Все клинические процедуры проводились в соответствии с Хельсинкской декларацией и были одобрены Комитетом по этике Шанхайской больницы Чанхай (Approval No. CHEC2022-156). Письменное информированное согласие было получено от всех участников. Эксперименты на животных были одобрены Комитетом по этике Чанхайского медицинского колледжа (Одобрение No. CHEC2022-156) и соответствовали национальным стандартам ухода за лабораторными животными.
Клинические особенности
Набор и группировка пациентов
С августа 2022 года по март 2023 года из Центра репродуктивной медицины Первого аффилированного госпиталя Военно-морского медицинского университета и амбулаторного отделения больницы Юэян Шанхайского университета традиционной китайской медицины было набрано 78 пациентов с диагнозом «Синдром дефицита почек-инь10 » и обратившихся за АРТ. Участники были случайным образом распределены либо в контрольную группу, либо в группу лечения (по 39 случаев в каждой) с использованием генерации случайных чисел SPSS 23.0.
Критерии диагностики
Западный медицинский диагноз последовал заключению Комитета Американского общества репродуктивной медицины (ASRM) 2020 года о показателях овариального резерва11. Критерии включали ФСГ ≥ 10 МЕ/л, эстрадиол ≥ 80 пг/мл, количество антральных фолликулов (AFC) < 7 и АМГ < 0,5-1,1 нг/мл. Диагноз синдрома почечно-иньского дефицита проводился в соответствии с Гинекологией традиционной китайской медицины12 и Критериями диагностической эффективности синдромов ТКМ13.
Критерии включения и исключения
Критериями включения были запланированы ЭКО/ИКСИ-ЭТ с использованием протокола антагонистов; плохой ответ яичников в анамнезе (< 5 извлеченных ооцитов); возраст 20-40 лет; соответствие критериям ДОР и синдрома ТКМ; и подписанное информированное согласие. Критерии исключения включали патологию эндометрия (полипы, туберкулез, дисплазия, рак), мальформацию матки, сопутствующие заболевания (диабет, волчанка), недавнюю гормональную терапию (< 3 месяцев), хирургические операции на органах малого таза в анамнезе, хромосомные аномалии или лекарственную аллергию. Критерии элиминации применялись в случае отклонения протокола, нежелательных явлений, отмены или спонтанного зачатия в течение 2 недель после включения в исследование.
Медикаментозный метод
Обе группы прошли базовую оценку на 2-3-й день менструального цикла с помощью трансвагинального ультразвукового исследования и гормонального тестирования. Контрольная группа получала схему приема антагонистов: рекомбинантный ФСГ или человеческий менопаузальный гонадотропин, начальная доза 225 МЕ/сут внутримышечно в течение 5 дней с последующей коррекцией дозы в зависимости от роста фолликулов. Когда диаметр ведущего фолликула превышал 12 мм, начинали прием антагониста ГнРГ (0,125 мг/сут подкожно) и продолжали до триггера. Когда ≥ 1 фолликул достигал 18 мм, ≥ 2 достигал 17 мм, или ≥ 3 достигал 16 мм, овуляцию запускали с 250 мкг рекомбинантного ХГЧ с последующим извлечением ооцитов через 34-36 ч.
Группа лечения следовала тому же протоколу с добавлением отвара Янцзин Чжунъюй (YZD), вводимого перорально 2 раза в день (утром и вечером), по одному отвару в день, начиная со 2-3 дня менструального цикла до триггерного дня. Клиническая формула содержала Rehmannia 12 г, Paeonia lactiflora 12 г, Cornus officinalis 10 г и Angelica sinensis 12 г.
Индикаторы наблюдения
Клинические исходы включали исходные параметры возраста, ИМТ (рассчитанный как вес (кг)/рост² (м²)), продолжительность бесплодия, ФСГ, доза/продолжительность гонадотропина, баллы по синдрому почечно-иньского дефицита, количество антральных фолликулов (оценено с помощью трансвагинального УЗИ, 2-9 мм в диаметре), извлеченные ооциты, ооциты метафазы II (MII) (идентифицированы при заборе ооцитов), оплодотворенные эмбрионы, спайады, высококачественные эмбрионы (определены стандартными лабораторными критериями эмбриологии). и частота клинической беременности, которая определялась как наличие гестационного мешка на УЗИ на 6-7 неделе беременности.
Подопытные животные
Здесь 30 самок крыс класса SPF Sprague-Dawley (в возрасте 8 недель, 160-200 г) были акклиматизированы в контролируемых условиях (23 ± 2 °C, влажность 40%-45%, 12-часовой цикл света/темноты) с пищей и водой ad libitum .
Приготовление лекарств
YZD готовили из Rehmannia 30 г, Angelica 15 г, Paeonia lactiflora 15 г и Cornus officinalis 15 г. Травы отваривали в воде, фильтровали через фильтр на 200 меш и концентрировали при пониженном давлении при 70 °C. Конечные растворы для низких, средних и высоких доз составляли 0,34 г/мл, 0,68 г/мл и 1,35 г/мл, что соответствует 0,5x, 1,0x и 1,2x клинической дозы YZD. Отвары хранили при температуре 4 °С.
Моделирование и группировка
Модель DOR индуцировали путем внутрибрюшинного введения триптеригийгликозидов (40 мг/кг ежедневно в течение 15 дней). Крысы были случайным образом распределены по холостым (n = 6), модельным (n = 6) и группам лечения YZD (низкая, средняя и высокая дозы; n = 6 каждая). Введение зонда (10 мл/кг массы тела) проводили 1 раз в сутки, начиная с первого дня введения гликозидов триптеригия и продолжая в течение 15 дней.
Цитология влагалища
Стадии эстрального цикла оценивали с помощью вагинальной эксфолиативной цитологии. Мазки из влагалища собирали один раз в день (08:00-10:00) стерильными ватными тампонами, разведенными в 30 мкл физиологического раствора, и исследовали под световым микроскопом при 100-кратном увеличении. Период наблюдения длился 15 дней подряд. Индекс нормального эстрального цикла определялся как доля крыс, демонстрирующих регулярные 4-5-дневные эстральные циклы в течение этого периода.
Анализы на гормоны
Цельную кровь собирали под наркозом с помощью пункции сердца в конце 15-дневного периода лечения, давали свернуться при комнатной температуре в течение 30 минут и центрифугировали при 1000 х г в течение 15 минут при 4 °C для получения сыворотки. Уровни Е2 и ФСГ измеряли методом ИФА в соответствии с инструкциями производителя.
Гистология яичников
Ткань яичников собирали сразу после эвтаназии путем хирургического удаления обоих яичников, промывали в холодном физрастворе для удаления крови, а затем фиксировали в 4% параформальдегиде при 4 °С в течение 24-48 ч. Ткани обезвоживали в сортированном этаноле, очищали в ксилоле, погружали в парафин и срезали при давлении 4-5 мкм. Срезы окрашивали гематоксилином и эозином, обезвоживали, очищали и монтировали.
Статистический анализ
Данные были проанализированы с помощью SPSS 26.0. Нормальные переменные выражали как среднее значение ± SD и сравнивали с помощью t-критерия; ненормальные переменные в качестве медианы (IQR) и сравнения с помощью U-критерия Манна-Уитни. Категориальные переменные выражались в % и сравнивались с помощью критерия хи-квадрат. p < 0,05 считался статистически значимым. Для согласованности те же статистические методы были применены к анализу фигур (без отдельного описания t-критерия Стьюдента).
Безопасность и утилизация отходов
Параформальдегид, ксилол и гликозиды триптеригиума обрабатывались в сертифицированных вытяжных шкафах с перчатками, защитными очками и лабораторными халатами; Разливы и загрязненные одноразовые материалы собирались в контейнеры с маркировкой опасных отходов и утилизировались в соответствии с институциональной СОП по биобезопасности. Все процедуры с использованием параформальдегида, ксилола и гликозидов триптеригиума выполнялись в вытяжных шкафах с соответствующими средствами индивидуальной защиты (перчатки, халаты, защитные очки). Химические отходы и туши животных были утилизированы в соответствии с институциональными рекомендациями по биобезопасности.