$$\rightleftharpoonup{xx}$$
$$\longleftharp{xx}$$,
$$\longrightharp{xx}$$,
Протокол был утверждён Институциональным комитетом по биомедицинским исследованиям на людях (CIIBH) Национального института медицинских наук и нутрициона Сальвадора Зубирана (INCMNSZ) (REFERENCE 1734). Все участники дали информированное согласие перед тем, как быть включены в это исследование.
Дизайн исследования и население
Это было рандомизированное плацебо-контролируемое, двойное слепое клиническое исследование с 5-недельным периодом наблюдения. Сотрудники INCMNSZ были приглашены принять участие в исследовании, а здоровые волонтёры в возрасте 20–50 лет, не проходившие антимикробное лечение в предыдущем месяце, приняли и подписали форму информированного согласия, были включены в период с 2011 по 2012 годы. Участники исследования были рандомизированы 1:1 в группу Synbiotic Gel с 10,32 г агавы инулина в качестве пребиотика и 4 × 109 CFU/г Lactobacillus acidophilus NCFM и 4 × 109 CFU/г Bifidobacterium lactis Bi07 в день, содержащегося в 4 пакетиках в течение 5 недель, и 200 мг рифаксимина дважды в день в первую неделю. Группа Плацебо Геля получила 4 упаковки по 15 г плацебо-геля с той же презентацией и сенсорными характеристиками, что и синбиотический гель, в течение 5 недель и 200 мг рифаксимина дважды в день в первую неделю (см. рисунок 1).
Клиническая оценка
В обеих группах оценивались симптомы и внешний вид кала с помощью шкалы Бристоля. Также измерялись индекс массы тела, роста и массы тела (ИМТ). Дневник использовался для оценки потребления синбиотического геля, плацебо-геля и рифаксимина, а также для фиксации наличия или отсутствия побочных эффектов, связанных с приемом геля.
Потребление клетчатки
Поступление клетчатки оценивалось с помощью пищевого дневника и 24-часового отзыва каждую неделю в обеих группах.
Соблюдение лечения
Соблюдение приема рифаксимина и геля оценивалось путем подсчёта количества доз рифаксимина и количества пакетиков синбиотических и плацебо-гелей на одного участника. Наличие Lactobacillus acidophilus и Bifidobacterium lactis было обнаружено с помощью полимеразной цепной реакции (ПЦР).
Микробиологическая оценка фекалий
При посещении 0 и еженедельно по 5 (6 визитов) в каждой группе количество лактобацилл, бифидобактерий и энтеробактерий оценивалось в 120 образцах калов методом подсчёта пластин. Этот метод измеряет колониообразующие единицы (CFU) путём размещения разбавленных образцов на специализированные твёрдые среды10. Образцы кала собирались в начале каждого визита.
Для идентификации микроорганизмов собирались образцы фекалий и хранили в пробирках BBL. Флакон PBG использовался для анаэробных бактерий, а образцы фекалий транспортировались в охладителе из пенопласта с замороженные гелевые пакеты для поддержания низкой температуры перед обработкой в лаборатории. Крышка флакона PBG для копрокультуры была снята, а образец кала взят с помощью мазка, чтобы убедиться, что тампон был пропитан образцом. Затем аппликатор помещали в трубку с твёрдой культурной средой.
Для анаэробных бактерий флаконы взвешивались, и с помощью ложки собирали 5–10 г кала. Затем табурет смешивали с содержимым флакона и плотно запечатывали. Для обработки образцов взвешивали флаконы с образцами и стерильные пакеты Stomacher. Образец выливался в мешок, центрифугировался в течение 60 секунд, после чего добавляли 4,5 мл воды с пептонами 0,1%. Впоследствии 500 мкл образца передавали в флакон и вихрили для гомогенизации смеси. После того как 100 мкл образца был инъекциирован в дублике на каждую пластину специфической селективной среды, в среде Man Rogosa Sharpe (MRS) для лактобацилл и среде DP Beerens с цистеином + циклогексимидом (для устранения нежелательной флоры) для бифидобактерий, до разбавления 8 (коэффициент разбавления 0,1 мл). Для энтеробактерий среда МакКонки использовалась при разбавлениях 5–8 (коэффициент разбавления 0,1 мл), где отделялись и количественно оценивались бактериальныеколонии 11. Каждый средний порошок растворялся в очищенной дистиллированной воде, раствор нагревался до кипения для полного растворения и стерилизовался в автоклаве при 121 °C в течение 15 минут. Смесь охлаждалась до 46,5 °C для выполнения техники налива, заливая по 1 мл на одну тарелку в стерильные чашки Петри с 15–20 мл культурной среды и давая пластинам затвердеть. Инокуляционные образцы инкубировали при 37 °C в атмосфере, обогащённойCO2, в анаэробных системах GasPak для поддержания анаэробных условий в течение 24–48 часов. Колониообразующие единицы (CFU) отмечались пером инасчитывали 12 единиц. Была применена следующая формула:
CFU/mL = (количество колоний × общий коэффициент разбавления)/объём посварённой (mL)
Идентификация морфологических характеристик лактобацилл и бифидобактерий
Для определения морфологических характеристик образца использовался Gram Stain. Образец бактериальных колоний каждого штамма помещался на микроскопический стекло, окрашивался кристаллическим фиолетовым в течение 1 минуты, а затем промывался дистиллированной водой. Раствор йода наносили на 1 минуту, затем промывали дистиллированной водой. В течение 10 секунд использовали спиртово-ацетоновый раствор в качестве обесцветителя и промывали дистиллированной водой. Наконец, сафранин наносили в качестве контрморилки в течение 1 минуты и промывали дистиллированной водой. Микроскопические слайды наблюдались под оптическим микроскопом с использованием погружного масла с объективом 100x.
Общая количественная оценка была проведена с помощью традиционной полимеразной цепной реакции (ПЦР) на случайно отобранных образцах фекалий из пяти участников в каждой группе, в общей сложности 60 образцов за 5 недель. Изоляты из культурных сред были обработаны для извлечения генетического материала. ПЦР проводилось с использованием универсальных бактериальных праймеров для амплификации фрагмента гена 16SрРНК 13. Продукты ПЦР были очищены и секвенированы. Последовательности были проверены и отправлены в базу данных GenBank для подтверждения наличия штаммов лактобацилл и бифидобактерий, выделенных из фекальных образцов.
Статистический анализ
Данные представлены в виде абсолютных и относительных частот или медианы (p25-P75). Совокупная тяжесть симптомов определялась с помощью шкалы Ликерта (лёгкий, 1; умеренный, 2; тяжёлый, 3) при каждом последующем обследовании. Межгрупповые сравнения проводились с использованием теста ранговой суммы Уилкоксона и хи-квадрата или точного теста Фишера. Внутригрупповые сравнения между 0 и 5 неделями проводились с использованием теста Фридмана и множественных сравнений с Дурбина-Коновером. Статистическая значимость была установлена на уровне P < 0,05.