Исследовательская статья

Количественная оценка ДНК с красным комплексом бактерий и статуса пародонта в реальном времени с помощью ПЦР у носителей съемных частичных протезов

DOI:

10.3791/69774

⸱

2 января 2026 г.

 ,  , 
1Department of Prosthodontics, Dental School, Faculty of Medicine, University of Prishtina, 2Department of Reconstructive Dentistry and Gerodontology, School of Dental Medicine, University of Bern, 3Oral Implantology Research Institute, 4School of Dental Medicine, University of Zagreb

В этой статье

Краткое содержание

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Полимеразная цепная реакция в реальном времени (ПЦР) использовалась для количественного определения ДНК красных комплексных бактерий у носителей съемных частичных протезов (RPD). Это исследование обещает новый подход к будущим стратегиям лечения имплантатными протезами для этих пациентов, учитывая роль этих бактерий в развитии периимплантита.

Аннотация

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Установка съёмных частичных протезов (РПД) в полость рта связана с изменениями микрофлоры полости рта со временем. Однако существует мало литературы, изучающей наличие бактерий красного комплекса (RCB) у этих пациентов. Учитывая устоявшуюся роль RCB в развитии пародонтита, периимплантита и различных системных заболеваний, исследование влияния РПД на эти бактерии крайне важно. Цель данного исследования — количественно оценить субгингивальную нагрузку зубов RCB-Porphyromonas gingivalis, Tannerella forsythia и Treponema denticola в абатментах у частично едентульных пациентов, реабилитированных с помощью РПД, с использованием полимеразной цепной реакции в реальном времени (РТ-ПЦР). Второстепенной задачей было оценить состояние пародонтального состояния зубов абатмента и неабатментов, а также определить корреляции между микробной нагрузкой и клиническими показателями пародонта.

Были зачислены тридцать участников, требующих RPD. Дезоксирибонуклеиновая кислота (ДНК) была выделена из бактериальных образцов, полученных из зубов абатментов до (T0) и через 3 месяца после вставки (T3). Квантификация RCB проводилась с помощью RT-PCR и выражалась как «Lg (геномные эквиваленты/образец)». Клинические параметры — индекс налёта (PI), индекс десна (GI), глубина зондирования (PD) и подвижность зуба (TM) — были зафиксированы для абатментных и неабатментных зубов в обоих временных точках.

Зубы опоры показали статистически значимое увеличение нагрузки на RCB у всех трёх целевых видов от T0 до T3: P. gingivalis (1,99 ± 2,01 против 3,64 ± 2,21, p = 0,00003), T. forsythia (2,20 ± 2,17 против 3,56 ± 2,33, p = 0,00009) и T. denticola (0,82 ± 1,41 против 2,35 ± 2,21, p = 0,0001). Хотя пародонтальные параметры были повышены в абатментах по сравнению с неабатментными зубами после лечения, различия не достигли статистической значимости. Среди патогенов T. forsythia проявила наиболее сильную положительную корреляцию с пародонтальными показателями.

Кратковременное использование РПД связано со значительным увеличением колонизации зубов абатментов RCB, что указывает на ранние микробные и воспалительные сдвиги, которые могут предшествовать клинически явному распаду пародонта.

Введение

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Полость рта содержит динамический микробиом, экологический баланс которого критически важен для поддержания здоровьяпародонта 1. Нарушение этого микробного гомеостаза из-за эндогенных и экзогенных факторов может нарушить микробный гомеостаз, создавая благоприятные условия для роста патогенных бактерий, включая пародонтальные патогены, такие как Porphyromonas gingivalis, Tannerella forsythia и Treponema denticola, которые вместе называются бактериями красного комплекса (RCB)2. Эти патогены играют ключевую роль в патогенезе пародонтита и периимплантита, действуя синергетически, обходя защиту хозяина, способствуя воспалению и способствуя разрушению пародонтальных тканей, что часто приводит к потерезубов 3,4. Потеря зубов негативно влияет на способность человека есть и говорить, а также способствует снижению уверенности и благополучия, что увеличивает потребность в протезной компенсации. Одним из наиболее распространённых методов, особенно среди пожилого населения из-за различных местных и общих заболеваний, является протезирование с помощью съёмных частичных протезов (РПД). Однако со временемRPD 5 может привести к различным проблемам.

Убедительные данные свидетельствуют о том, что использование РПД может привести к накоплению зубного налёта и развитию воспаления десен и пародонтальных тканей, особенно уабатментных зубов 6,7,8,9,10. Однако возникновение таких заболеваний полости рта также зависит от приверженности пациента гигиене полости рта, а также от ухода и ухода запротезом 11,12,13,14. Басси и др. в своих исследованиях подчеркнули важность контроля зубного налёта. Они обследовали пациентов, носящих РПД в течение 6–12 лет, и обнаружили, что состояние абатментных зубов в пародонтальном состоянии похоже на неабатментные зубы при регулярной гигиене полости рта. В отличие от этого, состояние пародонта ухудшилось у группы пациентов, которые не придавали значения контролю и поддержанию гигиены полостирта 13.

Несмотря на функциональные преимущества РПД, их введение в ротовую полость затрудняет свободный поток слюны, предрасполагая к образованию пелликулного слоя на поверхности протеза, что может привести к бактериальной колонизации. У пациентов с ПРРЛ выявлены различные виды вредныхбактерий 15. Недавние исследования показали, что уровень патогенов, вызывающих инфекции, связанные с зубным кариесом, таких как Streptococcus mutans16, а также Staphylococcus aureus17, может значительно увеличиваться после установки протезов. Помимо того, что они функционируют как индикатор состояния слизистой полости рта, изменения уровня бактерий, вызванные использованием РПД, могут также привести к развитию стоматологических заболеваний оставшихсязубов 18. Таким образом, если пациенты не поддерживают свои РПД должным образом, под основанием протеза могут возникать анаэробные условия, что может привести к чрезмерному росту патогенных бактерий. Некоторые типы пародонтальных патогенов могут проникать в общий кровообращение через ротоглоточный портал, представляя собой значительный фактор риска развития различных системных заболеваний19,20.

Однако у пациентов с РПД (РПД) по-прежнему мало исследований микробиологических изменений в десневой борозде абатментных зубов. Среди немногих исследований по этой теме использовались традиционные методы обнаружения пародонтальных патогенов, включая тест BANA-ZymeTM и метод посева. Учитывая, что большинство пародонтальных патогенов являются факультативными анаэробами, применение таких методов может привести к трудностям в их выращивании, поскольку в данном контексте требуются условия высокой восстанающей интенсивности и токсичностькислорода 25. Кроме того, доступная стоматологическая литература пока не удовлетворительно рассмотрела связь между такими патогенами и различными пародонтальными показателями в рамках этой точки зрения.

Поэтому, чтобы преодолеть ограничения традиционной микробной культуры и повысить точность диагностики, в этом исследовании использовалась реальная в реальном времени полимеразная цепная реакция (RT-PCR) для количественной оценки нагрузок на красный комплекс бактерий (RCB) в зубах опоры носителей RPD. Параллельно пародонтальный статус как абатментных, так и неабатментных зубов оценивался с использованием стандартизированных клинических индексов. Исследование дополнительно изучало корреляции между бактериальной нагрузкой и параметрами пародонта для лучшего прояснения биологического взаимодействия между использованием протезов и микробной дисбиозом.

Доступ ограничен. Войдите в систему или начните пробный период, чтобы просмотреть этот контент.

Протокол

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

В исследовании участвовали 30 частично адентульных пациентов, которые обращались за протезированием в Клинику стоматологических протезов Университетского стоматологического клинического центра Косово с сентября 2021 по март 2022 года. Этическое одобрение было получено институциональным ревизионным советом (Одобрение No 378/19), и все процедуры соответствовали принципам Хельсинкской декларации. Письменное информированное согласие было получено от всех участников.

Размер выборки был определен на основе предыдущих исследований, которые показывают, что 11–30 участников достаточно для получения значимых результатов по микробным и пародонтическим параметрам среди носителейРПД 21,23. При условии двухстороннего парного t-теста с альфа-уровнем 0,05, анализ мощности показал, что выборка из 28 участников обеспечит 80% мощности для выявления статистически значимой разницы такой величины. Чтобы учесть возможные отчисления, мы зарегистрировали 30 участников. Кроме того, период наблюдения в три месяца был достаточным для наблюдения за увеличением бактериальной нагрузки у этихпациентов 24.

Подходящие пациенты были впервые использовавшими протезы, имея как соседние, так и антагонистические естественные зубы. Критерии исключения включали: глубину зондирования >4 мм, иммунокомпрометированный статус (например, химиотерапия), употребление антибиотиков за последние 90 дней, интенсивное курение (>25 сигарет в день) и когнитивные нарушения, мешающие пониманию процедур РПД.

Всем участникам были получены RPD с защёлкой, изготовленные из каркаса из кобальт-хрома и акриловой смолы (полиметилметакрилат). Дизайн каждого RPD был адаптирован с учётом классификации эдентулизма, качества остаточного гребня и биомеханических особенностей.

Процедура сбора образцов

Сбор образцов проводился исключительно на зубах опор съёмных частичных протезов (RPD) между временными точками T0 и T3. Сначала участников попросили тщательно полоскать горло водой, чтобы удалить остатки пищи. Перед сбором образца выбранный зуб опоры изолировали с помощью хлопковых рулонов для поддержания сухой рабочей среды. Два стерильных бумажных наконечника (No 35; 04 сужаются) были вставлены в десневую борозду на мезиальной и дистальной сторонах щечной поверхности зуба и оставлены на месте на 1 минуту. Бумажные точки затем переносились в стерильную микротрубку с 1,5 мл обычного физиологического раствора и транспортировались в специализированную микробиологическую лабораторию. Образцы хранились при -20°C до процесса выделения ДНК.

Подготовка и амплификация бактериальной ДНК:

Для идентификации T. denticola, T. forsythia и P. gingivalis с помощью RT-PCR 26 использовался тест пародонтоскрина (Таблица материалов). Тест состоит из: подготовки ДНК; амплификацию ПЦР в реальном времени с использованием специфических реагентов (смесь для универсальной бактериальной амплификации, смесь для оппортунистической бактериальной амплификации и смесь для амплификации геномной ДНК человека); а также запись и интерпретация результатов усиления.

Экстракция ДНК проводилась с использованием набора для экстракции ДНК (Таблица материалов), следуя рекомендациям производителя для обеспечения оптимального качества ДНК. Тест использует качественный анализ ПЦР в реальном времени с использованием парафин-герметичной смеси ПЦР. Эта смесь включает внутренний контроль для проверки достоверности ПЦР-анализа и контроль забора образца (SIC) для оценки качества экстракции и подтверждения достаточного количества ДНК для точной амплификации.

ПЦР-амплификация проводилась с использованием специализированных полосок и крышек, реагенты включали раствор Taq-полимеразы, мастер-смесь под парафиновым слоем, образец ДНК и минеральное масло. Программа ПЦР следующая: (i) начальная денатурация при 80 °C в течение 30 с, (ii) денатурация при 94 °C в течение 1 минуты 30 с, (iii) 5 циклов по 30 с при 94 °C (денатурация), 15 с при 64 °C (связывание праймера и удлинение, обнаружение флуоресценции), (iv) 45 циклов по 10 с при 94 °C (денатурация), 15 с при 64°C (связывание и удлинение праймера, обнаружение флуоресценции), (v) 5 с при 94 °C (окончательная денатурация).

Флуоресцентное обнаружение проводилось на каналах Fam и Hex, за исключением лампы No5, где был обнаружен маркер (где флуоресценция была обнаружена на каналах Fam и Rox). Процесс усиления проводился с использованием термических циклеров реального времени (Таблица материалов). Программное обеспечение RealTime для прибора (версия 7.9) использовалось для автоматической регистрации, интерпретации и количественного анализа данных ПЦР-амплификации, что позволило точно оценивать нагрузку патогена.

Микробные нагрузки представлялись как «Lg (геномные эквиваленты/образцы)». Результаты были представлены в трёх диапазонах в отчёте по Parodontoscreen для каждого пациента на основе уровней бактериальной нагрузки следующим образом: P. gingivalis (нормальный <5,0; умеренный ≥5,0; тяжёлый >6,0); T. forsythia (нормальная <5,0; умеренная ≥5,0; тяжёлая >5,5); и T. denticola (нормальный <3,5; умеренный ≥3,5; тяжёлый >5,0).

Клиническое обследование

Клиническое обследование включало детальное изучение пародонтального состояния зубов абатментов и неабатментов на уровне T0 и T3. Индекс налёта (PI) оценивался с помощью зубного зонд согласно критериям Silness-Loe (0-3)27. Состояние десн оценивалось в шести точках на поверхности зуба с использованием индекса дессен (ГИ) по следующим критериям: 0, отсутствие воспаления; 1 — лёгкое воспаление; 2, воспаление с кровоизлиянием десн во время зондирования; 3, сильное воспаление с возможным спонтанным кровотечениемдесна 28.

Глубина зонда (PD) измерялась с помощью зонда Уильямса от края дессен до конца клиническойглубины 29. Подвижность зубов (ТМ) определялась бимануальной пальпацией в горизонтальном и вертикальном направлениях согласно критериюМиллера 30.

Все участники исследования получили адекватное нехирургическое пародонтологическое лечение перед клиническим осмотром, включая удаление зубного налёта и зубного камня с помощью ультразвукового масштабирования. Участников также обучали процедурам гигиены полости рта, таким как чистка зубов и чистка протезов, а также советы по снятию протезов ночью.

Статистический анализ

Данные анализировались с помощью Microsoft Excel и IBM SPSS Statistics for Windows. Описательная статистика (среднее, стандартное отклонение и диапазон) рассчитывалась для возраста, микробной нагрузки и пародонтальных индексов, включая PI, GI, PD и TM. Изменения клинических и микробиологических параметров между периодом до (T0) и 3 месяцами после введения (T3) оценивались с помощью теста Wilcoxon с знаковым рангом для парных непараметрических данных. Точный тест Фишера (моделирование Монте-Карло, двусторонняя) использовался для оценки категориальных данных, связанных с классификацией микробной нагрузки. Коэффициент корреляции ранга Спирмана (ρ) был использован для оценки ассоциаций между микробной нагрузкой и параметрами пародонта. p-значение < 0,05 считалось статистически значимым для всех анализов.

Доступ ограничен. Войдите в систему или начните пробный период, чтобы просмотреть этот контент.

Результаты

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Демография участников

Таблица 1 показывает распределение демографических параметров. Из 30 участников 16 были мужчинами (53,3%), а 14 — женщинами (46,7%). Средний возраст участников составлял 64,6 года, с диапазоном от 48 до 76 лет. Дополнительная информация о социальной демографии приведена в Таблице 1.

Клиническое обследование

В таблице 2 показаны резул...

Доступ ограничен. Войдите в систему или начните пробный период, чтобы просмотреть этот контент.

Обсуждение

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Поддержание оптимальной гигиены полости рта становится всё сложнее с возрастом из-за снижения иммунной реакции и механических ограничений, связанных с протезами, такими как РПД с защастями. Эти условия способствуют накоплению патогенных биопленок, особенно вокруг зубов абатмента, которые служат критически несущими структурами, но также уязвимы к разрушению пародонта. В данном исследовании было направлено решение этих проблем, количественно оценивая нагрузку на красные комплексные бактери...

Доступ ограничен. Войдите в систему или начните пробный период, чтобы просмотреть этот контент.

Раскрытие информации

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

У авторов нет конфликта интересов, которые можно было бы заявлять.

Благодарности

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Ни одного.

Доступ ограничен. Войдите в систему или начните пробный период, чтобы просмотреть этот контент.

Материалы

Список материалов, использованных в этой статье
ИмяКомпанияКаталожный номерКомментарии
Микроцентрифугные трубки объемом 1,5 мл с предохранителемBiotekMT1.5/100
Зубные пинцетыБейдер17/4021-1
Термические циклеры DTprime в реальном времениДНК-технологияТепловые циклеры реального времени
IBM SPSS IBM CorpВерсия 21.0 
Microsoft Excel Microsoft Office 2010
Бумажные очки (No 35; 04 сужается)DiaDentMP210-602
ParodontoScreen КОМПЛЕКТ ДЛЯ ОБНАРУЖЕНИЯ ПЦР В РЕАЛЬНОМ ВРЕМЕНИДНК-технологияR1-P808-S3/5EU
Пародонтальный зондMEDESY548/9PT
PREP-GS PLUSДНК-технологияP-003/2EUНабор для экстракции ДНК;
Программное обеспечение реального времениДНК-технологияВерсия 7.9
Хлорид натрия 0,9%VIOSER

Ссылки

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,
  1. Bostanghadiri, N., et al. Oral microbiota and metabolites: key players in oral health and disorder, and microbiota-based therapies. Front Microbiol. 15, 1431785(2024).
  2. Lamont, R. J., Koo, H., Hajishengallis, G. The oral microbiota:dynamic communities and host interactions. Nat Rev Microbiol. 16 (12), 745-759 (2018).
  3. Hashim, N. T., et al. The global burden of periodontal disease:a narrative review on unveiling socioeconomic and health challenges. Int J Environ Res Public Health. 22 (4), 624(2025).
  4. Cui, Z., Wang, P., Gao, W. Microbial dysbiosis in periodontitis and peri-implantitis:pathogenesis, immune responses, and therapeutic. Front Cell Infect Microbiol. 15, 1517154(2025).
  5. Awawdeh, M., et al. A systematic review of patient satisfaction with removable partial dentures (RPDs). Cureus. 16, e51793(2024).
  6. Almeida, M. L., et al. Evaluation of periodontal parameters on removable partial denture abutment teeth with direct and indirect retainers:a 48-month follow-up. J Int Acad Periodontol. 22 (2), 10-17 (2020).
  7. Dula, L. J., Shala, K. S., Pustina-Krasniqi, T., Bicaj, T., Ahmedi, E. F. The influence of removable partial dentures on the periodontal health of abutment and non-abutment teeth. Eur J Dent. 9 (3), 382-386 (2015).
  8. do Amaral, B. A., et al. A clinical follow-up study of the periodontal conditions of RPD abutment and non-abutment teeth. J Oral Rehabil. 37 (7), 545-552 (2010).
  9. da Fonte Porto Carreiro, A., de Carvalho Dias, K., Correia Lopes, A. L., Bastos Machado Resende, C. M., de Aquino Martins, A. R. Periodontal conditions of abutments and non-abutments in removable partial dentures over 7 years of use. J Prosthodont. 26 (8), 644-649 (2017).
  10. Hamid, N. F. A., Ariffin, F., Adam, F. A., Shuib, S., Ahmad, R. Evolving research on periodontal health of abutment teeth in removable partial dentures:a Scopus-based bibliometric analysis. J Indian Soc Periodontol. 29, 6-13 (2025).
  11. Jorge, J. H., et al. Clinical evaluation of abutment teeth of removable partial denture by means of the Periotest method. J Oral Rehabil. 34 (3), 222-227 (2007).
  12. Bergman, B., Hugoson, A., Olsson, C. O. A 25 year longitudinal study of patients treated with removable partial dentures. J Oral Rehabil. 22 (8), 595-599 (1995).
  13. Bassi, F., Mantecchini, G., Carossa, S., Preti, G. Oral conditions and aptitude to receive implants in patients with removable partial dentures:a cross-sectional study. Part I. Oral conditions. J Oral Rehabil. 23, 50-54 (1996).
  14. Drummond, L. B., Bezerra, A. P., Feldmann, A., Gonçalves, T. M. S. V. Long-term assessment of the periodontal health of removable partial denture wearers:a systematic review and meta-analysis. J Prosthet Dent. 134 (5), 1664-1685 (2025).
  15. Monteiro, D. R., de Souza Batista, V. E., Caldeirão, A. C. M., Jacinto, R. C., Pessan, J. P. Oral prosthetic microbiology:aspects related to the oral microbiome, surface properties, and strategies for controlling biofilms. Biofouling. 37 (4), 353-371 (2021).
  16. Rocha, E. P., Francisco, S. B., Del Bel Cury, A. A., Cury, J. A. Longitudinal study of the influence of removable partial denture and chemical control on the levels of Streptococcus mutans in saliva. J Oral Rehabil. 30 (2), 131-138 (2003).
  17. Bannwart, L. C., et al. Dentistry and intensive care unit:a brief report. Eur J Dent. 16 (2), 449-453 (2022).
  18. Arweiler, N. B., Netuschil, L. The oral microbiota. Adv Exp Med Biol. 902, 45-60 (2016).
  19. Chandra Nayak, S., et al. The oral microbiome and systemic health: bridging the gap between dentistry and medicine. Cureus. 17 (2), e78918(2025).
  20. Navarro-Sánchez, A., Nieto-Vitoria, M. Á, López-López, J. A., Martínez-Crespo, J. J., Navarro-Mateu, F. Is the oral pathogen, Porphyromonas gingivalis, associated to colorectal cancer?: a systematic review. BMC Cancer. 25, 395(2025).
  21. Costa, L., do Nascimento, C., de Souza, V. O., Pedrazzi, V. Microbiological and clinical assessment of the abutment and non-abutment teeth of partial removable denture wearers. Arch Oral Biol. 75, 74-80 (2017).
  22. Mine, K., Fueki, K., Igarashi, Y. Microbiological risk for periodontitis of abutment teeth in patients with removable partial dentures. J Oral Rehabil. 36 (9), 696-702 (2009).
  23. Vanzeveren, C., D'Hoore, W., Bercy, P. Influence of removable partial denture on periodontal indices and microbiological status. J Oral Rehabil. 29 (3), 232-239 (2002).
  24. Veseli, E., Staka, G. Detection of Actinobacillus actinomycetemcomitans DNA in patients with partial and complete dentures by real-time PCR. Int J Biomed. 13 (1), 141-145 (2023).
  25. Imlay, J. A. How oxygen damages microbes:oxygen tolerance and obligate anaerobiosis. Adv Microb Physiol. 46, 111-153 (2002).
  26. ParodontoScreen. , https://dna-technology.com/equipmentpr/pcr-kits-microbiome-composition-screening/parodontoscreen (2025).
  27. Silness, J., Loe, H. Periodontal disease in pregnancy II. Correlation between oral hygiene and periodontal condition. Acta Odontol Scand. 22, 121-135 (1964).
  28. Loe, H., Silness, J. Periodontal disease in pregnancy I. Prevalence and severity. Acta Odontol Scand. 21, 533-551 (1963).
  29. Mombelli, A. Clinical parameters:biological validity and clinical utility. Periodontol 2000. 39, 30-39 (2005).
  30. Anderegg, C. R., Metzler, D. G. Tooth mobility revisited. J Periodontol. 72 (7), 963-967 (2001).
  31. Bergman, B., Ericson, G. Cross-sectional study of the periodontal status of removable partial denture patients. J Prosthet Dent. 61 (2), 208-211 (1989).
  32. Chandler, J. A., Brudvik, J. S. Clinical evaluation of patients eight to nine years after placement of removable partial dentures. J Prosthet Dent. 51 (6), 736-743 (1984).
  33. Zlatarić, D. K., Celebić, A., Valentić-Peruzović, M. The effect of removable partial dentures on periodontal health of abutment and non-abutment teeth. J Periodontol. 73 (2), 137-144 (2002).
  34. Correia, A. R. M., da Silva Lobo, F. D., Miranda, M. C. P., de Araújo, F. M. S., Santos Marques, T. M. Evaluation of the periodontal status of abutment teeth in removable partial dentures. Int J Periodontics Restorative Dent. 38 (5), 755-760 (2018).
  35. Malakar, M., Ravishankar, P. L., Saravanan, A. V., Rao, K. S., Balaji, R. Prevalence of periodontal disease and oral hygiene practices in Kancheepuram district population:an epidemiological study. J Pharm Bioallied Sci. 13 (Suppl 2), S1517-S1522 (2021).
  36. Boillot, A., et al. Education as a predictor of chronic periodontitis:a systematic review with meta-analysis population-based studies. PLoS One. 6 (7), e21508(2011).
  37. Riaz, M., et al. Effect of smoking on periodontal health:awareness among Azra Naheed Dental College patients. Pakistan J Med Health Sci. 17, 612-615 (2023).
  38. Jiang, Y., Zhou, X., Cheng, L., Li, M. The impact of smoking on subgingival microflora:from periodontal health to disease. Front Microbiol. 11, 66(2020).
  39. Veseli, E., Staka, G., Tovani-Palone, M. R. Evaluation of red-complex bacteria loads in complete denture patients:a pilot study. BDJ Open. 9, 7(2023).
  40. Ooshima, T., et al. Occurrence of periodontal bacteria in healthy children:a 2-year longitudinal study. Community Dent Oral Epidemiol. 31 (6), 417-425 (2003).
  41. Cortelli, J. R., et al. Detection of periodontal pathogens in oral mucous membranes of edentulous individuals. J Periodontol. 79 (10), 1962-1965 (2008).
  42. Jung, W. R., Joo, J. Y., Lee, J. Y., Kim, H. J. Prevalence and abundance of 9 periodontal pathogens in the saliva of periodontally healthy adults and patients undergoing supportive periodontal therapy. J Periodontal Implant Sci. 51 (5), 316-328 (2021).
  43. Brill, N., Tryde, G., Stoltze, K., El Ghamrawy, E. A. Ecologic changes in the oral cavity caused by removable partial dentures. J Prosthet Dent. 38 (2), 138-148 (1977).
  44. Tanaka, J., Tanaka, M., Kawazoe, T. Longitudinal research on the oral environment of elderly wearing fixed or removable prostheses. J Prosthodont Res. 53 (2), 83-88 (2009).
  45. Tanaya,, et al. Time dependent oral microflora changes in removable partial denture wearers. Indian J Public Health Res Dev. 12 (2), 373-380 (2021).
  46. Mengatto, C. M., et al. Partial denture metal framework may harbor potentially pathogenic bacteria. J Adv Prosthodont. 7 (6), 468(2015).
  47. Bloch, S., Thurnheer, T., Murakami, Y., Belibasakis, G. N., Schäffer, C. Behavior of two Tannerella forsythia strains and their cell surface mutants in multispecies oral biofilms. Mol Oral Microbiol. 32 (5), 404-418 (2017).

Доступ ограничен. Войдите в систему или начните пробный период, чтобы просмотреть этот контент.

Перепечатки и разрешения

Запросить разрешение на повторное использование текста или иллюстраций этой статьи JoVE

Запросить разрешение

Теги

Porphyromonas gingivalisTannerella forsythiaTreponema denticola
Видео скоро будет доступно

Похожие статьи