку с помощью ложки. Фаза задачи, в которой бобы добываются ложкой, демонстрирует более сильную связь с познанием (в частности, зрительно-пространственной памятью), чем фаза, в которой бобы транспортируются к целевой чашке11,12. Когда ложка входит в чашку, она может возмущать бобы в чашке, а это означает, что движения участника могут усложнить задачу. Кроме того, по мере того, как испытание продвигается и количество зерен в домашней чашке уменьшается, задача становится более сложной (т.е. время на получение зерен ложкой увеличивается)13. Было показано, что эта задача коррелирует со специфической патологией болезни Альцгеймера (амилоидом)9,14 и нейродегенерацией (атрофией гиппокампа)10,15, предполагая, что ее выполнение может зависеть от нейронных схем и поведенческих процессов, которые затрагиваются на ранних стадиях заболевания. Известно, что инициация движения, планирование, выполнение и коррекция движений контролируются разнообразной сетью, проходящей через мозг, включая моторную кору, с телами верхних мотонейронов, расположенных в коре головного мозга, синапсирующими на нижних моторных нейронах спинного мозга16. Эти нижние двигательные нейроны напрямую взаимодействуют с мышцами для контроля движений в нервно-мышечном соединении. Восходящие пути передают сенсорную информацию от периферии к спинному мозгу, в то время как нисходящие пути внутри мозга передают направленную информацию о том, как и куда двигаться обратно к мышцам17,18. Понимание того, как эти пути избирательно влияют на патологию болезни Альцгеймера, имеет решающее значение для понимания прогрессирования заболевания, особенно с учетом того, что генетические модели животных, включая мышь 3xTg-AD и крысу TgF344-AD, ранее использовались для изучения того, как гены AD влияют на локомоцию, координацию и другие двигательные нарушения 19,20,21. Как правило, эти задачи сосредоточены на грубых моторных нарушениях, связанных с движением всего тела, но двигательные дефициты у людей гораздо более вариабельны, что может быть трудно выявить у грызунов. Поэтому необходимы новые задачи по преодолению разрыва между человеческими и животными моделями, чтобы отразить эту изменчивость.

Одной из областей мозга, которая обычно участвует в двигательных нарушениях и треморе, является мозжечок23. Мозжечок является важным регулятором точных и скоординированных движений и действует как процессор сенсорной информации для обеспечения обратной связи по нисходящим путям для коррекции и адаптации этого произвольного движения 24,25. Важно отметить, что мозжечковая атрофия была распознана у людей с БА, но, в отличие от других областей, таких как гиппокамп, повышенное отложение амилоида в мозжечке не коррелирует с повышеннойатрофией26. В то время как прогрессирование патологии БА в мозжечке отличается, существуют мультисинаптические двунаправленные связи между мозжечком и гиппокампом, которые, вероятно, нарушены в 27,28,29 гг. Альцгеймера. Примечательно, что существуют функциональные связи между мозжечком и гиппокампом, поскольку было задокументировано, что дефицит памяти возникает после резекции опухоли мозжечка 30,31,32,33,34,35,36,37. У грызунов клетки места гиппокампа нарушаются с мозжечковым возмущением38. Эти перекрывающиеся дефициты памяти, общительности и моторного контроля подчеркивают важность выявления потенциальных ранних изменений в моторных путях, которые происходят до снижения когнитивных способностей 30,31,38,39. С внедрением задач на мелкую моторику в ранних исследованиях болезни Альцгеймера мы можем начать менять традиционное понимание болезни Альцгеймера как просто когнитивного расстройства и перенаправить диагностические усилия на ранние двигательные изменения, которые могут предсказывать прогрессирование заболевания и могут быть более различимы между когнитивно ослабленными и здоровыми стареющими людьми.

Чтобы понять, как мелкая моторика может свидетельствовать об изменениях в структуре мозга, была создана и протестирована описанная выше версия человеческой задачи на грызуне. Эта задача на грызунов была названа KINEMAT (KINEmatic Motor Ability Task), и она отличается от предыдущих задач, требующих извлечения одной гранулы с пьедестала или лестницы, и более упрощенного подсчета очков в результате последовательного размещения гранул на всех этапах задачи 40,41,42,43,44,45,46. 47,48. Эта задача на мелкую моторику включает в себя новые методы подсчета очков, чаши с различными уровнями сложности и самовозмущающиеся функции, имитирующие человеческий аналог, с движением дробины и последующими корректировками стратегии участника, занимающими центральное место в дизайне. В этой задаче используются инструменты машинного обучения, Social LEAP Estimates Animal Pose (SLEAP) и keypoint-MoSeq49,50, позволяющие объективно и количественно измерять мелкую моторику и поведение при достижении цели. В то время как другие примечательные вычислительные модели были разработаны для задач квалифицированного досягаемости у грызунов 44,45,51, keypoint-MoSeq устраняет шум, чтобы обеспечить точную количественную оценку движений и хватательных поз50. Выполнение задач и стратегия моторного обучения были реконструированы с помощью высокопроизводительной камеры машинного зрения у типичных и моторно возмущенных крыс с использованием Harmaline52. Гармалин гиперактивирует нижнее ядро оливы и нарушает функцию мозжечка через глутаматергические лазающие волокна 53,54. Кроме того, была изучена мелкая моторика у подгруппы крыс TgF344-AD. Таким образом, ожидалось, что задача на мелкую моторику обнаружит измеримые нарушения у крыс, получавших гармалин, и крыс TgF344-AD по сравнению с их типичными собратьями в качестве доказательства концепции. Этот протокол описывает построение задачи на мелкую моторику, обучение и тестирование животных, а также количественную оценку поведения при достижении с помощью SLEAP и keypoint-MoSeq.

Доступ ограничен. Войдите в систему или начните пробный период, чтобы просмотреть этот контент.

Протокол

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Все описанные здесь методы были одобрены Комитетом по уходу за животными и их использованию (IACUC) Университета штата Аризона.

1. Проектирование и строительство камеры

  1. Подготовьте прозрачные акриловые панели. Схемы коробки расположены по адресу https://github.com/verpeutlab/ADFineMotorTask. Вырежьте прозрачные акриловые панели до следующих размеров (толщина всех панелей 1 см):
    1. Вырежьте две боковые панели: 26 см × 22 см.
    2. Вырежьте верхнюю панель: 27 см × 12 см.
    3. Вырежьте первую нижнюю панель: 26 см х 10 см
    4. Вырежьте вторую нижнюю панель: 26 см х 11 см
    5. Разрез лицевой панели: 20 см × 11 см.
    6. Вырежьте заднюю панель: 20 см х 12 см
    7. Вырежьте прорезь для лицевой панели (140 мм x 12 мм). Расположите прорезь по центру, выровняв его нижний край по нижней части панели.
    8. Вырежьте внутреннюю канавку: 1 см. На внутренних краях боковых панелей создайте углубление или углубление, чтобы передняя панель могла надежно вставляться и выдвигаться.
      ПРИМЕЧАНИЕ: Если функция скольжения не требуется, передняя панель может быть навсегда приклеена для упрощения конструкции.
    9. Просверлите равномерно расположенные отверстия (5 мм в диаметре) во второй нижней панели, чтобы при падении гранулы могли провалиться. Расположите отверстия на расстоянии 1 см друг от друга в виде сетки.
  2. Соберите камеру с помощью клея (рисунок 1А).
    ПРИМЕЧАНИЕ: Используйте прочный, прозрачный клей, специально предназначенный для акриловых материалов.
    1. Боковые панели: Нанесите непрерывную линию клея по краям нижней панели. Расположите боковые панели вертикально и плотно прижмите. Дайте клею застыть в соответствии с инструкциями по изготовлению.
    2. Задняя панель: Нанесите клей на задние края боковых и нижних панелей. Расположите заднюю панель и прижмите ее на место.
    3. Верхняя панель: Нанесите клей на верхние края боковой и задней панелей. Расположите верхнюю панель и сильно нажмите.
    4. Передняя панель: Осторожно вставьте переднюю панель в пазы на боковых панелях, обеспечивая плотное, но гладкое прилегание, или нанесите клей по краям передней панели и закрепите его на боковой, верхней и нижней панелях.
      1. Проверьте движение панели и убедитесь, что она точно выровнена по остальной части камеры.
  3. Настройка освещения
    1. Расположите инфракрасный (ИК) свет на противоположном конце испытательной камеры, направленный в сторону камеры. Положите лист белой строительной бумаги на верхнюю часть камеры, чтобы отражать свет вниз.
      ПРИМЕЧАНИЕ: Освещение имеет решающее значение для правильного отслеживания, и все записи должны производиться под ИК-светом в темной комнате.
  4. Подготовьте тренировочную миску.
    1. Изготовьте тренировочную чашу с радиусом 31 мм и удлинением 32 мм с помощью 3D-принтера. STL-файл доступен на https://github.com/verpeutlab/ADFineMotorTask (Рисунок 1B: вверху)
    2. Прикрепите тренировочную чашу к дну камеры прямо перед прорезью. Расположите миску так, чтобы ее верхний край находился примерно над уровнем глаз крысы в камере, используя поддерживающую подставку, например, деревянный брусок.
  5. Подготовьте тестовые чаши (Рисунок 1B: середина и дно).
    1. Распечатайте миски с помощью предоставленных файлов STL. Предлагаются две различные конструкции чаши: «Plain-Less» и «Plinko». (https://github.com/verpeutlab/ADFineMotorTask)
      1. Проверьте точность размеров и долговечность (размеры: 50 мм в глубину и 40 мм в ширину).

2. Компьютерное и фотоаппаратное обеспечение

  1. Используйте штатив для надежного крепления камеры.
  2. Расположите камеру примерно в 15-20 см от передней панели камеры.
    1. Отрегулируйте высоту и угол наклона штатива так, чтобы камера снимала изометрический вид под углом 45° как на прорезь, так и на чашу.
      ПРИМЕЧАНИЕ: Убедитесь, что поле зрения камеры охватывает крысиную лапу и полный радиус действия, слот и тренировочную или испытательную чашу. При необходимости тестируйте различные углы и расстояния для достижения оптимальной видимости.
  3. Загрузите программное обеспечение для сопряжения с камерой для записи поведенческих операций (https://www.teledynevisionsolutions.com/products/spinnaker-sdk) и откройте программное обеспечение, чтобы использовать камеру для записи поведения.
    1. Используйте следующие настройки камеры: режим съемки: непрерывный, частота кадров: 216 Гц, режим экспозиции: по времени, автоматическая экспозиция: выкл., время экспозиции: 4430 μс, усиление авто: выкл., усиление: 16,85 дБ, гамма: 0,8.
    2. Настройки записи следующие: тип файла H264, 5 миллионов (5 000 000) битрейт.
    3. Чтобы записывать в течение 10 минут, введите 130 000 кадров и используйте потоковый режим для сохранения.
      ПРИМЕЧАНИЕ: Рекомендуется использовать выделенную машину с минимум 16 ГБ ОЗУ и внутренним твердотельным жестким диском емкостью 1 ТБ для хранения данных.

figure-protocol-1
Рисунок 1: Схема задачи на мелкую моторику. (А) Мультяшное изображение задачи на мелкую моторику, в которой крыса протягивает руку через щель, чтобы достать сахарную гранулу. Достижения записываются для анализа машинного обучения. Используются три отдельные чаши: (внизу слева) тренировочная чаша, (внизу посередине) Plain/Less и (внизу справа) чаша Plinko с препятствиями, обведенными красным цветом. (B) Схемы каждой конструкции чаши, включая (верхнюю) тренировочную чашу, (среднюю) простую/меньшую чашу и (нижнюю) чашу Plinko. Пожалуйста, нажмите здесь, чтобы просмотреть увеличенную версию этой цифры.

3. Подготовка животных

  1. Сопряжение (как минимум) с крысами Fisher 344 CDF (самцы и самки, в возрасте >3 месяцев) в обратном цикле свет/темнота, чтобы можно было провести тестирование, когда животные наиболее активны.
  2. Взвесьте всех грызунов за 1 неделю до начала привыкания и обеспечьте ~30 г корма для грызуна массой свыше 300 г и ~15 г для грызуна 100-300 г для поддержания животных на 90% массы тела.
    1. Ежедневно взвешивайте крыс и корректируйте корм соответственно, уменьшая количество предоставляемой пищи на 1-2 г в день до тех пор, пока грызун не достигнет 90% массы тела. Ежедневное обращение с животными также поможет приучить их к экспериментатору.
    2. На протяжении всего привыкания и тестирования продолжайте эту процедуру, корректируя корм на +/- 0,5 г, когда вес опускается ниже или превышает пороговое значение.
    3. Во время тестирования взвешивайте животных до начала выполнения задачи, а затем выдавайте ей корм сразу после возвращения в клетку после выполнения задачи.
      ПРИМЕЧАНИЕ: Любая внезапная потеря веса (>15%) в течение 1-2 дней может сигнализировать о основной проблеме, и следует проконсультироваться с ветеринаром.

4. Привыкание (2 дня)

  1. Включите ИК-подсветку, камеру и компьютер.
  2. Поместите тренировочную чашу с гранулами в отверстие для отверстия, следя за тем, чтобы кончик чаши немного выступал внутрь аппарата (первоначально примерно на 2 см).
  3. Перенесите клетки в помещение для тестирования и дайте крысам акклиматизироваться в течение 5 минут.
  4. День 1: Добавьте в камеру крыс, содержащихся в парах, и дайте им исследовать в течение 20 минут. Поместите 3-5 сахарных гранул в домашнюю клетку после тестирования, чтобы крысы могли ознакомиться с гранулами.
    ПРИМЕЧАНИЕ: Размер гранул 45 мг позволяет извлекать одну гранулу.
  5. Очистите камеру дезинфицирующей салфеткой между крысами. В конце дня опрыскайте этанолом для дезинфекции.
  6. День 2: Приучайте грызунов индивидуально к аппарату по той же методике (20 мин). Если грызуны кажутся напуганными или избегают передней части аппарата и чаши, продолжайте приучать их до тех пор, пока это поведение не исчезнет. Продолжайте давать гранулы в качестве лакомства в домашней клетке (3-5 гранул).
    1. Чтобы облегчить знакомство и приближение к чаше, постепенно перемещайте удлиненную трубку вглубь затвора аппарата на протяжении всего привыкания, перемещая кончик на 0,5 см ближе к грызуну, чтобы облегчить дотягивание.
      ПРИМЕЧАНИЕ: Привыкание, тестирование и обучение должны проводиться в одном и том же месте при красном освещении, чтобы исключить воздействие нового окружения.

5. Формовка (10 дней)

  1. Включите ИК-подсветку, камеру и компьютер.
  2. Перенесите клетки в помещение и дайте крысам акклиматизироваться в течение 5 минут.
  3. Используя тренировочную чашу, обеспечьте 1-5 гранул вдоль удлинителя, при этом удлинитель должен быть полностью помещен внутрь снаряда в первый день. Дрессируйте животных за 10-минутные сеансы. Запись во время формовки не является обязательной.
    ПРИМЕЧАНИЕ: Чтобы познакомить грызунов с гранулами, важно предусмотреть несколько сахарных гранул в самом устройстве, чтобы уменьшить отвращение к гранулам в чаше. Грызуны, скорее всего, будут есть гранулы внутри устройства, потому что их легко достать, и они узнают эти гранулы в чаше. Важно приучить их смотреть в правильном направлении снаряда и привыкнуть к прикосновению к чаше.
  4. В последующие дни тренировок начинайте убирать удлинитель чаши из снаряда. Для этого грызунам придется приближаться к отверстию аппарата спереди и стимулировать взаимодействие с удлинителем, находящимся прямо за пределами аппарата.
    1. Конструкция позволяет обеспечить конкретное размещение пеллет. Например, поместите гранулы в конец миски, ближайший к грызуну, и постепенно отодвиньтесь от него, чтобы побудить грызуна вытянуть руку из устройства.
  5. По мере того, как грызуны привыкают брать гранулы с края удлинителей, даже если они только ртом, начинайте вводить гранулы через пинцет, чтобы стимулировать поведение при дотягивании.
    1. Держите одну гранулу в пинцете прямо за пределами аппарата, позволяя грызунам просто прикоснуться к пинцету. Немедленно вознаграждайте такое поведение, чтобы стимулировать дальнейшее достижение.
    2. По мере того, как грызуны будут чувствовать себя более комфортно при прикосновении к пинцету, позвольте им отойти немного дальше от устройства, чтобы коснуться или схватить гранулу, держа пинцет чуть дальше от отверстия устройства.
      ПРИМЕЧАНИЕ: Ведите заметки обо всем поведении животных, в частности, если животные боятся миски или не дотягиваются до нее. Этим животным могут потребоваться дополнительные дни формообразования.
  6. После того, как грызуны достигают непрерывно и самостоятельно в течение как минимум 3 дней (рисунок 2А), переходите к равнинной миске до тех пор, пока не установится поведение достижения (непрерывное достижение в течение 3 дней с не менее чем 10 независимыми дотягиваниями в день).
    1. При введении грызунов в обычную миску убедитесь, что миска максимально заполнена гранулами, чтобы грызуны могли визуализировать гранулы за бортиком миски.
      ПРИМЕЧАНИЕ: На этом этапе может потребоваться поощрение досягаемости с помощью пинцета.
  7. Очистите камеру дезинфицирующей салфеткой между крысами. В конце дня опрыскайте этанолом для дезинфекции.

6. Подготовьтесь к тестированию:

  1. Тестирование проводится в течение 9 дней (рисунок 2A), при этом каждый грызун выполняет 3 испытания в каждой миске, причем каждое 10-минутное испытание происходит в течение нескольких дней подряд.
    ПРИМЕЧАНИЕ: Тестирование лучше всего проводить утром.
  2. В каждый день тестирования взвешивайте крыс. После завершения теста крыс оставляют в домашних клетках на 30-60 минут перед тестированием, так как взвешивание может вызвать стресс и подавить достижение результатов.
  3. Включаем компьютер и настраиваем чашу. Подключите камеру и включите свет. Откройте программное обеспечение для записи и отрегулируйте настройки камеры, как описано в разделе 2 протокола.
    ПРИМЕЧАНИЕ: Рекомендуется записывать не менее 200 кадров в секунду (кадров в секунду) для захвата всех движений лап.
  4. Выровняйте чашу в кадре камеры и визуализируйте ее в программном обеспечении для записи, нажав кнопку воспроизведения. Поместите чашу заподлицо с аппаратом и камерой под углом 45° к боковой стороне чаши.
    1. Перемещайте камеру, чтобы запечатлеть дотягивание прямо в лоб, чтобы изучить движение отдельных пальцев и ладони, а также движение, связанное с высотой ладони над чашей во время дотягивания.
    2. Расположите камеру непосредственно перпендикулярно чаше для фиксации движений рук и кистей рук к чаше и из нее, но не для фиксации расположения пальцев или подробностей о цепочном поведении.
      ПРИМЕЧАНИЕ: Несмотря на то, что для захвата движения в плоскостях x, y и z рекомендуется использовать угол 45°, другие конфигурации могут более легко захватывать информацию для желаемого исследования.

7. Тестирование (9 дней)

  1. Поместите крыс в комнату для приучения на 1 час.
  2. Первую миску поставьте на платформу чаши, закрепив ее стоматологическим воском. Убедитесь, что передняя часть чаши находится заподлицо и центрирована с отверстием аппарата.
  3. Назовите видеофайл в Spinview, указав идентификационный номер крысы, дату записи и время записи.
  4. Поместите крысу в аппарат. Закройте крышку и положите сверху белый картон, чтобы отразить свет.
  5. На этом этапе дважды проверьте угол камеры, чтобы убедиться, что запечатлена соответствующая сцена, и отрегулируйте чашу, если она не расположена по центру.
  6. Насыпьте нужное количество гранул в чашу и нажмите «Начать запись».
    День 1-3 Обычная чаша: ~100 гранул
    День 4-6 Меньше чаши: ~50 гранул
    День 7-9 Чаша Плинко: ~50 пеллет
  7. Оставайтесь в комнате на протяжении всего тестирования, чтобы постоянно следить за крысой, делать заметки о достижении производительности и поведении и добавлять гранулы по мере необходимости для поддержания нужного количества.
    1. Для Plain bowl убедитесь, что грызуны могут видеть гранулы через край чаши и что гранулы всегда можно получить (т.е. заполняя чашу на протяжении всего испытания, по мере уменьшения количества гранул гранулы наслаиваются слоями).
    2. Для миски Less: убедитесь, что гранулы не сложены друг на друга, а между гранулами есть место, позволяющее им разлететься, когда крыса попытается дотянуться.
    3. Для чаши Plinko: убедитесь, что гранул достаточно, чтобы они были доступны между препятствиями.
  8. Верните животное в домашнюю клетку и обеспечьте его положенным кормом. Очистите камеру дезинфицирующей салфеткой между крысами.
  9. В конце дня распылите этанол для дезинфекции всей камеры, чтобы подготовиться к следующему дню.
    ПРИМЕЧАНИЕ: При тестировании как самцов, так и самок грызунов, обязательно уравновесьте полы: некоторые самки и некоторые самцы были протестированы ранее утром, а аналогичная смесь была протестирована позже. Соблюдайте порядок тестеров на протяжении всего эксперимента.

figure-protocol-2
Рисунок 2: Обучение и тестирование крыс, выполняющих задачу на мелкую моторику. (А) Хронология эксперимента. Крыс приучали к аппарату в течение двух дней, а затем в течение 10 дней проводили процедуры по приданию формы. Животных проверяли на мелкую моторику во всех трех чашах в течение трех дней в каждой миске. Затем животным вводили гармалин и повторно тестировали каждую чашу в течение трех дней. (B) Крысы (n = 6) подвергались двум разным мискам (тренировочной чаше и равнине) во время процедур формообразования, и тип чаши был изменен на 5-й день для улучшения охвата. Наблюдалось значительное увеличение формообразования в течение 10 дней для достижения критериев (F(9, 45) = 13,5, p < 0,001). Серая полоса обозначает переключение между оригинальной и текущей тренировочной чашей с удлиненной трубкой. (C) При тестировании всех трех чаш наблюдалась значительная разница в общем охвате за 9 дней тестирования (F(8, 32) = 3,74, p = 0,003). Примечание: Крыса 2 была удалена после придания формы. Чаша Плинко привела к значительным различиям между Less (p = 0,001) и Plain bowl (p = 0,027). Пожалуйста, нажмите здесь, чтобы просмотреть увеличенную версию этой цифры.

8. Моделирование нарушения мелкой моторики с помощью Harmaline

Примечание: Для определения влияния двигательных нарушений на мелкую моторику и производительность в мелкой моторике, крысам вводили гармалин (10 мг/кг), β-карболиновый алкалоид, который является обратимым ингибитором моноаминоксидазы-А и нацелен на низшую оливу 52,55,56,57. Гармалин на моделях грызунов влияет на осанку и равновесие, ограничивает тонкую моторную координацию и вызывает двигательные нарушения в верхних конечностях.

  1. Взвесьте крыс, чтобы рассчитать правильную дозу гармалина.
  2. Дайте крысам привыкнуть к испытательному залу в течение 1 ч.
  3. Включаем компьютер и настраиваем чашу. Подключите камеру и включите свет. Откройте программное обеспечение для записи и отрегулируйте настройки камеры, как описано в разделе 2 протокола.
  4. Вводите грызунам Гармалин (10 мг/кг, в/ч).
  5. Через 15 минут вылейте гранулы в подходящую миску и начните запись. Тестируйте крысу на каждой миске в течение 3 дней.
    День 1 Обычная чаша: ~100 гранул
    День 2 Меньше миски: ~50 гранул
    День 3 Плинко боул: ~50 пеллет
    ПРИМЕЧАНИЕ: Контролируйте место инъекции на предмет аномалий, включая раздражение кожи, болезненное поведение, атаксию, гипотермию и изменения осанки в течение 3 часов после инъекции. После 3-часовых окон продолжайте следить за любыми изменениями в поведении, включая задержки при приеме пищи или питья, а также любой остаточный тремор.

9. Анализ видео с помощью машинного обучения

ПРИМЕЧАНИЕ: После сбора данных и видеозаписи достижения были подсчитаны вручную и оценены следующим образом: Успех (извлечение и употребление гранулы), Выпадение (получение гранулы, но выпадение гранулы перед употреблением), Неудача (невозможность вернуть гранулу). Эти данные, полученные вручную, были использованы в качестве достоверных данных для анализа машинного обучения.

  1. С помощью пользовательского кода Python в https://github.com/verpeutlab/ADFineMotorTask были проведены сравнения между животными, получавшими исходный уровень, и животными, получавшими гармалин, чтобы определить изменения в показателях охвата (рис. 3, рис. 4, рис. 5 и рис. 6).
  2. Для анализа совместной кинематики поведения при дотягивании, включая траекторию досягаемости, конформацию и положение лапы, а также изменения в стратегии досягаемости при различных типах чаш, используйте бесплатное программное обеспечение машинного обучения с открытым исходным кодом Social LEAP Estimates Animal Pose (SLEAP) (см. https://sleap.ai/ для более подробного объяснения и пошагового руководства по использованию программы с открытым исходным кодом49).
    ПРИМЕЧАНИЕ: SLEAP49 можно скачать по адресу https://github.com/talmolab/sleap.
  3. Откройте новый проект и добавьте 3 видео с задачей на достижение цели.
  4. Создайте скелет, состоящий из 15 узлов: 1 плеча, 1 запястья, 1 ладонного центра, 4 основания, 4 костяшек пальцев и 4 пальцевых узлов (скачать скелет можно на https://github.com/verpeutlab/ADFineMotorTask).
  5. Добавьте ребра между узлами так, чтобы верхняя часть руки соединялась с запястьем, затем с центром ладони. От центра ладони соедините узлы-основания, костяшки пальцев и узлы кончиков пальцев так, чтобы центр ладони всегда был начальным узлом (рис. 7A).
  6. Пометьте не менее 50 кадров перед тренировкой по бегу. Здесь можно обучить новую модель или использовать модели для centered и centroid на github: https://github.com/verpeutlab/ADFineMotorTask.
  7. Как только модель будет обучена, откройте новое видео и запустите вывод: trackin.match: greedy, n_instances:1, tracking.clean_instance_count:1, tracking.target_instance_count:1, tracking.pre_cull_to_target:1.
    ПРИМЕЧАНИЕ: Вывод может быть запущен как bash-скрипт в локальном кластере. Записанные видео могут потребовать корректуры (инструкции по корректуре см. в https://sleap.ai/).
  8. Для дальнейшего анализа узлов и понимания различий между группами в совместной кинематике используйте бесплатную ключевую точку с открытым исходным кодом — MoSeq50 (подробности о загрузке и инструкции по использованию см. в https://github.com/dattalab/keypoint-moseq).
  9. Создание дискретных слогов поведения с помощью keypoint-MoSeq50 (рисунок 7B). Выполните дополнительный анализ, чтобы сопоставить частоту переходов, вероятность и изменения частоты переходов между условиями Harmaline и Baseline для каждой миски (рис. 7C, D). Код анализа см. в https://github.com/verpeutlab/ADFineMotorTask.

figure-protocol-3
Рисунок 3: Изменения в досягаемости чаш и обработке. (A) Для исходного тестирования (n = 5) во всех 3 чашах наблюдалась значительная разница в общем охвате (H(df) = 8,48, p = 0,014, Краскал-Уоллис), причем большее количество достиганий наблюдалось при типе чаши Плинко (p = 0,011, апостериорный тест Данна с поправкой Бонферрони). (B) Возмущение гармалином (n = 5) не приводило к различиям между типами чаш. Ошибки отображаются как S.E.M. *p < 0,05. Пожалуйста, нажмите здесь, чтобы просмотреть увеличенную версию этой цифры.

figure-protocol-4
Рисунок 4: Сравнение производительности в разных условиях и по типам чаш .(A) Во время исходного тестирования наблюдалась значительная разница в чаше (F(2) = 5,78, p = 0,007) и исходах (F(2) = 3,92, p = 0,029). Попытки досягаемости увеличивались по мере усложнения типа чаши, хотя досягаемость уменьшалась от базового уровня во всех чашах в состоянии гармалина. (B) Не было обнаружено различий у крыс, получавших гармалин, при подсчете досягаемости в мисках. (C) Наблюдалась значительная разница в исходах (F(2) = 2,07, p < 0,001) во время базового тестирования при анализе по производительности. (D) Не было обнаружено различий у крыс, получавших гармалин, в отношении чаши или результатов. Ошибки отображаются как S.E.M. Пожалуйста, нажмите здесь, чтобы просмотреть увеличенную версию этого рисунка.

figure-protocol-5
Рисунок 5: Сравнение исходного уровня и условий с гармалином. (A) Не было различий в успешности работы между условиями. (B) При подсчете неудач наблюдалась значительная разница между исходными условиями и условиями Гармалина (H(df) = 4,85, p = 0,028, Краскала-Уоллиса) со значительным эффектом, обнаруженным в условиях Гармалина (p = 0,028, апостериорный критерий Данна с поправкой Бонферрони). Ошибки отображаются как S.E.M. Пожалуйста, нажмите здесь, чтобы просмотреть увеличенную версию этого рисунка.

figure-protocol-6
Рисунок 6: Показатели обучения и достижения. (А) У животных, получавших гармалин, наблюдалась задержка в обучении по сравнению с исходным уровнем (t-stat = 2,833, p = 0,022). (B) Для общего количества попаданий в минуту наблюдалось значимое взаимодействие между чашей (меньше) и условием (гармалином) (F(1,5) = 9,83, p = 0,002, смешанная линейная модель) и чашей (плинко) и условием (гармалином) (F(1,5) = 22,67, p < 0,001, смешанная линейная модель). Гармалин уменьшил общее количество охватов в минуту для всех типов чаш (меньше: p = 0,01, Plinko: p < 0,001) по сравнению с исходным уровнем. Ошибки отображаются как S.E.M. *p < 0,05, ***p < 0,001. Пожалуйста, нажмите здесь, чтобы просмотреть увеличенную версию этой цифры.

figure-protocol-7
Рисунок 7: Машинное обучение выявляет уникальные позы и стратегию выполнения задач. (A) Расположение узлов на лапе крысы, помеченное с помощью SLEAP. (B) Примеры слогов, идентифицированных по ключевому точке-MoSeq во время досягаемости. (C) Матрица частот перехода биграмм между последовательными слогами. Вероятности переходов нормализуются на общее количество биграмм. (D) График переходов, сравнивающий различия в переходах по слогам между Harmaline и Baseline. Узлы графа представляют собой слоги, а ребра — переходы между ними. Более выступающие края указывают на слоговые переходы с более высокими частотами. Красные соединения указывают на переход вверх, в то время как синий сигнал указывает на переход вниз у животных, получавших гармалин. Красные круги указывают на повышенное использование, в то время как синий круг указывает на пониженное использование указанного слога у животных, получавших гармалин. Исключались пары слогов с частотой менее 0,005. Пожалуйста, нажмите здесь, чтобы просмотреть увеличенную версию этой цифры.

Доступ ограничен. Войдите в систему или начните пробный период, чтобы просмотреть этот контент.

Результаты

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

После того, как крысы достигали 90% массы тела по ограничению корма, их приучали к камере в течение 2 дней, затем в течение 1-2 недель проходили процедуры по коррекции формы. Количество успешных, пропущенных и неудачных попыток оценивалось обученным наблюдателем, слепым к каждому условию. В течение 9 дней (исходный уровень) крыс проверяли мелкую моторику на 3 различных конфигурациях чаш (Plain, Less и Plinko). Затем тем же крысам (n = 5 в группе, 1 удалена после тренировки формы чаши из-...

Доступ ограничен. Войдите в систему или начните пробный период, чтобы просмотреть этот контент.

Обсуждение

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Задачи досягаемости грызунов обычно ограничены одиночными гранулами и не включают в себя препятствий или самобеспокойных особенностей, которые являются обычными проблемами для пациентов с нейродегенеративной патологией. Представленный здесь метод, использующий как переосмысленную задачу достижения дробины, так и машинное обучение, может обнаруживать как координацию, так и стратегию посредством анализа особенностей позы и переходов, в дополнение к индивидуальным движениям пальцев. Созданн...

Доступ ограничен. Войдите в систему или начните пробный период, чтобы просмотреть этот контент.

Раскрытие информации

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Авторы заявляют об отсутствии конкурирующих финансовых интересов.

Благодарности

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Эта работа была поддержана Институтом исследований в области психического здоровья, Институтом исследований в области социальных наук, Департаментом медицинских наук штата Аризона [ADHS14-052688], Министерством здравоохранения и социальных служб США, Национальными институтами здравоохранения [P30AG019610], Программой стипендиатов Аризонского исследовательского центра болезни Альцгеймера, Аризонским консорциумом по борьбе с болезнью Альцгеймера и премией Нэнси Айзенберг для младших преподавателей. Фигуры создавались с использованием Biorender.com. Мы хотели бы поблагодарить Нельсона Ямаду (Nelson Yamada), Акаша Купправалли (Akash Kuppravalli) и Жанну Камау (Jeanne Kamau) за их помощь в проектировании.

Доступ ограничен. Войдите в систему или начните пробный период, чтобы просмотреть этот контент.

Материалы

Список материалов, использованных в этой статье
ИмяКомпанияКаталожный номерКомментарии
Материалы для 3D-печатиAmazon (увертюра)B07PGY2JP1Филамент PLA 1,75 мм PLA 3D-принтер, точность размеров +/- 0,03 мм
КамераEdmond OpticsBFS-U3-13Y3M-C1,3 МП, моно, 170 FPS, ON Semi PYTHON 1300 x2
Кабели камерEdmond OpticsACC-01-2300USB 3.1, 3 м, кабель Type-A до Micro-B (фиксирующий)
Объектив камерыЛаборатории ТораMVL5WA4,5 мм EFL, f/1,4, объектив машинного зрения формата 1/2"
Соединение камеры с штативEdmond Optics88-210Подключение камеры к штатива
Чистящие салфеткиAmazon (Sani-Cloth)B00KMZ7KMOAF3 Поверхностный дезинфицирующий очиститель Салфетка Canister Мягкий аромат 160 Ct P13872
КомпьютерDellТочностьIntel Core i7-13700 @ 2.1 GHz, NVIDIA T1000 8 GB, RAM 16 GB
ИК-светAmazon (Serlium)B0BJFDBT44Камера с ИК-светом 48 светодиодов, ИК-светильники, водонепроницаемые инфракрасные лампы ночного видения, светильник для безопасности, камера видеонаблюдения и nbsp;            
Клей для панелейAmazon (Сдинтар)B0B1DLRPNZСтеклянный клей
ПлексигласAmazon (TOOLINHAND  США)B0BRJ1L8TR12 и раз; 12" прозрачные литые акриловые и плексигласные листы — прозрачные 1/8" Толстая (3 мм) 
Python  Фонд программного обеспечения PythonPython 3.7
СпинвьюTeledyne TechnologiesВерсия 3.1.0.79 
Сахарные гранулы (45 мг)BioservF002345 мг, без вкуса 50 000/коробку; Состав: сахароза, декстроза, магний стеарат, кальций-силикат, минеральное масло
ШтативAmazon (YOUYI)B086PYJF9DГибкий настольный веб-камерный штатив Amazon
ПинцетТонкие научные инструменты11064-07Ирисовые щипцы
ВоскAmazon (ортомеханика)B00FKDC0UUНастоящий ортовакс 

Ссылки

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,
  1. Hooyman, A., Malek-Ahmadi, M., Fauth, E. B., Schaefer, S. Y. Challenging the relationship of grip strength with cognitive status in older adults. Int J Geriatr Psychiatry. 36 (3), 433-442 (2021).
  2. Hooyman, A., et al. Remote, unsupervised functional motor task evaluation in older adults across the United States using the MindCrowd electronic cohort. Dev Neuropsychol. 46 (6), 435-446 (2021).
  3. Chudzik, A., Śledzianowski, A., Przybyszewski, A. W. Machine learning and digital biomarkers can detect early stages of neurodegenerative diseases. Sensors (Basel). 24 (5), 1572(2024).
  4. Félix, J. P., do Nascimento, H. A. D., Guimarães, N. N. Investigation of machine learning techniques to aid in the diagnosis of neurodegenerative diseases. Anais Estendidos do XXIV Simpósio Brasileiro de Computação Aplicada à Saúde (SBCAS). 2024, 115-120 (2024).
  5. Sabbagh, J. J., Kinney, J. W., Cummings, J. L. Alzheimer's disease biomarkers in animal models: closing the translational gap. Am J Neurodegener Dis. 2 (2), 108-120 (2013).
  6. Borchelt, D. R. Inherited neurodegenerative diseases and transgenic models. Lab Anim Sci. 48 (6), 604-610 (1998).
  7. Burré, J., Sharma, M. Cellular and small animal models of neurodegenerative diseases. J Vis Exp. (186), e64542(2022).
  8. Schaefer, S. Y., Hooyman, A., Duff, K. Using a timed motor task to predict one-year functional decline in amnestic mild cognitive impairment. J Alzheimer's Dis. 77 (1), 53-58 (2020).
  9. Schaefer, S. Y., et al. Improving prediction of amyloid deposition in mild cognitive impairment with a timed motor task. Am J Alzheimer's Dis Other Demen. 37, 15333175211048262(2022).
  10. Schaefer, S. Y., et al. Association between motor task performance and hippocampal atrophy across cognitively unimpaired, amnestic mild cognitive impairment, and Alzheimer's disease individuals. J Alzheimer's Dis. 85 (4), 1411-1417 (2022).
  11. Hooyman, A., Lingo VanGilder, J., Schaefer, S. Y. Mediation analysis of the effect of visuospatial memory on motor skill learning in older adults. J Motor Behav. 55 (1), 68-77 (2023).
  12. Hooyman, A., Wang, P., Schaefer, S. Y. Age-related differences in functional tool-use are due to changes in movement quality and not simply motor slowing. Exp Brain Res. 239 (5), 1617-1626 (2021).
  13. Schaefer, S. Y., Hengge, C. R. Testing the concurrent validity of a naturalistic upper extremity reaching task. Exp Brain Res. 234 (1), 229-240 (2016).
  14. Reed, A. M., et al. Examining the diagnostic accuracy of a novel performance-based test for Alzheimer's disease screening. J Prev Alzheimer's Dis. 11 (4), 903-907 (2024).
  15. Malek-Ahmadi, M., et al. Volumetric regional MRI and neuropsychological predictors of motor task variability in cognitively unimpaired, mild cognitive impairment, and probable Alzheimer's disease older adults. Exp Gerontol. 173, 112087(2023).
  16. Rawji, V., Rothwell, J. C., Jahanshahi, M. Motor control: response preparation, initiation, and inhibition. Cogn Syst Neurosci. , 379-397 (2024).
  17. Erzurumlu, R., Sengul, G., Ulupinar, E. Ascending and descending pathways of the spinal cord. Human Neuroanat. 215, 231(2024).
  18. Canedo, A. Primary motor cortex influences on the descending and ascending systems. Prog Neurobiol. 51 (3), 287-335 (1997).
  19. Castillo-Mariqueo, L., Pérez-García, M. J., Giménez-Llort, L. Modeling functional limitations, gait impairments, and muscle pathology in Alzheimer's disease: studies in the 3xTg-AD mice. Biomedicines. 9 (10), 1365(2021).
  20. Nyul-Toth, A., et al. Early manifestation of gait alterations in the Tg2576 mouse model of Alzheimer's disease. GeroScience. 43 (4), 1947-1957 (2021).
  21. Rutkowsky, J. M., et al. The impact of continuous and intermittent ketogenic diets on cognitive behavior, motor function, and blood lipids in TgF344-AD rats. Aging. 16 (7), 5811-5828 (2024).
  22. Wirths, O., Bayer, T. A. Motor impairment in Alzheimer's disease and transgenic Alzheimer's disease mouse models. Genes Brain Behav. 7 (s1), 1-5 (2008).
  23. Trujillo, P., Darby, R. R. The cerebellum as the central hub of a widespread network in essential tremor. Neurology. 101 (15), 639-640 (2023).
  24. Paulin, M. G. The role of the cerebellum in motor control and perception. Brain Behav Evol. 41 (1), 39-50 (1993).
  25. Ito, M. Mechanisms of motor learning in the cerebellum. Brain Res. 886 (1-2), 237-245 (2000).
  26. Jacobs, H. I. L., et al. The cerebellum in Alzheimer's disease: evaluating its role in cognitive decline. Brain. 141 (1), 37-47 (2018).
  27. Fouquet, C., et al. Complementary roles of the hippocampus and the dorsomedial striatum during spatial and sequence-based navigation behavior. PLoS One. 8 (6), e67232(2013).
  28. Rondi-Reig, L., et al. A liaison brought to light: cerebellum-hippocampus, partners for spatial cognition. Cerebellum. 21 (5), 826-837 (2022).
  29. Lefort, J. M., et al. Cerebellar contribution to spatial navigation: new insights into potential mechanisms. Cerebellum. 14 (1), 59-62 (2015).
  30. Badura, A., et al. Normal cognitive and social development require posterior cerebellar activity. eLife. 7, e36401(2018).
  31. Stoodley, C. J., et al. Altered cerebellar connectivity in autism and cerebellar-mediated rescue of autism-related behaviors in mice. Nat Neurosci. 20 (12), 1744-1751 (2017).
  32. Klibaite, U., et al. Deep phenotyping reveals movement phenotypes in mouse neurodevelopmental models. Mol Autism. 13 (1), 12(2022).
  33. van der Heijden, M. E. Converging and diverging cerebellar pathways for motor and social behaviors in mice. Cerebellum. 23 (5), 1754-1767 (2024).
  34. Gibson, J. M., et al. A critical period for development of cerebellar-mediated autism-relevant social behavior. J Neurosci. 42 (13), 2804-2822 (2022).
  35. Chao, O. Y., et al. Functional convergence of motor and social processes in lobule IV/V of the mouse cerebellum. Cerebellum. 20 (6), 836-852 (2021).
  36. Chao, O. Y., et al. Social memory deficit caused by dysregulation of the cerebellar vermis. Nat Commun. 14 (1), 6007(2023).
  37. Yu, W., Krook-Magnuson, E. Cognitive collaborations: bidirectional functional connectivity between the cerebellum and the hippocampus. Front Syst Neurosci. 9, 177(2015).
  38. Grossauer, S., et al. Behavioral disorders and cognitive impairment associated with cerebellar lesions. J Mol Psychiatry. 3 (1), 5(2015).
  39. Verpeut, J. L., Oostland, M. The significance of cerebellar contributions in early-life through aging. Front Comput Neurosci. 18, 1449364(2024).
  40. Montoya, C. P., et al. The "staircase test": a measure of independent forelimb reaching and grasping abilities in rats. J Neurosci Methods. 36 (2-3), 219-228 (1991).
  41. Bova, A., et al. Automated rat single-pellet reaching with 3-dimensional reconstruction of paw and digit trajectories. J Vis Exp. (149), e59979(2019).
  42. Chen, C. -C., Gilmore, A., Zuo, Y. Study motor skill learning by single-pellet reaching tasks in mice. J Vis Exp. (85), e51238(2014).
  43. Salameh, G., et al. The home-cage automated skilled reaching apparatus (HASRA): individualized training of group-housed mice in a single pellet reaching task. eNeuro. 7 (5), (2020).
  44. Becker, M. I., Person, A. L. Cerebellar control of reach kinematics for endpoint precision. Neuron. 103 (2), 335-348.e5 (2019).
  45. Whishaw, I. Q., Alaverdashvili, M., Kolb, B. The problem of relating plasticity and skilled reaching after motor cortex stroke in the rat. Behav Brain Res. 192 (1), 124-136 (2008).
  46. Klein, A., et al. The use of rodent skilled reaching as a translational model for investigating brain damage and disease. Neurosci Biobehav Rev. 36 (3), 1030-1042 (2012).
  47. Farr, T. D., Whishaw, I. Q. Quantitative and qualitative impairments in skilled reaching in the mouse (Mus musculus) after a focal motor cortex stroke. Stroke. 33 (7), 1869-1875 (2002).
  48. Whishaw, I. Q., et al. Proximal and distal impairments in rat forelimb use in reaching follow unilateral pyramidal tract lesions. Behav Brain Res. 56 (1), 59-78 (1993).
  49. Pereira, T. D., et al. SLEAP: a deep learning system for multi-animal pose tracking. Nat Methods. 19 (4), 486-495 (2022).
  50. Weinreb, C., et al. Keypoint-MoSeq: parsing behavior by linking point tracking to pose dynamics. Nat Methods. 21 (7), 1329-1339 (2024).
  51. Ryait, H., et al. Data-driven analyses of motor impairments in animal models of neurological disorders. PLoS Biol. 17 (11), e3000516(2019).
  52. Martin, F. C., et al. Harmaline-induced tremor as a potential preclinical screening method for essential tremor medications. Mov Disord. 20 (3), 298-305 (2005).
  53. Vrieler, N., et al. Variability and directionality of inferior olive neuron dendrites revealed by detailed 3D characterization of an extensive morphological library. Brain Struct Funct. 224 (4), 1677-1695 (2019).
  54. Lefler, Y., Yarom, Y., Uusisaari, M. Y. Cerebellar inhibitory input to the inferior olive decreases electrical coupling and blocks subthreshold oscillations. Neuron. 81 (6), 1389-1400 (2014).
  55. Khan, F. A., et al. Recent pharmacological developments in β-carboline alkaloid "harmaline.". Eur J Pharmacol. 721 (1-3), 391-394 (2013).
  56. Woodward, K., et al. Cerebello-thalamo-cortical network dynamics in the harmaline rodent model of essential tremor. Front Syst Neurosci. 16, 899446(2022).
  57. Guo, D., et al. In vivo calcium imaging in mouse inferior olive. J Vis Exp. (172), (2021).
  58. Zemmar, A., et al. Acquisition of a high-precision skilled forelimb reaching task in rats. J Vis Exp. (100), e53010(2015).
  59. Lemke, S. M., et al. Information flow between motor cortex and striatum reverses during skill learning. Curr Biol. 34 (9), 1831-1843.e7 (2024).
  60. Pierre, P. J., et al. A behavioral characterization of the effects of food deprivation on food and nonfood object interaction: an investigation of the information-gathering functions of exploratory behavior. Physiol Behav. 72 (1-2), 189-197 (2001).
  61. Machado, A. S., et al. A quantitative framework for whole-body coordination reveals specific deficits in freely walking ataxic mice. eLife. 4, e07892(2015).
  62. Aljovic, A., et al. A deep learning-based toolbox for Automated Limb Motion Analysis (ALMA) in murine models of neurological disorders. Commun Biol. 5 (1), 131(2022).
  63. Sheppard, K., et al. Stride-level analysis of mouse open field behavior using deep-learning-based pose estimation. Cell Rep. 38 (2), 110231(2022).
  64. Kim, B., et al. Impact of motor task conditions on end-point kinematics and trunk movements during goal-directed arm reach. Sci Rep. 14 (1), 4520(2024).
  65. Sugioka, J., et al. Relationship between finger movement characteristics and brain voxel-based morphometry. PLoS One. 17 (10), e0269351(2022).

Доступ ограничен. Войдите в систему или начните пробный период, чтобы просмотреть этот контент.

Перепечатки и разрешения

Запросить разрешение на повторное использование текста или иллюстраций этой статьи JoVE

Запросить разрешение

Теги

Fisher 344

Похожие статьи