Для просмотра этого контента требуется подписка на JoVE. Войдите или начните свой бесплатный пробный период.

Методическая статья

Перевязка левой передней нисходящей коронарной артерии у крыс для разработки модели окклюзионного инфаркта миокарда

1.1K просмотров

⸱

DOI:

10.3791/68143

⸱

3 октября 2025 г.

 ,  ,  ,  ,  ,  ,  ,  , 
1Department of Pharmacology, Khalsa College of Pharmacy, 2Khalsa College of Veterinary and Animal Sciences, 3Department of Molecular Biology and Biochemistry, Guru Nanak Dev University, 4Universal Diagnostics, 5Histopathology Department, Fortis Memorial Research Institute

В этой статье

Краткое содержание

Протокол показывает разработку модели инфаркта миокарда (ИМ) путем постоянного лигирования левой передней нисходящей коронарной артерии у крыс. Выживание животных после ИМ имеет важное значение для сохранения кардиомиоцитов в ишемической зоне, предотвращения расширения инфаркта и уменьшения постмиокардиального воспаления и фиброза.

Аннотация

Сердечно-сосудистые заболевания (ССЗ), включая ишемическую болезнь сердца и инсульт, являются одной из основных причин смертности и заболеваемости во всем мире. Инфаркт миокарда – клинический синдром ишемической болезни сердца, возникающий вследствие длительной ишемии. Ишемический миокард претерпевает функциональные, метаболические и структурные изменения, что приводит к необратимому повреждению части миокарда вследствие некроза. Экспериментальные модели инфаркта миокарда имеют решающее значение для понимания острых и хронических клеточных, молекулярных и морфологических изменений, происходящих во время и после ИМ, а также для разработки и оптимизации новых мишеней или стратегий лечения. Хирургическая модель ИМ у мелких животных с использованием постоянного закрытия левой передней нисходящей коронарной артерии (ПМЖ) почти напоминает человеческий ИМ. Целью данного исследования является создание хирургически индуцированной модели ИМ, включающей нестираемое закрытие коронарной артерии ПМЖ у крыс. Протокол эксперимента включает начальную индукцию анестезии кетамином 80 мг/кг и ксилазином 12 мг/кг в/, интубацию эндотрахеальной канюли с помощью отоскопа без выполнения трахеотомии в условиях искусственной вентиляции легких с использованием внешнего положительного давления в конце выдоха (PEEP) для предотвращения коллапса альвеол. Была принята процедура торакотомии, которая ограничивает повреждения скелетных мышц во время операции. Этот подход является минимально инвазивным, повторяемым и снижает смертность после операции. В этой модели животные выживали через 4 дня после инфаркта миокарда, чтобы понять краткосрочные патобиологические изменения, в основном воспаление после инфаркта, ангиогенез как естественный процесс заживления инфаркта и, в конечном итоге, фиброз в инфарктном миокарде.

Введение

Сердечно-сосудистые заболевания (ССЗ), в основном включающие ишемическую болезнь сердца (ИБС) и инсульт, являются одной из основных причин смертности и заболеваемости во всем мире. По данным Всемирной федерации сердца, в 20,5 году от сердечно-сосудистых заболеваний умерло 1,2 млн человек. Инфаркт миокарда (ИМ), также известный как инфаркт миокарда, является острым клиническим синдромом ИБС. При ИМ ткань миокарда претерпевает необратимые повреждения в результате длительной ишемии, которая обычно вызвана окклюзионным тромбом, образующимся над разорванной атеросклеротической бляшкой в коронарной артерии3.

Своевременная реперфузия с использованием чрескожного коронарного вмешательства (ЧКВ) или тромболитических препаратов является основной терапией для спасения ишемического миокарда от некроза 3,4. В развитых странах, благодаря более широкому внедрению ЧКВ, смертность после ИМ снизилась, но заболеваемость ИМ растет в развивающихся странах, таких какЮжная Азия. После ИМ часть миокарда, которая подвергается некрозу, окружена зоной обратимо поврежденных клеток миокарда и ишемизированной зоной. Ишемический миокард подвергается пост-инфарктному ремоделированию желудочков, которое может привести к расширению и дисфункции желудочков, в конечном итоге прогрессируя до сердечной недостаточности6.

В настоящее время проводятся обширные исследования, способствующие регенерации поврежденных кардиомиоцитов с помощью терапии стволовыми клетками7 и облегчающие восстановление миокарда путем стимуляции ангиогенезав ишемической зоне8. Тем не менее, для клинического успеха обоих подходов необходимы значительные усовершенствования в стратегиях. Таким образом, экспериментальные модели, имитирующие инфаркт миокарда или ишемию, имеют решающее значение для понимания патологических, клеточных, молекулярных и морфологических изменений, происходящих во время и после ИМ, чтобы можно было идентифицировать новые терапевтические мишени или стратегии лечения и оптимизировать их для клинической трансляции. В данном исследовании разработана экспериментальная модель ИМ путем необратимого закрытия левой передней нисходящей коронарной артерии (ПМЖ) у крыс. Во-первых, эндотрахеальная интубация проводилась у животных без трахеотомии под наркозом в условиях искусственной вентиляции легких с применением внешнего положительного давления в конце выдоха (PEEP) для предотвращения ателектаза (сдувания/коллапса воздушных мешков в легких). Для вскрытия грудной полости была применена минимально инвазивная процедура, позволяющая избежать травмирования скелетных мышц во время операции. Расположение лигирования предполагает начало первой диагональной ветви ПМЖ, которая производит достаточный инфаркт и имитирует клиническое состояние окклюзионного инфаркта миокарда (ОМИ). Поскольку местом проведения лигирования является средняя область ПМЖ, смертность после операции, а также послеоперационныеосложнения ниже9. В этой модели животные выживали через 4 дня после ИМ, чтобы понять краткосрочные изменения, происходящие в ткани миокарда после ИМ, и определить новые мишени и стратегии лечения ИМ.

Доступ ограничен. Войдите в систему или начните пробный период, чтобы просмотреть этот контент.

Протокол

Экспериментальные процедуры проводились в соответствии с протоколом после одобрения Институционального комитета по этике животных (IAEC) [Протокол No. (IAEC/KCP/2023/009)]. При обращении с подопытными животными и уходе за ними соблюдались руководящие принципы Комитета по контролю и надзору (CCSEA) и Министерства окружающей среды, лесов и изменения климата правительства Индии.

1. Анестезия и интубация эндотрахеальной канюли (Продолжительность: 10-15 мин)

  1. Используют Вистар крысам любого пола, массой 200 - 240 г, возрастом более 6 месяцев. Запишите вес крыс. Обезболивайте крысу путем введения кетамина (80 мг/кг) и ксилазина (12 мг/кг) в зависимости от массы тела через внутрибрюшинный путь.
    ПРИМЕЧАНИЕ: Кетамин, диссоциативный анестетик, вызывает быструю анестезию, но частичную иммобилизацию мышц10. Таким образом, он используется в сочетании с ксилазином для производства мышечной релаксации и достижения состояния хирургической анестезии11.
  2. Зажмите хвост, чтобы обеспечить степень обезболивания. Если у крысы проявляются рефлексы, введите 1/3дозы кетамина. Подключите грелку к аппарату искусственной вентиляции легких, чтобы положить ее на операционный стол, чтобы обеспечить гомеотермический прогрев.
  3. Поместите крысу в положение лежа на грелке (рисунок 1A). Удерживайте крысу в таком положении, наложив клейкие ленты, и установите операционный стол в наклонное положение.
  4. Отрегулируйте параметры дыхания аппарата ИВЛ с помощью дыхательного объема 8 мл/кг (2-3 мл/мин), частоты дыхания 77 вдохов в минуту (уд/мин) и пикового давления (пикового давления на вдохе) при 15 см H2O. Чтобы предотвратить коллапс легких, отрегулируйте положительное давление в конце выдоха (PEEP) до 2 см H2O.
  5. Чтобы выполнить эндотрахеальную интубацию, возьмитесь за язык и поднимите его тупым пинцетом. Введите отоскоп (рисунок 1B) в рот, чтобы осмотреть голосовые связки и ввести эндотрахеальную канюлю (рисунок 1B и рисунок 2A) через голосовые связки. Чтобы хорошо видеть надгортанник, спроецируйте фонарик на горло сверху.
  6. Подсоедините эндотрахеальную канюлю к трубке аппарата искусственной вентиляции легких (Рисунок 1A и Рисунок 2B) и следите за движениями грудной клетки, чтобы убедиться в правильности интубации. Отек живота указывает на подозрение на интубацию пищевода, повторите интубацию согласно шагу 1.8.
  7. После того, как все настройки будут выполнены, используйте хирургический стереомикроскоп для лигирования ПМЖ (рис. 1A), а во время операции используйте нагревательную лампу для поддержания температуры тела крысы на уровне 37 °C.
  8. Нанесите крем для депиляции на шею и грудную область крысы и оставьте на 10 - 20 минут. Аккуратно снимите шерсть крысы с шеи до грудного отдела.

2. Хирургическая индукция инфаркта миокарда (продолжительность: 20 - 25 минут)

  1. С помощью пинцета выщипывают кожу на мечевидном отростке и делают небольшой надрез (около 1 см) с помощью ножниц с последующим продольным разрезом, начиная с мечевидного отростка, направленного в сторону грудино-ключично-сосцевидной мышцы.
    1. Избегайте повреждения фасции, чтобы предотвратить сильное кровотечение. Если есть кровотечение, используйте обернутые салфетки, чтобы аккуратно надавить на кровоточащую область.
  2. От основания грудино-ключично-сосцевидной мышцы до5-го -6-го ребра разрежьте фасцию и грудные мышцы вдоль левой стороны грудины.
  3. С помощью щипцов сделайте прокол в3-м и4-м межреберье по направлению к левой стороне грудины. Не повреждайте сердце или легкие при создании отверстия (около 6-8 мм). Примените средство на этом шаге.
  4. С помощью кусачки для обрезки ребер разрежьте4-е,5-е и6-е ребра вместе с межреберными мышцами и отделите оставшиеся межреберные мышцы с помощью щипцов (Рисунок 2C).
  5. Осторожно вставьте реберный ремешок, чтобы раздвинуть ребра и обнажить сердце (Рисунок 2D). Чтобы четко рассмотреть левое предсердие, отделите перикард и вилочковую железу от передней стороны сердца с помощью пинцета и изогнутых ножниц.
  6. Определите расположение левой передней нисходящей (ПМЖ) коронарной артерии для перевязки швами.
    1. После осторожного удаления перикарда определите ПМЖ как выступающую поверхностную артерию, идущую по диагонали от основания сердца к верхушке вдоль межжелудочковой борозды. ПМЖ делится на две группы ветвей: во-первых, септальные ветви (S1 и S2), которые перфорируют межжелудочковую перегородку. Второй набор ветвей, называемых диагональными ветвями (D1 и D2), перфорируют переднюю часть левого желудочка.
    2. Определите три области ПМЖ, а именно: проксимальную, среднюю и дистальную области. Проксимальный ПМЖ: область ПМЖ от начала до первой ветви, которая может быть как септальной, так и диагональной; Mid LAD: область между первой ветвью и второй диагональной ветвью; Дистальный отдел ПМЖ: область за пределами второй диагональной ветви известна как дистальный отдел ПМЖ (рис. 2E).
    3. ПМЖ проявляется как пульсирующая красноватая артерия с более толстыми стенками. Чтобы подтвердить его расположение, аккуратно надавите микрощипцами, и почувствуется пульсация.
  7. Выполнить окончательное закрытие ПМЖ проходом 8-0 шелковый шов в средней части LAD рядом с началом первой диагональной ветви D1 с помощью иглодержателя и осторожно потянув за шов, предотвращая нанесение вреда сердцу (рис. 2E).
  8. С помощью щипцов сделайте два узла лигатуры в одинаковой ориентации (хирургический узел). Закрепите лигатуру, сделав множественные узлы в двустороннем направлении с помощью щипцов.

3. Фиктивная хирургия

  1. Выполните шаги 2.1-2.6. После выполнения левосторонней торакотомии обнажите сердце, наложите шелковый шов и протяните под левую главную коронарную артерию (ПМЖ) без лигации.

4. Применение лечебного препарата (Продолжительность: 2-5 мин)

  1. После лигирования ПМЖ необходимо немедленно ввести Доксазозин в дозе 0,06 мг/кг внутривенно через хвостовую вену в группе лечения (Рисунок 3)

5. Закрытие грудной полости после хирургического вмешательства (продолжительность: 5 минут)

  1. Удалите втягивающие устройства так, чтобы ребра и межреберные мышцы вернулись в исходное положение. Закройте грудную полость, зашив левую и правую межреберные мышцы с помощью шелкового шва 6-0. Сделайте швы с помощью шва 4-0 Prolene, чтобы закрыть кожу (Рисунок 2F).

6. Послеоперационный уход и наблюдение (продолжительность: 40 мин - 60 мин)

  1. Наблюдайте за прооперированной крысой для восстановления после анестезии в течение 40 минут или более. Обеспечьте полное выздоровление, приподняв или зажав хвост.
  2. Временно отключите подключение к аппарату искусственной вентиляции легких и обеспечьте саморегуляцию дыхания крысы, исследуя нормальное движение грудного отдела.
  3. Выключите аппарат искусственной вентиляции легких и извлеките эндотрахеальную канюлю. Отсоедините клейкие ленты, прикрепленные к конечностям.
  4. Введите трамадол (12,5 мг/кг) внутрибрюшинным путем, чтобы облегчить послеоперационную боль.
  5. Держите крысу на грелке, чтобы поддерживать температуру тела на уровне 37 °C не менее 30 минут. Постоянно наблюдайте за крысой на предмет любых болезненных состояний, таких как нерегулярное дыхание или затрудненное дыхание, или любых опасных признаков инфаркта.
  6. Когда крыса сможет свободно передвигаться, рассматривайте ее в состоянии полного восстановления после анестезии. Несмотря на то, что крыса не способна к произвольному перемещению, держите ее в клетке в течение 45 минут после снятия с аппарата искусственной вентиляции легких.
  7. Наблюдайте за крысой ежедневно в течение первых 4 дней. На 4-й день принесите крысу в жертву с помощью камеры эвтаназии CO2 .

7. Анализ биохимических маркеров инфаркта миокарда

  1. Оценивают уровень тропонина как биомаркера инфаркта миокарда через 6 ч и 4 сутки после операции в образцах крови животных.
    1. Сбор и подготовка образца: Забор образца крови (200 мкл) из хвостовой вены через 6 ч после инфаркта в пробирках, покрытых ЭДТА или гепарином, и с помощью ретроорбитальной пункции (1 мл) после 4 дней ИМ.
      ПРИМЕЧАНИЕ: Образец цельной крови с антикоагулянтами является предпочтительным для тестирования на тропонин Т.
    2. Нанесите 150 мкл образца на тест-полоску с помощью сердечных пипеток и одноразовых дозирующих шприцев, входящих в комплект.
    3. Инкубировать при комнатной температуре в течение 15-20 минут, а затем интерпретировать результаты на основании появления сигнальной линии (красноватой линии) в зоне обнаружения в течение 15-20 минут. Используйте следующие параметры: Нет линии обнаружения, только контрольная линия = отрицательная; видимая линия обнаружения и контрольная линия = положительная (рисунок 6B).
  2. Определите тропонин I в образце сыворотки с помощью стандартного F-анализатора.
    1. Сбор и подготовка образцов: Забор образцов крови (200 мкл) из хвостовой вены через 6 ч после инфаркта в пробирках, покрытых ЭДТА или гепарином, и с помощью ретроорбитальной пункции (1 мл) после 4 дней ИМ.
    2. Перед исследованием дайте набору и образцу крови нагреться при комнатной температуре. Проверьте срок годности на обратной стороне пакета из фольги. Откройте пакет из фольги и проверьте испытательное устройство (рисунок 4).
    3. Вставьте тестовое устройство в тестовый паз анализатора. Анализатор считывает данные штрих-кода и проверяет работоспособность тестового устройства (рисунок 4).
    4. Соберите 100 мкл пробы с помощью пипетки фиксированного объема (100 мкл). Выдавите собранный образец в буферную пробирку для экстракции. Затем выбросьте использованную пипетку фиксированного объема (100 μл).
    5. Перемешайте образец и буферизуйте в 2-3 раза с помощью одноразовой пипетки (100 мкл). Затем соберите 100 μл смеси образцов.
    6. После нанесения образца в лунку для проб испытательного прибора немедленно нажмите кнопку TEST START анализатора. Анализатор автоматически отобразит результат теста в течение 10 минут.
      Примечание: Если присутствует тропонин I (TnI), он будет связан с микрочастицей европия. Этот комплекс будет захватываться антителом захвата на тестовой линии, а интенсивность флуоресцентного света будет определяться анализатором.

8. Анализ области инфаркта

  1. После умерщвления крыс через 4 дня после инфаркта определяют область инфаркта макроскопическим методом с помощью красителя 2,3,5-трифенилтетразолия хлорида (ТТС).
    1. Извлеките сердце из тела животного и оставьте на ночь при температуре 4 °C. Иссекаются обе ушные раковины, корень аорты и правый желудочек. Замороженный левый желудочек разрежьте на ломтики толщиной 2-4 мм с помощью хирургического лезвия. Срезы желудочков инкубировать при 37 °C в 1% растворе TTC (приготовленном с использованием 0,1 М Трис-буфера, поддерживаемого при pH 7,8) в течение 20 минут.
    2. Анализируйте картину окрашивания, так как жизнеспособный миокард, который содержит фермент дегидрогеназу и кофактор НАДН, окрашивается в кирпично-красный цвет с ТТС за счет образования формазана, в то время как область миокарда, которая подвергается инфаркту, остается неокрашенной.
  2. Определяют область инфаркта по объемному методу.
    1. Поместите срезы желудочков между двумя стеклянными предметными стеклами и положите над ней прозрачную пластиковую сетку со 100 квадратами в 1 см.
    2. Рассчитайте среднюю площадь каждого среза желудочка, подсчитав количество квадратов с каждой стороны. Аналогично рассчитайте количество квадратов, приходящихся на испачканные и незапачканные участки с обеих сторон. Неокрашенная тускло-желтая область представляла инфарктную часть, а красная область представляла жизнеспособную часть.
    3. Выражайте размер инфаркта в процентах от общего объема левого желудочка (%LVV).

9. Гистопатологический анализ

  1. Окрашивание гематоксилином и эозином
    1. Для получения гистопатологических результатов животное умерщвляют через 4 дня после лигирования ПМЖ, удаляют сердце, промывают фосфатным буфером (PBS, pH 7,4) и немедленно консервируют в растворе формалина (10%).
    2. Проведите обработку тканей путем обезвоживания ткани в течение 1 ч в серии повышения концентрации спирта (70%, 80%, 95%, 95% и абсолютного спирта), чтобы вода была удалена из ткани и спирт проник внутрь ткани. Проведите очищение тканей от спирта путем погружения в ксилол.
    3. После очистки перенесите ткань с помощью щипцов на расплавленный парафин в форму из нержавеющей стали. Очищающий агент диффундирует, а расплавленный воск проникает внутрь тканей. Охладите форму на холодной плите, чтобы парафин застыл. Когда воск полностью остынет и затвердеет (30 минут), легко извлеките парафиновый блок из формы.
    4. Парафиновые блоки, содержащие засаженную ткань, разрежьте на участки толщиной 4 мкм с помощью микротома. Поместите ленту из парафиновых срезов на водяную баню при температуре 40-45 °С. Установите секции на предметное стекло и высушите на воздухе или осторожно прогрейте предметное стекло. Затем депарафинизируйте срезы, промыв их ксилолом и регидратировав абсолютным спиртом и водой.
    5. Окрашивать гематоксилином в течение 15 мин. Испачканные участки промойте водой и обработайте их 1%-ной кислотной спиртовой смесью в течение 20 с.
    6. После промывки водой запачкать участки противопятном (1% водным раствором эозина) в течение 2 мин. Наблюдайте за предметными стеклами под микроскопом, чтобы визуализировать гистопатологические изменения при 10-кратном и 40-кратном увеличении.
  2. Трихромное окрашивание Массона
    1. Приготовьте следующие реагенты.
      1. Раствор Буина: Добавьте 75 мл насыщенной пикриновой кислоты, 25 мл 40% формальдегида и 5 мл ледяной уксусной кислоты. Раствор железного гематоксилина Вейгерта: Приготовьте исходный раствор А, содержащий гематоксилин 1 г в 100 мл 95% спирта. Приготовьте исходный раствор В, содержащий 29% хлорида железа, на 4 мл воды, 1 мл концентрированной соляной кислоты и 95 мл дистиллированной воды. Добавьте равные части исходного раствора А и Б для использования. Смесь стабильна только не более 3 месяцев.
      2. Раствор фушина Biebrich Scarlet-Acid: добавьте 90 мл 1% водного раствора Biebrich Scarlet, 10 мл 1% водной кислоты fuschin и 1 мл ледяной уксусной кислоты. Раствор фосфомолибдичево-фосфовольфрамовой кислоты: добавьте 25 мл 5% фосфомолибдиновой кислоты и 25 мл 5% фосфомолибдиновой кислоты. Раствор анилинового синего: Добавьте 2,5 г анилинового синего и 2 мл ледяной уксусной кислоты в 100 мл дистиллированной воды. 1% раствор ледяной уксусной кислоты.
    2. Депарафинизация залитых парафином участков сердца с помощью ксилола с последующей регидратацией в различных концентрациях алкоголя.
    3. Инкубируйте сердечные участки с раствором Буэна в течение 30 минут при температуре 56 °C для увеличения конечной интенсивности цвета. Промойте срезы в проточной воде из-под крана до тех пор, пока не исчезнет желтый цвет.
    4. Окрашивайте ткань гематоксилином в течение 1 минуты, затем промывайте проточной водой из-под крана в течение 2-3 минут. Срезы окрашивать раствором фуксина алой кислоты Бибриха на 15 мин.
    5. Дифференцировать с 5% фосфомолибдиком - фосфотунстровой кислотой в течение 5 - 8 мин. Переложите секцию непосредственно (не смывая) в раствор анилинового синего на 6-8 минут.
    6. Умываем дистиллированной водой. Затем дифференцируйте с 1% раствором уксусной кислоты. Обезвоживаем 95% этанолом, прозрачным ксилолом, устанавливаем на предметное стекло и рассматриваем под микроскопом12.

Доступ ограничен. Войдите в систему или начните пробный период, чтобы просмотреть этот контент.

Результаты

Эндотрахеальная интубация необходима для облегчения вентиляции во время процедуры лигирования ПМЖ с использованием открытых операций на грудной клетке у крыс. Успешная интубация подтверждается базальными параметрами дыхания до операции и поддержанием стабильного дыхания, дыхательного объема и минутного объема во время хирургической процедуры (рис. 5).

Успешность процедуры лигирования ПМЖ была подтверждена оценкой сердечного тропонина Т и тропонина I в качестве био...

Доступ ограничен. Войдите в систему или начните пробный период, чтобы просмотреть этот контент.

Обсуждение

В нашем настоящем исследовании представлена индукция инфаркта миокарда путем постоянного закрытия левой передней нисходящей коронарной артерии (ПМЖ) у крыс. В этом хирургическом протоколе анестетик кетамин в дозе 80 мг/кг, вводимый внутрибрюшинным путем, вызвал быструю анестезию, наряду с внутрибрюшинным введением ксилазина в дозе 12 мг/кг, обеспечивал достаточную мышечную релаксацию, тем самым эффективно облегчая всю хирургическую процедуру, а также плавное послеоперационное восстановле...

Доступ ограничен. Войдите в систему или начните пробный период, чтобы просмотреть этот контент.

Раскрытие информации

Все авторы раскрыли все конфликты интересов.

Благодарности

д-ру Рави Кумару Дхавану, директору Фармацевтического колледжа Халса, Амритсар, за предоставление рекомендаций и поддержку в приобретении всего хирургического оборудования; Управление Управляющим советом колледжа Халса по предоставлению средств; д-ру Харишу Кумару Верме, директору Колледжа ветеринарии и зоотехнии Халса, Амритсар, за предоставление в подарок образца кетамина и ксилазина; Д-р Рекха Сингх, отделение гистопатологии, Мемориальный научно-исследовательский институт Фортис, Гуруграм для учреждений гистопатологии и классификации; Г-н Хемаант Арора, доктор медицинских наук, Universal Diagnostics, предоставляющий оборудование для оценки тропонина I; Д-р Рахна Хора, доцент кафедры молекулярной биологии и биохимии по методам блоттинга.

Доступ ограничен. Войдите в систему или начните пробный период, чтобы просмотреть этот контент.

Материалы

Список материалов, использованных в этой статье
ИмяКомпанияКаталожный номерКомментарии
Канюля для внутривенного введения 18-го калибраКент научный, США
Канюля для внутривенного введения 20-го калибраКент научный, США
4-0 Полипропиленовый шовный материалХирургическая клиника Ханна
6-0 шелковый шовНанак Хирургический
8-0 шелковый шовный материалНанак Хирургический
Щипцы АдсонаНанак Хирургический
Аппараты для анестезииОрхидея Сайентифик
Индукционная камера для анестезииОрхидея Сайентифик
Изогнутые ножницыНанак Хирургический
Эндотрахеальная интубационная трубкаКент Сайент, США
Крем для эпиляцииНанак Хирургический
ГрелкуКент научный, США
Крючковатые щипцыНанак Хирургический
КетаминОбразец подарка от KVAS, Амритсар
МикроиглодержательНанак Хирургический
Нитриловые перчатки Нанак Хирургический
Операционный стол
ОтоскопНанак Хирургический
Щипцы для горохаНанак Хирургический
Реберное втягивающее устройствоНанак Хирургический
Прямой пинцетНанак Хирургический
Стрейт-нипперНанак Хирургический
Хирургическая шапочка для волосНанак Хирургический
Хирургическая маскаНанак Хирургический
Хирургический стереомикроскопОлимп Магнус24В1187Стереозум Микроскоп MSZ-TR с кронштейном и подставкой, кратность зума: 1:7 Зум объектива: 0,65 - 4,5x Окуляр 10x/22 мм Увеличение: 6,5 - 45x с 10-кратным окуляром Светодиодная подсветка кольца
Беззубые щипцыНанак Хирургический
ТрамадолОбразец подарка от больницы Амандип, ASR
ПинцетНанак Хирургический
ВентиляторRoVent (Kent Scientific,  США)РВ-04-220Автоматический аппарат ИВЛ с контролем объема и давления, а также подогревом и мониторингом температуры
КсилазинОбразец подарка от KVAS, Амритсар

Ссылки

  1. World Heart Report. , World Heart Federation. https://world-heart-federation.org/wp-content/uploads/World-Heart-Report-2023.pdf (2023).
  2. Lindstrom, M., et al. Global Burden of Cardiovascular Diseases and Risks Collaboration, 1990-2021. J Am Colleg Cardiol. 80 (25), 2372-2425 (2022).
  3. Byrne, R. A., et al. ESC guidelines for the management of acute coronary syndromes. Eur Heart J. 44 (38), 3720-3826 (2023).
  4. Widimsky, P., et al. Long distance transport for primary angioplasty vs immediate thrombolysis in acute myocardial infarction. Final results of the randomized national multi-center trial-PRAGUE-2. Eur Heart J. 24 (1), 94-104 (2003).
  5. Roth, G. A., et al. Global, regional, and national age-sex-specific mortality for 282 causes of death in 195 countries and territories, 1980-2017: a systematic analysis for the Global Burden of Disease Study 2017. Lancet. 392, 1736-1788 (2018).
  6. Frangogiannis, N. G. The mechanistic basis of infarct healing. Antioxid Redox Signal. 8, 1907-1939 (2006).
  7. Gill, J. K., Rehsia, S. K., Verma, E., Sareen, N., Dhingra, S. Stem cell therapy for cardiac regeneration: past, present, and future. Can J Physiol Pharmacol. 102, 161-179 (2024).
  8. Robich, M. P., et al. Myocardial therapeutic angiogenesis: a review of the state of development and future obstacles. Expert Rev Cardiovasc Ther. 9 (11), 1469-1479 (2011).
  9. Ahn, D., et al. Induction of myocardial infarcts of a predictable size and location by branch pattern probability-assisted coronary ligation in C57BL/6 mice. Am J Physiol Heart Circ Physiol. 286, H1201-H1207 (2004).
  10. Domino, E. F. Taming the ketamine tiger. 1965. Anesthesiology. 113, 678-684 (2010).
  11. Van Pelt, L. F. Ketamine and Xylazine for surgical anesthesia in rats. J Am Vet Med Assoc. 171, 842-844 (1977).
  12. Li, C., et al. Silver nanoparticles/chitosan oligosaccharide/ poly(vinyl alcohol) nanofiber promotes wound healing by activating TGFβ1/Smad signaling pathway. Silver nanoparticles/chitosan oligosaccharide/ poly(vinyl alcohol) nanofiber promotes wound healing by activating TGFβ1/Smad signaling pathway. Int J Nanomedicne. 11, 373-387 (2016).
  13. Thygesen, K., et al. Fourth universal definition of myocardial infarction. Eur Heart J. 40, 237-269 (2018).
  14. Radha, R., Shahzadi, S. K., Al-Sayah, M. H. Fluorescent Immunoassays for Detection and Quantification of Cardiac Troponin I: A Short Review. Molecules. 26, 4812(2021).
  15. Srikanth, G. V. N., Parkash, P., Tripathy, N. K., Dixit, M., Nityanand, S. Establishment of a rat model of myocardial infarction with a high survival rate: A suitable model for evaluation of efficacy of stem cell therapy. J Stem Cells Regen Med. 5 (1), 30-36 (2004).
  16. Lugrin, J., Parapanov, R., Kueger, T., Liaudet, L. Murine Myocardial Infarction Model using Permanent Ligation of Left Anterior Descending Coronary Artery. J Vis Exp. (150), e59591(2019).
  17. Kast, S., et al. Simplification of rat intubation on inclined metal plate. Adv Physiol Educ. 28, 29-32 (2004).
  18. Maruyama, K., et al. Anterior descending coronary artery in mice to generate a model of myocardial infarction. STAR Protoc. 2, 100775(2021).
  19. Pop, I. C., et al. Induction of a chronic myocardial infarction in the laboratory animal - experimental model. Clujul Medical. 86 (4), 334-339 (2013).
  20. Durant, E., Singh, A. Acute first diagonal artery occlusion: a characteristic pattern of ST elevation in noncontiguous leads. Am J Emerg Med. 33 (9), 1326.e3-1326.e5 (2015).
  21. McLaren, J., et al. From ST-Segment Elevation MI to Occlusion MI: The New Paradigm Shift in Acute Myocardial Infarction. JACC Adv. 3 (11), 101314(2024).
  22. Kasturi, S., Bandimida, S., Gajiwal, N., Thakkar, A. A Challenging Case of Bifurcation Lesion in Left Anterior Descending Artery: Managed Successfully with Everolimus-Eluting Bioresorbable Vascular Scaffold and Kissing Balloon Technique under Optical Coherence Tomography Guidance. Heart India. 3 (3), 79-81 (2015).
  23. Meyers, H. P., et al. Comparison of the ST-elevation myocardial infarction (STEMI) vs. NSTEMI and occlusion MI (OMI) vs. NOMI paradigms of acute MI. J Emerg Med. 60, 273-284 (2021).

Доступ ограничен. Войдите в систему или начните пробный период, чтобы просмотреть этот контент.

Перепечатки и разрешения

Теги

Эта статья была опубликована

Видео скоро будет доступно

Связаться с нами
Порекомендовать библиотеке

Конфиденциальность

Условия использования

Политики

© 2026 MyJoVE Corporation. Все права защищены.