Все процедуры на животных проводились в соответствии с установленными институциональными стандартами гуманного ухода и использования лабораторных животных и были официально одобрены Комитетом по этике в отношении животных учреждения. Принимались меры по снижению дискомфорта и стресса у животных, когда это было возможно.
Работы с химическими соединениями, красителями и биологическими образцами следовали установленным практикам биобезопасности для снижения потенциальных рисков. Потенциально опасные вещества — включая параформальдегид, медные реагенты и DHE — обрабатывались с помощью соответствующих средств индивидуальной защиты, включая перчатки, маски и защитные очки. Все отходы, такие как отработанные реагенты и загрязнённые одноразовые предметы, были выделены в специализированные контейнеры для биологической опасности и впоследствии обработаны авторизованными службами по управлению опасными отходами в соответствии с институциональными и экологическими нормами безопасности. Общий экспериментальный дизайн изложен на рисунке 1.

Рисунок 1: Рабочий процесс этого исследования. Пожалуйста, нажмите здесь, чтобы увидеть увеличенную версию этой фигуры.
Культивирование и группировка клеток
Нормальные человеческие астроциты мозга (NHA) и линии клеток глиобластомы A172, U251, LN229 и SHG-44 (см. Таблицу материалов) культивировались в среды DMEM, содержащей 10% сыворотки плода крупного рогатого скота (FBS), и содержались в инкубаторе при 3 °C с 5% CO₂. Среда менялась через день, а клетки проходили, когда они достигали примерно 80% слияния. Подходящая доза и время воздействия CUM были определены с помощью MTT-анализа. Клетки NHA, A172, U251, LN229 и SHG-44 обрабатывались разными концентрациями CUM (0, 2,5, 5, 10, 20 и 4 мкм) в течение 24, 48 и 7 часов соответственно, 23 часа. Затем был добавлен 2 мкл раствора MTT. После часа в каждую скважину добавляли 15 мкл диметилсульфоксида и аккуратно перемешивали. Оптическая плотность (OD) при 45 нм измерялась с помощью считывателя микропластин. Необработанные клетки (контрольная группа) использовались в качестве отрицательных контролей во всех экспериментах.
Клетки A172 и U251 были засеяны и разделены на группы: контрольные, низкодозовые CUM (1 мкм), высокодозированные CUM (2 мкм), ингибитор AKT (MK-2206), ингибитор AKT + ингибитор Wnt (MK-2206 + LGK974) и Elsm-Cu (Elesclomol + CuCl₂), в зависимости от условий лечения. Клетки в группах CUM обрабатывали 10 или 2 мкм CUM в течение 4 часов. Клетки группы MK-2206 получили 1 мкм MK-2206 в течение 2 часа. Клетки группы MK-2206 + LGK974 были обработаны μM LGK974 на час после воздействия MK-2206. Клетки группы Elsm-Cu обрабатывались 100 нМ Элескломолом и μM CuCl₂ в течение 4ч. 14.
Проточная цитометрия
Культивированные клетки A172 и U251 в каждой группе инкубировали с PBS, содержащим раствор окрашивания PI с концентрацией 1 мкг/мл в течение 1 минуты. Клетки затем обработали трипсином 0,25% и собирали методом центрифугирования (20 × г, минимум, комнатной температуры). PI-положительные клетки были обнаружены с помощью потокового цитометра с ПЭ-каналом (возбуждение на 488 нм), а уровень гибели клетокрассчитан 27.
Анализ карбоксифлуоресцеина сукцинимидиламидил аминоэфира (CFSE)
Клетки A172 и U251 инкубировали с красителем CellTrace CFSE при 3 °C в течение 1 минуты в темноте. Затем среда была нейтрализована, а ячейки центрифугированы при 20 × г минимум при комнатной температуре. После сбора клетки культивировались и обработаны в соответствии с их группировками. Интенсивность флуоресценции CFSE была проанализирована с помощью проточной цитометрии (возбуждение на 488 нм)27.
Анализ образования клеточных клонов
Культивированные клетки A172 и U251 были переварены, вновь суспендированы и подсчитаны. Было добавлено два миллилитра подготовленной ячейки. После аккуратного смешивания клетки инкубировали примерно 14 дней. Затем клетки фиксировались 4% параформальдегидом в течение 3 минут, после чего фиксатив отбрасывали. После окрашивания 0,1% кристаллического фиолетового цвета. Были сделаны снимки колонии, и скорость формирования клонов быларассчитана как 14.
Тест на царапину клеток
Клетки A172 и U251 (1 × 106 клеток/скважины) культивировались до достижения 90% слияния. Клеточный монослой был один раз поцарапан стерильным наконечником объёмом 2 мкл для образования раны, а затем обработан разными концентрациями CUM в течение h и 48 час. Изображения были сделаны с помощью микроскопа. Скорость заживления царапины оценивалась с помощью программного обеспечения ImageJ. Изображения конвертировались в 8-битный формат, был установлен единый порог для различия скретч-области от ячейки, а царапинные области на 0 и 48 ч вычислялись с помощью функции Analyze Particles (Анализ частиц ). Скорость заживления от царапины (%) = (дистанция 0 ч − 48 ч) / дистанция 0 ч × 100%23.
Эксперимент Трансвелла
Клетки A172 и U251 подвергались воздействию указанных обработок, затем ферментативно отсоединялись и центрифугировали при 200 × г в течение 5 минут при комнатной температуре. Клетки были вновь суспендированы в безсывороточной среде. Matrigel разбавляли в соотношении 1:8 в безсывороточной среде, тщательно смешивали, и 5 мкл наносили в верхнюю камеру вставки Трансвелла, после чего следовала инкубация через 4 часа. В верхней камере было добавлено всего 5 × 104 элементов на каждую скважину, а 60 мкл среды с добавлением 20% FBS — в нижнюю камеру. После 48 часов инкубации клетки фиксировались с помощью параформальдегида и окрашены кристаллическим фиолетовым цветом. Пять зрительных полей были выбраны из центра и периферии каждой скважины. Клетки наблюдались и снимались под микроскопом. Инвазивные клетки были рассчитаны с помощью ImageJ. Изображения конвертировались в 8-битный формат, устанавливались пороги для различия окрашенных клеток от фона, а функция анализа частиц подсчитывала клетки, мигрировавшиечерез мембрану 23.
Обнаружение митохондриального мембранного потенциала (MMP)
Культивированные клетки A172 и U251 в каждой группе инкубировались с мл рабочего раствора JC-1 в течение 30 минут в темноте. Клетки аккуратно промывались предварительно охлаждённым буфером JC-1, наблюдались и фотографировались с помощью флуоресцентного микроскопа. С помощью возбуждения 488 нм полимерные и мономерные сигналы JC-1 собирались с использованием эмиссионных фильтров 590 нм и 530 нм соответственно. Соотношение красной и зелёной флуоресценции (агрегаты JC-1 к мономерам) было проанализировано с помощью программного обеспечения ImageJ для оценки измененийMMP 28. Изображения красного и зелёного каналов были извлечены отдельно, а средняя интенсивность флуоресценции в том же регионе была количественно оценена.
Обнаружение скорости потребления кислорода (OCR)
Были засеяны культивированные клетки A172 и U251. Пластина помещалась в предварительно нагретый анализатор при 3 °C для адаптации. После адаптации была добавлена среда решимости. После автоматической калибровки пластина уравновешивалась на 15-2 минуты при 3 °C без содержанияCO2. Был измерен исходный OCR, и программа анализа была настроена на фиксацию митохондриального OCR с определёнными интервалами. Данные были экспортированы для последующегоанализа 28.
Флуоресцентное обнаружение реактивных форм кислорода (ROS) с помощью флуоресцентного зонда MitoSOX
Клетки A172 и U251 были скорректированы до плотности 1 × 104 клеток/мл, и 1 мл на каждую скважину был посеян в конфокальной антенне, после чего проводилась лекарственная интервенция. Супернатант клетки был отброшен, и добавлен 1 мл разбавлённого зонда MitoSOX (1:1 000). Клетки инкубировали в темноте при 3 °C в течение 1 минуты. Флуоресцентный сигнал фиксировался с помощью флуоресцентного микроскопа (возбуждение/излучение: 510/580 нм) для оценки уровня митохондриальной ROS29.
Иммунофлуоресценция
Накладки были однажды промыты с помощью DMEM-культурного материала. Затем их помещали в пластины с шестью лунками для клеточного посева и применения лекарств. Через 24 часа клетки фиксировались в 4% параформальдегиде и затем блокировались 5% бычьей сывороткой альбумина (BSA) на 30 минут. Блокирующий раствор был удалён, а также применили разбавленные первичные антитела, направленные на дигидролипоамид ацетилтрансферазу (DLAT) и β-катенин, после чего началась ночная инкубация при°C 30. Затем были введены флуоресцентно маркированные вторичные антитела, которые инкубировали при 3 °C в течение 30 минут. Ядра клеток окрашивались с помощью DAPI, а стекли монтировались с использованием реагента против фейда. Флуоресцентные изображения были получены с помощью флуоресцентного микроскопа, а интенсивность сигнала измерялась с помощью программного обеспечения ImageJ. Изображения преобразовывались в 8-битный формат, и устанавливался постоянный порог для различия целевых сигналов от фоновых шумов. Инструмент «Прямоугольник » использовался для выбора нужных областей клеток, средняя интенсивность флуоресценцииизмерялась на уровне 27. Для визуализации митохондрий клетки обработали 20 нМ MitoTracker Red CMXRos в течение 30 минут, а затем фиксировалипараформальдегидом 30.
Комплект репортера TCF/LEF1 для люциферазы
Активация Wnt/β-катенина в клетках A172 и U251 была оценена с помощью репортерного комплекта люциферазы TCF/LEF1. Репортерный вектор TCF/LEF содержит блок TATA и элементы ответа фактора Т/фактора лимфоидного энхансера (TCF/LEF), что позволяет косвенно обнаруживать транскрипционную активность β-катенина через экспрессию зелёного флуоресцентного белка (GFP). Культивированные клетки A172 и U251 были обратно трансфектированы с помощью 5 нг TCF/LEF репортерного вектора. Через шестнадцать часов после трансфекции интенсивность флуоресценции фиксировалась с помощью считывателя микропластин с настройками возбуждения и излучения 488 и 51 нм соответственно31.
Мыши с опухолями
Десять самцов мышей BALB/c (7 недель, 2 ± 2 г) содержались в специфических условиях без патогенов (2 °C, влажность 65%) с неограниченным доступом к стандартной еде и воде. Все процедуры были утверждены Комитетом по этическому рассмотрению Первой аффилированной больницы Университета Янцзы (No 2023092; дата утверждения: 18.10.2023).
Для создания модели ксенотрансплантата GBM клетки A172 (4 ×10 6 клеток/мл) были взвешены в безсывороточной среде, а 0,1 мл вводилось подкожно в правый бок каждой мыши. Животных случайным образом распределяли либо в контрольную группу, либо в группу лечения CUM (n = 5 на группу). Группа CUM получала 60 мг/кг куркумина ежедневно перорально, а контрольная группа — равный объём физиологического раствора. Диаметры опухоли регистрировались каждые 7 дней с помощью верньерного суппорта, а объём опухоли рассчитывался по формуле 1/2 × длина ×ширина 2 (мм3). Через 5 недель мышей эвтаназии вывихом шейки матки, а опухоли собирались в стерильных условиях для измерениявеса 32.
Анализ TUNEL
Ткани опухоли фиксировались в 4% параформальдегиде в течение 24 часа, обезвоживались этанолом, встраивались в парафин и секцировались толщиной мкм. Срезы были очищены от воска и повторно увлажнены, промыты PBS, обработаны протеиназой K в течение 50 минут для получения антигена и инкубированы с 3% перекисью водорода. В течение 1 часа применялась реактивная смесь TUNEL, после чего применялась реагент против фейда. Флуоресцентные изображения были получены микроскопией, а TUNEL-положительные клетки на поле количественно оценивались с помощью программного обеспечения ImageJ.
Иммуногистохимия
Срезы опухоли с вложением парафина запекались при 6 °C, обезвоскивались в ксилоле и регидратировали с помощью серии градуированного этанола. Забор антигена проводился с использованием нагретого буфера ЭДТА, после чего следовало затухание активности эндогенной пероксидазы. Слайды инкубировали с первичным антителом против Ki-67 в течение ночи при °C. После инкубации вторичным антителом в течение 20 минут срезы окрашивались диаминобензидином (DAB) в течение 5 минут и контрокрашивались гематоксилином. После обезвоживания и установки с нейтральной смолой стекли были снимены под микроскопом. Положительное окрашивание было выявлено по коричневато-жёлтому осадку, а клетки с положительным содержанием Ki-67 количественно измерены с помощью ImageJ27.
Флуоресцентное окрашивание дигидроэтидия (DHE)
Уровни ROS оценивались с помощью окрашивания DHE-флуоресценцией. Замороженные срезы опухолевой ткани были промыты с помощью PBS. Фоновая флуоресценция была затушена, и в каждую секцию добавлялся μM DHE на 3 минуты. После стирки PBS секции запечатывались в темноте. Флуоресценция наблюдалась с помощью микроскопа (возбуждение/излучение: 518/605 нм), и в каждой группе было собрано по пять случайных изображений. ImageJ использовался для количественной оценки уровней ROS.
Обнаружение содержимого Cu2+
Концентрация Cu2+ в клетках GBM и тканях опухолей была измерена с помощью колориметрического набора для обнаружения. Клетки A172 и U251 после обработки были собраны и центрифугированы при 1500 × г в течение 10 минут при °C. Клеточные гранулы были вновь взвешены в 0. мл дистиллированной воды, соникированной на льду и снова центрифугированной. Ткани опухоли были гомогенизированы в дистиллированной воде и аналогично центрифугированы при 4 °C в течение 10 минут. Супернатанты (1 мкл) переносились в пластину с 96 лунками, смешивались с 23 мкл хромогенного реагента, герметизировали и инкубировали в течение 5 минут. Оптическая плотность (OD) измерялась на 58 нм с помощью считывателя микропластин, а уровни Cu2+ —14.
Western Blot (WB)
Белки были выделены из культивированных клеток и тканей опухоли. Супернатанты были получены методом центрифугирования при 12 000 × г в течение 15 минут при 4 °C, а концентрации белков измерялись с помощью анализа BCA. После денатурации образцы разделялись с помощью SDS-PAGE, переносились на мембраны PVDF и блокировались 5% обезжиренным молоком в течение 1 часа. Мембраны промывались в TBST и инкубировали ночью при °C с первичными антителами против FDX1, LIAS, DLAT, DLD, AKT, p-AKT, Wnt3a, GSK-3β, p-GSK-3β, β-катенина, p-β-катенина и β-актина (см. таблицу материалов)14,33. После дополнительных промывок TBST мембраны инкубировали с помощью вторичных антител, конъюгированных с HRP, в течение 1 часа, разработанных с использованием реагента ECL и визуализации с помощью хемилюминесценции. Программное обеспечение ImageJ использовалось для количественной оценки интенсивности сигнала с помощью инструмента выбора прямоугольников и функции анализа Gels. Относительная экспрессия белка рассчитывалась как отношение значения целевой полосы серого к внутреннему контролю (GAPDH). Ядерные экстракты из клеток A172 и U251 были подготовлены с помощью набора для экстракции ядерного белка. Экспрессия β-катенина и ламина B1 была оценена, при этом ламин B1 служил контроллером ядернойнагрузки 34.
Статистический анализ
Количественные результаты отражают среднее значение трёх независимых репликатов. Все данные оценивались с учётом нормального распределения и однородности дисперсии. Для сравнения между несколькими группами использовался односторонний ANOVA, а затем пост-хок тест Тьюки. Данные представлены в виде среднего ± стандартного отклонения (SD). P-значение менее 0,05 считалось статистически значимым. Эти процедуры использовались для обеспечения надёжности данных и поддержки надёжности выводов.