Этическое заявление и меры безопасности
Все эксперименты на животных одобрены Этическим комитетом Университета традиционной китайской медицины Чэнду (2024029). Во время всех процедур инъекций, включая введение CFA и лентивируса, операторы должны носить средства индивидуальной защиты (СИЗ), включающие одноразовые перчатки, очки и лабораторные халаты. Эти процедуры должны проводиться в шкафу биобезопасности или в хорошо проветриваемой среде. Все острые предметы, контактировавшиеся с реагентами, должны быть немедленно выброшены в специальные контейнеры. Во время процедуры моксибустии оператор внимательно следил за реакцией животного. Конус моксы был немедленно заменён, чтобы предотвратить термические повреждения кожи. Кроме того, горючие материалы следует держать вдали от горящей моксы, чтобы избежать пожарной опасности.
1. Создание модели RA
Тридцать самцов SD крыс (вес: 200 ± 20 г), в возрасте шести недель (номер лицензии: SCXK 2020-030), были случайным образом разделены на пять групп (n = 6): контрольная группа, группа модели РА (группа РА), группа лечения РА + моксибустией (группа Mox), группа интерференции РА + лентивируса TIM-3 (группа RA + TIM-3 — группа) и группа лечения интерференцией лентивируса РА + TIM-3 + моксибустионная группа (группа RA + TIM-3 + Mox). Перед экспериментом крыс акклиматизировали в течение семи дней в контролируемой среде с температурой 22–24 °C, влажностью 20% и естественным циклом света и темноты, с свободным доступом к еде и воде. На 23-й день эксперимента у той же компании были куплены ещё пять трёхнедельных самцов SD. Эти крысы акклиматизировались в течение пяти дней в одинаковых условиях перед использованием для экстракции ПЭМ. Схематическая схема, обобщающая экспериментальную процедуру, и репрезентативные процедурные фотографии показаны на рисунке 1.
В первый день эксперимента 0,5 мл/кг CFA было введено в подушечки задних лап всех крыс, кроме контрольной группы, для индуцирования РА. Такой же объём физиологического раствора был введён в том же месте у крыс контрольной группы. Толщина лапы использовалась в качестве критерия для успешного создания моделиRA 23.
2. Инъекция лентивируса
Крысы в группах RA + TIM-3- и RA + TIM-3- + Mox получили инъекцию LV-Havcr2-RNAi (94435-1) в подушечки задних лап (3,5 × 107 TU/mL; 10 мкл на прокладку) в первый день эксперимента. Все остальные крысы получали одинаковые инъекции обычного физиологического раствора в том же анатомическомучастке 24.
3. Моксибусция
На седьмой день эксперимента крысы из групп Mox и RA + TIM-3- + Mox получили лечение моксибустией. Для облегчения процедуры была сбрита шерсть примерно на площади 1 × 1 см вокруг акупунктурных точек BL23 и ST36 (эта процедура также проводилась у крыс в остальных группах). Во время моксибустинга каждую крысу аккуратно закрепляли к деревянному блоку, немного большему размеру её тела, с помощью двух резинок для полного открытия зон обработки (крысы в других группах также были ограничены). Впоследствии к обеим точкам были нанесены колбочки моксы в форме зерна. Для обеспечения стабильности термической стимуляции у каждого конуса мокса (диаметр: 2 мм; высота: 5 мм; содержание мокса-шерсти: 60%) готовили из стандартизированной порции мокса-шерсти в 5 мг. Каждый день к двум акупунктурам с одной стороны тела наносили пять колбочек, а на следующий день обработка чередовалась с противоположной. Этот чередующийся протокол лечения сохранялся три недели, с одним дневным отдыхом каждые седьмой день.
После трёх циклов лечения моксибустией крыс были анестезиированы с помощью изофлурана (4% индукция, 2% поддержания, ингаляция), а из брюшной аорты было взято 5 мл артериальной крови. После центрифугирования (2 000 × г, 15 мин, 4 °C) супернатантная сыворотка перемещалась в микроцентрифугные трубки и хранилась при −20 °C. После взятия крови крыс были эвтаназии с вывихом шейки матки. Суставы голеностопа были тщательно рассечени и закреплены в 4% параформальдегиде. Синовиальные ткани и селезёнка быстро замораживались с помощью жидкого азота и хранили при температуре −80 °C.
4. Измерение толщины лапы крысы
Средние точки задних лап крыс были отмечены водонепроницаемым маркером для обеспечения равномерного положения измерений. Толщина лапы измерялась с помощью верньерных суппортов до моделирования, после успешного моделирования и между каждым курсом обработки (в дни 0, 7, 14, 21 и 28 эксперимента).
5. Гистологический анализ
После фиксации в 4% параформальдегиде суставы лодыжки крыс были помещены в центрифугные трубки с достаточным объёмом раствора декальцификации (10% муравьиной кислоты). Трубки устанавливались на шейкер и подвергались мягкому перемешиванию при комнатной температуре в течение 30 часов. В этот период раствор декальцификации регулярно заменялся, а состояние тканей отслеживалось для предотвращения чрезмерной декальцификации. Затем ткани переносились в раствор тиосульфата натрия 5% для нейтрализации в течение 6 часов, после чего тщательно промывали 4 часа под проточнойводопроводной водой. Ткани затем обезвоживались и помещались в парафиновые блоки. Сечения были поперечно вырезаны толщиной 5 мкм. После депарафинизации и гидратации участки окрашивались гематоксилином в течение 3 минут, затем промывались водой, ненадолго дифференцировали (5 секунд), затем снова промывали и посиняли в течение 5 секунд, после чего тщательно промывали под проточной водопроводной водой. Впоследствии срезы были обезвожены в 95% этаноле в течение 1 минуты и контрокрашивались эозином в течение 15 секунд. В конце концов секции были обезвожены, очищены и установлены с покрытием для наблюдения под световым микроскопом. При таком окрашивании ядра выглядели синими, тогда как цитоплазма, коллагеновые волокна и эритроциты были представлены в различных оттенках розового; кератинизированный слой обычно окрашивался ярко-красным цветом.
6. ЭЛИЗА
В соответствии с производственным протоколом в назначенные скважины добавлялся аликвот 100 мкл каждого образца сыворотки (предварительно разбавленный 1:2). Параллельно включались пустые и стандартные скважины. После герметизации пластину инкубировали при 37 °C в течение 90 минут. После этапа промывки добавлялось обнаружение антитела и инкубировалось при 37 °C в течение 60 минут. После ещё одной промывки был добавлен конъюгат стрептавидин–HRP. После тщательной промывки добавляли раствор субстрата для проявления цвета, который остановился добавлением стоп-раствора. Поглощение измерялось на 450 нм (OD₄₅₀). Концентрации IL-4 и IFN-γ в образце определялись интерполяцией по стандартной кривой, а конечные концентрации — умножением на соответствующий коэффициент разбавления.
7. qRT-PCR
Общая РНК была извлечена из образцов сыворотки с помощью реагента TRIzol согласно модифицированному протоколу. Кратко, 100 мкл сыворотки было гомогенизировано с помощью 1 мл реагента TRIzol методом интенсивного пипетирования. Впоследствии добавляли 100 мкл хлороформа, и интенсивно взбавливали смесь в течение 15 секунд, после чего инкубировали при комнатной температуре в течение 3 минут. Затем образец был центрифугирован при 12 000 × г в течение 15 минут при 4 °C для достижения фазового разделения. Верхняя водная фаза аккуратно переносилась в новую трубку, смешивалась с 0,5 мл изопропанола и инкубировала при комнатной температуре в течение 10 минут. Впоследствии общая РНК была гранулирована центрифугой при 12 000 × г в течение 10 минут при 4 °C. Полученная РНК-гранула была промыта один раз 1 мл этанола 75% (центрифугирование при 8 000 × г в течение 5 минут при 4 °C) и высушена на воздухе перед окончательным растворением. Полученная РНК прошла обратную транскрипцию с помощью комплекта для синтеза кДНК. Анализ экспрессии генов проводился с помощью qRT-PCR с использованием программного обеспечения для количественной системы ПЦР в реальном времени. β-актин использовался в качестве гена, связанного с хозяйством, для нормализации. Относительная экспрессия мРНК TIM-3 была рассчитана с помощью метода 2−ΔΔCt . Детали праймеров приведены в Таблице 1.
8. Вестерн блот
Извлеченная селезёнка была промыта три раза предварительно охлаждённым фосфатно-буферным физиологическим раствором (PBS), нарезана на мелкие кусочки и лизирована путём добавления лизисного буфера с объёмом в десять раз больше, чем в ткани. Гомогенизация проводилась с помощью гомогенизирующей трубки. Гомогенат помещали на лёд на 30 минут для лизиса, с пятью-шестью раундами вихря для полного разрушения тканей. Образцы были центрифугированы при 12 000 × г в течение 10 минут при 4 °C, а супернатант был собран как общий белковый экстракт. Концентрации целевых белков измерялись с помощью анализа на бицинхониновую кислоту (BCA) согласно протоколу KIT.
После сепарации с помощью электрофореза гель с содержанием 10% натрия додецилсульфата и полиакриламида (SDS–PAGE) извлеченные образцы белка были перенесены в мембрану поливинилидендифторида (PVDF). Мембрана была заблокирована при комнатной температуре в течение 1 часа с помощью трисбуферного физиологического раствора с Tween 20 (TBST) и дополнительного 5% обезжиренного молока, после чего проводилась ночная инкубация при 4 °C с первичными антителами. После тщательной промывки мембрана была инкубирована с конъюгированными вторичными антителами пероксидазой хрена (HRP) при 37 °C в течение 2 часов. Наконец, изображения были получены с помощью системы хемилюминесценции и проанализированы на интенсивность оттенков серого с помощью программного обеспечения для анализа ChemiScope. Подробности первичных и вторичных антител приведены в Таблице 1.
9. Обнаружение иммунофлуоресценции
Извлеченная синовиальная ткань была погружена в 4% параформальдегид, обезвожена и погружена в парафин, прежде чем разрезать на срезы толщиной 5 мкм. Секции последовательно очищались от воска в ксилоле I, ксилоле II и ксилоле III (по 10 минут каждая), затем три промывания абсолютным этанолом (по 5 минут каждая) и финальное промывывание дистиллированной водой.
После забора антигена в этилендиаминтетрауксусной кислоте (ЭДТА) стекли были промыты три раза в фосфатно-буферном физиологическом растворе (PBS) (по 5 минут каждая) с мягким перемешиванием. Затем срезы блокировались инкубацией с 3% бычьей сывороткой альбумина (BSA) на 30 минут при комнатной температуре. После блокировки первичные антитела, включая антииндуцируемую синтезу оксида азота (iNOS) (1:500) и анти-CD206 (1:400), были введены и инкубированы при 4 °C в течение 24 часов.
После трёх 5-минутных промываний с PBS секции инкубировали 50 минут при 37 °C в темноте с использованием вторичного антитела (Cy3-конъюгированный козёл против кроликов IgG, 1:300). Ядерное окрашивание проводилось путем трижной промывки стекло PBS (5 минут на стирку), затем обработку раствором окрашивания 4′,6-диамидино-2-фенилиндол (DAPI) и 10-минутную инкубацию при комнатной температуре в темноте. Изображения изучались под флуоресцентным микроскопом.
10. Изоляция PEM
После эвтаназии по вывиху шейки матки крыс дезинфицировали 75% этанолом в течение 10 минут и перемещали в стерильный биобезопасный шкаф. Кожа брюшной поверхности была разрезана стерильными ножницами, затем внутрибрюшнической инъекцией физиологического раствора (PBS) с помощью шприца с помощью брюшника. Брюшная полость была аккуратно массирована, после чего брюшинная жидкость была вдувана обратно в шприц и передана в центрифугные трубки для получения макрофаговых суспензий.
Суспензия клеток была промыта три раза с помощью PBS, прежде чем посеять в модифицированную среду Eagle Medium (DMEM) от Dulbecco, содержащую 10% сыворотку плода крупного рогатого скота (FBS). Клетки культивировались в течение 24 часов в увлажнённой атмосфере с 5% CO₂ при 37 °C. Клетки, полученные после этого инкубационного периода, были идентифицированы как макрофаги.
11. Трансвелл
Миграционный анализ проводился с использованием 24-колодцевых пластин. После 24 часов голодания в сыворотке в верхнюю камеру были добавлены 4 × 104 макрофагов в 300 мкл DMEM, дополненных 1% плодовой бычий сывороткой (FBS) и 1% антибиотиками (50 U/mL пенициллина, 50 мкг/мл стрептомицина), а в нижнюю камеру было введено 700 мкл DMEM с 10% FBS и 1% антибиотиков. Клетки предварительно обработаны сывороткой разных групп крыс в течение 24 часов. После этого пластины инкубировали при 37 °C в условиях 5% CO₂ в течение 24 часов. После окрашивания в кристаллический фиолетовый цвет верхняя камера была промита для удаления немигрировавших клеток. Мигрирующие клетки количественно оценивались вручную по четырём случайно выбранным полям зрения под оптическим микроскопом.
12. Статистический анализ
Статистический анализ проводился с использованием версии SPSS 25.0. Наборы данных сначала были проверены на нормальность и однородность дисперсий. Когда эти параметрические предположения были выполнены, межгрупповые сравнения проводились с помощью одностороннего анализа дисперсии (ANOVA), за которым следовал пост-хок анализ наименее значимой разницы (LSD). Для данных, нарушающих эти предположения, применялся непараметрический тест Крускаля–Уоллиса, за которым следовали тесты Манна–Уитни U с соответствующей коррекцией для множественных сравнений. Все значения были выражены как среднее ± стандартное отклонение, а P < 0,05 считалось статистически значимым.