Исследовательская статья

Исследование устройства с синим светом светодиода для подавления патогенов ран с использованием синтетической модели кожи на основе коллагена

855 просмотров

⸱

DOI:

10.3791/69403

⸱

24 февраля 2026 г.

 ,  ,  ,  ,  ,  , 
1School of Engineering Technology and Applied Sciences (SETAS), Centennial College, 2Cofan Thermal/Violumas

В этой статье

Краткое содержание

Светодиодное устройство с синим светом 405 нм демонстрирует антимикробную эффективность против широкого спектра патогенов ран при оценке на синтетической модели на основе коллагена. Этот упрощённый подход in vitro предлагает воспроизводимую и этически жизнеспособную альтернативу для ранней оценки световых антимикробных терапий.

Аннотация

Традиционное лечение ран всё больше подвергается вызовам из-за роста антимикробной устойчивости и цитотоксических побочных эффектов традиционных препаратов. Фототерапия, особенно с использованием синего света (BL), предлагает перспективную неинвазивную и бесконтактную альтернативу. В этом исследовании оценивалась антимикробная эффективность и безопасность устройства BL-LED с частотой 405 нм против широкого спектра медицински значимых патогенов ран, используя синтетическую кожную модель на основе коллагена, подчёркивая новизну применения этой платформы для светового антимикробного тестирования. Эта синтетическая кожа создаёт более реалистичную атмосферу, имитируя структуру и топографию человеческой кожи. Картирование равномерности света показало стабильное излучение диаметром 10 см (30,14 ± 0,78 мВт/см 2). Устройство достигло значительного сокращения микробного логафора, зависящего от флуэнса, до 3,5 при 27 Дж/см², что показало значительно более высокую эффективность, чем в аналогичных исследованиях. Его широкочастотная активность была подтверждена против патогенов ESKAPE и Candida albicans, что является значительным преимуществом для управления полимикробными инфекциями ран. Ключевым открытием стала разница в восприимчивости между видами: Klebsiella pneumoniae проявила наивысшую восприимчивость, а Staphylococcus aureus — наиболее устойчивую. Вероятно, это связано с изменениями в структуре оболочки микроорганизмов и содержании фоточувствительных молекул, что влияет на реактивные виды кислорода (ROS). Эксперименты по оптической передаче и анализ поверхностных и встроенных колоний не выявили статистической значимости, что указывает на возможное применение BL для ингибирования патогенов под кожей. Инфракрасная спектроскопия подтвердила, что воздействие BL, даже при высоких флюенциях (108 Дж/см²), не вызывало обнаруженного химического или конформационного разрушения матрикса коллагена, в отличие от вредных эффектов, наблюдаемых при гермицидном контроле УФ-C. Наконец, уникальная оценка в аэрозольной камере показала, что обработка BL снижает микробное осаждение на поверхностях более чем на 95%, что подчёркивает потенциал для снижения нозокомиальных инфекций. Эти результаты демонстрируют пригодность субстратов, имитирующих кожу, как доступной альтернативы для оценки BL в доклинических испытаниях, тем самым исключая необходимость использования животных моделей.

Введение

Инфекции ран представляют собой постоянную проблему и значительную нагрузку для глобальной системы здравоохранения, влияя на качество жизни пациентов. Заживление ран часто осложняется микробными инфекциями, которые замедляют закрывание кожных ран, что приводит к поражениям и хроническим ранам, преимущественно у пожилых и диабетиков. Традиционные методы лечения ран основаны на антибиотиках, антисептиках, химикатех и природных биоактивных агентах, которые в первую очередь подавляют рановызывающие организмы. Хотя эти традиционные методы эффективны для ускорения процесса заживления за счёт уменьшения количества воспалительных клеток и увеличения количествафибробластов 1, они связаны со многими побочными эффектами. Многие местные антимикробные препараты, используемые в бинтах ран, обычно не являются дружелюбными к коже и могут вызывать нежелательные эффекты, такие как обезвоживание кожи, раздражение тканей и цитотоксическое воздействие на клетки, необходимые для заживленияраны. 2. Антимикробная устойчивость (АМР), о которой широко сообщают из-за чрезмерного использованияантимикробных препаратов 3, главным образом системного применения антибиотиков, угрожает долгосрочной жизнеспособности существующих фармакологических методов лечения. Учитывая эти ограничения существующей клинической практики, подчеркивается необходимость более безопасных и устойчивых альтернатив ухода за ранами, особенно бесконтактных и безболезненных методов, таких как фототерапия.

Фототерапия, использующая видимый спектр света, постепенно привлекает внимание как перспективное неинвазивное и нефармакологическое вмешательство для различных дерматологических и терапевтических применений. Его применение охватывает от общего омоложениякожи и косметических улучшений, а также целенаправленных методов лечения таких состояний, как акне и антивозрастные терапии. Среди видимых длин волн (400–760 нм) синий свет, обычно в диапазоне от 400 нм до 480 нм, привлёк значительный научный и клинический интерес благодаря своему многогранному терапевтическомупотенциалу 5. В отличие от ультрафиолетового (УФ) излучения, особенно диапазона УФ-C (100-280 нм), который широко используется для дезинфекции поверхности из-за своих бактерицидных свойств, но несёт хорошо задокументированные риски повреждения ДНК, канцерогенеза и рака кожи, синий свет классифицируется как неионизирующее излучение. Это фундаментальное различие делает синий свет по своей сути безопаснее для человеческихтканей 5, так как он не обладает энергией для прямого повреждения клеточной ДНК или вызвания мутагенных эффектов.

Антимикробная активность синего света была зафиксирована как против бактерий сграммположительным 6 , так играмотрицательным 7 . Были проведены клинические испытания для подтверждения использования терапии синим светом против распространённых инфекций илинарушений 8, например, подавление акне Propionibacterium , вызывающего акнеvulgaris 9, и лечение желудочныхинфекций 10 , вызванных Helicobacter pylori. Однако клинические испытания, изучающие антимикробную эффективность инфекций ран, не были опубликованы. Растущее число недавних исследований in vitro показывает, что фиолетово-голубой свет (400-420 нм) способен инактивировать несколько патогенов ESKAPE, сохраняя при этом минимальную цитотоксичность для клеток млекопитающих11. В последнее время синий свет в диапазоне 410-430 нм модулирует активность фибробластов и отложение коллагена, способствует пролиферации клеток, регулирует воспалительные реакции и генерирует реактивные кислородные формы (ROS ) посредством эндогенного возбуждения порфирина, что нарушает работубактериальных клеток 12, что делает его перспективным кандидатом для заживления ран.

Однако сложность заживления ран, определяемая множеством факторов, включая индивидуальную вариативность, тип ран, а также физиологические и предшествующие патологические состояния, представляет собой значительные вызовы для исследований. Прямое тестирование in vivo методов терапии ран остаётся сложным из-за биологической изменчивости, этических соображений и сложности среды ран. Животные модели, хотя и широко используемые, часто не могут точно отражать физиологию человеческой кожи и ограничены строгими нормативнымитребованиями 13. Исследования заживления ран с участием клинических испытаний редки и часто редко являются репрезентативными из-за малого размера выборки, требующего больших статистических выборок, надёжных контролей и строгих этических одобрений. Для преодоления этих барьеров появились in vitro модели, воспроизводящие свойства человеческой кожи, которые стали эффективными платформами для первичногоскрининга 14. Синтетические кожные системы на основе коллагена, такие как VITRO-Skin, имитируют pH, удержание влаги и текстуру поверхности человека и идеально подходят для тестирования внешних вмешательств в контролируемыхусловиях. Хотя несколько исследований показали широкоспектральные антимикробные эффекты синего света, большинство из них использовали бульонные культуры, агаровые пластины или животные модели, с ограниченным применением к субстратам, похожим на кожу.

Опираясь на доказанный потенциал синего света и преимущества моделей in vitro , текущее исследование направлено на проверку эффективности светодиодного устройства (LED), работающего на пиковой длине волны 405 нм, для подавления распространённых патогенов ран. Мы предлагаем новую методологию оценки эффективности заживления ран, основанную на упрощённой модели микробиома, применяемой к синтетической коже на основе коллагена. Также сравнивается антимикробная эффективность и влияние светодиодного синего света (LED-BL) на топографию кожи с флюэнсом бактерицидного УФ-C. Хотя этот метод не обладает сложностью биологических систем, он применяет прагматичный подход, позволяющий проводить строго контролируемые и воспроизводимые эксперименты, обходящие изменчивость и этические сложности, связанные с in vivo исследованиями и клиническими испытаниями, ускоряя предварительную оценку и первичный скрининг аналогичных новых терапевтических вмешательств. Основная инновация этой работы заключается в применении модели кожи на основе коллагена как воспроизводимой, контролируемой платформы для оценки эффективности антимикробных средств синего света, сопровождаемой оптической пенетрацией, равномерностью и анализами безопасности на основе FTIR.

Доступ ограничен. Войдите в систему или начните пробный период, чтобы просмотреть этот контент.

Протокол

1. Подготовка образцов синтетической кожи

Лист синтетической кожи на основе коллагена (VITRO-Skin) был разрезан на прямоугольные образцы размером 5,0 см × 2,5 см в асептических условиях в шкафе для биобезопасности. Каждый образец помещался в стерильную чашку Петри и хранился при 4 °C до использования. Перед вакцинацией образцы уравновешивались до комнатной температуры и увлажнялись в камере влажности согласно инструкциям производителя, чтобы имитировать уровень увлажнения человеческой кожи.

2. Подготовка микробных культур

Американская коллекция типовых культур (ATCC) референсные штаммы, включая Staphylococcus aureus (ATCC 25923), Escherichia coli (ATCC 25922), Enterobacter aerogenes (ATCC 13048), Pseudomonas aeruginosa (ATCC 27853), Acinetobacter baumannii (ATCC 19606), Klebsiella pneumoniae (ATCC 13883) и Candida albicans (ATCC 10231), использовались. Отдельные колонии были инокулены в 5 мл триптического соевого бульона (TSB) в асептических условиях. Бактериальные культуры инкубировали при 35 °C в течение 24 часов, а грибковые культуры — при 22 °C в течение 5 дней. После инкубации мутность была скорректирована до 0,5 стандарта Макфарланда (примерно 1,5 × 10⁸ CFU/mL) с использованием стерильного фосфатного буферного физиологического раствора (PBS) для антимикробных анализов.

3. Инокуляция синтетических моделей кожи

Каждый увлажнённый синтетический участок кожи был инокулен 100 мкл микробной суспензии и равномерно распределен с помощью стерильного одноразового распределителя. Инокуляционные поверхности сушились на воздухе в течение 15 минут в стерильной камере в лабораторных условиях (22-24 °C, 60%-70% влажности). Образцы были распределены по трём группам: необработанная контрольная система (группа A), источник света (синий светодиод, 405 нм), облучение (группа B) и светодиодное УФ-C (265 нм) облучение (группа C). На рисунке 1 показано схематическое представление экспериментов при оценке антимикробной эффективности источника света с использованием синтетической модели кожи.

4. Конфигурация источника света и облучение

На алюминиевом радиаторе было установлено светодиодное устройство с синим светом 405 нм для предотвращения накопления тепла и обеспечения термически безопасного облучения синтетических образцов кожу (см. рисунок 2). Излучение измерялось на точной плоскости обработки с помощью калиброванного оптического измерителя мощности, с учетом толщины датчика. Рабочая радиация была стандартизирована до 30 мВт/см² путём регулировки расстояния передачи светодиода.

Равномерность освещения по всему обработочному полю проверялась путём измерения излучения в 16 равномерно расположенных точках, что дало среднее количество 30,14 ± 0,78 мВт/см² (см. рисунок 3). Для базового сравнения бактерицидных эффектов обработка УФ-C проводилась с использованием светодиодного источника 265 нм, подающего 3 мВт/см² на расстоянии 20 см в течение 2 минут.

Флюэнция рассчитывалась как излучение × время экспозиции и соответствовала 27 Дж/см² для синего света (30 мВт/см² × 900 с) и 3,6 Дж/см² для ультрафиолетового света.

Для антимикробных анализов гидратированные синтетические образцы кожи, вакцинированные микробными суспензиями, асептически помещались в стерильные чашки Петри (крышки сняты) и размещались прямо под синим светодиодом. Образцы, назначенные в группу облучения (группа B), подвергались непрерывному воздействию до достижения целевого флюэнса (15 мин). Длительность воздействия в 15 минут (27 Дж/см²) была выбрана на основе предварительных экспериментов с временным убийством, которые продемонстрировали стабильную антимикробную эффективность среди видов и при этом отражали практическую продолжительность воздействия для потенциальных клинических или точечных применений. Температура каждого образца измерялась каждые 5 минут с помощью бесконтактного инфракрасного термометра, чтобы убедиться, что при освещении не произошло значительного нагрева. Мониторинг температуры не выявил измеримого повышения температуры поверхности (>2 °C) во время излучения синим светом, что подтверждает, что наблюдаемые антимикробные эффекты были нетермальными.

5. Антимикробная эффективность светодиодов синего света и УФ-C против патогенов ран

После обработки каждый синтетический образец кожи был перенесён в стерильную трубку объёмом 15 мл с содержанием 9,0 мл PBS (pH 7,4). Трубки мягко вихрили в течение 1 минуты, чтобы вытеснить микробы, прилипшие к поверхности. Были подготовлены серийные десятикратные разбавления, и 100 мкл аликвотов были покрыты на триптическом соевом агаре (TSA) для бактерий и Sabouraud Dextrose Agar (SDA) для грибов. Пластины инкубировали (бактерии при 35 °C в течение 24 часов; грибы при 22 °C в течение 5 дней), а также перечислялись колониообразующие единицы (CFU). Микробная редукция количественно оценивалась с помощью следующих уравнений:

Редукция логарифма = log10(A) - log10(B)

Процент уменьшения = ((A - B)/A) × 100

где A = счёт КФУ из контроля; B = количество КФУ из обработанных образцов.

Отрицательные контроли включали пластины только с медиа и PBS для проверки стерильности, а для сравнения эффективности лечения использовались необработанные инокуляционные образцы. Положительные контрольные пластины состояли из инокуляционных микробных суспензий ATCC для подтверждения жизнеспособности культуры. Все экспериментальные этапы проводились в асептических условиях.

6. Временно-зависимая антимикробная эффективность облучения синим светом

Для оценки эффекта, зависящего от флуэнса, длительность воздействия синего света была установлена на 2 мин, 5 минут, 10 минут, 15 минут, 20 минут и 30 минут. Антимикробная активность оценивалась с помощью перечисления CFU, как указано выше, что позволило проанализировать зависимость от дозы.

7. Эффективность светодиода синего света в аэрозольной камере, имитируя нозокомиальные условия

Для имитации воздействия воздушного воздействия была использована специализированная акриловая аэрозольная камера при контролируемых условиях окружающей среды (рисунок 4). Аэрозольные микробные суспензии (~1,5 x 106 CFU/mL) были введены с помощью небулайзера, а синтетические образцы кожи экспонировали в течение 30 минут. Синий свет направлялся на образцы на протяжении всей экспозиции (10 мкВт/см², расстояние 20 см). В контрольном эксперименте применялись идентичные условия экспозиции, но устройство BL-LED оставалось выключенным. Плотность микробных клеток в аэрозольной камере отслеживалась с помощью измерений активности осадки, при которых агарные пластины помещались внутрь камеры перед воздействием. Жизнеспособные микробные клетки, прилипшие к синтетическим образцами кожи (2 см x 2 см), были количественно измерены с помощью стандартного анализа количества пластин, описанного выше. Это низкое излучение (10 мкВт/см²) было выбрано для имитации реальных условий окружающего освещения в медицинских учреждениях, где непрерывное высокоинтенсивное облучение невозможно.

8. Оптическая передача и испытания вложенных колоний

  1. Оптическая передача через синтетическую подложку кожи
    Для количественного измерения проникновения синего света через синтетическую кожу излучение измерялось с помощью калиброванного оптического измерителя мощности, расположенного в плоскости обработки. Интенсивность BL (405 нм, 30 мВт/см²) фиксировалась с увлажнёнными синтетическими образцами кожи, размещёнными горизонтально между светодиодом и детектором. Пропускающая способность (%) рассчитывалась как отношение передаваемого излучения (с кожей) и падающего излучения (без кожи).
    Передача в водных условиях оценивалась с помощью спектрофотометра UV-Viz. Увлажнённая синтетическая полоска для кожи была вертикально вставлена в стандартную полистироловую кюветку, наполненную деионизированной водой. Кюветка, наполненная водой, служила только заготовкой. Было зафиксировано поглощение на 405 нм, а процент пропускания рассчитан с использованием %T = 10(-A) × 100.
  2. Функциональная валидация с использованием вложённого колониального анализа
    Анализы на редукцию микробов поверхностных и вложенных колоний проводились как функциональный коррелят передачи, при этом образцы инокуляцировались на одну поверхность, но облучались с противоположной (нижней) стороны для имитации микробов, находящихся под поверхностью кожи. ХФУ были количественно оценены, как описано выше в разделе антимикробной эффективности.

9. FT-IR спектроскопия для деградации синтетической кожи после воздействия синего света и УФ-C

Для оценки возможных химических и структурных изменений синтетической кожной матрицы на основе коллагена из-за воздействия света была проведена инфракрасная спектроскопия преобразования Фурье (FT-IR). Синтетические образцы кожи (2 см × 2 см) были увлажнены согласно инструкции производителя, аналогично образцам, используемым в микробных анализах. Гидратированные образцы подвергались воздействию либо синего света 405 нм (30 мВт/см²), либо 265 нм УФ-C (3 мВт/см²) в течение 15 минут (стандартное воздействие, 27 Дж/см²) или 60 минут (в худшем случае стрессовых условий). После облучения образцы аккуратно промокнули для удаления поверхностной влажности и немедленно анализировали с помощью FT-IR.

10. Измерение ATR-FTIR

Спектры получались с помощью ИК-спектрофотометра, оснащённого совместимым программным обеспечением для анализа. Все образцы анализировались с помощью модуля Attenuated Total Reflectance (ATR) iD7. Для выделения спектральных изменений, связанных с облучением, (1) Было проведено прямое сравнение спектра между необработанными контрольными и облучёнными образцами. (2) Сравнения, вычитаемые по базовому уровню, проводились с использованием необработанного контрольного образца в качестве фонового ориентира перед сканированием облучённых образцов, что позволяло визуализировать только новые или изменённые пики.

Этот двойственный подход снижает топографический шум и улучшает обнаружение тонких изменений в областях амида и отпечатков пальцев. Уровень гидратации, толщина образца и ориентация были стандартизированы для всех образцов для снижения спектральной вариабельности. Каждое состояние воздействия (контрольное — BL-15 мин, BL-60 мин, УФ-15 мин, УФ-60 мин) сканировалось в три экземпляжа.

11. Статистический анализ

Все эксперименты проводились с использованием независимых биологических тройных копий, если не указано иное. Данные представлены как среднее ± стандартное отклонение (SD) или как среднее с 95% доверительными интервалами (CI), как указано в легендах рисунка. Нормальность распределения данных оценивалась с помощью теста Шапиро-Вилка. Парные сравнения между двумя группами (например, синий свет против УФ-C, поверхностные и встроенные колонии) проводились с помощью непарных двуххвостых t-тестов Студента. Для сравнений, включающих более двух условий или временных точек, применялся односторонний анализ дисперсии (ANOVA), за которым следовало соответствующее постфактическое тестирование. Конкретный статистический критерий, используемый для каждого сравнения, обозначается в соответствующей легенде рисунка. p-значение <0,05 считалось статистически значимым.

Доступ ограничен. Войдите в систему или начните пробный период, чтобы просмотреть этот контент.

Результаты

Антимикробная эффективность светодиодов синего света и ультрафиолетового спектра против патогенов ран
Светодиодное устройство с синим светом (405 нм), работающее с интенсивностью 30 мВт/см² в течение 15 минут, продемонстрировало значительную антимикробную эффективность против всех протестированных патогенов ран на синтетических кожных моделях (см. рисунок 5). Среди исследованных видов Klebsiella pneumoniae показала наивысшую восп...

Доступ ограничен. Войдите в систему или начните пробный период, чтобы просмотреть этот контент.

Обсуждение

Это исследование демонстрирует значительный антимикробный потенциал устройства Blue Light LED (BL-LED) с частотой 405 нм на фоне панели клинически значимых патогенов ран, протестированных на синтетических кожных моделях на основе коллагена. Воздействие BL-LED при флуэнсе 27 Дж/см² достигло снижения микробной нагрузки на 3,5 логарифма (см. рисунок 6), превышая антимикробные показатели, сообщаемые в нескольких предыдущихисследованиях

Доступ ограничен. Войдите в систему или начните пробный период, чтобы просмотреть этот контент.

Раскрытие информации

У авторов нет конфликтов интересов.

Благодарности

Это исследование было профинансировано (W24-21) «Службой прикладных исследований, инноваций и предпринимательства» (ARIES), Centennial College, Канада. Микробные материалы и оборудование BSL-2 были предоставлены «Applied Biological and Environmental Sciences» (ABES), Centennial College, Канада. Авторы ценят руководство, предоставленное Эндрю Баером и Джиллиан Горинг в области FT-IR спектроскопии, а также персоналу подготовительной комнаты за их помощь в подготовке и стерилизации.

Доступ ограничен. Войдите в систему или начните пробный период, чтобы просмотреть этот контент.

Материалы

Список материалов, использованных в этой статье
ИмяКомпанияКаталожный номерКомментарии
Acinetobacter baumannii  ATCC Глобальный биоресурсный центрATCC 19606
Синий свет — Светодиод, излучающий свет  ВиолумыН/ДBL-LED является прототипом, поэтому не имеет каталожного номера 
Candida albicans  ATCC Глобальный биоресурсный центрATCC 10231
Enterobacter aerogenesATCC Глобальный биоресурсный центрATCC 13048
Escherichia coliATCC Глобальный биоресурсный центрATCC 25922
Фурье-преобразование InfraRed  (FT-IR) Спектрофотометр Nicolet iS5Thermo ScientificIQLAADGAAGFAHDMAZAДля анализа используется программное обеспечение OMNIC
FT-IR Nicolet iS5 iD1 Прямой пучковый модуль передачи (базовый адаптер)Thermo ScientificIQLAADGAAGFAJAMAYX
FT-IR Nicolet iS5 iD7 алмазно-ослабленный внутренний рефракционный модульThermo ScientificIQLAADGAAGFAJAMBFN
Incubator Percival Scientific 9330.01.06L
ИК-теромометрThermo Fisher Scientific   06-664-254
Klebsiella pneumonia  ATCC Глобальный биоресурсный центрATCC 13883
Фосфатно-буферный физиологический растворThermo Fisher Scientific   AM9624Каталожный номер PBS (Thermo Fisher Scientific) 
Pseudomonas aeruginosaATCC Глобальный биоресурсный центрATCC 27853
Сабуро Декстроз АгарBD Difco DF0109-17-1Каталожный номер SAB (BD Difco)
Staphylococcus aureus  ATCC Глобальный биоресурсный центрATCC 25923
Триптический соевый агарBD DifcoDF0369-17-6Каталожный номер TSA (BD Difco)
Триптический соевый бульонBD Difco DF0370-17-3Каталожный номер TSB (BD Difco)
УФ-светодиодВиолумыН/ДUV-LED является прототипом, поэтому не имеет каталожного номера 
UV-VIZ спектрофометр (Genesys 10 UV сканирование)Thermo Scientific 335907P
Vitro-SkinMEDELINKSKU24000Vitro-Skin

Ссылки

  1. Altoé, L. S., et al. Does antibiotic use accelerate or retard cutaneous repair? A systematic review in animal models. PLoS One. 14 (10), e0223511(2019).
  2. Punjataewakupt, A., Napavichayanun, S., Aramwit, P. The downside of antimicrobial agents for wound healing. Eur J Clin Microbiol Infect Dis. 38 (1), 39-54 (2019).
  3. Cristea, A. -G., et al. Antimicrobial smart dressings for combating antibiotic resistance in wound care. Pharmaceuticals. 18 (6), 825(2025).
  4. Lee, S. Y., et al. A prospective, randomized, placebo-controlled, double-blinded, and split-face clinical study on LED phototherapy for skin rejuvenation. J Photochem Photobiol B. 88 (1), 51-67 (2007).
  5. Mamalis, A., Garcha, M., Jagdeo, J. Light-emitting diode-generated blue light modulates fibrosis characteristics. Lasers Surg Med. 47 (2), 210-215 (2015).
  6. Guffey, J. S., Wilborn, J. In vitro bactericidal effects of 405-nm and 470-nm blue light. Photomed Laser Surg. 24 (6), 684-688 (2006).
  7. Maclean, M., MacGregor, S. J., Anderson, J. G., Woolsey, G. Inactivation of bacterial pathogens following exposure to light from a 405-nm LED array. Appl Environ Microbiol. 75 (7), 1932-1937 (2009).
  8. Dai, T., et al. Blue light for infectious diseases: Propionibacterium acnes, Helicobacter pylori, and beyond. Drug Resist Updat. 15 (4), 223-236 (2012).
  9. Ammad, S., Gonzales, M., Edwards, C., Finlay, A. Y., Mills, C. An assessment of the efficacy of blue light phototherapy in acne. J Cosmet Dermatol. 7, 180-188 (2008).
  10. Lembo, A. J., et al. Treatment of H. pylori infection with intra-gastric violet light phototherapy. Lasers Surg Med. 41 (5), 337-344 (2009).
  11. Bauer, R., Hoenes, K., Meurle, T., Hessling, M., Spellerberg, B. Effects of violet and blue light irradiation on ESKAPE pathogens. Sci Rep. 11, 24473(2021).
  12. Magni, G., et al. Blue-LED-light photobiomodulation of inflammatory responses in mouse wounds. Life (Basel). 12 (10), 1564(2022).
  13. Ahmad, N. In vitro and in vivo characterization methods for evaluation of modern wound dressings. Pharmaceutics. 15 (1), 42(2022).
  14. Sutterby, E., Thurgood, P., Baratchi, S., Khoshmanesh, K., Pirogova, E. Evaluation of in vitro skin models for studying external stressors. VIEW. 3 (2), 20210012(2022).
  15. Balasubramanian, V., et al. Antibacterial properties of soft solids in solution and on biosurfaces. KONA Powder Part J. 42, 251-260 (2025).
  16. Riaz, T., et al. FTIR analysis of natural and synthetic collagen. Appl Spectrosc Rev. 53 (9), 703-746 (2018).
  17. Kawada, A., et al. Acne phototherapy with narrow-band blue light: An open study and in vitro investigation. J Dermatol Sci. 30 (2), 129-135 (2002).
  18. Fukui, M., et al. Specific-wavelength visible light inhibits growth of P. gingivalis. J Periodontal Res. 43 (2), 174-178 (2008).
  19. Enwemeka, C. S., et al. Visible 405 nm SLD light photodestroys MRSA in vitro. Lasers Surg Med. 40 (10), 734-737 (2008).
  20. Anju, V. T., et al. Polymicrobial infections and biofilms: eradication strategies. Antibiotics (Basel). 11 (12), 1731(2022).
  21. Maclean, M., et al. The role of oxygen in visible-light inactivation of S. aureus. J Photochem Photobiol B. 92 (3), 180-184 (2008).
  22. Ashkenazi, H., et al. Eradication of P. acnes by porphyrins and high-intensity blue light. FEMS Immunol Med Microbiol. 35 (1), 17-24 (2003).
  23. Fan, X., et al. Effects of 420-nm intense pulsed light in acne animal model. J Eur Acad Dermatol Venereol. 27 (9), 1168-1171 (2012).
  24. Sinclair, L. G., Rodríguez-López, L. Antibacterial efficacy of low-irradiance 405-nm light. Sci Rep. 13, 1-15 (2023).
  25. Amodeo, D., et al. Violet-blue (405 nm) LED lamps for disinfection in healthcare. Pathogens. 12 (11), 1338(2023).
  26. Ozdemir, G. D., et al. Lights out for superbugs: antimicrobial blue light. Adv Drug Deliv Rev. 224, 115654(2025).
  27. Metreveli, N. O., et al. UV-vis and FT-IR spectra of irradiated collagen with ascorbic acid. Ecotoxicol Environ Saf. 73 (3), 448-455 (2010).
  28. Tu, Y., Quan, T. Oxidative stress and human skin connective tissue aging. Cosmetics. 3 (3), 28(2016).
  29. Nashchekina, Y. A., et al. Collagen analysis by FTIR spectroscopy. J Phys Conf Ser. 1697, 012053(2020).
  30. Ploydaeng, M., Rajatanavin, N., Rattanakaemakorn, P. UV-C light for inactivation of microorganisms and skin side effects. Photodermatol Photoimmunol Photomed. 37 (1), 12-19 (2021).

Доступ ограничен. Войдите в систему или начните пробный период, чтобы просмотреть этот контент.

Перепечатки и разрешения

Запросить разрешение на повторное использование текста или иллюстраций этой статьи JoVE

Запросить разрешение

Теги

Похожие статьи