Все эксперименты на животных проводились в соответствии с этическими стандартами для подопытных животных, установленными Отделом науки и технологий Сычуаньского высшего института традиционной китайской медицины (Одобрение No: 2023DS01). Используемые реагенты и оборудование приведены в Таблице материалов.
1. План и методика проведения эксперимента
- Животные
Тридцать шесть самцов 12-недельных крыс CD-Sprague-Dawley содержались и получали неограниченное питание в течение всего экспериментального периода. В окружающей среде поддерживалась температура 20-25 °C и уровень влажности 50%-60%, с 12-часовым циклом свет/темнота.
- Групповой дизайн
После недели адаптивного кормления крысы были случайным образом распределены либо в контрольную группу (Con, n = 6), либо в группу с интенсивными упражнениями (EE, n = 30). Крысы в группе ЭЭ проходили адаптационную подготовку путем бега со скоростью 10 м/мин в течение 15 мин на беговой дорожке в гору с наклоном 10 градусов в течение трех дней. После адаптивной тренировки группа ЭЭ была дополнительно разделена на пять временных подгрупп: 0 ч, 6 ч, 12 ч, 24 ч и 48 ч после изнурительных упражнений.
- Процедура вмешательства
Крысы в контрольной группе не занимались физическими упражнениями, в то время как крысы в группе ЭЭ подвергались изнурительному бегу на беговой дорожке в гору под углом наклона 10 градусов (рис. 1А). В соответствии с Бедфордским протоколом9 нагрузка была разделена на три уровня: Уровень 1 со скоростью 10 м/мин в течение 15 минут, Уровень 2 со скоростью 15 м/мин в течение 15 минут и Уровень 3 со скоростью 20 м/мин до истощения (Рисунок 1B). Истощение определяли, когда крыса больше не могла бегать и оставалась застрявшей на дорожке три раза в течение менее 1 минуты10 минут, несмотря на неоднократную электрическую (150 В, переменный ток 0,5 мА) и звуковую стимуляцию (70 дБ).
Крысы были умерщвлены путем чрезмерного внутрибрюшинного введения 3% пентобарбитала натрия (200 мг/кг) в указанное время (0 ч, 6 ч, 12 ч, 24 ч и 48 ч после изнурительных упражнений). Кожа и подкожные ткани пяточной кости были тщательно рассечены, а ахиллово сухожилие было разрезано на 2 см выше пяточной кости офтальмологическими ножницами. Правая пяточная кость (включая прикрепленное ахиллово сухожилие) была сохранена в 4% параформальдегиде для гистопатологического исследования и иммуногистохимического исследования. Кроме того, три случайных образца с левой стороны были сохранены в 2% растворе параформальдегида-2,5% глутаральдегида для электронной микроскопии с целью изучения ультраструктурных изменений ( рис. 1C).
2. Гистология сухожилийно-костного соединения
Образцы фиксировали в 4% параформальдегиде в течение 48 ч и декальцинировали 15% ЭДТА в течение 4 недель при комнатной температуре (20-25 °С), при этом раствор меняли ежедневно. Процесс декальцинации завершался, когда кость можно было легко проткнуть иглой без приложения какой-либо силы. После декальцификации образцы подвергались обезвоживанию с помощью автоматизированного процесса, включающего градационную серию этанола и ксилола, за которой следовали три промывки PBS. Образцы погружали в парафин сагиттально и разрезали с температурой 5 мкм. Окрашивание гематоксилин-эозином проводилось в соответствии со стандартными процедурами, а изображения были получены с помощью цифровой триокулярной микрокамеры Panthera с увеличением 20× и 40×.
3. Электронная микроскопия
В оставленные образцы добавляли префикс 2% параформальдегид-2,5% глутаральдегида в течение 48 ч, затем обезвоживали в серии растворов ацетона, инфильтрировали в анализатор отверждения эпоксидной смолы и внедряли сагиттал. Полутонкие срезы окрашивали метиленовым синим для идентификации области соединения сухожилия и кости. Ультратонкие участки, толщиной примерно 60-90 нм, были разрезаны с помощью алмазного ножа. Эти срезы окрашивали уранилацетатом в течение 10-15 мин, а затем цитратом свинца в течение 1-2 мин. Срезы исследовали под просвечивающим электронным микроскопом при увеличениях 6000×,12000× и 25000×.
4. Иммуногистохимический анализ
Сухожилийно-костное соединение обычно декальцинировали и разрезали, как описано ранее. После инкубации с раствором для извлечения цитратного буферного антигена в течение 10 мин образцы обрабатывали 3% H2O2 в течение 10 мин для блокирования активности эндогенной пероксидазы, а затем блокировали нормальной сывороткой коз в течение 20 мин при 25 °C. Затем срезы инкубировали в течение ночи при 4 °C с первичными антителами, включая GRP78 (1:100), CHOP (1:100) и Casspase-12 (1:100). Впоследствии образцы инкубировали со вторичными антителами в течение 2 ч при 25 °С. Развитие цвета достигали с помощью DAB в течение 8 мин при 25 °C, в результате чего получался коричнево-желтый положительный сигнал. Ядра задерживали гематоксилином в течение 3 мин. Для анализа средней плотности использовали программное обеспечение Image-Pro Plus 6.0. Для анализа были выбраны три области представляющего интерес области сухожильного и костного соединения (сухожилие, фиброзный хрящ и минерализованный фиброзный хрящ) и рассчитано среднее значение.
5. Статистический анализ
Для анализа данных и создания диаграмм использовался GraphPad Prism 8. Все данные выражаются в виде среднего ± стандартного отклонения. Сравнения между различными группами проводились с использованием одностороннего метода ANOVA, а для парных сравнений использовался тест на наименьшую значимую разницу (LSD). P-значение < 0,05 было признано статистически значимым.