$$\rightleftharpoonup{xx}$$
$$\longleftharp{xx}$$,
$$\longrightharp{xx}$$,
Это экспериментальное исследование было проведено с одобрения Институционального комитета по уходу за животными и их использованию (номер одобрения: LL-240077).
Культивирование клеток и медикаментозное вмешательство
Шванновские клетки крыс (СК) культивировали в шванновской клеточной среде, состоящей из базальной среды, 5% фетальной бычьей сыворотки, 1% добавки для роста шванновских клеток, 1% пенициллина и 1% стрептомицина. Все клетки содержались в атмосфере с содержаниемСО2 5% при 37 °C. Когда им позволили вырасти до плотности 70-80%, СК разделили на четыре группы (n = 5 в группе): (1) группа НК; (2) группа NC+CoCl2 ; (3) группа NC+CoCl2+Mus; (4) NC+CoCl2+siIL-1R1+Mus группа.
Известно, что хлорид кобальта (CoCl2), часто используемый агент для имитации гипоксии, вызывает реакции, сходные с реакцией на гипоксию, такие как препятствующая деградация и стабилизация индуцируемых гипоксией факторов и накопление белка HIF-1α15. Согласно модифицированному методу на основе Osuru et al.17, в группах NC+CoCl2 и NC+CoCl2+Mus СК культивировали в Schwann Cell Medium с добавлением 240 мкМ CoCl2 в течение 8 ч при атмосферных условиях 95% воздуха и 5%CO2 при 37 °C в увлажненном инкубаторе (21%O2). Затем в группах Mus применяли вмешательство в виде 1,25 мкг/мл Mus в течение дополнительных 24 ч. Между тем, в группе NC+CoCl2+siIL-1R1+Mus СК сначала обрабатывали инфекцией миРНК в течение 24 ч, затем непрерывно культивировали 240 мкМ CoCl2 в течение 8 ч, после чего проводили вмешательство 1,25 мкг/мл Mus в течение дополнительных 24 ч, как и в предыдущих группах. Блок-схема экспериментального процесса показана на рисунке 1.
Анализ жизнеспособности клеток
Жизнеспособность СК определяли с помощью реагента для анализа Cell Counting Kit-8 (CCK-8) в соответствии с инструкцией производителя. Культивируемые СК с плотностью 5 × 105 клеток /лунку высевали в 96-луночный клеточный планшет со 100 мкл полной питательной среды при 37 °C в увлажненной атмосфере с 5%CO2 . Когда слияние достигало 70-80%, в каждую лунку добавляли по 10 мкл раствора CCK-8, и планшеты инкубировали в течение 1 ч при 37 °С. Оптическую плотность (OD) 96-луночных планшетов измеряли на длине волны 450 нм с помощью считывателя микропланшетов, а также рассчитывали жизнеспособность клеток. Клетки были разделены на четыре группы: группа NC+CoCl2 , группа NC+CoCl2+Mus и группа NC+CoCl2+siIL-1R1+Mus. Результаты эксперимента корректировались с помощью пустой лунки (среда+раствор CCK8). Выживаемость клеток = [(экспериментальная группа - глухая лунка)/(группа НК - глухая лунка)] × 100%.
Трансфекция миРНК
Трансфекцию проводили в соответствии с инструкциями производителя коммерческого реагента для трансфекции миРНК/микроРНК in vitro с использованием синтетических дуплексов миРНК siIL-1R1 (AUAGUCUUGGAUUUUCUCCAA, GGAGAAAAUCCAAGACUAUGA) в концентрации 100 нг/мкл в течение 24 ч. После трансфекции siIL-1R1 экспрессию siIL-1R1 оценивали путем проведения анализа RT-qPCR через 24 ч после трансфекции18, и эффективность должна быть выше 80%
Иммуноферментный анализ (ИФА)
Посткультуральные надосадочные жидкости собирали и центрифугировали в групповых условиях (2950 г, 20 мин, 25 °C). Внеклеточные уровни IL-1β, TNF-α, АФК и СОД определяли с помощью иммуноферментного анализа в соответствии с инструкциями набора. Окончательные показания поглощения на длине волны 450 нм были получены с помощью считывателя микропланшетов.
Выделение РНК и количественная ПЦР в реальном времени (ОТ-кПЦР)
Следуя инструкциям производителя, общая РНК была экстрагирована из культивируемых клеток с помощью реагента TRisol. Гены-мишени (IL-1β, TNF-α, S-100b, IL-1R1) амплифицировали в 20 мкл реакций смеси SYBR qPCR в течение 40 циклов на ПЦР-инструменте. Для нормализации данных использовался β-актин, а специфичность ПЦР была проверена с помощью анализа кривой плавления. С помощью метода 2−ΔΔCt количественно оценивали относительную экспрессию пяти независимых образцов, проанализированных в трех экземплярах. Грунтовки приведены в таблице 1.
Вестерн-блот
После обработки СК из всех опытных групп инкубировали в течение 24 ч и собирали. Общий белок экстрагировали с помощью набора для экстракции общего белка. Лизаты белков комбинировали с додецилсульфатом натрия в полиакриламидном геле электрофорезом (SDS-PAGE) в загрузочном буфере, денатурированном при 98 °С в течение 5 мин и разделенным (20 мкг на полосу) на 10-12% SDS-полиакриламидных гелях. Растворенные белки электрофоретически переносили на мембраны из поливинилиденфторида (PVDF). Мембраны блокировали 5% обезжиренным сухим молоком в течение 60 мин при комнатной температуре, затем инкубировали в течение ночи при 4 °C в объеме 6 мл со следующими первичными антителами: антитело против HIF-1α (1:1000), антитело против GAPDH (1:1000), антитело против IL-1R1 (1:1000), антитело против C-JUN (1:1000), антитело против GDNF (1:1000), антитело против IRAK1 (1:1000), антитело против IKK (1:1000), антитело против p65 (1:800), антитело против p50 (1:900), антитела против IκB-α (1:900) и антитела против β-актина (1:1000). После промывки мембраны зондировали вторичными антителами, конъюгированными с пероксидазой хрена (HRP) в течение 60 мин при 25 °С. Белковые сигналы были обнаружены с помощью Image Studio Digits Ver 4.0. Интенсивность полос была количественно определена с помощью программного обеспечения ImageJ и нормализована до экспрессии β-актина и GAPDH. Было проведено три независимых эксперимента.
Иммунофлюоресценция
Локализацию IL-1R1 в СК оценивали по Zhao et al.19. Соберите клетки во время логарифмической фазы роста путем трипсинизации, повторно суспендируйте их в свежей полной среде и тщательно растирайте для получения однородной одноклеточной суспензии. Высадите клетки на культуральные планшеты, содержащие стерильные покровные листы. Как только клетки достигнут полного слияния, промойте их 1-2 раза фосфатно-солевым буфером (PBS), тщательно удалите покровные листы и зафиксируйте адгезивные клетки 4% параформальдегидом в PBS на 10 минут, пропитайте 0,05% Triton X-100 (10 минут) и заблокируйте 5% козьей сывороткой (1 час). В первичной инкубации использовался кролик против крыс IL-1R1 mAb. После промывки PBS образцы инкубировали с FITC-конъюгированным козьим антикроличьим IgG в течение 2 ч при комнатной температуре. Добавьте водорастворимые монтажные агенты в защитное стекло для монтажа. Иммуномеченые клетки визуализировали и количественно оценивали с помощью флуоресцентного микроскопа с длиной волны возбуждения 492 нм и длиной волны излучения 520 нм.
Ультраструктурный анализ
В соответствии с протоколом19 Zhao et al., СК фиксировали в 2,5% глутаральдегиде и после фиксации в течение ночи при 4°C в 1% тетраоксиде осмия. Образцы подвергались серии дегидратации этанола/ацетона. Ультратонкие срезы (80 нм) окрашивали уранилацетатом и цитратом свинца перед ультраструктурным исследованием с помощью просвечивающего электронного микроскопа.
Утилизация опасных химических реагентов
Среда и растворы, содержащие CoCl2 , собираются в специальный контейнер для отходов из тяжелых металлов. Все одноразовые материалы, вступившие в контакт с вышеупомянутыми жидкостями, включая наконечники для пипеток, центрифужные пробирки и перчатки, классифицируются как опасные отходы тяжелых металлов и передаются лицензированной компании по управлению опасными отходами, одобренной соответствующими органами, для надлежащей утилизации. Выбросьте отработанный раствор параформальдегида в специальный контейнер для отходов альдегида. Использованные расходные материалы должны собираться как отходы альдегида и перерабатываться той же лицензированной компанией по обращению с опасными отходами.
Статистический анализ
Многогрупповые сравнения были проанализированы с помощью одностороннего ANOVA с апостериорным тестом Тьюки в GraphPad Prism 8.0. Статистическая значимость была определена как P < 0,05. Данные представлены в виде среднего ±± стандартного отклонения (SD).