Методическая статья

Изготовление микроканалов с круглым сечением со стенозом с помощью DLP-3D-печати и надувания мембраны PDMS для микрофлюидных сосудистых моделей

DOI:

10.3791/69706

⸱

6 марта 2026 г.

 ,  ,  , 
1School of Biomedical Engineering, International University, 2Vietnam National University Ho Chi Minh City

В этой статье

Краткое содержание

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

В этой статье представлен простой и недорогой метод изготовления круговых микроканалов с использованием цифровой световой обработки (DLP), 3D-печати и надувания мембраны полидиметилсилоксана (PDMS). Метод обеспечивает гладкие, контролируемые и биомиметические каналы, подходящие для применения сосудистых процессов на чипе или орган-на-чипе.

Аннотация

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Микрофлюидные модели, имитирующие сложную архитектуру биологических сосудов, требуют круглых поперечных каналов для точного моделирования гемодинамических условий, сдвигового стресса и поведения клеток в нативных сосудах. Традиционные методы мягкой литографии обычно дают прямоугольные каналы, что приводит к нефизиологическим паттернам потоков и плохой имитации кровеносной системы человека. Здесь мы представляем доступный гибридный метод изготовления, который интегрирует 3D-печатные мастер-формы цифровой обработки света (DLP) с технологией надувания мембраны полидиметилсилоксана (PDMS) для получения высокоточных круглых микроканалов. Основная цель этого протокола — предоставить стратегию без чистых комнат для создания биомиметических сосудистых моделей с настраиваемой геометрией стеноза.

Предлагаемый протокол состоит из четырёх основных этапов: (1) Автоматизированное проектирование (CAD) мастер-форм с компенсацией высоты 10% для учёта усадки материала, (2) DLP-3D-печать и постобработка смольных форм, (3) литье PDMS и склеивание с помощью кислородной плазмы с тонкой упругой мембраной, и (4) контролируемое надувание пневматической мембраны с последующим повторным отливом PDMS для герметизации круглой конструкции. Мы продемонстрировали, что этот подход позволяет точно настраивать диаметры каналов от 300 мкм до 1000 мкм, тщательно регулируя внутреннее давление надува. Производительность полученных микроканалов оценивалась с помощью структурной характеристики, включая анализ поперечного кругового сечения, измерение шероховатости поверхности с помощью сканирующей электронной микроскопии (SEM) и пневматические вспышки для обеспечения стабильности связи. Наши результаты показывают, что этот метод поддерживает доступное и воспроизводимое производство циркулярных микроканалов, предоставляя надежную платформу для будущих исследований в области сосудистой физиологии, моделирования тромбоза и скрининга лекарств.

Введение

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Микрофлюидные системы, имитирующие биологические кровеносные сосуды, жизненно важны для будущих исследований сосудистой физиологии, механизмов заболеваний и лекарственных взаимодействий in vitro 1,2. Среди множества существующих структур тела геометрии кругового сечения имеют решающее значение для точного воспроизведения гемодинамических условий, таких как сдвиговое напряжение и паттерны потока, характерные для естественных сосудов3. Традиционные методы изготовления, такие как мягкая литография или жертвенное формование с использованием проводов или игл, часто приводят к прямоугольным каналам или неполным круговым геометриям, что приводит к искажениям потока и низкой физиологическойзначимости 4,5,6. Кроме того, эти подходы занимают много времени, склонны к несогласованности при многоуровневой сборке и обеспечивают ограниченную масштабируемость при проектировании сложных микроканалов, собранных на сосудьях с более чем двумяветвями 7. Однако недавние достижения в аддитивном производстве, особенно цифровой светообработке (DLP) 3D-печати, открыли новые возможности для быстрого и точного микроканального изготовления сложных структур, включая круглыемикроканалы 8. Кроме того, DLP позволяет печатать индивидуальные геометрии форм с исключительным разрешением, несмотря на отсутствие чистых помещений.

В этом исследовании мы представляем новую стратегию изготовления без чистых комнат, которая интегрирует DLP-3D-печатные формы, сопровождаемую надуванием мембраны полидиметилсилоксана (PDMS). Кратко, этот гибридный протокол состоит из: (1) проектирования и изготовления полуканальной формы для получения полукруглого слоя PDMS, и (2) соединения этого слоя с тонкой пластиковой мембраной, затем пневматического надувания и литья второго слоя для формирования целого круглого микроканала. Эта экспериментальная процедура предлагает простой, недорогой и не допускающий неправильных выравниваний подход, который эффективнее других методов многослойной микрофлюидической сборки. Кроме того, круглость полученных каналов можно точно контролировать путём регулировки давления надува.

Помимо этих преимуществ, предлагаемый протокол также обеспечивает быстрое время изготовления (менее 4 часов). Полученные круговые конструкции высоко согласованы по длинам каналов с малыми диаметрами (например, 300 мкм). Кроме того, экспериментальные результаты в этой работе (например, измерение шероховатости поверхности, оптическая визуализация, измерение угла контакта и испытания на разрывы давления) подтвердили структурную целостность и гидросовместимость, открывая многообещающее будущее в производстве сложных сосудистых микроканальных сетей с поразительной воспроизводимостью и адаптивностью. Наконец, предлагаемый метод особенно подходит для лабораторий с ограниченным доступом к инфраструктуре чистых помещений и обладает большим потенциалом для будущих достижений в области моделирования сосудов на чипе, тромбоза и скрининга наркотиков.

Доступ ограничен. Войдите в систему или начните пробный период, чтобы просмотреть этот контент.

Протокол

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

1. Изготовление главной формы

  1. Дизайн мастер-формы
    ПРИМЕЧАНИЕ: Дизайн мастер-формы микроканала был выполнен с использованием Fusion 360, который можно скачать с официального сайта.
    1. Спроектируйте основу для формы.
      1. Откройте Fusion 360 и создайте новый эскиз на плоскости Oxy.
      2. Набросьте прямоугольный угловой контур на основе Origin (например, 30 мм × 30 мм) в качестве платформы для формы.
      3. Используйте инструмент Fillet , чтобы филить все углы радиусом 3 мм.
      4. Используйте инструмент «Смещение », чтобы сместить базовый контур внутрь на 3 мм и создать контур стены.
      5. Используйте инструмент Extrude , чтобы экструдировать всю поверхность базовой платформы вверх на 2 мм и создать основание. Экструдируйте платформу стены вверх на 4 мм.
      6. Используйте инструмент Фаска с опцией «Две дистанции » в разделе «Изменить », чтобы создать наклон.
      7. Выберите внутренние края стены и установите расстояния между первым и вторым смещением на 0,5 мм и 4 мм соответственно.
        ПРИМЕЧАНИЕ: Этот этап облегчает процесс деформования чипа PDMS в дальнейшем.
    2. Спроектируйте круглый микроканал.
      1. Постройте две плоскости с смещением, которые находятся на расстоянии 5 мм и 15 мм от плоскости Oyz.
      2. На плоскости смещения 5 мм нарисуйте круг диаметром 1 мм, при этом центр смещён на 2 мм от плоскости Oxy.
        ПРИМЕЧАНИЕ: Центр круга должен совпадать с верхней поверхностью основания.
      3. Экструдируйте круглый профиль на 8 мм к внутренней стороне основания, чтобы получить первую сторону правильного сечения микроканала.
      4. На плоскости смещения 15 мм нарисуйте круг диаметром 0,5 мм (или желаемый диаметр стеноза), при этом центр смещен на 2 мм от плоскости кислорода.
      5. Экструдируйте круговой профиль стеноза на 0,25 мм в сторону правильного среза, чтобы получить половину стеноза микроканала.
      6. Используйте инструмент Loft в разделе Create , чтобы соединить обычную секцию и секцию стеноза, чтобы получить полную половину кругового микроканала для стеноза и регулярного круга.
      7. Используйте инструмент Mirror с плоскостью смещения 15 мм в качестве плоскости зеркала, чтобы создать вторую половину кругового микроканала.
      8. Выберите весь полученный круглый микроканал > правой кнопкой мыши > выберите опцию «Переместить/Копировать ».
      9. Сдвините тело микроканала на 0,05 мм вверх (или 10% от диаметра стеноза) вдоль оси Z.
        ПРИМЕЧАНИЕ: Этот этап обеспечивает компенсационную высоту для допуска печати и приводит к улучшенному микроканалу круглой формы.
      10. Создайте четыре дополнительных круговых микроканала тем же методом, чтобы снизить стеноз с 0,4 мм до 0,1 мм.
      11. Используйте инструмент Pattern в разделе Create , чтобы продублировать четыре дополнительных регулярных сечения и 4 дополнительных круговых профиля стеноза.
      12. Корректируйте профили диаметра стеноза в эскизах и применяйте инструмент Loft для каждого микроканала.
      13. Переведите тела микроканалов в позицию компенсации высоты 10%.
    3. Экспортируйте дизайн микроканальной основной формы в виде . Дело STL.
  2. DLP-печать на 3D-принтере
    1. Настройте параметры обработки.
      1. Откройте программное обеспечение Chitubox, выберите « Открыть » на панели инструментов и выберите главную форму в . Файл STL
      2. Разместите форму горизонтально по умолчанию на платформе для программной печати.
        ПРИМЕЧАНИЕ: Проверьте расстояние z = 0, угол = 0°.
        ПРИМЕЧАНИЕ: Используйте опцию «Сделать копию », чтобы сразу разместить и распечатать несколько форм.
      3. Откройте опцию «Печать » на панели инструментов и установите толщину слоя на 25 мкм.
      4. Выберите опцию «Срез » и дождитесь, пока процесс нарезки завершится в предполагаемое время печати. Затем выберите «Печать », чтобы продолжить.
    2. Обработайте мастер-форму после обработки.
      ПРИМЕЧАНИЕ: Существует два этапа промывания спиртом, чтобы удалить весь остаток смолы и добиться менее дефектной поверхности плесени: (1) промывка этанолом и (2) промывка изопропиловым спиртом.
      1. Демолд мастер-форму с основания 3D-принтера.
      2. Протрите печатную конструкцию бумажным полотенцем, а затем стирайте с 70% этанолом в стакане 10 минут.
      3. Тонко промывайте с 99% этанолом в течение 15 минут на станции для мойки.
      4. Высушите форму при комнатной температуре минимум 10 минут.
        ПРИМЕЧАНИЕ: Проверьте наличие белых неправильных пятен на внутренней поверхности формы. Если вокруг микроканалов остался белый налёт, повторите этап мелкой промывки ещё один-два раза.
      5. Подвергайте формы ультрафиолетовому излучению с интенсивностью 20 мВт/см² в течение 5 минут для полного отверждения поверхности.
      6. Сушите формы в духовке при 65 °C минимум 12 часов, чтобы испарить химические остатки и стабилизировать поверхность.

2. Литье PDMS и сборка форм

ПРИМЕЧАНИЕ: изготовление микроканалов на основе PDMS состоит из трёх основных этапов: (1) литье PDMS для первой половины круглых микроканалов, (2) надув мембраны и (3) литье PDMS для циркулярных микроканалов второй половины.

  1. Подготовка к PDMS
    1. Смешивать основу PDMS и отверждающий агент (например, SYLGARD 184) с соотношением веса 10:1.
    2. Дегазируйте смесь в вакуумной камере в течение 10 минут или до тех пор, пока все пузырьки не будут удалены.
  2. Отливка первого полукруглого PDMS-чипа
    1. Поместите 3D-печатную форму на ровную поверхность внутри чашки Петри.
    2. Вылейте дегазированную смесь PDMS на форму до полного погружения (толщина 4 мм выше полукруглого канала).
    3. Вылечить PDMS при 90 °C в течение 40 минут9.
    4. Аккуратно удалите затвердевший слой PDMS из формы и обрежьте края, если нужно.
      ПРИМЕЧАНИЕ: PDMS-чип теперь содержит вогнутые полукруглые микроканалы.
  3. Мембранное соединение
    1. Вырежьте пластиковую мембрану толщиной 25 мкм в виде прямоугольника размером 5 мм x 25 мм и удалите верхний слой мембраны.
    2. Очистите поверхность чипа PDMS несколько раз прозрачной лентой.
    3. Сделайте вход возле конца микроканала с помощью биопсийного перфоратора диаметром 1 мм.
    4. Разместите PDMS-чип и мембрану вперёд на платформе, покрытой алюминиевой фольгой. Аккуратно вставьте платформу внутрь плазменного очистителя.
    5. Включите вакуумный насос на 60 секунд, затем установите уровень кислородной плазмы на 30 Вт с давлением 0,3 Торра на 75 с.
    6. Отключите уровень плазмы и вакуумный насос.
      ПРИМЕЧАНИЕ: Аккуратно отсоедините вакуумный насос, чтобы предотвратить разлив, вызванный резким изменением давления.
    7. Немедленно выровняйте микроканал на чипе PDMS и обработанную поверхность мембраны.
      ПРИМЕЧАНИЕ: Аккуратно расположите оба компонента, чтобы обеспечить правильное выравнивание.
    8. Аккуратно прижмите чип PDMS и мембрану друг к другу.
      ПРИМЕЧАНИЕ: Убедитесь, что микроканал полностью герметичен под мембраной. Используйте пинцет или отметки, чтобы помочь выравнивать их вручную. Не откладывайте более 60 секунд после плазмы, иначе эффективность соединения может снизиться
    9. Поместите склеенное устройство в духовку при 90 °C на 20 минут, чтобы стабилизировать поверхность и повысить прочность сцепления.
  4. Надувание мембран
    1. Настройте систему измерения давления.
      ПРИМЕЧАНИЕ: Система записи давления состоит из трёх компонентов: (1) электрического шприцового насоса, (2) ноутбука и (3) Arduino Mega 2560. Шприц — 50 мл люэр-лок.
      1. Скачайте код для считывания датчика, доступный в Дополнительном файле 1 , и загрузите его на плату Arduino.
        ПРИМЕЧАНИЕ: Проверьте, успешно ли скомпилирован код.
      2. Откройте программное обеспечение Tera Term, чтобы записать журнал давления. Из настройки > последовательный порт > скорость > 115200.
      3. Из файла выберите Журнал , чтобы записывать давление со временем.
      4. Выберите New/Overwrite для записи нового журнала и поставьте галочку в поле Timestamp , чтобы записать журнал давления с временными отметками.
      5. Выберите «Просмотр », чтобы выбрать папку для сохранения журнала давления.
      6. Удержите кнопку включения/выключения на электрическом шприце, чтобы включить его, и нажмите << , чтобы начать настраивать уровень давления.
      7. Подключите иглу диаметром 1,1 мм к входу чипа PDMS и используйте гибкие силиконовые трубки для подключения к выходу насоса шприца.
      8. Установите уровень давления на 30 мл/ч и нажмите на <<, чтобы начать процесс надувания.
    2. Выполните мембранное надувание и PDMS-отливку микроканалов второй половины.
      1. Начните надувание и отслеживайте уровень давления в микроканале через тер-термологический журнал.
      2. Остановите процесс надувания, когда внутреннее давление достигнет желаемого уровня.
        ПРИМЕЧАНИЕ: Рекомендуется диапазон давления надувать от 0,0 до 17,5 кПа, поскольку давление свыше 20 кПа может привести к разрыву мембраны.
      3. Нанесите слой PDMS толщиной 2–3 мм поверх надутой мембранно-PDMS-структуры.
      4. Применяйте непрерывный нагрев при 90 °C в течение 40 минут, чтобы стабилизировать надутую конструкцию.
      5. Выберите Stop logging on Tera Term, чтобы прекратить запись уровня давления, когда второй слой PDMS полностью затвердеет.
      6. Сохраните файл журнала давления для экспериментальных записей и дальнейших исследований.

3. Характеристика полученных сосудистых микрофлюидных чипов PDMS

  1. Характеристика поверхностной шероховатости
    1. Проведите цифровую 3D-микроскопию поверхностей формы и поверхностей каналов
      1. Используйте систему 3D-цифрового микроскопа для характеристики поверхностного рельефа изготовленных PDMS-чипов и соответствующих DLP-3D-печатных форм.
      2. Определите и отметьте три конкретных области анализа для каждого образца.
        ПРИМЕЧАНИЕ: Стенозная секция микроканала (A1), регулярная секция канала (A2) и внешняя плоская поверхность чипа (контроль).
      3. Разместите образец на стадии микроскопа и отрегулируйте фокус для захвата высококачественной 3D-топографии в каждом месте.
      4. Получайте данные о профиле поверхности с помощью встроенного программного обеспечения для создания карт шероховатости и извлечения средней шероховатости поверхности (Sa) и колебаний высоты от пика до долины (Sz).
      5. Экспортировать топографические данные и 3D-визуализацию для сравнения при различных условиях печати (например, ориентации и толщине слоя).
        ПРИМЕЧАНИЕ: Обратите внимание на наклонную стенку в области стеноза, так как поверхностные особенности этой зоны могут существенно влиять на поведение потока вниз по течению и распределение сдвиговых напряжений.
    2. Проведите сканирующей электронную микроскопию (SEM).
      1. Используйте SEM для анализа детальной морфологии поверхности и микроструктуры микроканалов на основе PDMS.
      2. Аккуратно разрезьте область микроканала острым лезвием и закрепите образец на алюминиевых заголовках с помощью проводящей ленты.
      3. Нанесите золотой или платиновый слой на 60 секунд, чтобы уменьшить зарядку.
      4. Захватывайте SEM-изображения при нескольких увеличениях (например, 200× и 400×), нацеливаясь на область стеноза.
      5. Сравните видимость линий слоя, плавность стенок и переходы контуров между вертикально и горизонтально напечатанными чипами, полученными из формы.
        ПРИМЕЧАНИЕ: Ступенчатые артефакты в горизонтально напечатанных образцах и направленные гребни в вертикально печатных формах являются важными показателями качества изготовления и точности потока.
  2. Геометрическая характеристика полу- и полнокруговых микроканалов
    1. Подготовьте поперечные образцы, аккуратно разрезав чип PDMS перпендикулярно оси микроканала с помощью лезвия бритвы.
    2. Используйте флуоресцентный микроскоп для захвата поперечного сечения микроканалов.
    3. Загрузите изображения в программу ImageJ и используйте инструмент линии, чтобы вручную измерить H1, H2 и Wo.
      ПРИМЕЧАНИЕ: H1: Высота формованного полукруглого канала (снизу); H2: Высота надувания мембраны (верх). Wo: Ширина канала у основания.
    4. Рассчитать геометрические коэффициенты (H1 +H 2≈ Wo) для оценки кругового характера и проверки конструкции формы по сравнению с поведением при надувке.
      ПРИМЕЧАНИЕ: В идеале H1 иH 2 равны, и их сумма должна приближаться к Wo в полностью круглом профиле. Отклонения указывают на недостаточность надувания или перерастяжение мембраны.
  3. Проведите тест на прочность пневматического соединения
    ПРИМЕЧАНИЕ: Пневматический тест на разрыв состоит из пяти компонентов: (1) электрического шприцового насоса, (2) датчика давления, (3) микроконтроллера Arduino Mega 2560, (4) последовательного коммуникационного кабеля и (5) ноутбука.
    1. Подключите датчик давления к входу микроканала PDMS через гибкую силиконовую трубку.
    2. Инициализируйте Arduino, загрузив последовательный скрипт чтения данных.
    3. Запустите программное обеспечение Tera Term для мониторинга давления.
    4. Начинайте постепенно подавать давление, запуская шприцовый насос (например, 40 мл/ч).
    5. Записывайте данные о давлении в реальном времени. Продолжайте до тех пор, пока не произойдёт деламинация, разрыв или видимая протечка.
    6. Определите разрывное давление как окончательное зафиксированное значение давления перед разрушением конструкции. Это значение отражает прочность сцепления между мембраной и формованным PDMS-чипом.
  4. Измерьте угол контакта.
    1. Соберите систему измерения угла контакта с помощью цифровой камеры, установленной сбоку, кольцевого светодиодного источника света и ноутбука для съёмки изображений.
    2. Разместите отвергнутый PDMS-чип на ровной стеклянной платформе под камерой.
    3. Нанесите 2 мкл деионизированной воды на поверхность PDMS с помощью микропипетки.
    4. Немедленно зафиксируйте профиль капли с помощью камеры. Экспортируйте изображение для анализа.
    5. Откройте изображение в программном обеспечении ImageJ, выберите плагин Drop Analysis - LB-ADSA в разделе Анализ .
    6. Отрегулируйте кривую, чтобы определить угол контакта.

Доступ ограничен. Войдите в систему или начните пробный период, чтобы просмотреть этот контент.

Результаты

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

В этом исследовании представлен протокол без чистой комнаты для изготовления полнокруговых микроканалов PDMS с использованием DLP-печатных 3D-форм и надувания мембран. Дизайн полукруглых микроканальных форм с разным диаметром стеноза иллюстрирован на рисунке 1, а влияние ориентации печати на разрешение формы показано на рисунке 2. Полный рабочий процесс изготовления — от печати в форме до надувки и литья PDMS второго слоя — показан на рисунк...

Доступ ограничен. Войдите в систему или начните пробный период, чтобы просмотреть этот контент.

Обсуждение

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

В этой работе мы разработали протокол производства без чистой комнаты для циркулярных PDMS-микроканалов с использованием DLP-3D-печати и надувания мембран. Критическим этапом в этом протоколе является интеграция компенсации высоты 10% в конструкцию формы CAD, чтобы учесть внутреннюю изотропную усадку PDMS во время термического отверждения. Кроме того, выбор ориентации печати, в частности вертикальной, жизненно важен для минимизации артефактов «ступенчатого перехода», характерных для адди...

Доступ ограничен. Войдите в систему или начните пробный период, чтобы просмотреть этот контент.

Раскрытие информации

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Авторам нечего заявлять.

Благодарности

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Авторы выражают благодарность Международному университету, Вьетнамскому национальному университету в Хошимине, за лабораторное оборудование и материальную поддержку.

Доступ ограничен. Войдите в систему или начните пробный период, чтобы просмотреть этот контент.

Материалы

Список материалов, использованных в этой статье
ИмяКомпанияКаталожный номерКомментарии
3D-принтерElegoo Saturn 3Н/ДПечать форм на основе DLP
Смола для 3D-печатиJAMG HE, КореяН/ДСмола для общей DLP-печати
Микроконтроллер ArduinoArduino Mega 2560Н/ДИспользуется для мониторинга давления на взрывной стадии
Цифровой 3D-микроскопКейнс, СШАVHX-7100Характеристика поверхностной шероховатости
Цифровая камера-система и nbsp;Изготовление на заказН/ДИспользуется для изображения под углом контакта
Электрический шприцовый насосFresenius SE & Рота KGaA, ГерманияПИЛОТ A2 CE2RS232Используется для надувания при формировании мембран
Флуоресцентный микроскопNikon Eclipse Ti, СШАН/ДГеометрическое измерение микроканала
Программное обеспечение Fusion 360Autodesk, СШАhttps://www.autodesk.com/asean/products/fusion-360Программное обеспечение для проектирования
Программное обеспечение ImageJНациональные институты здравоохранения, СШАhttps://imagej.net/ij/Анализ изображений
Основание и агент для отверждения PDMSДовитч, Кореяhttps://www.dow.com/en-us/pdp.sylgard-184-silicone-elastomer-kit.01064291zИспользуется для литья чипов
ПолидиметилсилоксанНабор силиконового эластомера SYLGARD 1841330-20-7Используется для изготовления чипов
Датчик давленияNXPMPX5700APИзмеряет внутреннее давление во время испытания на разрыв
RAPID смолаЭлегу, Китай—Используется для изготовления мастер-форм
Сканирующий электронный микроскоп (SEM)Чоль, ЯпонияJSM T-100Визуализация морфологии поверхности
Силиконовая мембрана (25 и микро; m)——Используется для надувания мембран

Ссылки

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,
  1. Inagaki, S., Ishida, T. Fabrication of irregularity-free, highly circular cross-sectional microchannel. Micro. 2 (2), 325-333 (2022).
  2. Ma, Q., Ma, H., Xu, F., Wang, X., Sun, W. Microfluidics in cardiovascular disease research: state of the art and future outlook. Microsyst Nanoeng. 7 (1), 19(2021).
  3. Fleischer, S., Tavakol, D. N., Vunjak-Novakovic, G. From arteries to capillaries: approaches to engineering human vasculature. Adv Funct Mater. 30 (37), 1910811(2020).
  4. Li, Z., Hui, J., Yang, P., Mao, H. Microfluidic organ-on-a-chip system for disease modeling and drug development. Biosensors. 12 (6), 370(2022).
  5. Zhang, H., Yang, J., Sun, R., Han, S., Yang, Z., et al. Microfluidics for nano-drug delivery systems: from fundamentals to industrialization. Acta Pharm Sin B. 13 (8), 3277-3299 (2023).
  6. Oh, K. W. Microfluidic devices for biomedical applications: biomedical microfluidic devices 2019. Micromachines. 11 (4), 370(2020).
  7. He, Y., Wu, Y., Fu, J. Z., Gao, Q., Qiu, J. J. Developments of 3D printing microfluidics and applications in chemistry and biology: a review. Electroanalysis. 28 (8), 1658-1678 (2016).
  8. Qiu, J., et al. 3D printing of individualized microfluidic chips with DLP-based printer. Materials. 16 (21), 6984(2023).
  9. Miranda, I., et al. Properties and applications of PDMS for biomedical engineering: a review. J Funct Biomater. 13 (1), (2022).
  10. Kumar, P., Harvie, D. J. E. Energy dissipation during Wenzel wetting via roughness scale interface dynamics. Langmuir. 40 (31), 16190-16207 (2024).
  11. Pandian, N. K. R., Mannino, R. G., Lam, W. A., Jain, A. Thrombosis-on-a-chip: prospective impact of microphysiological models of vascular thrombosis. Curr Opin Biomed Eng. 5 (1), 29-34 (2018).
  12. Nguyen, T. Q., et al. Fabrication method of multi-depth circular microchannels for investigating arterial thrombosis-on-a-chip. Sens Actuators B Chem. 321 (1), 128590(2020).
  13. Nguyen, T. Q., et al. low-cost fabrication of circular microchannels by air expansion into partially cured polymer. Sens Actuators B Chem. 235 (1), 302-308 (2016).

Доступ ограничен. Войдите в систему или начните пробный период, чтобы просмотреть этот контент.

Перепечатки и разрешения

Запросить разрешение на повторное использование текста или иллюстраций этой статьи JoVE

Запросить разрешение

Теги

Похожие статьи