Начиная с коммерчески доступного β-ионона, синтезировали 28 г этил-β-ионилиденацетата. После восстановления 22 г β-ионилиденацетальдегида взаимодействовали с ацетоном в основных условиях с образованием C18-тетраена кетона; Получено 12 г очищенного С18-тетраенкетенкетона, который на ~90% состоял из транс-транса. Впоследствии его прореагировали с карбанионом 13С 2-триэтилфосфоноацетата с использованием модифицированной процедуры Виттига-Хорнера для добавления двух 13С в положениях 14, 15 молекулы ретинола. Полученный этиловый эфир (выход 3,7 г) восстанавливали до спирта и этерифицировали до 13С-2-ретинилацетата с уксусным ангидридом, растворенным в триэтиламине. Синтетический витамин был очищен на 8% дезактивированном водой оксиде алюминия с использованием высоколетучих органических растворителей – гексанов и диэтилового эфира. Полученный препарат характеризовали с помощью УФ-ВИД спектроскопии, ТСХ и ВЭЖХ. Для длительного хранения меченый ретинилацетат хранят растворенным в соевом масле при температуре -80 °С.
Описанная выше успешная схема синтеза 14,15-13С-2-ретинилацетата изображена на рисунке 2. Общий путь, начинающийся с β-ионона, состоит из семи ступеней. Первый выход составил 0,9 г цель-транс 14,15-13 С 2-ретинилацетата. Фракции цис/транс-изомеров (1,2 г) объединяли и повторно очищали на 300 г 8% обезвреженного водой нейтрального оксида алюминия с получением дополнительных 0,3 г полностью транс-14,15-13 С-2-ретинилацетата.
Для определения стабильности ретинилацетата в капсулах ретинилацетат (1 г) растворяли в гексанах и очищали методом открытой колоночной хроматографии с использованием 300 г 8% дезактивированного водой оксида алюминия с гексанами в качестве растворителя. Ретинилацетат контролировали методами ТСХ и УФ-ВИД спектроскопии, и использовали только чистые фракции. Этот процесс идентичен тому, который используется при синтезе и очистке 13С2-ретинилацетата в лаборатории Танумихарджо для испытания RID, как описано выше. Очищенный ретинилацетат растворяли в соевом масле, органический растворитель удаляли с помощью ротационного испарителя и добавляли больше масла до конечной концентрации 7,5 мкМ (с получением 1,5 мкм на 200 мкл, среднюю точку между дозой для взрослого и ребенка для теста RID, когда для анализа использовали GCCIRMS). Концентрацию определяли методом УФ-ВИД спектроскопии, как описано выше.
Аликвоту в 200 мкл масла распределили по целлюлозным капсулам размера 3 (максимальный объем 300 мкл) для исследования стабильности. Капсулы каждой дозы хранились в пяти условиях. Темнота достигалась за счет хранения капсул в стеллажах под алюминиевой фольгой. Капсулы (150) были приготовлены для каждого состояния в общей сложности 750 капсул: i) в морозильной камере: -20 °C в темноте; ii) в холодильнике: 4 °C в темное время суток; iii) на скамейке: 20 °C (комнатная температура) в темное время суток; iv) на скамейке, но оставленной на улице: 20 °C (комнатная температура) при стандартном флуоресцентном освещении; v) в печи, воспроизводя более высокие температуры окружающей среды в других местах: 37 °C в темноте.
В исследовании стабильности капсулы измеряли по три капсулы из каждого состояния в каждой временной точке (-20 °C, 4 °C, темная комнатная температура, светлая комнатная температура, 37 °C). Всем капсулам дали дойти до комнатной температуры (сначала анализировали капсулы комнатной температуры); Изменение температуры приводит к изменению абсорбции. Капсулы отмеряли до 480 дней. Капсулы оставались стабильными в течение девяти месяцев при температуре от -20 °C до 4 °C (Рисунок 4).
Было проведено сравнение методов сравнения одноразовых туберкулиновых шприцев с пипетками положительного вытеснения Rainin в качестве эталонного стандарта. Дозатор объемного действия Rainin был откалиброван с помощью воды с учетом местной температуры и давления, а затем протестирован с помощью трех наконечников в трех экземплярах для определения целевого объема масла, выдаваемого при настройке 200 мкл на тарированную весовую лодку. Протокол дозирования проводился 10 техниками с разным уровнем опыта. Для каждого техника было протестировано восемь шприцев в трех экземплярах и сравнено с эталоном пипетки. Боковые стороны пипетки были протерты салфеткой, и масло подавалось в весовую лодку под углом, обеспечивая максимальный выброс масла. Техники были ослеплены результатами дозированной массы на протяжении всего протокола; Масса масла фиксировалась отдельным техником. Процесс повторяли с 200 мкл соевого масла с использованием восьми туберкулиновых (например, Norm-Ject) шприцев.
Статистическое программное обеспечение R было использовано для подгонки модели компонент дисперсии (FitVCA)22 (рис. 5). Измеряемые факторы вариабельности включали техника, шприц в технике и ошибку повторения. Среднее значение нормализованной доставки шприца (95% ДИ) по сравнению с объемом доставки пипетки составило 0,996 (0,912; 1,08). Дисперсия от ошибки повторения составила 64,8% от общей дисперсии, что указывает на то, что наибольшим источником вариабельности были повторные измерения в одном и том же шприце. Процентная разница между техником и шприцем внутри техника была намного ниже, составляя 22,9% и 12,3% соответственно.
Анализ подгрупп был проведен путем разделения техников на две группы (n = 5/группа) на основе опыта. Средняя нормализованная доставка шприца была одинаковой в обеих группах, но 95% ДИ была ниже для техников с большим опытом; 1,001 (0,939, 1,063) и 0,998 (0,900, 1,100) соответственно. Среди более опытных техников большая часть отклонений произошла из-за шприца в технике (57,0%) и ошибки репликации (42,9%), в то время как у менее опытных техников большая вариативность произошла из-за ошибки техника (32,7%) и ошибки репликации (67,2%).

Рисунок 1: Структура ретинола с пронумерованными атомами углерода. 13С обычно добавляются в 14 и 15 положениях для использования в газовой хроматографии и масс-спектрометрии горения. Пожалуйста, нажмите здесь, чтобы просмотреть увеличенную версию этой цифры.

Рисунок 2: Схема синтеза 14,15-13 C2-ретинилацетата, используемого в испытаниях на разбавление изотопов ретинола при использовании масс-спектрометрии газовой хроматографии-горения-изотопного отношения, используется для анализа сыворотки крови или грудного молока. Пожалуйста, нажмите здесь, чтобы просмотреть увеличенную версию этого рисунка.

Рисунок 3: Туберкулиновый шприц объемом 1 мл без мертвого объема на кончике и пипетка положительного вытеснения объемом 250 мкл, используемая для дозирования в исследованиях с использованием индикаторов. Пожалуйста, нажмите здесь, чтобы просмотреть увеличенную версию этого рисунка.

Рисунок 4: Кривые деградации ретинилацетата, хранящегося в капсулах в пяти различных условиях. Условия составляют -20 °C, 4 °C, 20 °C (комнатная температура) в темноте, 20 °C (комнатная температура) при стандартном флуоресцентном свете и 37 °C. Пожалуйста, нажмите здесь, чтобы просмотреть увеличенную версию этого рисунка.

Рисунок 5: Дисперсионный компонентный анализ количества доставляемой дозы при сравнении туберкулиновых шприцев объемом 1 мл с пипеткой положительного вытеснения объемом 250 мкл среди 10 техников, ослепленных результатами во время оценки. Значения дозируются массой масла (200 мкл) из шприцев, нормализованных до пипетки положительного объема. Пожалуйста, нажмите здесь, чтобы просмотреть увеличенную версию этой цифры.
Дополнительный рисунок S1: Пример окончательной проверки чистоты 14,15-13C-ретинилацетата с помощью жидкостной хроматографии под ультрадавлением. Соответствующие спектры характерны для цис/транс форм витамина. Условия UPLC были следующими: растворитель A 70:25:5 (ацетонитрил:вода:изопропанол) с 10 мМ ацетатом аммония, а растворитель B состоял из 75% ацетонитрила, 25% изопропанола. В качестве колонки использовалась колонка Acquity UPLC, BEH C18 1,7 мкМ, 2,1 x 100 мм. Колонка была установлена на 29 °C, а скорость потока составила 0,4 мл/мин. Градиент начинался со 100% растворителя А и держался в течение 5,0 мин, затем переход к 98% растворителю В через 7 мин и держался в течение 8 мин, прежде чем вернуться к 100% растворителю А в течение 1 мин и удерживаться в течение 4 мин равновесия. Пожалуйста, нажмите здесь, чтобы загрузить этот файл.