Этот клинический протокол был утверждён Этическим комитетом Народной больницы Хэншуй (Одобрение No 2019-2-013). Все участники или их законные опекуны предоставляли письменное информированное согласие перед включением. Исследование соответствовало Хельсинкской декларации и институциональным руководящим принципам по этике человеческих исследований.
Подготовка серебро-углеродного (Ag-C) нанокомпозита
Для синтеза нанокомпозита Ag-C точно взвешивали 3,0 г тартрата калия натрия и помещали в кварцевый тигель объёмом 50 мл внутри трубчатой печи. Образец нагревался до 400 °C при скорости 15 °C/мин и поддерживался 6 часов, после чего охлаждался до комнатной температуры (~25 °C). Продукт перемещался в стеклянный стакан объёмом 250 мл и распылялся в 80 мл деионизированной воды (сопротивление ≥18 МОМ·см) с помощью магнитной мешалки при 400 об/мин в течение 10 минут. Суспензия была центрифугирована при 10 000 x г в течение 10 минут при 4 °C, а также был собран коричневый супернатант с квантовыми углеродными точками (CQD). Супернатант концентрировался до 20 мл при 80 °C при перемешивании, после чего добавляли 60 мл ацетона и смешивали вихрь в течение 1 минуты. После центрифугирования при 9 500 x г в течение 20 минут при 4 °C светло-жёлтый супернатант был собран в качестве стандартного раствора CQD. Для подготовки реагента Толленса 1 мл массой 0,5 MAgNO 3 смешали с 1,04 мл аммиачной воды и 0,65 мл 3 M NaOH, после чего добавляли 17,3 мл деионизированной воды при непрерывном перемешивании. В трёхшейной колбе, завернутой в алюминиевую фольгу, смешивались 25 мл раствора CQD и 75 мл деионизированной воды, которые перемешивались при 500 об/мин в течение 5 минут. pH был скорректирован примерно до 7,0 с помощью концентрированной аммиачной воды, после чего добавили 1 мл реактива Толленса. Смесь нагревалась до 120 °C в течение 20 минут в тёмных условиях. После охлаждения до комнатной температуры получали жёлтый раствор Ag-C и хранили при 4 °C до использования.
ВНИМАНИЕ: NaOH и аммиачная вода коррозийны и выделяют раздражающие пары. Выполняйте все реакции в вытяжке с химическим дымом, надевая перчатки, очки и лабораторный халат. Не закрывайте нагретые контейнеры плотно, чтобы предотвратить накопление давления.
Подготовка наносеребряных антибактериальных повязок (NSAD)
Для приготовления растворительной смеси 15 мл деионизированной воды смешали с 200 мкл ледниковой уксусной кислоты в стеклянном стакане объёмом 100 мл. К этому добавляли 0,1 мл приготовленного раствора Ag-C (22 мг/л), 0,2 мл глицерина и 60 мг полоксамера и полностью растворяли при 50 °C с помощью магнитного перемешивания. Впоследствии постепенно добавляли 0,6 г порошка хитозана для предотвращения комков и непрерывно перемешивали в течение 30 минут до однородного образования. Затем 2 мл 1 MNaHCO 3 добавляли по каплям при перемешивании для вызвания лёгкой пены, после чего следовало ещё 10 минут перемешивания. Общий объём был отрегулирован до 20 мл с помощью деионизированной воды, а раствор дегазировали ультразвуковым способом в течение 5 минут. Однородный раствор заливали в прямоугольную форму (14 см x 8 см x 0,5 см), запечатывали пластиковой пленкой и оставляли гелировать на 48-72 часа при комнатной температуре (20-25 °C). После гелирования пленку удаляли и сушили в печи с принудительным воздушным давлением при 40 °C в течение 12–18 часов, получая пленки NSAD толщиной примерно 1 мм. Фиксируйте температуру и влажность окружающей среды во время гелирования, так как они влияют на однородность пленки и прочность на растяжение. Убрать плёнки с видимыми трещинами или пузырьками.
Характеристика нанокомпозита Ag-C
Капля разбавленного раствора Ag-C помещалась на углеродную сетку медино-трансмиссиальной электронной микроскопии (TEM) и сушилась под инфракрасным светом в течение 10 минут. Образцы снимались при напряжении 100 кВ под ТЭМ. Размер частиц анализировался с помощью программного обеспечения ImageJ путём измерения не менее 200 случайно выбранных частиц, а данные были выражены в среднем ± SD.
Оценка антибактериальной активности
Staphylococcus aureus (ATCC 29213) и Escherichia coli (ATCC 25922) были культивированы в триптоновом соевом бульоне (TSB) ночью при 37 °C. Бактериальная суспензия была отрегулирована до оптической плотностиOD 600 = 0,1 (~1 x 107 CFU/mL). Образцы были разделены на три группы: контрольные группы с обработкой деионизированной водой, контрольные группы с положительным результатом обработанного амоксициллином (10 мкг/мл) и группы, обработанные нанокомпозитами, обработанные Ag-C (эквивалентное содержание Ag 10 мкг/мл). Культуры инкубировали при 37 °C и встряхивались при 150 об/мин в течение 7 дней. Каждый день собиралось 100 мкл образцов, серийно разбавлялось, покрывалось на ТСБ-агаре и инкубировалось в течение 24 часов. Были подсчитаны колониообразующие единицы (CFU), а коэффициенты ингибирования (%) рассчитаны как [(N 0−N t)/N0] x 100. Каждый эксперимент проводился в тройном экземпляре, а результаты были представлены как среднее ± SD.
ВНИМАНИЕ: Обрабатывайте все бактериальные культуры в шкафчике уровня биобезопасности II. Автоклав — все отходы при 121 °C в течение 20 минут до утилизации.
Поведение отека у NSAD
Квадратные образцы NSAD (1 см x 1 см) взвешивались для получения сухого веса (W 0). Каждый образец был погружен в 10 мл физиологического физиологического раствора при температуре 37 °C. Через 1, 6, 12 и 24 часа образцы снимались, промокались фильтрующей бумагой и взвешивались (Wt). Коэффициент набухота (%) был рассчитан как [(Wt −W 0)/W 0] x 100. Все измерения проводились в тройном экземпляре, а результаты были представлены как средние ± SD.
Сборка и применение VAC в сочетании с NSAD
Подготовленная пленка NSAD была вырезана с помощью стерильных ножниц в соответствии с размером раны и нанесена непосредственно на ложо раны. Под NSAD были вставлены две стерильные силиконовые дренажные трубки (толщина стенки 1 мм, микропоры 0,4–0,5 мм). Вся рана и 2-3 см окружающей целостной кожи были запечатаны прозрачной полиуретановой пленкой для герметичного покрытия. Дренажные трубы были подключены к непрерывному источнику отрицательного давления, поддерживаемому от -60 кПа до -80 кПа в течение 72 часов. Печать проверялась ежедневно, а собранный экссудат фиксировался по цвету и объёму. Повязки меняли каждые 3-5 дней или раньше, если происходила протечка. VAC-терапия была прекращена, когда грануляционная ткань полностью покрыла рану. Перед запечатыванием раны подтвердите полный гемостаз. Если происходит активное кровотечение, временно уменьшайте отрицательное давление до -40 кПа. Следите за дискомфортом пациента, чрезмерной болью или неисправностью устройства.
Управление отходами
Все серебросодержащие и щелочные остатки собирались в маркированные контейнеры для утилизации опасных отходов. Щелочные растворы нейтрализовались до pH 7 перед выбросом. Биологические отходы стерилизовались с помощью автоклава и утилизировались в соответствии с нормами биобезопасности больницы.
Пациенты и дизайн исследования
Всего 300 пациентов с диагнозом Густило типа I или II открытых переломов большеберцовой кости (OTF), были набраны в отделение травматологической ортопедии Народной больницы Хэншуй с ноября 2019 по ноябрь 2022 года. Пациенты проходили скрининг по заранее определённым критериям включения и исключения. Критерии включения: (1) возраст от 18 до 70 лет; (2) подтвержден перелом Густило типа I или II на основе клинической и радиологической оценки; (3) отсутствие серьёзного повреждения сосудов или нервов; и (4) способность предоставлять информированное согласие и соблюдать послеоперационное наблюдение. Критерии исключения включали: (1) переломы Густило типа III; (2) тяжёлые сопутствующие заболевания, такие как неконтролируемый диабет, периферические сосудистые заболевания, хронические инфекции или иммунодефицит; (3) патологические переломы; и (4) беременность или нарушения свертываемости. Рандомизация проводилась с использованием компьютерно сгенерированной последовательности с блочных рандомизацией (размер блока = 6). Сокрытие распределения обеспечивалось с помощью запечатанных непрозрачных конвертов, подготовленных независимым статистиком. Пациенты были равномерно разделены на три группы (n = 100 в каждой): группа 1 получила закрытую редукцию и внутримедуллярную фиксацию ногтей (CRINF) с традиционным уходом за ранами; Группа 2 получила CRINF в сочетании с вакуумным закрытием (VAC); а группа 3 получила CRINF с наносеребряной антибактериальной перевязкой (NSAD) и VAC. Все процедуры выполнялись одной и той же хирургической командой для минимизации смещения оператора. Оценщики результатов были ослеплены в отношении распределения лечения при оценке заживления ран, инфекций и боли. Все пациенты наблюдались в течение 9 месяцев после операции для оценки заживления переломов и функционального восстановления.
План лечения OTF типа Густило I и II
Пациенты подвергались анестезии (общей, спинномозговой или местной) в зависимости от тяжести травмы и медицинского состояния. После предварительного дебридмента раны тщательно промывались стерильным физиологическим раствором и перекисью водорода; девитализированные ткани были обрезаны, а края мягких тканей временно зашивались по мере необходимости. Стабилизация перелома была достигнута путём закрытой редукции и внутримедуллярной фиксации ногтей после стандартных ортопедическихпроцедур 17. Для группы 3 стерильная пленка NSAD была вырезана в соответствии с размерами раны и наклеена на ложо раны; Под повязкой были размещены два силиконовых слива. Полупроницаемая полиуретановая плёнка герметизировала рану, а также 2–3 см окружающей целостной кожи. Герметичность и гемостаз подтверждались до всасывания; Булавочные тракты (если они были) покрывались стерильной марлей. Постоянное отрицательное давление применялось при -60–-80 кПа и корректировалось в зависимости от размера и глубины раны, при замене повязки каждые 3-5 дней или раньше, если возникала протечка/насыщение. Для групп 1 и 2 раны закрывались стерильной марлей из валины и менялись каждые 48–72 часа. Послеоперационный уход включал профилактические антибиотики широкого спектра в течение 3-5 дней (цефалоспорины или фторхинолоны), анаэробное покрытие метронидазолом принеобходимости 18 дней, противовоспалительные и обезболивающие терапию, контроль отёков, меры по стимулированию кровообращения и поддержку питания (включая приём белка). Пациенты с нейроваскулярным поражением получали нейротрофные и противоотёчные/спазмолитические препараты при необходимости. Лабораторный мониторинг (общий анализ крови, скорость осадконакопления эритроцитов, C-реактивный белок) проводился на плановых послеоперационных визитах для наблюдения за инфекцией. Реабилитация началась с изометрических сокращений и мягких движений суставов с третьего дня, переходя к активной подвижности спустя ~1 неделю при условии терпимости. Рентгенографическое наблюдение было проведено примерно через 1, 3, 6 и 9 месяцев; Постепенная переноска веса началась после того, как на рентгене и клинической боли были заметны мостовые мозоли и непрерывность с большеберцовой корой.
Индексы наблюдения
Основные показатели исхода включали время заживления раны, время заживления переломов, скорость заживления раны и скорость заживления переломов. Вторичные исходы включали частоту послеоперационных осложнений (поверхностная инфекция, глубокая инфекция, отсроченное сращение, жировая эмболия, инфекции игольчатого тракта и инфицированное несросление), продолжительность госпитализации, общие медицинские затраты и интенсивность боли после операции. Интенсивность боли оценивалась по численной шкале оценки (NRS) от 0 (без боли) до 10 (самая сильная боль, какая только можно представить). Заживление ран определялось как полное эпителиализацию без экссудата, а заживление переломов подтверждалось рентгеновским путём перекрытия мозолей по крайней мере трём кортикам. Последующие оценки проводились через 1, 3, 6 и 9 месяцев после операции, включая клиническую оценку и рентгенографию.
Статистический анализ
Статистический анализ проводился с использованием версии SPSS 20.0. Непрерывные переменные тестировались на нормальность и выражались как среднее ± стандартное отклонение (SD). Различия между тремя группами анализировались с помощью одностороннего ANOVA, а затем последовал пост-хок тест Тьюки для множественных сравнений. Ненормально распределённые данные анализировались с помощью теста Крускаля-Уоллиса. Категориальные переменные выражались в виде счётов и процентов, а также анализировались с помощью теста хи-квадрата (χ²) или точного теста Фишера, когда это было уместно. Для ключевых параметров были рассчитаны 95% доверительные интервалы (ДИ). Статистическая значимость была установлена на уровне p < 0,05. Все анализы проводились независимым биостатистиком, ослеплённым к групповому распределению.