Методическая статья

Разработка эффективной модели расширения мышиной ткани для исследований регенерации кожи

DOI:

10.3791/69865

⸱

6 марта 2026 г.

 ,  ,  ,  ,  ,  ,  ,  , 
1Department of Plastic and Reconstructive Surgery, Shanghai Ninth People's Hospital, Shanghai Jiaotong University School of Medicine, 2Department of Plastic and Reconstructive Surgery, Shanghai Tenth People's Hospital, Tongji University School of Medicine

* These authors contributed equally

В этой статье

Краткое содержание

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Это исследование представляет собой практический и эффективный протокол для создания модели непрерывного расширения тканей у крыс, что способствует изучению механизмов и совершенствованию технологий регенерации кожи.

Аннотация

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Регенерация кожи необходима для заживления различных поверхностных ран и может стимулироваться механической стимуляцией. Расширение тканей — широко используемая стратегия для ускорения регенерации кожи за счёт контролируемого механического растяжения; однако клиническая эффективность часто ограничена несоответствием механической нагрузки и регенеративной способности кожи. Для решения этого ограничения срочно требуется разработка стандартизированной модели расширения тканей на животных. В этом исследовании мы установили модель расширения тканей у крыс Спраг-Доули. После дорсальной имплантации тканевого экспандера объемом 10 мл сразу после операции было введено 5 мл физиологического раствора. После двухнедельного периода восстановления животным проходили режим дважды в неделю инъекций физиологического раствора (10 мл за сеанс). Кинетика расширения демонстрировала характерную тенденцию быстрого роста кожи с постепенным замедлением. На поздних стадиях наблюдались серьёзные осложнения, такие как некроз кожи, разрушение тканей и воздействие экспандеров. Эта работа устанавливает воспроизводимую доклиническую структуру, которая тесно имитирует физиологические и патологические процессы расширения человеческих тканей, предоставляя базовую модель для изучения регенеративных механизмов и оптимизации клинических протоколов.

Введение

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Кожа служит первой линией защиты организма, обеспечивая механическую защиту и предотвращая потерю воды, а также играя ключевую роль в регуляции температуры, внешнем раздражительном ответе ииммунитете. Кожные раны часто встречаются в клинической практике, возникающие в результате травм, микробных инфекций, химических повреждений и хирургическойрезекции 2. Хотя небольшие раны могут заживать при нормальном виде, крупные травмы обычно оставляют сильные фиброзные рубцы, которые нарушают функцию тканей и могут даже стать опаснымидля жизни 3. Аутологичная пересадка кожи полной толщины широко считается золотым стандартом для лечения крупных ран и предотвращениярубцов 4. Однако получение достаточного количества трансплантируемой кожи остаётся критической клинической задачей. В результате разработка инновационных технологий регенерации кожи стала центральным направлением в области регенеративной медицины и биоматериалов5.

С тех пор как Нойман впервые ввёл принцип расширения тканей в 1957 году, имплантировав полиэтиленовый баллон в постаурикулярную область сосцевидной кости для реконструкции деформацииуха 6, эта техника значительно эволюционировала. Сегодня это один из самых широко используемых методов в реконструктивной хирургии и остаётся важным способом лечения серьёзных кожных дефектов. В частности, расширение тканей создаёт дополнительную аутологичную ткань, привлекая соседнюю кожу и стимулируярегенерацию 7. Благодаря механической стимуляции вновь образовавшаяся кожа очень похожа на родную кожу как внешне, так и по структуре, что делает её идеальной для клиническогоприменения 8. Однако из-за несоответствия величины нагрузочной силы и скорости роста кожи на поздней стадии количество собранной кожи оказывается недостаточным для масштабного покрытияран 9. Кроме того, развитие технологий расширения тканей затрудняется низкой эффективностью расширения, серьёзными осложнениями, неполными количественными показателями оценки и плохо охарактеризованными молекулярнымимеханизмами 10. Учитывая сложность регулирующих сетей in vivo, подходящие животные модели расширения тканей необходимы для точного повторения физиологических и патологических реакций кожных тканей на механическую стимуляцию.

В настоящее время основным выбором для исследований in vivo являются модели мышей (мыши и крысы) и свиней. Модели расширения спины или кожи головы у мыши широко используются благодаря их простоте эксплуатации; однако кожа слишком тонкая, чтобы выдержать длительное или непрерывноерасширение 12. Модель дорсального расширения крысы подходит для непрерывного расширения благодаря своему обширному подкожному пространству, но отсутствие окончательного протокола для прекращения расширения ограничивает её клиническуюприменимость 13,14. Хотя свиная кожа обладает наибольшей степенью гомологии с человеческой кожей, её низкая эластичность приводит к задержке реакций на механическое растяжение, а необходимость глубокой седации во время процесса значительно усложняет экспериментальныеманипуляции 15. Поэтому разработка подходящей модели непрерывного расширения, имитирующей клинический процесс, остаётся научной проблемой.

Целью этого исследования было разработать модель непрерывного расширения кожи на крысах. Кратко времени в дорсальную область крыс Спраг-Доули (SD) вводили силиконовый экспандер объемом 10 мл, а после операции сразу же вводили 5 мл физиологического раствора. После двухнедельного периода восстановления дважды в неделю вводилось 10 мл физиологического раствора до достижения общего объёма 155 мл, после чего наблюдалось значительное снижение генерации кожи, что свидетельствует об исчерпании регенеративных способностей. Регенеративное истощение означает критическое снижение регенеративной способности кожи, характеризующееся на клеточном уровне снижением пролиферативного потенциала и разрушением внеклеточногоматрикса 16. Макроскопически это проявляется в виде заметного ухудшения текстуры кожи, проявляющегося в виде истончения кожи, ишемии и расширения строек, что может привести к некрозу и разрушениютканей 17. Помимо технической простоты, эта доклиническая модель успешно воспроизводит непрерывное расширение кожи, позволяя исследователям изучать различные этапы расширения, адаптированные к конкретным целям исследования. Этот метод моделирования также можно применить к генетически модифицированным крысам, что облегчает выявление ключевых функций генов и тем самым раскрывает основные механизмы. Кроме того, обширная поверхность спинной кожи способствует самоконтролируемому проектированию исследований, позволяя применять как экспериментальные, так и контрольные методы на одном и том жеживотном 18. В совокупности эта модель служит полезным инструментом для изучения специфических механизмов, участвующих в расширении тканей, и способствует преодолению современных технологических ограничений.

Доступ ограничен. Войдите в систему или начните пробный период, чтобы просмотреть этот контент.

Протокол

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Все процедуры на животных были одобрены Этическим комитетом Шанхайской девятой народной больницы (No SH9H-2025-A1673-1) и проводится в соответствии с Руководством Национального института здоровья по уходу и использованию лабораторных животных.

1. Подготовка

  1. Акклиматизируйте всех SD-крыс за 7 дней до начала исследования. Содержать крыс SD в животном доме с циклом света 12 часов и 12 часов темноты. Обеспечивайте стандартную диету на основе пшеницы и сои и воду ad libitum на протяжении всего эксперимента.
  2. Спроектировать полукруглые тканевые экспандеры объёмом 10 мл для экспериментального использования (рисунок 1A), которые включают расширенный баллон, инъекционный порт и соединительный катетер. Стерилизуйте экспандеры с помощью электронно-лучевого облучения (25 кГ). Перед операцией проверьте целостность каждого экспандера для обеспечения безопасности. Введите 10 мл физиологического раствора через инъекционный отверстие, затем осмотрите промежутость соединительного катетера и его расширение, чтобы убедиться в отсутствии протечки воды.
    ПРИМЕЧАНИЕ: Сливайте заранее введённый обычный физиологический раствор.

2. Предоперационный и внутриоперационный уход за животными

  1. Приобретайте самцов SD крыс возрастом 6-8 недель, весом 240-260 г.
  2. Анестезировать крыс SD путём вдыхания изофлурана. Поместите крыс в индукционную камеру и введите анестезию с использованием 5% изофлурана при расходе 3 л/мин. Поддерживайте анестезию во время операции с 2% изофлураном при расходе 1,5 л/мин.
  3. Поместите анестезированных SD-крыс на ватный диск для поддержания тепла во время операции и положите их на подогреваемую прокладку (примерно 28 °C) на 20 минут после восстановления после анестезии, чтобы предотвратить гипотермию.
  4. Используйте рефлекс отмены сжатия пальца, чтобы оценить глубину анестезии.
    ПРИМЕЧАНИЕ: Следите за частотой дыхания и рисунком, температурой тела и цветом кожи на пальцах ног у анестезируемых SD крыс.

3. Имплантация тканевых экспандеров

  1. Сбрийте спинную кожу у SD крыс машинкой для стрижки. Оцените цвет кожи, текстуру и наличие любых поражений, чтобы определить пригодность для расширения.
  2. Нарисуйте горизонтальную пунктирную линию в центральной части спины, чтобы отметить место разреза. Продезинфицируйте выбритый участок спиртом 75% и накройте стерильной апертурной занавеской.
  3. Введите нормальный физиологический раствор подкожно вдоль отмеченной линии с помощью шприца объёмом 1 мл с иглой 30 G (0,31 мм диаметра), затем выполните горизонтальный разрез с помощью скальпеля. Проведите обширную диссекция подкожной ткани выше и ниже разреза вдоль дорсальной мышечной фасции. Создайте карман, достаточно большой, чтобы вместить расширяющий баллон и инъекционный отверстие с помощью комарных щипцов. Расположите нижний полюс расширяющего баллона в 3-5 см от разреза, при этом вершина была обращена к слою кожи, а основание — на мышцу. Кроме того, зашивайте фасцию с обеих сторон рядом с соединением соединительного катетера и инъекционного порта для стабилизации порта. Отрегулируйте положение баллона и инжекционного порта, чтобы соединительная трубка не имела резких изгибов и изгибов (рисунок 1B).
    ПРИМЕЧАНИЕ: Обычная инъекция физиологического раствора облегчает разрез кожи и определяет анатомическую плоскость. Ориентируйте инъекционный порт так, чтобы мягкая сторона была обращена к слою кожи, чтобы обеспечить последующие растворы.
  4. Закройте разрезы с помощью прерванных швов 4-0. Затем введите первоначально 5 мл физиологического раствора с иглой для кожи головы диаметром 25 г (0,5 мм).
    ПРИМЕЧАНИЕ: Аккуратно зашивайте разрез, чтобы не проколоть экспандер кончиком иглы для шва. Введите иглу для головы вертикально в инъекционный порт и выведите её вертикально.
  5. Дайте крысе SD восстановиться после наркоза и поместите её в отдельную клетку.

4. Процесс непрерывного расширения

  1. Дайте SD крысам с экспандерами восстановиться в течение 2 недель, обеспечив полное заживание разреза. Отметьте пунктирную рамку размером 2,5 × 2,5 см на зоне расширения, чтобы облегчить визуализацию изменений кожи (рисунок 2A).
  2. Анестезируйте крыс SD с помощью метода, описанного в шагах 2.2–2.4. Сбрить область расширения для облегчения наблюдения. Немедленно прекратите процедуру расширения, если расширение кожи осложнено инфекцией, экхимозом или некрозом.
    ПРИМЕЧАНИЕ: Брийте расширяющуюся зону как минимум раз в неделю, чтобы обеспечить быстрый рост волос.
  3. Сбрийте область вокруг инъекционного порта и продезинфицируйте спиртом 75%. Зафиксируйте порт, затем медленно введите 10 мл обычного физиологического раствора иглой для головы на 25 G. Нажмите на точку инъекции асептической марлей в течение 2 минут, чтобы подтвердить гемостаз.
  4. Дайте SD крысам восстановиться после наркоза, поместите их на подогреваемую подушку на 20 минут, а затем переместите в отдельные клетки.
  5. Вводите обычный физиологический раствор два раза в неделю. Мониторинг осложнений, связанных с расширением, во время наблюдения, включая утечку экспандера, изгиб соединительной трубки, экспандер, экхимоз кожи, некроз, инфекцию и разрушение (рисунок 2E). Изучите возможные перегибы катетера при возникновении сопротивления во время инъекции физиологического раствора. Можно подозревать утечку экспандера, если шар расширителя смягчится. Определите локализованный экхимоз как признак нарушения перфузии, а потемнение кожи — как некроз. Подозрение на инфекцию при заметном локальном покраснении, отёке и повышенной температуре кожи. Классифицируйте незаживающие раны как повреждение кожи и проверьте возможный экспандерный контакт.
    ПРИМЕЧАНИЕ: Осматривайте расширенную кожу до и после каждой инъекции, чтобы облегчить раннее выявление нежелательных эффектов. При возникновении серьёзных осложнений, включая утечку экспандера, разрушение или некроз кожи, а также экспандерное воздействие немедленно, чтобы максимально эффективно сохранить жизнеспособную кожу.

5. Измерение области расширения и сбор регенерированной кожи

  1. Измеряйте область расширения с помощью высокоточного 3D-сканера. Сканируя кожу над экспандером, автоматически рассчитывается площадь поверхности сканируемой области (рисунок 2B).
    ПРИМЕЧАНИЕ: Перед каждой инъекцией проводите сканирование анестезированных крыс с SD.
  2. Фотографируйте расширенную кожу с помощью цифровой камеры; измерить и взвесить площадь, обозначенную пунктирной точкой, и записать изменения площади поверхности (рисунок 2C) и массы (рисунок 2D).
  3. В конце эксперимента усыпить SD-крыс путём воздействия чрезмерного углекислого газа.
    ПРИМЕЧАНИЕ: В этом исследовании определите конечную точку как общий объём инъекции 155 мл, чтобы воспроизвести весь процесс расширения в клинической практике.
  4. При вскрытии отметьте участки выборки как на расширенной коже, так и на прилегающей нормальной коже. После аспирации половины общего объёма экспандера горизонтально разрезите кожу над инъекционным портом с помощью ножниц. Тщательно разобрать плоскость между экспандером и расширенной кожей с помощью комарных щипцов, чтобы полностью и целостно снять экспандер. Вырезать образцы кожи ножницами и разрезать ткань пополам. Зафиксируйте их раствором 4% параформальдегида и обработайте гистологическое окрашивание.
    ПРИМЕЧАНИЕ: Определите области интереса для отбора образцов перед удалением экспандера, чтобы предотвратить ошибочную идентификацию из-за втягивания кожи, обеспечивая точную идентификацию локализованных областей лечения (рисунок 3A).
  5. Собранные туши животных помещайте отдельно в жёлтые пакеты для медицинских отходов. Утилизировать использованные экспандеры, шприцы и марлю в жёлтые пакеты для медицинских отходов. Выбросьте лезвия, иглы и другие острые изделия в специальные контейнеры.
    ПРИМЕЧАНИЕ: Вся утилизация отходов в данном исследовании соответствует правилам управления Центром экспериментальных животных Шанхайской Девятой народной больницы.

6. Гистологическое окрашивание кожи

  1. Внедрите образцы кожи в парафин, нарежьте их на секции диаметром 5 мкм и разместите на клеевые слайды.
  2. Используйте окрашивание гематоксилином и эозином (HE-окрашивание) для оценки толщины кожи (рисунок 3B,C), а также трихромное окрашивание Массона для оценки отложения коллагена (рисунок 3D, E). Сканируйте секции с помощью целого слайд-сканера и анализируйте с помощью программного обеспечения ImageJ версии 1.54.
  3. Используйте иммунофлуоресцентное окрашивание CD31 для оценки васкуляризации. Нанести первичные антитела и инкубировать за ночь при 4 °C, использовать вторичные антитела, конъюгированные с FITC, а затем осмотреть под флуоресцентным микроскопом (рисунок 3F,G).
  4. Анализировать количественные данные с помощью программного обеспечения GraphPad Prism версии 10.0 и представлять результаты как среднее ± стандартное отклонение (SD). Проведите статистические сравнения с помощью t-теста Студента, определяя статистическую значимость как *p < 0,05.

Доступ ограничен. Войдите в систему или начните пробный период, чтобы просмотреть этот контент.

Результаты

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

В этом исследовании мы разработали стандартный протокол для модели непрерывного расширения тканей. После подтверждения безопасности экспандера (рисунок 1A) он был хирургически имплантирован подкожно в спинную область SD-крыс. Её надувающаяся поверхность была расположена ближе к коже. Чтобы предотвратить смещение экспандера, точка соединения между катетером и инъекционным портом была закреплена на мышечной фасции (рисунок 1B). После двух недельных инъекций физиол...

Доступ ограничен. Войдите в систему или начните пробный период, чтобы просмотреть этот контент.

Обсуждение

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Расширение тканей стало широко используемой техникой для получения дополнительной кожи, которая по текстуре и цвету очень похожа на соседнюю здоровуюкожу 19. Он применялся в различных клинических условиях, включая восстановление рубцов, реконструкцию груди и реконструкцию после резекции опухолей поверхноститела 20. Тем не менее, долгосрочное расширение тканей по-прежнему остаётся критической проблемой, главным образом из-за истощенной реген...

Доступ ограничен. Войдите в систему или начните пробный период, чтобы просмотреть этот контент.

Раскрытие информации

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Авторы заявляют, что у них нет конкурирующих финансовых интересов.

Благодарности

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Это исследование спонсируется Национальным фондом естественных наук Китая (грант No 82372536, 82572898, 82472543), Шанхайским исследовательским центром пластической хирургии Шанхайского приоритетного исследовательского центра (2023ZZ02023), Шанхайской программой развития молодежи «Восходящие звёзды медицинских талантов» (программа для специалистов молодежных медицинских специалистов), Специальной клинической исследовательской программой Шанхайской муниципальной комиссии здравоохранения здравоохранения индустрии здравоохранения (грант No 20244Y0031).

Доступ ограничен. Войдите в систему или начните пробный период, чтобы просмотреть этот контент.

Материалы

Список материалов, использованных в этой статье
ИмяКомпанияКаталожный номерКомментарии
Антитела к CD31Abcam Shanghai Trading Co., Ltdab182981IHC окрашивание
Прибор электронно-лучевой облученияTongwei Xinda Technology (Цзянсу) Co. LtdВысокоэнергетический электронный ускоритель (10 МэВ, 24 кВт)Стерилизация
FITC-конъюгированный вторичный антителProteintech Group, IncSA0003-2IHC окрашивание
Программное обеспечение Graghpad Prism Программное обеспечение GraphPadВерсия 10.0Статистический анализ
Набор для окрашивания гематоксилина и эозинаBeyotime Biotech IncC0105SГистологическое окрашивание
Высокоточный 3D-сканерСИЯНИЕ 3DEinScan Pro 2X V2Измерение площади 
Программное обеспечение Image JНациональные институты здравоохраненияВерсия 1.54Статистический анализ
Трихромный набор для окраски MassonBeyotime Biotech IncC0189SГистологическое окрашивание
Тканевые экспандерыШанхайская компания Winning Plastic Surgery Products Co., Ltd.Н/ДСпециальная кастомизация

Ссылки

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,
  1. Peña, O. A., Martin, P. Cellular and molecular mechanisms of skin wound healing. Nat Rev Mol Cell Biol. 25 (8), 599-616 (2024).
  2. Wu, Z., et al. Material design, fabrication strategies, and the development of multifunctional hydrogel composites dressings for skin wound management. Biomacromolecules. 26 (3), 1419-1460 (2025).
  3. Yadav, A. K., et al. Pioneering 3d and 4d bioprinting strategies for advanced wound management: From design to healing. Small. , (2025).
  4. Song, Y. T., et al. Extracellular matrix-based biomaterials in burn wound repair: A promising therapeutic strategy. Int J Biol Macromol. 283 (Pt 3), 137633(2024).
  5. Tian, X., et al. Recent advances in smart hydrogels derived from polysaccharides and their applications for wound dressing and healing. Biomaterials. 318, 123134(2025).
  6. Neumann, C. G. The expansion of an area of skin by progressive distention of a subcutaneous balloon; use of the method for securing skin for subtotal reconstruction of the ear. Plast Reconstr Surg (1946). 19 (2), 124-130 (1957).
  7. Guo, Y., et al. Mechanical stretch induced skin regeneration: Molecular and cellular mechanism in skin soft tissue expansion. Int J Mol Sci. 23 (17), 9622(2022).
  8. Ding, Y., et al. Reconstruction of facial multiunit defects using expanded scalp flap with laser depilation in a group of predominantly pediatric patients. Facial Plast Surg Aesthet Med. 24 (5), 352-356 (2022).
  9. Huang, X., et al. Acellular dermal matrix-assisted tissue expansion for giant congenital melanocytic nevi of the extremities and trunk in pediatric patients. Plast Reconstr Surg. 155 (1), 141e-151e (2025).
  10. Kooijman, M. M. L., et al. Long-term outcomes of 1989 immediate implant-based breast reconstructions: An analysis of risk factors for failure and revision surgery. Plast Reconstr Surg. 155 (3), 469e-478e (2025).
  11. Liu, S., et al. Establishment of a novel mouse model for soft tissue expansion. J Surg Res. 253, 238-244 (2020).
  12. Xue, Y., et al. The mechanotransducer piezo1 coordinates metabolism and inflammation to promote skin growth. Nat Commun. 16 (1), 6876(2025).
  13. Liang, B., et al. Innovative applications of acellular adipose matrix derived film in skin soft tissue expansion. Biomater Adv. 173, 214291(2025).
  14. Ding, J., et al. Macrophages are necessary for skin regeneration during tissue expansion. J Transl Med. 17 (1), 36(2019).
  15. Janes, L. E., et al. Modeling tissue expansion with isogeometric analysis: Skin growth and tissue level changes in the porcine model. Plast Reconstr Surg. 146 (4), 792-798 (2020).
  16. Sun, Y., et al. Mechanical stretch-induced interlayer coordination between mmp2 and col17a1 exacerbates regenerative exhaustion in skin. Adv Sci (Weinh). 12 (41), e11474(2025).
  17. Tan, P. C., et al. A randomized, controlled clinical trial of autologous stromal vascular fraction cells transplantation to promote mechanical stretch-induced skin regeneration. Stem Cell Res Ther. 12 (1), 243(2021).
  18. Bai, R., et al. Ace2 inhibits dermal regeneration through ang ii in tissue expansion. J Cosmet Dermatol. 24 (1), e16767(2025).
  19. Hassan, N., Krieg, T., Zinser, M., Schröder, K., Kröger, N. An overview of scaffolds and biomaterials for skin expansion and soft tissue regeneration: Insights on zinc and magnesium as new potential key elements. Polymers (Basel). 15 (19), 3854(2023).
  20. Gao, W., et al. Aesthetic reconstruction of the sequelae of large facial involuted infantile hemangioma with tissue expanders. Aesthetic Plast Surg. 48 (19), 3718-3725 (2024).
  21. Sun, Y., et al. Mechanical stretch-induced interlayer coordination between mmp2 and col17a1 exacerbates regenerative exhaustion in skin. Adv Sci (Weinh). , (2025).
  22. Kocsis, D., et al. Characterization and ex vivo evaluation of excised skin samples as substitutes for human dermal barrier in pharmaceutical and dermatological studies. Skin Res Technol. 28 (5), 664-676 (2022).
  23. Xiong, S., et al. Metformin promotes mechanical stretch-induced skin regeneration by improving the proliferative activity of skin-derived stem cells. Front Med (Lausanne). 9, 813917(2022).
  24. Zhou, S. B., et al. Tracing the change and contribution of subcutaneous adipose to skin expansion using a luciferase-transgenic fat transplantation model. Plast Reconstr Surg. 153 (3), 558e-567e (2024).
  25. Schievink, W. I., Luyendijk, W., Los, J. A. Does the artery of adamkiewicz exist in the albino rat. J Anat. 161, 95-101 (1988).
  26. Blaise, O., Duchesne, C., Banzet, S., Rousseau, A., Frescaline, N. A murine model of a burn wound reconstructed with an allogeneic skin graft. J Vis Exp. (162), e61339(2020).
  27. Cuddy, L. C. Wound closure, tension-relieving techniques, and local flaps. Vet Clin North Am Small Anim Pract. 47 (6), 1221-1235 (2017).
  28. Hankenson, F. C., Kim, J. J., Le, T. M., Lawrence, F. R., Del Valle, J. M. Using waterless alcohol-based antiseptic for skin preparation and active thermal support in laboratory rats. J Am Assoc Lab Anim Sci. 60 (3), 365-373 (2021).
  29. Laudo, J., et al. Development and calibration of digital twins for human skin growth in tissue expansion. Acta Biomater. 198, 267-280 (2025).
  30. Hassani, Z. A., Fejjal, N. Complications of skin expansion in the pediatric population: A 10-year retrospective study. J Plast Reconstr Surg. 3 (4), 151-156 (2024).
  31. Zhao, Y., et al. Ultrasound-driven electric conversion hydrogel coating enhances macrophage efferocytosis for non-invasive skin expansion. Advanced Functional Materials. 35 (34), 2424713(2025).
  32. Huang, X., et al. Intraoperative indocyanine green angiography facilitates flap fenestration and facial organ fabrication in total facial restoration. Plast Reconstr Surg. 153 (6), 1416-1424 (2024).
  33. Wu, Z., Wang, Y., Li, W., Zhang, W., Zhu, L. A clinical early evaluation of the combined use of low-intensity focused ultrasound and radiofrequency for female abdominal contouring. J Cosmet Dermatol. 24 (7), e70267(2025).
  34. Hase, E., Okubo, N., Ogura, Y., Minamikawa, T., Yasui, T. Multimodal second-harmonic-generation, two-photon excitation fluorescence, and brillouin microscopy for visualising dermal mechanical properties in ex vivo human skin. Exp Dermatol. 34 (3), e70081(2025).
  35. Tao, X., et al. Disruption of electrophysiological rhythms and memory impairment in an alzheimer's transgenic rat model. Alzheimers Res Ther. 17 (1), 200(2025).
  36. Cirka, H., Nguyen, T. T. Comparative analysis of animal models in wound healing research and the utility for humanized mice models. Adv Wound Care (New Rochelle). 14 (9), 479-512 (2025).

Доступ ограничен. Войдите в систему или начните пробный период, чтобы просмотреть этот контент.

Перепечатки и разрешения

Запросить разрешение на повторное использование текста или иллюстраций этой статьи JoVE

Запросить разрешение

Теги

Sprague Dawley

Похожие статьи