Для просмотра этого контента требуется подписка на JoVE. Войдите или начните свой бесплатный пробный период.

Описание случая

Описание случая анапластической лимфома-киназы-отрицательной воспалительной миофибробластной опухоли в передней средостине пожилого мужчины

43 просмотров

⸱

DOI:

10.3791/69850

⸱

26 июня 2026 г.

 ,  ,  ,  ,  , 
1Department of Medical Imaging, Shengli Oilfield Central Hospital, 2Department of Pathology, Shengli Oilfield Central Hospital, 3Department of Pulmonary Medicine, Shengli Oilfield Central Hospital, 4Department of Clinical Laboratory, Shengli Oilfield Central Hospital, 5Department of Ultrasound Examination, Shengli Oilfield Central Hospital

* These authors contributed equally

В этой статье

Краткое содержание

Пожилой пациент с анапластической лимфомакиназой-отрицательной воспалительной миофибробластной опухолью в передней части средостения достиг благоприятного контроля заболевания после полной хирургической резекции и оставался без рецидива в течение двух лет наблюдения.

Аннотация

Воспалительная миофибробластная опухоль (ИМТ) — это редкая мезенхимальная неоплазма промежуточного биологического потенциала, характеризующаяся размножающимися миофибобластными веретентными клетками с заметным воспалительным инфильтратом. Хотя ИМТ чаще встречается у детей и молодых взрослых, первичное поражение переднего медиастинца крайне редко, особенно у пожилых мужчин, и может имитировать более распространённые передние медиастинальные опухоли, такие как тимома или тимусная карцинома. Авторы сообщают о 68-летнем мужчине, у которого случайно обнаружена передняя медиастинальная опухоль. Контрастно-усиленная компьютерная томография грудной клетки и магнитно-резонансная томография выявили поражение переднего медиастинального мягкого тканя размером 6,6 × 3,6 см с гетерогенным усилением, периферическим задержкой усиления, центральной гипоэнтенцией, ограниченной диффузией и неясным интерфейсом с соседними перикардиальными структурами. Пациенту была проведена полная хирургическая резекция с помощью срединной стернотомии. Гистопатологическое исследование показало пролиферацию веретеноклеток с заметным лимфоплазмацитическим инфильтратом, что подтверждает диагноз ИМТ. Иммуногистохимия показала негативность анапластической лимфомакиназы (ALK). Дополнительные дополнительные исследования показали отрицательную окрашивание CD21, CD23 и CXCL13, а также отрицательную малую РНК in situ, кодируемую вирусом Эпштейна–Барра (EBV), что противоречит фолликулярной дендритной клеточной саркоме и поражениям, связанным с EBV. Флуоресцентная гибридизация in situ не выявила перестановок с участием ALK, ROS1, RET или PDGFRB. Пациент успешно восстановился без адъювантной терапии, послеоперационный уровень CA125 и нейрон-специфический уровень энолазы вернулся к норме, и в течение 2 лет наблюдения рецидивов или метастазирования не наблюдалось. Этот редкий случай подчёркивает, что ALK-отрицательный передний медиастинальный IMT следует учитывать при дифференциальной диагностике передних медиастинальных масс в разных возрастных группах. Полная резекция может обеспечить устойчивый контроль заболеваний в отдельных резектируемых случаях, но единичный характер данного отчёта и известный потенциал рецидива IMT поддерживают осторожную интерпретацию и долгосрочное наблюдение.

Введение

Воспалительная миофибробластная опухоль (ИМТ) — это редкая мезенхимальная неоплазма, состоящая из фибробластных или миофибробластных клеток веретенообразной формы, сопровождаемых вариативным хроническим воспалительным инфильтратом, чаще всего плазматическими клетками и лимфоцитами, с редкими эозинофилами и тучнымиклетками 1,2. Согласно последней классификации Всемирной организации здравоохранения (ВОЗ), ИМТ признаётся опухолью промежуточного биологического потенциала, а не чисто реактивным воспалительнымпоражением 3. В классификации мягких тканей ВОЗ 2002 года был официально принят термин «воспалительная миофибробластная опухоль», и опухоль была классифицирована на фибробластные и миофибробластные опухоли с редким метастатическимпотенциалом 4.

Воспалительная миофибробластная опухоль имеет широкое анатомическое распределение и была обнаружена в торакопульмональной области, брюшной полости, желудочно-кишечном тракте, мочевой системе идругих участках 5. Хотя ИМТ чаще сообщается у детей и молодых взрослых, её возрастное распределение варьируется в зависимости от анатомического расположения, и взрослых или пожилых пациентов не следует исключать из рассмотрения толькона основании возраста 6 лет. Легочная ИМТ составляет небольшую долю опухолей легких, но относительно чаще встречается среди доброкачественных опухолей легких удетей 7,8. В желудочно-кишечном тракте ИМТ чаще всего затрагивает тонкую кишку итолстую кишку 9. В мочевой системе мочевой пузырь является наиболее часто поражаемым органом, случаи описаны как у детей, так и увзрослых пациентов 10,11,12. Голова и шея ИМТ составляют примерно 15%–25% всех случаев ИМТ и могут возникать в широком возрастном диапазоне без устойчивой сексуальнойсклонности 13,14. В отличие от этого, первичная ИМТ передней средостия встречается исключительно редко. В этом месте ИМТ может клинически и рентгенологически имитировать более распространённые передние опухоли средностинальной части, включая тимому, тимусную карциному, лимфому, герминогенную опухоль и нейроэндокринную опухоль.

Клинические проявления и визуализационные особенности ИМТ неспецифичны, что может привести к ошибочному диагнозу или задержке лечения, особенно если опухоль возникает в необычном участке. Точный диагноз обычно требует интеграции клинических результатов, мультимодальной визуализации, гистопатологической морфологии, иммуногистохимии и, при доступности, молекулярного тестирования. Это особенно актуально для анапластической лимфомакиназы (ALK)-отрицательной IMT, поскольку негативность ALK не исключает IMT и может требовать рассмотрения альтернативных молекулярных изменений в отдельных случаях. Полная хирургическая резекция остаётся предпочтительным методом лечения резектируемых, локализованных заболеваний; однако прогноз следует интерпретировать осторожно, так как может возникнуть локальный рецидив, и требуется долгосрочное наблюдение. В этой статье сообщается редкий случай ALK-отрицательного первичного переднего медиастинального ИМТ у 68-летнего мужчины, подчёркивая необходимость учитывать ИМТ при дифференциальной диагностике передних медиастинальных опухолей у пожилых пациентов, а также важность интеграции визуализации, гистопатологии, иммуногистохимии и молекулярных факторов при оценке ALK-отрицательных очагов веретеноклеток.

Изложение случая:

68-летний пациент-мужчина был поступлен в больницу 4 марта 2022 года после того, как передняя медиастинальная опухоль была случайно обнаружена во время планового медицинского обследования за неделю до этого. На момент обращения пациентка была без симптомов. Прошлые медицинские и семейные анамнезы пациента не были примечательными. При поступлении физический осмотр выявил бибазилярные трески; Других значимых признаков не было зафиксировано.

Диагностика, оценка и план:

Первичная компьютерная томография грудной клетки с контрастом (КТ) выявила переднюю средостинальную пухлу, что потребовало дальнейшего обследования. Опухолевые маркеры показали слегка повышенный уровень CA125 (42,25 U/mL) и нейронноспецифическую энолазу (NSE; 31,85 нг/мл). Плановые анализы крови, функции печени, рутинная биохимия, профиль свертывания с D-димером, анализ газов артериальной крови и T-SPOT. Анализ на туберкулёз и тестирование на антиядерные антитела не отличались выдающимися. Усиленная КТ грудной клетки (рисунок 1A–D) показала большую переднюю средостинальную мягкотканевую массу (6,6 × 3,6 см) с однородной плотностью. Наблюдалось гетерогенное усиление, с периферическим задержкой усиления и центральным гипоинтенсиментом, что указывает на гетерогенность сосудистости. Поражение имело нечёткий интерфейс с соседними перикардиальными структурами, что указывает на локальное спайку или возможное вторжение. Усиленная магнитно-резонансная томография (МРТ) (рисунок 2A–D) выявила изо- или слегка гиперинтенсивное поражение сигнала T2 с ограниченной диффузией на диффузионно-взвешенной визуализации, что соответствует высокой клеточной опухоли. Динамическое улучшение показало гиперусиление венозной фазы с гетерогенностью сигнала, совместимым с гиперваскулярной опухолью. Плохая граница между перикардом и передней плеврой дополнительно подтверждала возможность локальной адгезии или инфильтрации. Кардиологическое ультразвуковое исследование (рисунок 3) выявило хорошо описанное гипоэхоическое образование (58 × 33 мм) перед правым желудочком, коррелирующее с медиастинальным поражением на КТ/МРТ. Междисциплинарные консультации, включающие торакальную хирургию, радиологию, онкологию и кардиохирургию, пришли к выводу, что результаты визуализации, включая гиперваскулярную пухлу передней медиастинальной области с перикардиальной адгезией и ограничением диффузии, вызывают обеспокоенность по поводу злокачественной опухоли передней средестини, особенно тимомы или тимической карциномы; В дифференциальной диагностике также учитывались лимфома, опухоль герминальных клеток и нейроэндокринная неоплазма. Для окончательной диагностики и лечения была рекомендована хирургическая резекция.

Доступ ограничен. Войдите в систему или начните пробный период, чтобы просмотреть этот контент.

Протокол

1. Этическое заявление и согласие пациента

Этот отчёт по делу был рассмотрен и утверждён Этическим комитетом Центральной больницы нефтяного месторождения Шэнли (Одобрение No YXLL202504301). Комитет по этике отменил требование письменного информированного согласия, поскольку вся информация о пациентах была анонимной, и в публикации не было включено идентифицирующее сведение. Вся информация о идентификации пациента была удалена из клинических, визуализационных, интраоперационных и гистопатологических материалов, представленных в данном отчёте.

2. Операция хирургической резекции

  1. 10 марта 2022 года пациенту ввели общий наркоз.
  2. Первоначальный хирургический доступ был получен с помощью субксифоидного торакоскопического подхода для исследования.
  3. Внутриоперационные результаты подтвердили наличие крупной опухоли в передней средостине с умеренной жёсткостью при пальпации и обширными спайки с окружающими тканями, особенно перикардом.
  4. Из-за размера опухоли и спаек процедура была переведена в медианную стернотомию для обеспечения достаточного контакта и безопасной диссекции.
  5. Опухоль была полностью удалена в блоке с прилегающей жировой тканью и участками перикарда, к которым она была плотно приклеена, что обеспечило отрицательные макроскопические края.
  6. Грудная полость была тщательно исследована, и не обнаружено признаков метастатических отложений или очагов имплантации.

3. Обработка образцов и патологический анализ

  1. Удаленный образец был измерен и подвергнут грубому осмотру.
  2. Образец фиксировался в 10% нейтральном буферном формалине на 24–48 часов.
  3. Фиксированные ткани регулярно обрабатывались с помощью автоматизированного процессора тканей, обезвоживались, очищались и помещались в парафиновый воск.
  4. Парафиновые блоки были разрезаны толщиной 4–5 мкм с помощью микротома.
  5. Срезы окрашивались гематоксилином и эозином (HE) с помощью автоматизированной системы окрашивания HE.
  6. Последовательные сечения использовались для иммуногистохимического (IHC) окрашивания на автоматизированной платформе IHC в соответствии с протоколом производителя. Для каждого цикла окрашивания были включены соответствующие положительные и отрицательные контроли.
  7. Панель антител IHC включала следующие: Виментин, CD35, CD68, β-катенин, Ki-67, панцитокератин (pan-CK), антиген эпителиальной мембраны (EMA), ALK, актин гладкомышечных мускулов (SMA), CD117 и S-100. Клоны антител, разбавления, производители и каталожные номера приведены в Таблице материалов.
  8. Были проведены дополнительные дополнительные исследования IHC и in situ гибридизации для дифференциальной диагностики, включая in situ-кодируемую малую РНК (EBER), кодируемую CD21, CD23, CXCL13 и вирусом Эпштейна–Барра (EBV). Детали антител/зонда приведены в Таблице материалов.
  9. Анализ флуоресцентной гибридизации in situ (FISH) был проведён для оценки перестановок с участием ALK, ROS1, RET и PDGFRB. Детали зонда приведены в Таблице материалов.

Доступ ограничен. Войдите в систему или начните пробный период, чтобы просмотреть этот контент.

Результаты

Следующие результаты были получены при выполнении описанного протокола. Процедура успешно завершила полную макроскопическую резекцию передней медиастинальной массы. Гистопатологический анализ резецированного образца подтвердил окончательный диагноз ИМТ. Результаты гистологического обследования: Микроскопическая оценка срезов с окрашенными HE-оксидами выявила опухолевые клетки в форме веретена, расположенные в пучках или сториформном узоре. Клетки демонстрировали обильное количество эозин...

Доступ ограничен. Войдите в систему или начните пробный период, чтобы просмотреть этот контент.

Обсуждение

Воспалительная миофибробластная опухоль — это редкая мезенхимальная опухоль, состоящая преимущественно из веретенообразных миофибробластных или фибробластных клеток, сопровождаемых вариативным воспалительныминфильтратом 15. Патогенез ИМТ до конца не прояснен, несмотря на относительно чётко определенные гистологические особенности. Хроническая воспалительная стимуляция была предложена как один из возможных факторов развития опухоли, но сейчас IMT обычно рассматрива...

Доступ ограничен. Войдите в систему или начните пробный период, чтобы просмотреть этот контент.

Раскрытие информации

Авторам нечего раскрывать.

Благодарности

Авторы не имеют признаний.

Доступ ограничен. Войдите в систему или начните пробный период, чтобы просмотреть этот контент.

Материалы

Список материалов, использованных в этой статье
ИмяКомпанияКаталожный номерКомментарии
10% neutral buffered formalinGuangzhou Weiges Biotechnology Co., Ltd.5200015Используется для фиксации резецированного образца опухоли.
ALK antibodyFuzhou Maixin Biotech Co., Ltd.MAB-0281Клон ALKp80 (5A4); готовый к использованию; используется для иммуногистохимии ALK.
Automated H&E staining systemRoche Diagnostics/Ventana Medical SystemsVENTANA HE 600Используется для автоматизированного окрашивания гематоксилином и эозином.
Automated IHC staining platformRoche Diagnostics/Ventana Medical SystemsVENTANA BenchMark ULTRAИспользуется для иммуногистохимического окрашивания.
Automated tissue processorThermo Scientific/EprediaA82300001Используется для дегидратации, очищения и инфильтрации парафином фиксированной ткани.
β-catenin antibodyFuzhou Maixin Biotech Co., Ltd.MAB-0754Клон MX043; готовый к использованию; используется для оценки экспрессии β-катенина.
Buffer solutionRoche Diagnostic Products (Suzhou) Co., LTD86187Используется для поддержания соответствующего pH во время автоматизированных процедур окрашивания.
Cardiac ultrasound systemPhilipsEPIQ 7CИспользуется для предоперационного ультразвукового исследования сердца для оценки передне-средостенальной массы и ее связи с правым желудочком.
CD117 antibodyFuzhou Maixin Biotech Co., Ltd.Kit-0029Клон YR145; готовый к использованию; используется для исключения KIT-положительных опухолей.
CD21 antibodyFuzhou Maixin Biotech Co., Ltd.RMA-1030Клон MXR015; готовый к использованию; используется для исключения KIT-положительных опухолей.
CD23 antibodyFuzhou Maixin Biotech Co., Ltd.RMA-0504Клон SP23; готовый к использованию; используется для исключения KIT-положительных опухолей.
CD35 antibodyFuzhou Maixin Biotech Co., Ltd.RM-0768Клон EP197; готовый к использованию; используется для оценки экспрессии CD35 и помощи в дифференциальной диагностике.
CD68 antibodyFuzhou Maixin Biotech Co., Ltd.Kit-0026Клон KP1; готовый к использованию; используется для оценки окрашивания, связанного с гистиоцитами/макрофагами.
CT scannerSiemens AGSOMATOM Force CTИспользуется для контрастно-усиленной КТ груди для оценки передне-средостенальной массы.
CXCL13 antibodyFuzhou Maixin Biotech Co., Ltd.MAB-1007Клон MX107; готовый к использованию; используется для оценки экспрессии CD35 и помощи в дифференциальной диагностике.
Decolorizing solutionRoche Diagnostic Products (Suzhou) Co., LTD86184Используется для депарафинизации/деколоризации во время автоматизированного окрашивания гематоксилином и эозином.
EMA antibodyFuzhou Maixin Biotech Co., Ltd.Kit-0011Клон E29; готовый к использованию; используется для оценки экспрессии антигенов эпителиальной мембраны.
Eosin staining solution VENTANA HE 600 EosinVentana Medical Systems86183Используется для окрашивания цитоплазмы и внеклеточного матрикса во время автоматизированного окрашивания гематоксилином и эозином.
Glass cover slipVentana Medical Systems86188Используется для покрытия окрашенных секций тканей для микроскопического исследования.
Hematoxylin staining solution VENTANA HE 600 HematoxylinVentana Medical Systems86189Используется для ядерного окрашивания во время автоматизированного окрашивания гематоксилином и эозином.
Ki-67 antibodyFuzhou Maixin Biotech Co., Ltd.RMA-0731Клон MXR002; готовый к использованию; используется для оценки индекса пролиферации опухоли.
MicrotomeLeica Biosystems149BIO000C1Используется для резки 4–5 мкм парафиновых секций.
MRI systemSiemens AGMAGNETOM Trio Tim 3.0T MRIИспользуется для контрастно-усиленного МРТ груди и диффузионно-взвешенного исследования.
Pan-Cytokeratin antibodyFuzhou Maixin Biotech Co., Ltd.Kit-0009Клон AE1/AE3; готовый к использованию; используется для исключения эпителиальной опухолевой дифференциации.
Paraffin waxFujian Weiao Medical Equipment Co., Ltd.WP-58/60Используется для встраивания обработанных образцов тканей.
Recoloring dye solutionRoche Diagnostic Products (Suzhou) Co., LTD86185Используется в качестве вспомогательного окрашивающего реагента для улучшения контраста во время автоматизированного окрашивания гематоксилином и эозином.
S-100 antibodyFuzhou Maixin Biotech Co., Ltd.RMA-1075Клон MXR0347; готовый к использованию; используется для исключения нервной или меланоцитарной дифференциации.
Sample preservation solution VENTANA HE 600 Coverslip ActivatorVentana Medical Systems86181Используется во время автоматизированного процесса накрытия секций на системе VENTANA HE 600.
Smooth Muscle Actin antibodyFuzhou Maixin Biotech Co., Ltd.Kit-0006Клон 1A4; готовый к использованию; используется для оценки дифференциации гладкомышечных клеток/миофибробластов.
VENTANA HE 600 Cleaning SolutionRoche Diagnostic Products (Suzhou) Co., LTD86190Используется для рутинной чистки и технического об

Ссылки

  1. Leivaditis, V., et al. Inflammatory myofibroblastic tumor of the lung: A comprehensive narrative review of clinical and therapeutic insights. Kardiochir Torakochirurgia. Pol. 22 (1), 32-43 (2025).
  2. Sheng, J. M., Xia, J. D., Yao, K. L. Analysis of misdiagnosis reasons for 1 case of anterior mediastinal inflammatory myofibroblastic tumor. Chinese Journal of Clinical Medical Imaging. 35 (4), 294-295 (2024).
  3. Sbaraglia, M., Bellan, E., Dei Tos, A. P. The 2020 WHO classification of soft tissue tumors: News and perspectives. Pathologica. 113 (2), 70-84 (2021).
  4. Pathology and Genetics of Tumors of Soft Tissue and Bone. Fletcher, C. D. M., Unni, K. K., Mertens, F. , 3rd ed, IARC Press. Lyon. (2002).
  5. Singh, G., et al. Inflammatory myofibroblastic tumor in the intradural extramedullary space of the lumbosacral spine: A case report and review of the literature. Childs Nerv Syst. 41 (1), 24(2024).
  6. Ballal, D. S., Panjwani, P., Samreen, S. Q., Sajid, S. Q. Can chemotherapy facilitate less morbid surgery in multicentric intra-abdominal inflammatory myofibroblastic tumor? J Gastrointest Cancer. 56 (1), 107(2025).
  7. Khatri, A., et al. Inflammatory myofibroblastic tumor of the lung. Adv Respir Med. 86 (1), 27-35 (2018).
  8. Choi, J. H. Inflammatory myofibroblastic tumor: An updated review. Cancers (Basel). 17 (8), 1327(2025).
  9. Gwizdon, M., Kalinski, T., Schreyer, A. G. Inflammatory myofibroblastic tumor of the colon: A rare aggressive course. Rofo. 198 (4), 524-527 (2026).
  10. Beland, L. E., et al. Inflammatory myofibroblastic tumor of the bladder in childhood: A three-case series. Urology. 200, e72-e75 (2025).
  11. Li, Y. P., Han, W. W., Yang, Y., He, L. J., Zhang, W. P. Inflammatory myofibroblastic tumor of the urinary bladder and ureter in children: Experience of a tertiary referral center. Urology. 145, 229-235 (2020).
  12. Ren, H., et al. Case report: Clinical response of ensartinib for an inflammatory myofibroblastic tumor of the urinary bladder with multiple metastases and TPM4-ALK fusion. Front Oncol. 15, 1481602(2025).
  13. Saxena, V., Gopalakrishnan, V., Rangarajan, H., Kaushal, U., Choraria, N. Inflammatory myofibroblastic tumor of maxilla; a rare entity to encounter: From resection to rehabilitation-a case report with review of literature. J Maxillofac Oral Surg. 24 (5), 1402-1407 (2025).
  14. Liu, F., et al. Therapeutic strategy and prognostic analysis of inflammatory myofibroblastic tumor in the head and neck: A retrospective study. PeerJ. 13, e19315(2025).
  15. Chmiel, P., et al. Inflammatory myofibroblastic tumor from molecular diagnostics to current treatment. Oncol Res. 32 (7), 1141-1162 (2024).
  16. Liu, J. L., et al. Vaginal superficial myofibroblastoma: A rare mesenchymal tumor of the lower female genital tract and a study of its association with viral infection. Med Mol Morphol. 45 (2), 110-114 (2012).
  17. Thirunavukkarasu, B., Roy, P. S., Gupta, K., Sekar, A., Bansal, D. Infantile inflammatory myofibroblastic tumor of spleen. Fetal Pediatr Pathol. 41 (3), 475-479 (2022).
  18. Helal, I., et al. Inflammatory myofibroblastic tumor of the spleen: A diagnostic challenge. Int J Surg Case Rep. 129, 111086(2025).
  19. Okuda, K., et al. Pulmonary inflammatory myofibroblastic tumor with TPM4-ALK translocation. J Thorac Dis. 9 (11), e1013-e1017 (2017).
  20. Billingsley, B. C., et al. Inflammatory myofibroblastic tumor of the esophagus and stomach successfully treated with alk inhibitor in a pediatric patient: A case report and concise review of literature. Int J Surg Pathol. 33 (1), 145-152 (2025).
  21. Han, Q., et al. Case report: Early distant metastatic inflammatory myofibroblastic tumor harboring EML4-ALK fusion gene: Study of two typical cases and review of literature. Front Med (Lausanne). 9, 826705(2022).
  22. Parra-Herran, C. Alk immunohistochemistry and molecular analysis in uterine inflammatory myofibroblastic tumor: Proceedings of the ISGYP companion society session at the 2020 USCAP annual meeting. Int J Gynecol Pathol. 40 (1), 28-31 (2021).
  23. Özcan, H. N., Atak, F., Oğuz, B., Kutluk, T., Haliloğlu, M. Imaging findings of primary lung tumors in children. Diagn Interv Radiol. 30 (6), 419-426 (2024).
  24. Zheng, Y., et al. A case report: Pathological complete response to neoadjuvant lorlatinib for epithelioid inflammatory myofibroblastic sarcoma with EML4-ALK rearrangement. Front Pharmacol. 15, 1401428(2024).
  25. Bălăceanu, L. A., et al. CA125 as a Potential Biomarker in Non-Malignant Serous Effusions: Diagnostic and Prognostic Considerations. J Clin Med. 14 (12), 4152(2025).
  26. Cheng, Z., et al. Treatment, Prognostic Markers, and Survival in Thymic Neuroendocrine Tumors, with Special Reference to Temozolomide-Based Chemotherapy. Cancers (Basel). 16 (14), 2502(2024).
  27. Zhang, K. Y., Chen, L. Progress in imaging diagnosis of retroperitoneal inflammatory myofibroblastic tumor. Journal of Medical Imaging. 30 (8), 1490-1493 (2020).
  28. Poyraz, N., Yazar, M. E., Kılınç, F., Korkmaz, C., Altınok, T. Inflammatory myofibroblastic tumor of the lung: Histopathology and imaging findings. Tuberk Toraks. 68 (3), 321-327 (2020).
  29. Facchetti, F., Simbeni, M., Lorenzi, L. Follicular dendritic cell sarcoma. Pathologica. 113 (5), 316-329 (2021).
  30. Henriques De Gouveia, R. Inflammatory myofibroblastic tumor of the heart: A brief overview. Rev Port Cardiol. 42 (2), 171-172 (2023).
  31. Zhang, Q., et al. Clinical diagnosis and treatment of abdominal inflammatory myofibroblastic tumors. Discov Oncol. 16 (1), 554(2025).
  32. Iwai, H., et al. Surgical treatment for lung metastasis of inflammatory myofibroblastic tumor of the lung: A case report. Thorac Cancer. 14 (17), 1644-1647 (2023).
  33. Si, X., et al. Chinese expert consensus on the diagnosis and treatment of inflammatory myofibroblastic tumor. Thorac Cancer. 16 (5), e70027(2025).
  34. Zhang, P., Wang, C., Lv, Z., Du, M., Xu, R. Crizotinib combined with bronchoscopic interventional treatment in alk-positive inflammatory myofibroblastic tumor of left main stem bronchus: A case report. J Cardiothorac Surg. 18 (1), 318(2023).
  35. Comandini, D., et al. Outstanding response in a patient with ROS1-rearranged inflammatory myofibroblastic tumor of soft tissues treated with crizotinib: Case report. Front Oncol. 11, 658327(2021).
  36. Baldi, G. G., et al. The activity of chemotherapy in inflammatory myofibroblastic tumors: A multicenter, European retrospective case series analysis. Oncologist. 25 (11), e1777-e1784 (2020).
  37. Tao, Y. L., Wang, Z. J., Han, J. G., Wei, P. Inflammatory myofibroblastic tumor successfully treated with chemotherapy and nonsteroidals: A case report. World J Gastroenterol. 18 (47), 7100-7103 (2012).
  38. Guo, H., et al. Case report: The role and value of radiotherapy in the treatment of inflammatory myofibroblastic tumor. Front Oncol. 14, 1395787(2024).
  39. Qian, X., et al. Treatment of intracranial inflammatory myofibroblastic tumor with PD-L1 inhibitor and novel oncolytic adenovirus AD-TD-nsIL12: A case report and literature review. Front Immunol. 15, 1427554(2024).

Доступ ограничен. Войдите в систему или начните пробный период, чтобы просмотреть этот контент.

Перепечатки и разрешения

Теги

232232
Свяжитесь с нами
Рекомендовать библиотеке

Конфиденциальность

Условия эксплуатации

Политика

Авторские права © 2026 MyJoVE Corporation. Все права защищены.