Методическая статья

В естественных условиях Конфокальная микроскопия: стандартная операционная процедура для обнаружения клещей демодекса на краю века

1.4K просмотров

⸱

DOI:

10.3791/68534

⸱

3 июля 2025 г.

 ,  , 
1National Clinical Research Center for Ocular Diseases, Eye Hospital, Wenzhou Medical University, 2Eye Hospital of Wenzhou Medical University at Hangzhou

В этой статье

Краткое содержание

Конфокальная микроскопия in vivo является перспективным методом визуализации с высоким разрешением. Мы представляем клиницистам следующую процедуру для обнаружения демодекса на краю века in vivo.

Аннотация

Заражение клещом демодекс может вызвать воспаление края века, а блефарит демодекса может привести к ряду глазных заболеваний в клинических случаях. Многие врачи диагностируют заражение глаз клещами Demodex с помощью эпиляции ресниц и наблюдения за ресницами под световой микроскопией in vitro. Тем не менее, наличие остаточных клещей после удаления ресниц и боль, связанная с процедурой, являются ограничениями стандартной клинической помощи.

Конфокальная микроскопия in vivo (IVCM) — это неинвазивный метод визуализации, который позволяет клиницистам детально наблюдать клещей Demodex на краю века без эпиляции. Этот метод позволяет безболезненно провести анализ, который может быть завершен за <30 минут. Несмотря на растущее внимание к этому обследованию, оно может быть недоступно для многих офтальмологов без большого опыта. В данной статье представлена стандартная операционная процедура визуализации клещей Demodex на краю века с помощью IVCM для содействия более широкому внедрению этого метода в клиническую работу.

Введение

Блефарит является одним из наиболее часто встречающихся офтальмологических диагнозов в клинической практике. Данные свидетельствуют о значительной связи между присутствием клещей демодекса и блефаритом1. Заражение клещами включает в себя как прямое повреждение, вызванное Demodex2, так и иммунные реакции, вызванные его выделениями, которые могут выступать в качестве переносчика бактерий и потенциально способствовать развитию блефарита3. Demodex blepharitis(DB) вызывает ряд неудовлетворительных событий, включая повреждение роговицы и глазной поверхности1, которые негативно влияют на качество жизни пациента 4,5.

Демодекс – паразитический клещ, который обитает в волосяных фолликулах и сальных железах, а также на участках возле них6. Обнаружение демодекса в фолликулах ресниц или вокруг них может помочь в диагностике DB7. Клиническая диагностика ДБ включает в себя эпиляцию ресниц и наблюдение за Демодексом под световой микроскопией. Тем не менее, признано, что многие клещи, находящиеся глубоко внутри фолликула, могут оставаться в отверстии после удаления ресниц 8,9,10, что потенциально может привести к недооценке количества клещей. Конфокальная микроскопия in vivo (IVCM), неинвазивный инструмент визуализации в офтальмологии, предлагает альтернативный подход к визуализации демодекса в фолликулах ресниц или вокруг них in vivo11. Этот метод позволяет получить представление о микроструктурах глазной поверхности и век с гистологическим разрешением11. Клещи могут быть визуально идентифицированы на основе их характерной морфологии и подвижности. Тем не менее, IVCM может представлять технические проблемы для офтальмологов, не имеющих большого опыта работы с этим методом визуализации12.

Чтобы облегчить внедрение IVCM в рутинное клиническое применение, включая дифференциальную диагностику и последующее наблюдение за здоровыми веками, а также DB, мы предлагаем стандартную операционную процедуру (СОП) для наблюдения клещей Demodex на краю века. Этот протокол предоставляет клиницистам систематический подход к обнаружению клещей in vivo.

Доступ ограничен. Войдите в систему или начните пробный период, чтобы просмотреть этот контент.

Протокол

Этот протокол основан на СОП, используемой для наблюдения демодекса на краю века с помощью IVCM (Рисунок 1). Это исследование было одобрено Институциональным наблюдательным советом (IRB) Офтальмологической больницы Медицинского университета Вэньчжоу (одобрение IRB No H2023-022-K-20), и требование индивидуального согласия для этого ретроспективного анализа было отменено из-за ретроспективного характера. Описанные здесь процедуры относятся к описаниям, о которых сообщалось ранее 11,13,14,15,16.

figure-protocol-1
Рисунок 1: Томограф. Пожалуйста, нажмите здесь, чтобы просмотреть увеличенную версию этого рисунка.

1. Подготовьте устройство и программу

  1. Включите компьютер.
    1. После того как появится рабочий стол, переключите кулисный переключатель на задней панели устройства с O на I. Прежде чем приступать к любым исследованиям, обратите внимание на зеленое свечение кулисного переключателя, указывающее на то, что устройство включено.
      ПРИМЕЧАНИЕ: Включение устройства перед запуском компьютера может привести к сбою подключения.
    2. Запустите программу и установите настройки программы перед обследованием. В меню «Настройка » выберите «Параметры » (Дополнительный файл 1: Дополнительный рисунок S1); затем установите флажок Показать номера изображений , чтобы отобразить номер изображения для каждого изображения. Кроме того, установите флажок «Показывать информацию при выходе », чтобы предотвратить непреднамеренное выключение программного обеспечения.
      ПРИМЕЧАНИЕ: Отображение миниатюр изображений в виде больших значков облегчает непосредственное наблюдение за результатами. Не меняйте настройки часто.
  2. Подготовка к обследованию
    1. Очистите объектив салфетками для чистки объектива. Продезинфицируйте подголовник и подбородок ватными шариками, смоченными в спирте, чтобы избежать инфекций, вызванных патогенными микробами, передаваемыми через загрязненные детали устройства.
    2. Отрегулируйте подбородок. Убедитесь в правильном горизонтальном положении подбородка: нажмите вместе на два черных рычага, чтобы потянуть подбородок вперед до щелчка.
    3. Переместите камеру назад. Перед обследованием поверните регулировочный винт, чтобы убедиться, что он отдаляется от пациента.
    4. Нанесите каплю (примерно 0,02 мл) офтальмологического геля на основе карбомера в качестве контактного геля на переднюю поверхность линзы микроскопа прибора.
      ПРИМЕЧАНИЕ: Убедитесь, что контактный гель не содержит пузырьков воздуха и используется только небольшое количество. Слишком большое количество контактного геля, нанесенного на лицевую поверхность объектива микроскопа прибора, может попасть внутрь объектива и прилипнуть к механическим компонентам, что приведет к повреждению прибора.
    5. Снимите стерильный одноразовый колпачок из полиметилметакрилата (ПММА) с защитной крышки и плотно прижмите боковые стороны колпачка к объективу микроскопа устройства, не касаясь передней поверхности колпачка (рис. 2).
      ПРИМЕЧАНИЕ: Чтобы правильно прилегать к колпачку из ПММА, убедитесь, что контактный гель находится в контакте с задней поверхностью колпачка без пузырьков воздуха. Крышки хранятся в специальном контейнере, чтобы предотвратить повреждение стерильной упаковки. Не используйте колпачки с поврежденной упаковкой, которые могут нести риск инфицирования во время обследования.
    6. Нанесите одну каплю гелевого заменителя слезы на переднюю поверхность колпачка в качестве гелевого мостика между колпачком и веком (Рисунок 2).
      ПРИМЕЧАНИЕ: Чтобы избежать путаницы между гелями, мы используем один и тот же офтальмологический гель на основе Carbomer для обоих применений: заменитель слезы геля и гель, используемый в качестве агента между линзой микроскопа и колпачком.
    7. Создайте новую карту пациента или выберите существующую карту пациента.

figure-protocol-2
Рисунок 2: Правильная посадка колпачка из ПММА и нанесение геля. Пожалуйста, нажмите здесь, чтобы просмотреть увеличенную версию этого рисунка.

2. Подготовьте пациента

ПРИМЕЧАНИЕ: Не проводите это обследование, если целостность роговицы вызывает сомнения.

  1. Чтобы заручиться сотрудничеством пациента и свести к минимуму потенциальные риски, объясните ему следующее:
    1. Убедите пациента в том, что обследование с помощью устройства безопасно, даже если оно касается века. Сообщите пациенту, что его глаз будет обезболен каплей местного анестетика на край века.
    2. В начале обследования попросите пациента положить подбородок на подбородок и прислониться лбом к подбородку на протяжении всей процедуры обследования для достижения наилучшего качества изображения.
    3. Сообщите пациенту, что устройство будет перемещаться близко к веку до тех пор, пока колпачок из ПММА не коснется его. Заверьте их, что они не почувствуют никакой боли, пока устройство коснется века, хотя они будут ощущать контакт колпачка из ПММА. Попросите их немедленно сообщить врачу, если они почувствуют боль во время обследования.
    4. Сообщите пациенту, что он должен удерживать взгляд неподвижно, пока врач получает изображения края века для наблюдения за демодексом. Попросите пациента сообщить врачу, если он чувствует усталость; Им будет разрешено откинуться на спинку кресла и отдохнуть некоторое время, прежде чем обследование будет продолжено. Они будут проинформированы после завершения обследования.
  2. Следуйте инструкциям на упаковке анестетика и/или геля для глаз для местного применения, чтобы избежать противопоказаний к применению препарата. Спросите пациента, есть ли у него аллергия, чтобы подтвердить, что аллергия пациента не является противопоказанием к применению местного анестетика и/или геля для глаз.
    ПРИМЕЧАНИЕ: Аллергические реакции на местный анестетик и/или гель для глаз могут возникнуть в результате неустановленной аллергии.
  3. Нанесите каплю пропаракаина гидрохлорида, местного анестетика, на край исследуемого века.
    ПРИМЕЧАНИЕ: При возникновении аллергической реакции немедленно промойте солевым раствором.

3. Проведите обследование

  1. В первую очередь обратите внимание на правый глаз. Переместите камеру сканирования влево с точки зрения оператора. Внешний диаметр будет выбран автоматически в разделе Настройки путем распознавания камеры справа-влево.
  2. Переместите ПЗС-камеру влево. Поверните объектив ПЗС-камеры, чтобы отрегулировать изображение ПЗС-камеры (управляющее изображение) перпендикулярно оптической оси лазерной камеры сканера.
  3. Начните новое обследование.
    1. Обратите внимание на диалоговое окно «Данные обследования » и на вкладке «Данные обследования » выберите «Heidelberg Retina Tomograph-Cornea» в раскрывающемся списке «Устройство » (Дополнительный файл 1: Дополнительный рисунок S2) и обратите внимание на появившееся диалоговое окно «Настройки модуля роговицы ».
    2. Выберите поле зрения 400 в раскрывающемся списке Field Lens и нажмите OK для подтверждения (Supplemental File 1: Supplemental Figure S3).
    3. Подождите, пока откроется окно получения ; Отображается изображение в реальном времени со сканирующей лазерной камеры и изображение управления. Если управляющее изображение не отображается, убедитесь, что кабель ПЗС-камеры правильно подключен к ПЗС-камере, а затем перезапустите окно сбора данных.
  4. Установите коэффициенты в окне сбора данных (Дополнительный файл 1: Дополнительный рисунок S4): выберите 1x из выпадающего списка CCD Zoom Factor , чтобы задать размер управляющего изображения. Установите флажки Автоматическая яркость и Авто , чтобы автоматически управлять яркостью живых и управляющих изображений. Однако, если автоматическое управление яркостью отключено, используйте ползунок для управления яркостью элемента управления и изображениями в реальном времени. Убедитесь, что выбран тип сканирования Секция , чтобы при каждом нажатии ножного переключателя получалось и сохранялось одно изображение.
  5. Получите эталонное изображение.
    1. Перед началом съемки отключите автоматическую регулировку яркости и переместите ползунок влево, чтобы отрегулировать яркость изображения. Отрегулируйте фокальную плоскость с помощью регулировочного штифта таким образом, чтобы первоначальное яркое отражение отображалось на живом изображении сканирующей лазерной камеры после наступления темноты, указывая на переднюю поверхность колпачка из ПММА.
      ПРИМЕЧАНИЕ: Микроскоп позволяет выполнять фокусную коррекцию с точностью до 10 мкм.
    2. Нажмите «Сброс » в разделе «Положение фокусировки» [μm] и подождите, пока значение «Положение фокусировки» [μm] станет равным 0; Текущее изображение обозначается как эталонное изображение. Выключите функцию Автоматический сброс и установите флажок Автоматическая яркость ; Яркость живого изображения будет контролироваться автоматически.
    3. Если в разделе «Положение фокусировки» [μm] вместо значений отображаются пунктирные линии или если отображаемые значения не меняются, несмотря на корректировку фокальной плоскости, убедитесь, что кабель объектива микроскопа подключен правильно.
      ПРИМЕЧАНИЕ: Положение фокусировки [μм] для пахиметрии отображает положение фокальной плоскости отображаемого в данный момент изображения в микронах. Если фокальная плоскость перемещается впоследствии, фактическое положение фокальной плоскости вычисляется по отношению к положению исходного изображения.
  6. Увеличьте или уменьшите высоту смотрового стола для пациента. Положите подбородок пациента на подбородок, а лоб — на подставку для лба (рис. 3A, B). Отрегулируйте подъем подбородка с помощью специального черного регулировочного винта устройства так, чтобы верхние веки пациента совпадали с красными метками на столбце подголовника.
  7. Скажите пациенту, чтобы он смотрел вниз перед неподвижным источником света указателя и не сводил с него взгляд (рис. 3А, В).
    ПРИМЕЧАНИЕ: Движение глаз во время получения изображения может привести к ухудшению качества изображения и повреждению поверхности глаза.
  8. Ватным тампоном переверните верхнее веко, полностью обнажив корень ресницы и глазной край. Расположите отражение лазерного луча на уровне верхнего века пациента, повернув регулировочный винт аппарата. Медленно перемещайте сканирующую лазерную камеру к краю верхнего века пациента до тех пор, пока она не коснется центра колпачка из ПММА по вертикали (рис. 3C). Если пациент жалуется на дискомфорт, сделайте паузу и проверьте выравнивание колпачка из ПММА.
    ПРИМЕЧАНИЕ: Не оказывайте слишком большого давления на веко пациента. Контакт колпачка из ПММА с веком пациента из-за недостаточного гелевого мостика, движения глаз и головы пациента и/или слишком сильного движения камеры оператора может привести к травме поверхности глаза и века.
  9. Тщательно просканируйте корень ресницы от височной стороны к носовой стороне края века, небольшими горизонтальными движениями глазного края, чтобы можно было оценить ресницы и их фолликулы. Сканируйте и получайте изображения, поворачивая объектив микроскопа по часовой стрелке или против часовой стрелки, постепенно изменяйте плоскость фокусировки, чтобы наблюдать за всем фолликулом и корнем ресницы, и записывайте различные глубины, отображаемые на изображении сканирующей лазерной камеры в реальном времени. Получите изображения путем сканирования от шести до десяти волосяных фолликулов ресниц на каждый глаз, при этом образцы будут распределены по височной, средней и носовой областям края века.
    ПРИМЕЧАНИЕ: Если на живом изображении сканирующей лазерной камеры отображается небольшой рефлекс, который сохраняется при изменении положения фокальной плоскости, это может свидетельствовать о наличии пузырьков воздуха в контактном геле. Чтобы решить этот вопрос, обновите контактный гель.
  10. Сохраните изображения вручную и запишите все подозрительные изображения клещей Demodex , нажав на ножную педаль. Включите звуковую обратную связь с педалью, чтобы убедиться в успешном получении изображения. Если структуры век не отображаются, а на изображении в реальном времени сканирующей лазерной камеры видны только пограничные слои с высокой отражающей способностью, это может указывать на то, что контакт между колпачком из ПММА и краем века пациента прерван. Чтобы решить эту проблему, перенаправьте камеру до тех пор, пока колпачок из ПММА правильно коснется края века пациента.
  11. Если изображение в реальном времени выглядит размытым, искаженным или не отображает структуру волосяного фолликула, эти проблемы могут указывать на то, что пациент двигает головой или моргает. Напомните пациенту о необходимости сосредоточиться на фиксирующем свете, чтобы свести к минимуму движение. Если возможно, отрегулируйте яркость, фокальную плоскость и положение сканирования для улучшения качества изображения.
  12. Если необходимо отрегулировать сканирующую лазерную камеру или пациент испытывает усталость или боль, попросите пациента откинуться на спинку кресла, переместить сканирующую лазерную камеру назад и снова настроить камеру. Если пациент продолжает испытывать дискомфорт во время обследования и не проявляет признаков облегчения симптомов после отдыха, следует прекратить и перенести процедуру для обеспечения безопасности пациента.
  13. Если пациента осматривают несколько раз в течение дня, храните все изображения на одной вкладке обследования в окне просмотра изображений.
  14. Осмотрите левый глаз, переместите камеру вправо с точки зрения оператора и дождитесь автоматического выбора ОС . Снимите колпачок из ПММА с прибора, установите новый колпачок из ПММА на объектив микроскопа прибора и повторите предыдущие действия.

figure-protocol-3
Рисунок 3: Положение пациента. (А,Б) Пациент позиционируется. (C) Колпачок регулируется так, чтобы касаться века. Пожалуйста, нажмите здесь, чтобы просмотреть увеличенную версию этой цифры.

4. После обследования

  1. Отказаться от экзамена; Убедитесь, что изображения фолликулов ресниц сохранены и что полученные изображения отображаются в окне просмотра изображения. В противном случае получение изображения могло не удаться или данные могли не быть сохранены. Во-первых, исключите возможные неисправности оборудования, такие как проблемы с подключением программного обеспечения или поломка педали. После устранения неполадок объясните пациенту ситуацию и повторите обследование.
  2. Попросите пациента не тереть глаза после обследования до тех пор, пока эффект местной анестезии не уменьшится.
  3. Снимите колпачок из ПММА с устройства.
  4. Очистите объектив микроскопа салфетками для чистки объектива.
  5. Выберите Сортировать по времени получения (быстро) в диалоговом окне Параметры и наблюдайте за полученными изображениями фолликулов ресниц, отображаемыми в порядке от височной стороны к носовой (Дополнительный файл 1: Дополнительный рисунок S5) - порядок сканирования корня ресницы вдоль края века. Просмотрите все изображения, выберите изображения высокого качества для анализа (рисунок 4) и удалите изображения низкого качества. Попросите наблюдателя оценить изображения на наличие клещей и запишите общее количество ресничных фолликулов с клещами демодекс для каждого глаза.
    Примечание: Высококачественные изображения показывают четкую морфологию клеща, а визуализируемая часть клеща должна быть как можно больше, в идеале более 100 мкм. Если изображения высокого качества недоступны, требуется независимая оценка вторым наблюдателем. Если результаты двух наблюдателей не согласуются, третий наблюдатель должен вынести решение для устранения расхождения и установления окончательного результата для включения в отчет.
  6. Создавайте отчеты, помещая высококачественное изображение с временной стороны на носовую сторону в лайтбокс для отчета. Из шаблонов отчетов и форматов подсчета клещей (см. Дополнительный файл 2) выберите подходящий шаблон отчета для описания результатов, основанных на результатах обследования.

figure-protocol-4
Рисунок 4: Демодекс внутри фолликула ресницы. (Изображения: 400 μм x 400 μм). (А)Три клеща демодекса наблюдаются внутри фолликула (желтая стрелка), и одна ресница помечена (белая стрелка). (B) Пять клещей демодекса наблюдаются внутри фолликула (желтая стрелка), а одна ресница помечена (белая стрелка). Поскольку клещи могут мигрировать на разные глубины, визуализация в одной фокальной плоскости может захватывать фрагментированные части отдельных клещей, что приводит к неполному морфологическому представлению. Пожалуйста, нажмите здесь, чтобы просмотреть увеличенную версию этой цифры.

5. Выключайте устройство после работы каждый день

  1. После закрытия всех диалоговых окон и окон закройте программу.
  2. Выключите компьютер.
  3. Выключите устройство, переключив кулисный переключатель на задней панели устройства с I на O. Для обеспечения оптимальной производительности системы и безопасности данных сначала выключите программное обеспечение, а затем выключите устройство.
    ПРИМЕЧАНИЕ: Устройство не следует держать включенным слишком долго, особенно более чем на целый день.
  4. Регулярно обслуживайте источник бесперебойного питания (ИБП), подключенный к оборудованию, и обеспечивайте его правильную работу, чтобы предотвратить потерю данных или неисправность устройства, вызванную внезапными отключениями электроэнергии.
  5. Выполняйте регулярное резервное копирование, например с помощью сетевого хранилища (NAS).

Доступ ограничен. Войдите в систему или начните пробный период, чтобы просмотреть этот контент.

Результаты

В соответствии с описанной выше СОП мы обследовали пациентов с подозрением на заражение демодексом в 2024 году. Кроме того, мы сравнили данные за 2023 год, когда эта СОП не применялась. Как показано на рисунке 5, число пациентов, которым в 2024 году была проведена ИВКМ для выявления демодекса , значительно выше, чем в предыдущем году. Данная СОП позволяет обследовать пациентов разного возраста, от 4 лет до 92 лет.

Доступ ограничен. Войдите в систему или начните пробный период, чтобы просмотреть этот контент.

Обсуждение

Эктопаразит демодекс является одним из самых распространенных паразитов у человека. Эти клещи живут в фолликулах ресниц, мейбомиевых железах (МГ) и сальных железах и имеют прозрачную форму, удлиненную форму и имеют длину 0,15-0,4 мм. IVCM, выполненный с помощью устройства, обеспечивает изображения размером 400 мкм x 400 мкм в реальном времени с боковым разрешением 1 мкм/пиксель и увеличением 800x. С помощью IVCM можно получить подробные изображения де...

Доступ ограничен. Войдите в систему или начните пробный период, чтобы просмотреть этот контент.

Раскрытие информации

У авторов нет конфликта интересов, который можно было бы раскрыть.

Благодарности

Это исследование было поддержано грантом Национального управления науки и технологий традиционной китайской медицины - План совместного строительства науки и технологий Управления традиционной китайской медицины провинции Чжэцзян (GZY-ZJ-KJ-23086). Конфокальную микроскопию in vivo проводили с использованием томографа Heidelberg Retina Tomograph III с добавлением модуля роговицы Rostock. Авторы выражают благодарность компании Heidelberg Engineering GmbH, всем участникам и людям, работающим над этой стандартной рабочей процедурой.

Доступ ограничен. Войдите в систему или начните пробный период, чтобы просмотреть этот контент.

Материалы

Список материалов, использованных в этой статье
ИмяКомпанияКаталожный номерКомментарии
Офтальмологический гель на основе карбомера, Vidisic  Bausch and Lomb, Берлин, Германия8187195
Программное обеспечение Heidelberg Eye Explorer  Heidelberg Engineering GmbH, Гейдельберг, ГерманияВерсия 1.3.3.0
Гейдельбергский томограф сетчатки глаза III  Heidelberg Engineering GmbH, Гейдельберг, ГерманияХРТ3-08398
Пропаракаина гидрохлоридAlcon Laboratories, Форт-Уэрт, Техас, США8387271
ТомоКап  Heidelberg Engineering GmbH, Гейдельберг, Германия18829Колпачок из ПММА

Ссылки

  1. Cheng, A. M., Sheha, H., Tseng, S. C. Recent advances on ocular Demodex infestation. Curr Opin Ophthalmol. 26 (4), 295-300 (2015).
  2. Czepita, D., Kuźna-Grygiel, W., Czepita, M., Grobelny, A. Demodex folliculorum and Demodex brevis as a cause of chronic marginal blepharitis. Ann Acad Med Stetin. 53 (1), discussion 67 63-67 (2007).
  3. Clifford, C. W., Fulk, G. W. Association of diabetes, lash loss, and Staphylococcus aureus with infestation of eyelids by Demodex folliculorum (acari: Demodicidae). J Med Entomol. 27 (4), 467-470 (1990).
  4. O'Dell, L., et al. Psychosocial impact of Demodex blepharitis. Clin Ophthalmol. 16, 2979-2987 (2022).
  5. Yeu, E., Holdbrook, M. J., Baba, S. N., Gomes, P. J. Psychosocial impact of Demodex blepharitis. Invest Ophthalmol Vis Sci. 62 (8), 1261-1261 (2021).
  6. Wu, M., Wang, X., Han, J., Shao, T., Wang, Y. Evaluation of the ocular surface characteristics and Demodex infestation in paediatric and adult blepharokeratoconjunctivitis. BMC Ophthalmol. 19 (1), 67(2019).
  7. Zou, D., et al. Characteristics of bacterial community in eyelashes of patients with Demodex blepharitis. Parasit Vectors. 17 (1), 64(2024).
  8. Coston, T. O. Demodex folliculorum blepharitis. Trans Am Ophthalmol Soc. 65, 361-392 (1967).
  9. Mastrota, K. M. Method to identify Demodex in the eyelash follicle without epilation. Optom Vis Sci. 90 (6), e172-e174 (2013).
  10. Gao, Y. Y., et al. High prevalence of demodex in eyelashes with cylindrical dandruff. Invest Ophthalmol Vis Sci. 46 (9), 3089-3094 (2005).
  11. Randon, M., et al. In vivo confocal microscopy as a novel and reliable tool for the diagnosis of Demodex eyelid infestation. Br J Ophthalmol. 99 (3), 336-341 (2015).
  12. Muntz, A., Purslow, C., Wolffsohn, J. S., Craig, J. P. Improved Demodex diagnosis in the clinical setting using a novel in situ technique. Cont Lens Anterior Eye. 43 (4), 345-349 (2020).
  13. Kojima, T., et al. In vivo evaluation of ocular demodicosis using laser scanning confocal microscopy. Invest Ophthalmol Vis Sci. 52 (1), 565-569 (2011).
  14. Tas, A. Y. Interobserver and intraobserver agreements of the detection of Demodex infestation by in vivo confocal microscopy. Beyoglu Eye J. 7 (3), 173-180 (2022).
  15. Wang, Y. -J., Ke, M., Chen, X. -M. Prospective study of the diagnostic accuracy of the in vivo laser scanning confocal microscopy for ocular demodicosis. Am J Ophthalmol. 203, 46-52 (2019).
  16. hrt3 rostock cornea module user manual v. 1.5 english. , Heidelberg Engineering GmbH. http://www.HeidelbergEngineering.com (2025).
  17. Lee, S. H., Chun, Y. S., Kim, J. H., Kim, E. S., Kim, J. C. The relationship between Demodex and ocular discomfort. Invest Ophthalmol Vis Sci. 51 (6), 2906-2911 (2010).
  18. Sattler, E. C., et al. Noninvasive in vivo detection and quantification of Demodex mites by confocal laser scanning microscopy. Br J Dermatol. 167 (5), 1042-1047 (2012).
  19. Duncan, N., Sood, P., Khandelwal, S. Demodex blepharitis: Its role and treatment in ocular surface disease. Curr Ophthalmol Rep. 10 (4), 107-113 (2022).
  20. Luo, X., Li, J., Chen, C., Tseng, S., Liang, L. Ocular demodicosis as a potential cause of ocular surface inflammation. Cornea. 36 Suppl 1 (Suppl 1), S9-S14 (2017).

Доступ ограничен. Войдите в систему или начните пробный период, чтобы просмотреть этот контент.

Перепечатки и разрешения

Запросить разрешение на повторное использование текста или иллюстраций этой статьи JoVE

Запросить разрешение

Теги

Demodex

Похожие статьи