$$\rightleftharpoonup{xx}$$
$$\longleftharp{xx}$$,
$$\longrightharp{xx}$$,
Исследование проведено в соответствии с Хельсинкской декларацией и одобрено Институциональным этическим комитетом Центральной народной больницы Хуэйчжоу (Одобрение No 2022-015). Это исследование не было зарегистрировано как клиническое исследование из-за ретроспективного дизайна. Информированное согласие было отклонено из-за ретроспективного характера анализа, и все данные пациентов были деидентификационированы. Регенты и используемое оборудование указаны в Таблице материалов.
1. Дизайн исследования и отбор пациентов
В качестве ретроспективного многоцентрового исследования мы признаём возможность выборочного искажения. Для снижения этой проблемы идентификация пациентов проводилась по последовательному протоколу регистрации из проспективных реестров инсульта в каждом участвующем центре. Все пациенты, обращавшиеся с острым инфарктом мозга в период исследования (январь 2022 — январь 2025 года), прошли скрининг на соответствие, а те, кто соответствовал критериям включения, были зачислены последовательно. Данные были собраны из трёх учреждений: Народной больницы Шаосин Шанъю, больницы Ран Ран Шоу и центральной народной больницы Хуэйчжоу. Были заключены соглашения о обмене данными между всеми участвующими центрами для обеспечения надлежащего контроля и доступа к данным.
Для работы с отсутствующими данными был реализован метод множественной импутации с использованием цепочных уравнений для переменных с отсутству <5%. Для переменных с отсутствующими данными >5% применялся анализ полного случая с прозрачным отчётом о закономерностях отсутствующих. Критические переменные, включая CYP2C19 генотип, исходный NIHSS и трёхмесячный mRS, содержали полные данные для всех участников. Возможные замешательства были устранены путём многомерной корректировки в наших статистических моделях, включая известные прогностические факторы, такие как возраст, исходная степень тяжести инсульта, сосудистые факторы риска и сопутствующие медикаменты. В частности, были собраны и скорректированы данные о сопутствующих лекарствах (антитромбоцитах, статинах, антигипертензивах) в анализах.
- Критерии включения
Критерии включения были следующими: (1) Диагноз острого инфаркта мозга, подтверждённый с помощью визуализации и клинических критериев согласно Китайским руководствам по диагностике и лечению острого ишемического инсульта; (2) Первый в истории инсульт с временем от начала до поступления <72 часа; (3) лечение бутилфталидом (0,1 г на капсулу) в дозе 0,2 г три раза в день на голодный желудок, начатое в течение 24 часов после приёма; (4) Не было предыдущей тромболитической или антикоагулянтной терапии.
- Критерии исключения
Критерии исключения были следующими: (1) Сопутствующие психиатрические расстройства или когнитивные нарушения; (2) тяжёлые заболевания печени, почек или сердца; (3) Гиперчувствительность к исследуемому препарату; (4) Системные воспалительные или аутоиммунные заболевания. Пациенты были распределены на группы с хорошим прогнозом (mRS ≤2) и плохим прогнозом (mRS ≥3) на основе трёхмесячных модифицированных баллов по шкалеРанкина 7. Процесс включения пациентов показан на рисунке 1.
Соблюдение терапии бутилфталидом пациентом отслеживалось через прямое наблюдение за введением лекарств во время госпитализации, подсчёт таблеток и обзор дневника лекарств во время повторных приёмов, структурированные телефонные интервью с интервалом в 2 недели для оценки соблюдения требований и побочных эффектов, а также проверку записей о повторном рецепте в аптеках для амбулаторных пациентов. Пациенты с соблюдением <80% были исключены из анализа (n=7). Конечная точка последующей процедуры в течение 3 месяцев была выбрана на основе установленных стандартов исследования результатов инсульта, поскольку mRS через 90 дней после инсульта широко признаётся основной конечной точкой, охватывающей критический период восстановления.
2. Сбор клинических данных
Данные систематически собирались с использованием электронных форм отчётов о случаях, охватывающих пять областей: демографические характеристики (возраст, пол, индекс массы тела, Таблица 1), сосудистые факторы риска (гипертония, сахарный диабет, история курения, история употребления алкоголя), клиническая картина (место инфаркта, исходный балл NIHSS), лабораторные параметры и детали лечения. Биомаркеры крови измерялись следующим образом:
- Липидный профиль (TC, TG, LDL-C, HDL-C)
Анализ проводился с помощью автоматизированного биохимического анализатора с диапазоном 0–20 ммоль/л для ТС, 0–10 ммоль/л для ТГ, 0–15 ммоль/л для ЛПНП и 0,5–2,0 ммоль/л для ЛПВП.
- Сыворотка гомоцистеина (Hcy)
Измеряется по ИФК (диапазон обнаружения 5–50 мкмоль/л, коэффициент вариации <5%). Образцы хранили при -80 °C в течение 2 часов после сбора, чтобы избежать разрушения.
3. CYP2C19 генотипирование
- Сбор образцов и экстракция ДНК
Утром из срединной кубитальной вены была взята венозная кровь натощак (5 мл). После 30 минут свертывания при комнатной температуре образцы центрифугировали при 1600 × г в течение 10 минут при 4 °C с использованием высокоскоростной центрифугы для выделения сыворотки. Геномная ДНК была извлечена из 300 мкл сыворотки согласно протоколу производителя. Кратко образцы инкубировали с буфером лизиса 300 мкл при 56 °C в течение 10 минут, после чего добавляли 100 мкл абсолютного этанола. Смесь была перемещена в колонны очистки и центрифугирована при 12 000 × г в течение 1 минуты при комнатной температуре. ДНК была элюирована с помощью предварительно нагретого (70 °C) элюционного буфера с 50 мкл после двух этапов промывания с буфером по 500 мкл каждый, при центрифугировании при 12 000 × г в течение 1 минуты после каждой промывки. Итоговая концентрация ДНК была отрегулирована до 50–100 нг/мкл с помощью спектрофотометра и хранена при -20 °C.
- Генотипирование ПЦР в реальном времени
CYP2C19 генотипирование проводилось с помощью ПЦР в реальном времени. Смесь реакции 20 мкл состояла из 10 мкл 2× TaqMan Master Mix, 1 мкл смеси праймер-зонд, 2 мкл ДНК-шаблона и 7 мкл воды без нуклеазы. Условия термического цикла были установлены следующим образом: начальная денатурация при 95 °C в течение 30 секунд, затем 40 циклов денатурации при 95 °C в течение 5 секунд и совместное отжиг/продолжение при 60 °C в течение 34 секунд. Данные о флуоресценции собирались на этапе отжига/расширения.
- Подтверждение генотипа и контроль качества
Генотипические вызовы были подтверждены с помощью секвенирования второго поколения Hi-SNP с покрытием 100×. Для диссонантных результатов (n=3) в качестве резервного метода использовался анализ полиморфизма длины фрагментов рестрикции: продукт ПЦР 20 мкл был инкубирован с 1 мкл ферментом рестрикции HpyCH4V и соответствующим буфером 4 мкл при 37 °C в течение 1 часа, после чего проводилась сепарация с помощью электрофореза агарозного геля при 100 В в течение 45 минут.
Были введены строгие меры контроля качества. Все образцы обрабатывались в дублировании с помощью слепого репликационного тестирования; внутренние контроли (известные генотипы) включались в каждый запуск ПЦР; согласованность между результатами секвенирования ПЦР в реальном времени и Hi-SNP составила 100%; случайно отобранные выборки (10%) отправлялись в независимую лабораторию для валидации, обеспечивая 100% совпадение; Частота звонков превысила 99,5% при минимальном балле качества генотипа Q30.
- Классификация метаболических фенотипов
Метаболические фенотипы классифицировались на основе CYP2C19 генотипа следующим образом: Плохие метаболизаторы (*2/*2, *2/*3, *3/*3); Промежуточные метаболизаторы (*3/*17, *2/*17, *1/*2, *1/*3); Быстрые метаболизаторы (*1/*1). Эта трёхуровневая схема классификации была использована для согласованности с региональными клиническими лабораторными практиками. Частота аллеля *17 и распределение генотипов внутри группы IM подробно описаны в разделе «Результаты».
4. Статистический анализ
Статистический анализ проводился с использованием версии SPSS 25.0. Категориальные данные были выражены как [n (%)] и сравнивались с помощью χ2 тестов (с поправкой Йейтса для малых выборок). Непрерывные переменные проверялись на нормальность с помощью теста Шапиро-Вилка; нормально распределенные данные представлялись как средние ± стандартного отклонения и анализировались с помощью независимых t-тестов, тогда как ненормальные данные анализировались с помощью тестов Mann-Whitney U.
Мультиколлинеарность оценивалась с использованием толерантности (≥0,1) и коэффициента нарастания дисперсии (VIF <10). Логистический регрессионный анализ (с использованием Analyze → Regression → Binary Logistic menu path in SPSS) был использован для выявления независимых прогностических факторов, с критериями входа и выхода соответственно в P <0,05 и P >0,10. Переменные, включённые в модель, включали уровни Hcy (непрерывный), исходный балл NIHSS (непрерывный), гипертонию (категорический) и CYP2C19 метаболический фенотип (категорический, с экспресс-метаболизатором в качестве ориентира). Для оценки калибровки модели был проведён тест на пригодность Хосмера-Лемешоу. Двухсторонний P <0,05 считался статистически значимым.
Размеры эффектов рассчитывались следующим образом: для непрерывных переменных коэффициент Коэна d вычислялся с помощью функции Analyze < Compare MeanIndependent-Samples T Test с включенным дополнительным вычислением размера эффекта; для категориальных переменных коэффициент phi был получен из результатов теста χ2 в разделе Анализ описательных статистическихперекрестных таблов с выбором Phi и V Крамера в настройках статистики.