Method Article

Пилотное исследование in vitro для оценки способности к очистке и влияния различных методов дезактивации на поверхности имплантов

DOI:

10.3791/69521

November 21st, 2025

In This Article

Summary

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Текущее пилотное исследование in vitro было направлено на оценку эффективности очистки трёх различных инструментов для дезактивации и возможных изменений поверхности после обработки, используя постоянные красные чернила для имитации присутствия оральной биопленки.

Abstract

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Важным компонентом лечения периимплантита является эффективная дезактивация поверхностей имплантатов. Идеальная техника дезактивации должна безопасно и эффективно удалять биопленку без повреждения поверхности имплантата. Это пилотное исследование было направлено на оценку эффективности очистки и изменений поверхности, связанных с тремя протоколами механической дезактивации. Здесь 12 имплантатов были окрашены несмываемой красной краской и закреплены в акриловые блоки для имитации горизонтальных дефектов периимпланта. Дезактивация поверхности проводилась в течение 2 минут тем же экспертом с помощью одного из следующих устройств: титановая щётка (TiB), кища с хитозаном (ChB) или титановая кюретка (TiC). В сочетании с механическими инструментами не использовались химические средства для дезактивации. Стандартизированные фотографии были сделаны до и после деконтаминации с переднего и ротового видов, а также при углах 30° и 60°. Площадь неочищенной поверхности имплантата рассчитывалась цифровым способом. Для оценки морфологии поверхности использовалась сканирующая электронная микроскопия (SEM). Ни один из протестированных методов не позволил полностью удалить пятно от чернил. Хотя 75,98% ± 2,42% окраски осталось, TiB показал наивысшую эффективность очистки при щечных и оральных фронтальных видах (p = 0,027), за ним следуют TiC (80,3% ± 0,86% оставшихся пятенцев) и ChB (90,34% ± 6,07% оставшихся пятен). Были отмечены значимые различия между группами ChB и TiB (p = 0,022). Анализ SEM показал, что TiC наносит наибольшие поверхностные повреждения, тогда как TiB — минимальные изменения. В рамках этого пилотного исследования TiB продемонстрировал эффективную очистку при сохранении морфологии поверхности имплантата. Эти результаты свидетельствуют о том, что титановые щётки могут представлять собой более безопасный и эффективный вариант механической дезактивации во время лечения периимплантита. Однако необходимы дальнейшие исследования для оценки сочетания механических и химических методов для повышения эффективности очистки.

Introduction

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Периимплантит определяется как воспаление слизистой периимплантатуры, сопровождающееся прогрессирующей потерей костной ткани. Это состояние, связанное с биопленкой, поражающее ткани вокруг зубныхимплантов 1. Пациенты с анамнезом тяжёлого пародонтита, плохой гигиеной полости рта или отсутствием регулярного обслуживания после имплантатурной терапии имеют повышенный риск развитияпериимплантита 1,2. Средняя распространённость периимплантита, по данным Диаса и соавторов, составляла 19,53% на уровне пациентов, тогда как на уровнеимпланта 3 она составляла 4,8%-23,0%, и эти данные были очень варьирующими даже после ограничений клинического определенияслучая 2. Диабет и анамнез пародонтита считаются признаками риска периимплантита. Однако нет единого мнения относительно связи между периимплантитом и курением, надстройкой импланта и уровнем кератинизированнойслизистой 2,3. Хотя в настоящее время нет стандартизированных, проверенных методов профилактики периимплантита, профилактика, адекватная гигиена полости рта и соблюдение регулярного обслуживания считаются самыми важными шагами 3,4.

Учитывая сложные гистопатологические особенности и непредсказуемое, быстрое развитие заболевания, периимплантит представляет собой вызов для каждогоклинициста 4,5. Основная цель лечения периимплантита — подавление воспаления и остановка потери костной ткани через импланты. Клиническая цель — уменьшить глубину зондирования (PD), устранить кровотечение при зондировании (BoP) и/или дренажгноя 6. Важной частью лечения периимплантита является дезинфекция поверхностей имплантов. Идеальная техника дезактивации должна быть безопасной в использовании без причинения травм пациентам или повреждения имплантатов, хотя она должна эффективно удалятьбиопленку 7. Однако морфология и характеристики имплантата препятствуют идеальной дезактивации, ограничивая успех лечения, поскольку полный доступ к поражённым участкам в основном ограничен характеристиками поверхностиимпланта 5,8. Такие ситуации требуют необходимости новых материалов или методов для правильной дезактивации при лечении периимплантита.

На сегодняшний день было введено множество средств и методов дезактивации поверхности имплантатов, и их эффективность и способы применения всё ещё находятся подследствием 9. Методы, используемые для дезактивации поверхности периимплантатов, обычно классифицируются как механические/физические и химические методы, и пока отсутствуют чёткие научные доказательства превосходства этихметодов 7,8. Результаты недавнего мета-анализа показали, что кюреты с титановым покрытием, специально предназначенные для дебридмента поверхности имплантатов, не вызывают царапин на поверхности, поскольку их твёрдость схожа с поверхностью импланта и может быть безопасно использована длядезактивации 7. В том же мета-анализе было показано, что использование только вращающихся титановых щёток для дезактивации поверхности имплантата обеспечивает значительное улучшение клинических параметров пародонта, таких как снижение PD и BoP. В рандомизированном клиническом исследовании, сравнивающем эффективность удаления биопленки стальных и пластиковых кюрет, ультразвуковых и титановых ротационных кистей с поверхностей имплантов, Тома и др. сообщили, что ротационные щётки были клинически более эффективны и сохраняли морфологиюповерхности 10. Титановая щётка (TiB), состоящая из никелево-титановых (NiTi) щетинок, имеет более низкий модуль упругости, чем у поверхности импланта, что придаёт щетке гибкость и снижает риск царапания поверхностиимпланта 11. Ещё одним перспективным средством для дезактивации является нетоксичная, биоразлагаемая кисть, изготовленная из натурального полисахарида хитозана, получаемого из хитина, ценящаяся за биосовместимость, биоразлагаемость, бактериостатические и противовоспалительные свойства. Сообщалось, что Хитозан проявляет бактериостатические и противовоспалительные свойства, а также вызывает значительные улучшения клинических параметров при лечении периимплантальных заболеваний12. В отличие от металлических инструментов, он неабразив и предназначен для биологического и механического снижения бактериальнойнагрузки 5,12. Однако до сих пор нет однозначного консенсуса по идеальному агенту для дезактивацииимплантата 13, и необходимы дополнительные исследования для оценки эффективности этих новых кистей с хитозаном на этапе деконтаминации периимплантативного лечения.

Несмотря на обширные исследования по деконтаминации поверхности имплантатов, поиск метода/агента деконтаминации, который обеспечивает оптимальную эффективность очистки при сохранении целостности поверхности, по-прежнему остаётся значительной клинической задачей. С этой точки зрения цель настоящего исследования — оценить способность к очистке и модификацию поверхности в рамках трёх различных протоколов механической дезактивации. Нулевая гипотеза заключается в том, что TiB, киточка для хитозана (ChB) и титановая кюретка (TiC) не имеют значительной разницы в эффективности очистки или модификациях поверхности имплантата после механической дезактивации.

Access restricted. Please log in or start a trial to view this content.

Protocol

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

ПРИМЕЧАНИЕ: Процедуры данного исследования были проведены в соответствии с рекомендуемыми критериями стандартизации экспериментов in vitro 14. Этическое одобрение не требовалось, так как в исследовании использовались коммерчески доступные поверхности имплантатов. В исследовании были установлены импланты диаметром 3,2 мм и длиной 10 мм, с пескоструйной поверхностью с крупной зернистостью и кислотным травлением (SLA). Импланты с разными размерами и характеристиками поверхности были исключены. Расчёт размера выборки проводился согласно Халилу и др. 15. Размер эффекта был взят как 0,90, альфа-ошибка — 0,05, а 95% статистическая мощность дала восемь испытуемых для каждой группы.

1. Подготовка образцов исследований

  1. Импланты погружают в реципиента с красными перманентными чернилами, полностью покрывающими поверхность импланта в течение 10 секунд, и сушите на воздухе для равномерного распределения чернил по поверхностям импланта, описанного Санз-Мартином и др.16 , с помощью драйверного наприцела.
  2. После высыхания в течение 48 часов при комнатнойтемпературе 17 убедитесь, что покрытие красными чернилами равномерно не задерживается после высыхания.
  3. Вводите импланты на 5 мм в акриловые блоки размерами 20 x 20 x 20 мм вручную, используя драйвер имплантата, чтобы обеспечить контролируемое вставление и равномерное положение до отметки глубины 5 мм на корпусе импланта, имитируя горизонтальные дефекты периимплантакласса I 18 (рисунок 1A).
  4. Для поддержания равномерного угла и вертикального положения используйте специально изготовленный параллелометрический направляющий для выравнивания длинной оси импланта, перпендикулярной (90°) поверхности акрилового блока во время установки.
    ПРИМЕЧАНИЕ: Поверхности имплантата должны быть защищены от контакта с рукой и изолированы драйверными надонками во время сушки.

2. Создание системы стандартизации фотографий

  1. Задайте параметры камеры: ISO 100, диафрагма f/32 и экспозиция 1/80 с. В режиме ручной фокусировки используйте макрообъектив с фокусным расстоянием 100 мм.
  2. Разместите кольцевую вспышку (двухточечная макровспышка, дневный баланс 5500 K) под углом 45° относительно поверхности импланта, чтобы обеспечить равномерное освещение и минимизировать отражения. Используйте диффузор, чтобы смягчить свет и уменьшить блики от металлической поверхности.
  3. Разместите камеру на расстоянии 15 см от поверхности импланта и сделайте стандартизированные фотографии в фронтальном виде (0°) от продольной оси импланта на щечной и ротовой поверхности каждого импланта (рисунок 1B).
  4. Проверяйте выравнивание камеры с помощью калибровочной линейки перед каждой сессией съёмки.
  5. Подготовьте индивидуально изготовленную акриловую шину для размещения камеры с углом 30° (вид сверху) и 60° (вид снизу) к длинной оси импланта для стандартизированной оценки корональных и апикальных нитей (рисунок 1C).

3. Применение обработок и получение фотографий

  1. Примените три различных метода дезактивации (см. Таблицу материалов) к открытым щёчным и ротовым поверхностям на каждый имплантат (8 поверхностей из 4 имплантатов), которые обычно применяются при лечении периимплантита в течение 2 минут одним оператором, чтобы устранить смещение (рисунок 2). Контролируйте время работы с помощью секундомера.
  2. Выполняйте все процедуры под стерильным солевым орошением только для устранения возможных комбинированных эффектов химических агентов на эффективность очистки или целостность поверхности.
    1. Для TiC применяйте Gracey Curette типа 11/12 mini с боковым давлением под углом 60° к поверхности.
    2. Нанесите ChB, замоченный стерильным физиологическим раствором перед обработкой, поместить в низкоскоростной накопитель на 800 об/мин, с мягким круговым движением.
    3. Нанесите TiB, помещённый в низкоскоростной накопленник, установленный на 800 об/мин, с мягким круговым движением.
  3. Снова получите стандартизированные фотографии после обработки, как описано на шаге 2 (рисунок 3).

4. Анализ фотографий

  1. После получения всех фотографий оцифровывайте и калибруйте их с помощью программного обеспечения для съёмок (ImageJ v 1.54f). Поскольку импланты были вмонтированы вертикально на 5 мм в акрил, оставшуюся часть 5 мм, видимую на фотографиях, вместе со стандартным диаметром 3,2 мм, вводите в программу с помощью инструмента Straight-Line для обеспечения калибровки.
  2. Обрезайте фотографии так, чтобы включить только оставшиеся 5 мм экспонированной поверхности имплантата, представляющую интересующую область (ROI).
  3. Обрабатывайте изображения в красном, зелёном и синем (RGB) цветном режиме. Конвертируйте в цветные стеки, нажав Image > Type > RGB Stack , чтобы выделить красные области, представляющие остаточные чернила.
  4. Выберите красный канал. Примените порог цвета, нажав на Image > Adjust > Color Threshold, используя диапазоны оттенков 0°-25° и 330°-360°, насыщенность 50-255 и яркость 30-255. Включите опцию «Тёмный фон » для точного обнаружения пятна.
  5. Определите корпус импланта вручную с помощью инструмента выбора полигонов, исключая фон. Сохраните выбранную область в ROI Manager, нажав «Анализировать > инструменты» > ROI Manager , чтобы убедиться, что одна и та же область поверхности анализируется стабильно.
  6. Рассчитайте всю площадь поверхности имплантата и остатки красных чернил, нажав Анализ > измерить > площадь.
  7. Сведите полное удаление чернил к полному отсутствию красных пикселей внутри ROI. Сохраняйте настройки постоянными при анализе изображений для стандартизации.
  8. Рассчитайте остаточный процент окрашивания так: остаточное окрашивание x 100/общая площадь поверхности имплантата с помощью ImageJ (рисунок 4).

5. Анализ морфологии поверхности имплантата

  1. Закодировать образцы, обезвожить этанолом и закрепить их на алюминиевых заготовках углеродной лентой и поместить в устройство для распыления ионов.
  2. Определите среднюю треть открытой поверхности имплантата как ROI для SEM-анализа.
  3. Покройте образцы слоем золота диаметром 20 нм в распылительном покрытии на 90 секунд и поместите в вакуумную камеру при вакуумном давлении 10-3 торр и мощности 10 мА. Всегда носите защитное лабораторное снаряжение и обеспечивайте достаточную вентиляцию во время подготовки образцов.
  4. Поместите образцы с золотым покрытием в вакуумную камеру сканирующего электронного микроскопа и осмотрите их под углом наклона 0° при напряжении ускорения 5 кВ с рабочим расстоянием 9 мм.
  5. Зафиксируйте микрофотографии SEM с увеличением 20x, 500x, 1000x и 5000x для оценки топографических изменений.

6. Статистический анализ

  1. Проведите статистический анализ с помощью программного обеспечения SPSS (версия 27). Выражаем категориальные переменные в виде среднего ± стандартного отклонения, медианы, а также минимальных и максимальных значений.
  2. Оценить нормальность распределения с помощью теста Шапиро-Уилка. Используйте тест Крускаля-Уоллиса для сравнения между тремя группами. Применим тест Манна-Уитни, скорректированный Бонферрони, для парных сравнений, когда данные распределены ненормально. Установить значение на p < 0,05.

Access restricted. Please log in or start a trial to view this content.

Results

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

После обработки ни одна из обработанных поверхностей не проявила полного удаления пятна от чернил. Процент остаточных чернил варьировался в зависимости от типа используемого устройства, а также от угла фотографии. Сравнение остаточных процентов окрашиваний для каждой группы дезактивации показано в Таблице 1.

При сочном и оральном фронтальном виде максимальная эффективность очистки была достигнута в каждом методе дезактивации. TiB оказался самым эффективным методом, оставив наи...

Access restricted. Please log in or start a trial to view this content.

Discussion

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

В настоящем исследовании была протестирована дебридмент поверхности импланта с помощью трёх различных методов инструментирования. Среди трёх проверенных методов механической дезактивации TiB показал наивысшую эффективность очистки и минимальные изменения поверхности имплантатов. Анализ SEM подтвердил, что TiB эффективнее сохраняет морфологию поверхности импланта, тогда как TiC наносит наибольшее повреждение поверхности, и гипотеза исследования была отвергнута. Результаты показали, что до...

Access restricted. Please log in or start a trial to view this content.

Disclosures

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Авторы не сообщают о конфликте интересов.

Acknowledgements

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Импланты для исследования были предоставлены компанией Bilimplant.

Access restricted. Please log in or start a trial to view this content.

Materials

List of materials used in this article
NameCompanyCatalog NumberComments
АкрилИмикрилКонья, ТурцияИспользуется для изготовления подставок для фотографий и экспериментальных горизонтальных дефектов
Камера  Canon EOS 80DТокио, ЯпонияИспользуется для получения стандартизированных фотографий имплантов
Кисть Chitosan Labrida BioClean, Institut Straumann AGБазель, ШвейцарияИспользуется для деконтаминации поверхности имплантата 
Система вспышки освещения SigmaРёдермарк, ГерманияИспользуется для получения стандартизированных фотографий имплантов
Программное обеспечение для создания изображенийImageJNIH, Мэриленд, СШАИспользуется для анализа изображений
ИмплантыБильимплант, PBL 3210Стамбул, ТурцияОсновной учебный материал
Низкоскоростной накопленникNSK AR-YНиппон, ЯпонияИспользуется для деконтаминации с помощью вращающихся щёток
Красные перманентные чернила Staedtler LumocolorНюрнберг, ГерманияОкрашивание импланта для имитации оральной биопленки
Сканирующий электронный микроскопЧоль, JSM 6335FПибоди, Массачусетс, СШАИспользуется для анализа поверхностей
Распылительный коутерPolaron Emitech, SC7640Ист-Эссекс, ВеликобританияСнизить электрическую зарядку образцов SEM для достижения максимально возможного качества изображения
Статистическое программное обеспечениеSPSS 27, IBMНью-Йорк, СШАИспользуется для статистического анализа результатов
Стерильный физиологический раствор  Polifarma, % 0,9 Стамбул, ТурцияИспользуется для орошения во время дезактивации 
Ti BrushNiTi Brush, Hans KoreaКёнги, КореяИспользуется для деконтаминации поверхности имплантата 
Ti curette (мини 11/12T)Ху-ФридиЧикаго, СШАИспользуется для деконтаминации поверхности имплантата 

References

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,
  1. Berglundh, T., et al. Peri-implant diseases and conditions: Consensus report of workgroup 4 of the 2017 World Workshop on the Classification of Periodontal and Peri-Implant Diseases and Conditions. J Clin Periodontol. 45 (20), S286-S291 (2018).
  2. Diaz, P., Gonzalo, E., Villagra, L. J. G., Miegimolle, B., Suarez, M. J. What is the prevalence of peri-implantitis? A systematic review and meta-analysis. BMC Oral Health. 22 (1), 1-13 (2022).
  3. Wada, M., et al. Prevalence and risk indicators for peri-implant diseases: A literature review. Jpn Dent Sci Rev. 57, 78-84 (2021).
  4. Berglundh, T., Jepsen, S., Stadlinger, B., Terheyden, H. Peri-implantitis and its prevention. Clin Oral Implants Res. 30 (2), 150-155 (2019).
  5. İnce Kuka, G., Gürsoy, H. Reconstructive surgical treatment of peri-implantitis with use of a chitosan brush for decontamination- case series with 1-year follow-up. Int J Implant Dent. 10 (1), 60(2024).
  6. Renvert, S., Roos-Jansåker, A. M., Persson, G. R. Surgical treatment of peri-implantitis lesions with or without the use of a bone substitute-a randomized clinical trial. J Clin Periodontol. 45 (10), 1266-1274 (2018).
  7. Baima, G., et al. Surface decontamination protocols for surgical treatment of peri-implantitis: A systematic review with meta-analysis. Clin Oral Implants Res. 33 (11), 1069-1086 (2022).
  8. Cosgarea, R., et al. Efficacy of mechanical/physical approaches for implant surface decontamination in non-surgical submarginal instrumentation of peri-implantitis. A systematic review. J Clin Periodontol. 50 Suppl 26, 188-211 (2023).
  9. Sahrmann, P., et al. Cleaning potential of glycine air-flow application in an in vitro peri-implantitis model. Clin Oral Implants Res. 24 (6), 666-670 (2013).
  10. Toma, S., Brecx, M. C., Lasserre, J. F. Clinical Evaluation of Three Surgical Modalities in the Treatment of Peri-Implantitis: A Randomized Controlled Clinical Trial. J Clin Med. 8 (7), 966(2019).
  11. de Araújo, C. J., da Silva, M. M., Gonzalez, C. H. A comparative study of Ni-Ti and Ni-Ti-Cu shape memory alloy processed by plasma melting and injection molding. Mater Design. 32 (10), 4925-4930 (2011).
  12. Wohlfahrt, J. C., et al. A novel non-surgical method for mild peri-implantitis- a multicenter consecutive case series. Int J Implant Dent. 3 (1), 38(2017).
  13. Wang, H. L., et al. AO/AAP consensus on prevention and management of peri-implant diseases and conditions: Summary report. J Periodontol. 96 (6), 519-541 (2025).
  14. Krithikadatta, J., Gopikrishna, V., Datta, M. CRIS Guidelines (Checklist for Reporting In-vitro Studies): A concept note on the need for standardized guidelines for improving quality and transparency in reporting in-vitro studies in experimental dental research. J Conserv Dent. 17 (4), 301-304 (2014).
  15. Khalil, M. I., Sakr, H. Implant Surface Topography Following Different Laser Treatments: An In Vitro Study. Cureus. 15 (5), e38731(2023).
  16. Sanz-Martín, I., et al. Significance of implant design on the efficacy of different peri-implantitis decontamination protocols. Clin Oral Investig. 25 (6), 3589-3597 (2021).
  17. Luengo, F., et al. In vitro effect of different implant decontamination methods in three intraosseous defect configurations. Clin Oral Implants Res. 33 (11), 1087-1097 (2022).
  18. Monje, A., et al. Morphology and severity of peri-implantitis bone defects. Clin Implant Dent Relat Res. 21 (4), 635-643 (2019).
  19. Sahrmann, P., et al. In vitro cleaning potential of three different implant debridement methods. Clin Oral Implants Res. 26 (3), 314-319 (2015).
  20. Giffi, R., et al. The efficacy of different implant surface decontamination methods using spectrophotometric analysis: an in vitro study. J Periodontal Implant Sci. 53 (4), 295-305 (2023).
  21. Jordan, A., Smojver, I., Budimir, A., Gabrić, D., Vuletić, M. Evaluation of Different Procedures for Titanium Dental Implant Surface Decontamination-In Vitro Study. Bioengineering (Basel). 11 (4), 326(2024).
  22. Larsen, O. I., et al. Antimicrobial Effects of Three Different Treatment Modalities on Dental Implant Surfaces. J Oral Implantol. 43 (6), 429-436 (2017).
  23. Ozgu, I., Ustun, K. Effects of Mechanical Methods Used in Peri-implantitis Treatment on Implant Surface Decontamination and Roughness. J Vis Exp. (217), e67778(2025).
  24. Ronay, V., Merlini, A., Attin, T., Schmidlin, P. R., Sahrmann, P. In vitro cleaning potential of three implant debridement methods. Simulation of the non-surgical approach. Clin Oral Implants Res. 28 (2), 151-155 (2017).
  25. Sammons, R. L., Lumbikanonda, N., Gross, M., Cantzler, P. Comparison of osteoblast spreading on microstructured dental implant surfaces and cell behaviour in an explant model of osseointegration. A scanning electron microscopic study. Clin Oral Implants Res. 16 (6), 657-666 (2015).
  26. Maher, N., et al. An updated review and recent advancements in carbon-based bioactive coatings for dental implant applications. J Adv Res. 72, 265-286 (2025).

Access restricted. Please log in or start a trial to view this content.

Reprints and Permissions

Request permission to reuse the text or figures of this JoVE article

Request Permission

Tags

Implant Surface DecontaminationPeri Implantitis TreatmentMechanical DecontaminationTitanium BrushChitosan BrushTitanium CuretteCleaning EfficacySurface MorphologyScanning Electron MicroscopyBiofilm Removal

Related Articles