Методическая статья

Мониторинг поглощения и локализации органических соединений в тканях растений с помощью гидропонного анализа 14С-радиоактивного мечения и люминофорной визуализации

DOI:

10.3791/68735

⸱

10 октября 2025 г.

 ,  , 
1Department of Biological Sciences, University of Calgary

* These authors contributed equally

В этой статье

Краткое содержание

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

В этой статье описывается метод изучения растительно-опосредованной рекультивации с использованием 14С-меченых органических загрязнителей. В нем описывается гидропонная подготовка растений, поглощение радиоактивных меток и визуализация фосфора для отслеживания поглощения, транслокации и метаболизма загрязняющих веществ. Этот метод является ценным инструментом для оценки потенциала фиторемедиации различных видов растений и загрязнителей окружающей среды.

Аннотация

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Фиторемедиация, использование растений для смягчения последствий загрязнения окружающей среды, предлагает устойчивый и экономически эффективный подход к очистке загрязненных территорий. Разработка методов, которые помогают прояснить механизмы поглощения растениями и метаболизма загрязняющих веществ, имеет решающее значение для улучшения практики фиторемедиации. В данной статье описан метод оценки поглощения и трансформации органических загрязнителей растениями с использованием радиоактивно меченых соединений. 14Меченые С-меткой органические соединения, такие как С-нафтеновая кислота модели 14, используются для отслеживания их абсорбции, транслокации, локализации и метаболизма в тканях растений. Ранее мы использовали этот метод с несколькими видами растений, включая Elymus trachycaulus и Salix interior. Эти наблюдения подтверждаются на модельном растении Arabidopsis thaliana, выращенном на гидропонике в модифицированных растворах Hoagland. Поглощение радиоактивных меток контролировалось с помощью жидкостного сцинтилляционного подсчета и фосфорной визуализации, что позволяет визуализировать и количественно оценить радиоактивно меченые соединения в тканях растений. Этот метод детализирует подготовку растительного сырья, использование меченых соединений и процесс анализа распределения и судьбы загрязняющих веществ внутри растений. Метод также включает в себя стратегии оценки экссудации соединений и позволяет оценить как поглощение растениями, так и их перемещение. Этот подход дает представление о процессах восстановления, опосредованных растениями, и может быть применен для изучения широкого спектра загрязнителей окружающей среды и видов растений.

Введение

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Биоремедиация — это технология ремедиации, опосредованная биологическими объектами, такими как растения и микроорганизмы. Фиторемедиация, в рамках которой используются растения или растительные продукты для удаления загрязняющих веществ из окружающей среды, может дополнять или служить альтернативой микробной ремедиации, преодолевая некоторые ограничения, связанные с использованием только микроорганизмов 1,2,3,4. Фиторемедиация является экономически эффективной благодаря процессам, происходящим под воздействием солнечной энергии в растениях, при которых загрязняющие вещества поглощаются через их корни или побеги и переносятся между клетками и тканями, где они могут метаболизироваться, изолироваться или улетучиваться5. Наиболее эффективными растениями для фиторемедиации обычно являются устойчивые, устойчивые к стрессу виды с высокой скоростью транспирации, быстрым производством биомассы и глубокими корневыми системами, такие как те, которые встречаются в родах Populus и Salix 6. Будучи сидячими организмами, растения развили различные метаболические пути для обработки токсичных соединений в окружающей среде1. Это наделяет их широким спектром генов и биохимических процессов, которые повышают их способность управлять загрязняющими веществами.

Концепция фитодеградации, впервые предложенная Sandermann et al. (1977)7, описывает трехэтапный процесс детоксикации загрязняющих веществ, опосредованных растениями: трансформация, конъюгация и компартментализация. На каждой фазе загрязняющие вещества подвергаются ферментативным модификациям, которые повышают их гидрофильность, снижают токсичность и делают их более восприимчивыми к секвестрации или дальнейшейминерализации. Однако, поскольку растения в основном полагаются на атмосферный углекислый газ для фиксации углерода, их способность полностью минерализовать органические загрязнители потенциально ограничена. Вместо этого загрязняющие вещества могут быть изолированы в вакуолях или клеточных стенках (фитосеквестрация) или улетучиваться в атмосфере (фитосекратизация)1.

Ключевой проблемой в исследованиях по фиторемедиации является определение того, могут ли растения поглощать и преобразовывать органические загрязнители из окружающей среды1. Традиционные методы обнаружения часто не позволяют точно проследить пути поглощения и перемещения загрязняющих веществ, что затрудняет оценку способности предприятия к ликвидации конкретных загрязнителей 1,5. Меченые радиоактивными веществами органические соединения углерода-14 (14C) предлагают мощное решение этой проблемы. Подвергая растения воздействию 14C-меченых загрязнителей, исследователи могут отслеживать проникновение радиоактивно меченого углерода в растительные ткани, обеспечивая точное понимание поглощения, перемещения и трансформации загрязнителя. Этот метод позволяет идентифицировать виды растений, способные восстанавливать определенные органические загрязнители, и предлагает надежный способ оценки вовлеченных физиологических путей. В конечном счете, использование 14С-меченых соединений улучшает наше понимание потенциала фиторемедиации, способствуя разработке более эффективных, целенаправленных стратегий по восстановлению окружающей среды.

В этой статье описывается метод использования 14С-меченых органических загрязнителей для мониторинга поглощения, транслокации и судьбы этих загрязнителей из гидропонного раствора растениями. В одной из недавних публикаций описан аналогичный метод отслеживания судьбы 14гербицидов, меченных С, при внекорневой подкормке8. Тем не менее, описанный здесь метод описывает, как оценить удаление и транслокацию радиоактивно меченых загрязнителей из гидропонного раствора, с комментариями о том, как адаптировать этот метод к использованию почвы.

Доступ ограничен. Войдите в систему или начните пробный период, чтобы просмотреть этот контент.

Протокол

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

ПРИМЕЧАНИЕ: Прежде чем приступить к работе с настоящим протоколом, важно ознакомиться с соответствующими институциональными и национальными руководствами и правилами безопасности радиоизотопов. Короче говоря, обращайтесь со всеми радиоактивными материалами или со всем, что могло вступать в контакт с радиоизотопами, надев двойные перчатки, лабораторный халат и защитные очки. Процедура проводилась в специальном месте в лаборатории с помощью ленты для маркировки участков, содержащих радиоизотопы. Кроме того, после всех процедур немедленно очистите стеклянную посуду и инструменты, затем возьмите мазок и проверьте их на наличие загрязняющих радиоизотопов с помощью сцинтилляционного подсчета. Все материалы и жидкости, использованные в этих анализах, также были утилизированы в специальных контейнерах для радиоактивных отходов и утилизированы надлежащим образом в соответствии с рекомендациями Университета Калгари и Канадской комиссии по ядерной безопасности.

1. Приготовление раствора Хогланда

  1. Приготовьте 0,5-кратный (половинчатый) раствор Хогланда из коммерческой смеси или изготовьте среду с нуля, состоящую из 0,5 мМ NH4H2PO4, 3 мМ KNO3, 2 мМ Ca(NO3)2, 1 мМ MgSO4, 23 μM H3BO3, 5 μM MnCl2•4H2O, 400 нМ ZnSO4•7H2O, 200 нМ CuSO4•5H2O, 70 нМ H2MnO4•1H2O, 45 μM FeSO4•7H2O.
  2. Добавьте MES или другой подходящий буфер для достижения конечной концентрации 10 мМ.
  3. Отрегулируйте pH до нужного значения (здесь pH был 5,0).

2. Приготовление раствора для радиоактивного мечения

  1. Перелейте необходимый объем 0,5-кратного раствора Хогланда (50 мл на реплику) в чистую колбу.
  2. Добавьте 0,1-0,26 кБк/мл меченого соединения в раствор Хогланда.
    Примечание: В этом исследовании использовали 14C-AdCA (адамантан-1-карбоновая кислота), растворенные в метаноле.
  3. Тщательно перемешайте, поворачивая колбу в течение 2-3 минут.
  4. Аликвотируйте 50 мл раствора для радиоактивного мечения в колбы Эрленмейера по 125 мл для каждой реплики.

3. Арабидопсис ( Arabidopsis thaliana (L.) Heynh.) Подготовка растений

ПРИМЕЧАНИЕ: Протокол гидропонного выращивания Arabidopsis thaliana подробно описан в Conn et al. (2013)9.

  1. Для каждого растения снимите ножницами колпачок со стандартной микропробирки объемом 1,7 мл и проткните отверстие диаметром 3 мм в центре колпачка с помощью дырокола из кожи.
  2. Временно заклейте верхнюю часть крышек скотчем и заполните крышки расплавленным 0,5x Hoagland фильтрующим материалом, содержащим 0,8% агара, затем поместите в крышку модифицированного коробки для наконечников (резервуар для проращивания) (Рисунок 1A).
  3. Поверхностно простерилизовать семена арабидопсиса путем последовательной промывки в 70% этаноле в течение 10 минут, затем 5 минут, и высушить в проточной колпаке на стерильной фильтровальной бумаге.
  4. Высевают семена в агаровую среду через отверстие, пробитое в верхней части крышки микроцентрифуги.
  5. Стратифицировать семена в решетке для кончиков при температуре 4 °C в течение 2-4 дней.
  6. Переместите емкость для проращивания в камеру выращивания в условиях длинного дня (16 ч при освещении, 8 ч в темноте при ~150 мкмоль/м,2с света и 22 °C).
  7. Заполните штативы наконечников 0,5-кратным раствором Хогланда.
    ПРИМЕЧАНИЕ: Убедитесь, что раствор соприкасается с агаром, чтобы предотвратить высыхание.
  8. Выращивайте растения в течение 2-3 недель, доливая раствор по мере необходимости (каждые 3-4 дня), чтобы агар оставался в контакте с гидропонным раствором.
  9. Пересадите крышки и рассаду в отверстие диаметром 10 мм, прорезанное через центр крышки трубки Falcon объемом 50 мл с помощью дрели и сверлильной пилы (рис. 1B).
  10. Просверлите 12 отверстий в пластиковой крышке 10 л с помощью сверлильной пилы диаметром 30 мм (резервуар для созревания).
  11. Поместите крышки трубок Falcon на отверстия в верхней части сумки, чтобы корни переходили в сумку ниже.
  12. Прикрепите воздушные камни на дно емкости для созревания и заполните раствором Хогланда, пока корни не будут в основном погружены в воду.
  13. Верните растения в камеру роста и выращивайте еще 6-8 недель (16 ч при свете, 8 ч в темноте при ~150 мкмоль/м,2с света и 22 °C), пока розетки не достигнут примерно 10 см в диаметре.

figure-protocol-1
Рисунок 1: Гидропонные резервуары для проращивания и созревания Arabidopsis и емкость для обработки 14C-AdCA. (А) Резервуар для проращивания, используемый для проращивания семян арабидопсиса для гидропонного роста. (В) Растения Arabidopsis в резервуаре для созревания, готовые к экспериментам. (C) Растение Arabidopsis с корнями, погруженными в раствор 14C-AdCA во время эксперимента. Колбы объемом 50 мл (сосуд для обработки 14°C) обычно покрываются алюминиевой фольгой (не показаны) во время воздействия для предотвращения роста водорослей. Пожалуйста, нажмите здесь, чтобы просмотреть увеличенную версию этой цифры.

4. Балтийский камыш (Juncus balticus Willd. ) подготовка растения

  1. Стратифицировать семена между двумя влажными листами фильтровальной бумаги в чашке Петри при температуре 4 °C в течение 1-2 недель.
  2. Снимите верхнюю фильтровальную бумагу и поместите чашку в камеру для выращивания в течение длительного дня (16 ч при освещении, 8 ч в темноте при ~150 мкмоль/м,2с света и 22 °C) на 1 неделю.
  3. Пересадите рассаду в модифицированные стеллажи с кончиками, как описано для Arabidopsis (шаг 3.1-3.4).
  4. Выращивайте растения в течение 2-3 недель (16 ч при освещении, 8 ч в темноте при ~150 мкмоль/м,2с света и 22 °C) или до тех пор, пока корни не достигнут 3-4 см в длину.
  5. Пересадите растения в модифицированную сумку объемом 10 л с воздушными камнями, заполните раствором Хогланда до тех пор, пока корни не будут полностью погружены в воду, и выращивайте еще 6-8 недель (16 ч при свете, 8 ч в темноте при ~150 мкмоль/м,2с света и 22 °C).

5. Подготовка саженца ивы песчаной косы ( Salix interior Rowlee

ПРИМЕЧАНИЕ: Протокол выращивания саженцев ивы песчаной косы описан в Alberts et al. (2021)10.

  1. Нарежьте стебель черенка длиной 10 см (5 мм в диаметре) и погрузите их на ночь при комнатной температуре при температуре diH2O для увлажнения и стимуляции укоренения.
  2. Перенесите гидратированные черенки в аэрированные гидропонные резервуары с 10 л 0,5x раствора Хогланда и выращивайте в течение 1 месяца (16 ч при свете, 8 ч в темноте при ~150 мкмоль/м,2с света и 22 °C) для роста корней и побегов.
    ПРИМЕЧАНИЕ: Обновляйте раствор Hoagland каждые 2 недели, чтобы предотвратить дефицит питательных веществ во время развития ростков.

6. Радиоизотопное мечение

  1. После изготовления раствора для радиоактивного мечения соберите аликвоту объемом 100 мкл из раствора для жидкого сцинтилляционного подсчета для определения исходной концентрации изотопов.
  2. Аккуратно промокните корни растений насухо и перенесите узел крышки пробирки Falcon в колбы Эрленмейера объемом 125 мл (сосуд для обработки 14°C), содержащие 0,5x раствор Хогланда с 14органическими соединениями, меченными C, из шага 2.4.
  3. Отметьте уровень раствора на колбе, чтобы убедиться, что во время эксперимента его можно долить до начального объема с учетом эвапотранспирации.
  4. Оберните колбы алюминиевой фольгой и встряхивайте при 40-60 об/мин под лампами для выращивания в течение всего анализа или до тех пор, пока меченые растения не перейдут в 0,5-кратный раствор Хогланда без радиоактивной метки в течение периода погони.
  5. Доливать объем в колбе каждые 1-2 ч до линии, выполненной на шаге 6.3, раствором Хогланда без радиоактивной метки перед сбором 100 мкл аликвот. Обязательно измерьте объем Hoagland's, добавленного в каждую колбу, чтобы сравнить скорость эвапотранспирации от каждого раствора. После первых 6-8 часов время отбора проб может увеличиваться до каждых 12-24 часов.
    ПРИМЕЧАНИЕ: Этот шаг может длиться несколько дней, если это необходимо, но обязательно ежедневно отслеживайте радиоактивность в аликвотах по мере продвижения эксперимента.
  6. Дополнительно: Для контроля экссудации в течение периода погони перенесите растение и крышку пробирки Falcon в колбу с 50 мл свежего раствора Хогланда (не содержащего 14C-меченного соединения) и удаляйте аликвоту 100 мкл каждые 2 ч в течение первых 6-8 ч, а затем с интервалом 24 ч с начала эксперимента.
    Примечание: Чтобы отличить пассивную диффузию от активной экссудации соединения из корней растений, можно добавить активный ингибитор транспорта, такой как циклоспорин А, в концентрации 20 мкМ.
  7. Измерьте количество радиоактивных веществ в каждой аликвоте, собранной между этапами 6.1-6.6, с помощью жидкостного сцинтилляционного счетчика.

7. Люминофорная визуализация растений

  1. Промойте корни в течение 15 минут в 0,5-кратном растворе Хогланда без радиоактивной метки, чтобы удалить слабо связанный радиоизотоп.
  2. Соберите 100 мкл раствора для промывки для подсчета жидкого сцинтилля.
  3. Взвесьте растения или недревесный растительный материал, чтобы определить свежую массу.
  4. Высушите растительный материал с помощью гелевой сушилки на листе фильтровальной бумаги с этикеткой при температуре 50 °C под вакуумом в течение 2 часов, затем оставьте сушиться на ночь при комнатной температуре.
    ПРИМЕЧАНИЕ: После высыхания растения могут храниться в течение длительного периода времени (4-6 месяцев), а визуализация может быть выполнена позже с минимальным падением радиоактивного сигнала.
  5. Очистите люминофорный экран, подставив его на яркий свет люминофорного ластика в течение 15 минут.
  6. Нанесите 2-10 μл раствора радиоактивной метки с известной радиоактивностью на лист фильтровальной бумаги и дайте ему высохнуть при комнатной температуре в течение ночи.
    ПРИМЕЧАНИЕ: Здесь используются стандарты с радиоактивностью: 67, 33, 17, 8, 4 и 2 Бк, но они могут быть изменены в соответствии с интенсивностью сигнала от образцов растений.
  7. Поместите люминофорный экран поверх высушенных образцов растений и радиоактивных эталонов в темноте или в закрытом непрозрачном контейнере и подвергните их воздействию не менее 24 часов.
    ПРИМЕЧАНИЕ: Если изображение недоэкспонировано или переэкспонировано, отрегулируйте время экспозиции соответствующим образом.
  8. Визуализируйте экраны с помощью лазерной сканирующей люминофорной системы визуализации с разрешением 50 мкм.
  9. Анализ интенсивности и распределения сигнала изображения люминофора с помощью программного обеспечения ImageJ11.
    1. Шаги ImageJ: Откройте изображение, выбрав «Файл» > «Анализировать > устанавливать измерения...» Выберите Площадь и среднее значение серого > OK. Выберите инструмент «Выделение фигуры », который лучше всего подходит к ткани. Нажмите и перетащите изображение, чтобы выделить интересующую область. Нажмите Ctrl + M. Скопируйте значение области и среднего серого в таблицу.
  10. Преобразуйте средние значения серого в Bq, используя радиоактивные стандарты на стандартной кривой.
  11. Рассчитайте общую активность в растительных тканях (интегрированные плотности) с помощью следующего уравнения:
    Интегрированная плотность (Бк) = (Средний Бк ткани (Бк/см2) - Фон (Бк/см2)) * Площадь (см2)
    1. Необязательно: Преобразуйте изображение в оттенках серого в шкалу интенсивности цвета с помощью программного обеспечения ImageJ11.

Доступ ограничен. Войдите в систему или начните пробный период, чтобы просмотреть этот контент.

Результаты

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Процедура поглощения 14C-label применима к различным видам растений, не относящимся к Arabidopsis, включая Salix interior, Elymus trachycaulus (Link) Gould ex Shinners и виды водно-болотных угодий, такие как Juncus balticus10,12. Тем не менее, для репрезентативных целей мы представляем результаты по экотипу Arabidopsis Columbia-7 (Col-7). Ранее мы продемонстрировали, что загрязнители окружающе...

Доступ ограничен. Войдите в систему или начните пробный период, чтобы просмотреть этот контент.

Обсуждение

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

В последние десятилетия фиторемедиация привлекает внимание как пассивный, экономичный и экологически чистый метод очистки промышленных отходов и загрязненных территорий1. Выявление видов растений с повышенным поглощением загрязняющих веществ и понимание молекулярных процессов, регулирующих поглощение органических молекул, может улучшить стратегии фиторемедиации. В отличие от других косвенных методов, описанный здесь метод захвата радиоактивных меток и визуализации...

Доступ ограничен. Войдите в систему или начните пробный период, чтобы просмотреть этот контент.

Раскрытие информации

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Авторы заявляют об отсутствии конфликта интересов.

Благодарности

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Эта работа была поддержана Genome Canada в рамках гранта Large Scale Applied Research Project (LSARP) (#18207) в партнерстве с Genome Alberta и Genome Quebec. Совместное финансирование было предоставлено правительством Альберты через Alberta Innovates и Министерство занятости, экономики и торговли.

Доступ ограничен. Войдите в систему или начните пробный период, чтобы просмотреть этот контент.

Материалы

Список материалов, использованных в этой статье
ИмяКомпанияКаталожный номерКомментарии
Модифицированная смесь базальных солей HoaglandЛаборатории фитотехнологийН353Содержит сульфат железа
АгарБиоШопАГР001
MES (2-(N-морфолино)этансульфоновая кислота)БиоШопМЭС555
pH-метрMettler ToledoСистема FiveEasy
МетанолБиоШопМЕТ302
12C-адамантана карбоновая кислотаСигма Олдрич106399
14C-адамантана карбоновая кислотаViTraxПользовательский синтез
Колбы Эрленмейера 125 млВВР30623-174
Пробирки Falcon 50 млВВРCA21008-940
Микроцентифугальные пробиркиВВР87003-294
Камеры для выращивания растенийКонвирон
Коробки для чаевыхДиаМедDIATEC530-8376
Сумка-тоут Rubbermaid Roughneck 3 GalАмазонкаB0B3345MYH
Фильтровальная бумагаВВРCA28320-020
Чашка ПетриВВР11019-566
Шейкер с держателями для колбФорма НаучнаяМодель 4516
Сцинтилляционный коктейльResearch Products International111195
Сцинтилляционные флаконыВВР10014-296
Сцинтилляционный счетчикБекман КоултерЛС 6000ИКИспользуемые флаконы будут зависеть от вашего счетчика сцинтилляции
Гелевая сушкаБио-РадМодель 583
Лазерный сканирующий люминофорный имидж-сканерБио-РадМолекулярный имиджер FX

Ссылки

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,
  1. Kafle, A., et al. Phytoremediation: mechanisms, plant selection and enhancement by natural and synthetic agents. Environ Adv. 8, 100203(2022).
  2. Reis, P. C. J., et al. Microbial degradation of naphthenic acids using constructed wetland treatment systems: metabolic and genomic insights for improved bioremediation of process-affected water. FEMS Microbiol Ecol. 99 (12), fiad153(2023).
  3. Saleem, M. H., Zhu, H., Liu, L. Synergistic and sustainable impact of reducing nitrogen fertilizer on growth, yield, and quality of ramie (Boehmeria nivea L.). Plant Prod Sci. 25 (3), 289-297 (2022).
  4. Kamal, A., et al. Ball-milled synthesis of maize biochar-ZnO nanocomposite (MB-ZnO) and estimation of its photocatalytic ability against different organic and inorganic pollutants. J Saudi Chem Soc. 26 (3), 101445(2022).
  5. Abhilash, P. C., Jamil, S., Singh, N. Transgenic plants for enhanced biodegradation and phytoremediation of organic xenobiotics. Biotechnol Adv. 27 (4), 474-488 (2009).
  6. Isebrands, J. G., Richardson, J. Poplars and willows: trees for society and the environment. , CAB International and FAO. Boston, USA. (2014).
  7. Sandermann, H., Diesperger, H., Scheel, D. Metabolism of xenobiotics by plant cell cultures. Plant tissue culture and its biotechnological application. , (1977).
  8. Mendes, K. F., Martins, B. A. B., Reis, F. C., Dias, A. C. R., Tornisielo, V. L. Methodologies to study the behavior of herbicides on plants and the soil using radioisotopes. Planta Daninha. 35, e017154232(2017).
  9. Conn, S. J., et al. Protocol: optimising hydroponic growth systems for nutritional and physiological analysis of Arabidopsis thaliana and other plants. Plant Methods. 9 (1), 4(2013).
  10. Alberts, M. E., et al. Detection of naphthenic acid uptake into root and shoot tissues indicates a direct role for plants in the remediation of oil sands process-affected water. Sci Total Environ. 795, 148857(2021).
  11. Schindelin, J., et al. Fiji: an open-source platform for biological-image analysis. Nat Methods. 9 (7), 676-682 (2012).
  12. Alberts, M. E., et al. The effect of rhizosphere pH on removal of naphthenic acid fraction compounds from oil sands process-affected water in a willow hydroponic system. Sci Total Environ. 948, 174720(2024).
  13. Leishman, C., et al. The effect of oil sands process-affected water and naphthenic acids on the germination and development of Arabidopsis. Chemosphere. 93 (2), 380-387 (2013).
  14. Widdup, E. E., et al. Identification of detoxification pathways in plants that are regulated in response to treatment with organic compounds isolated from oil sands process-affected water. Chemosphere. 139, 47-53 (2015).
  15. Alberts, M. E., Chua, G., Muench, D. G. Exposure to naphthenic acids and the acid extractable organic fraction from oil sands process-affected water alters the subcellular structure and dynamics of plant cells. Sci Total Environ. 651, 2830-2844 (2019).
  16. Martinière, A., et al. Uncovering pH at both sides of the root plasma membrane interface using noninvasive imaging. Proc Natl Acad Sci U S A. 115 (25), 6488-6493 (2018).

Доступ ограничен. Войдите в систему или начните пробный период, чтобы просмотреть этот контент.

Перепечатки и разрешения

Запросить разрешение на повторное использование текста или иллюстраций этой статьи JoVE

Запросить разрешение

Теги

PhytoremediationPlant UptakeOrganic ContaminantsRadiolabeled CompoundsHydroponic AssayLiquid ScintillationPlant MetabolismCompound TranslocationEnvironmental Remediation
Видео скоро будет доступно

Похожие статьи