Все процедуры проводились в соответствии с Мексиканским официальным стандартом по уходу и использованию лабораторных животных (NOM-062-ZOO-199) и утверждёны Институциональным комитетом по уходу и использованию лабораторных животных (CICUAL) Национального автономного университета Мексики (UNAM) в соответствии с протоколом No 035-CIC-2023. Все материалы, использованные в исследовании, указаны в Таблице материалов.
Определение и приобретение популяции
Всего было использовано 30 мышей C57BL/6 (9 самок и 21 самец) на 30-й день после родов (P30), с начальным весом тела 15–18 г. Мышей содержали индивидуально в домашних клетках в контролируемых условиях: цикл светло-тёмный 12:12 (свет включается в 6:00 утра), температура окружающей среды 23 ± 2 °C и относительная влажность 70 ± 10%.
Привычка
В P30 животных содержали по отдельности в домашних клетках с доступом к воде и стандартному корму ad libitum. Все клетки были обогащены с помощью картонных труб, а в качестве подстилки использовались деревянные стружки. В течение 7-дневного периода привыкания масса тела, потребление пищи и потребление воды фиксировались каждые 24 часа.
Приём, подобный перееданию
Экспериментальная модель, используемая в этом исследовании, основана на парадигме прерывистого переедания, описаннойисследователями 14. До распределения групп все животные были доведены до сопоставимой средней массы тела (17 г) для снижения исходной вариабельности. Животных (N = 30) затем случайным образом распределяли по экспериментальным группам с помощью цифрового инструмента «крутить колесо», в котором отдельные участники перечислялись и последовательно распределялись по одной из трёх групп. Стандартная группа включала женщин (стандартная женская группа, SFG; n = 3) и самцов (стандартная мужская группа, SMG; n = 7), которые имели постоянный доступ к стандартной еде и воде. Группа непрерывного доступа включала самок (непрерывная женская группа, CFG; n = 3) и самцов (непрерывная мужская группа, CMG; n =7) с непрерывным ad libitum доступом к стандартной еде, воде и вкусной пище (M&M's). Группа с прерывистым доступом включала самок (группа прерывистых самок, IFG; n =3) и самцов (группа прерывистых самцов, IMG; n = 7), которые имели ad libitum доступ к стандартной еде и воде и получали доступ к вкусной пище три раза в неделю (понедельник, среда и пятница) в течение 2 часов (16:00–18:00). Эти условия кормления сохранялись в течение 35 дней.
Магнитная стимуляция всего тела (WB-MS)
Эта парадигма стимуляции была выбрана на основе предыдущих исследований с использованием низкочастотных электромагнитных полей (50 Гц, 1 мТ) у мышей C57BL/6 при аналогичных экспериментальныхусловиях 20,21. WB-MS проводилась с помощью импульсного магнитотерапевтического устройства (Dhan 1000, магнитотерапевтический блок), которое генерировало синусоидальное переменное магнитное поле 10 гаусс (1 мТ) при частоте 50 Гц. Во время сеансов стимуляции мыши оставались в своих клетках по отдельности, которые размещались между двумя электромагнитными пластинами по разные стороны каждой клетки. Чтобы избежать помех магнитного поля, металлические компоненты, включая проволочную клетку, решётку и бутылку с водой, временно удалялись во время стимуляции. Такая схема позволяла животным свободно передвигаться на протяжении всей процедуры без ограничений и дополнительного стресса.
Для обеспечения экспериментальной стабильности поддерживались одинаковые условия обращения и окружающей среды как во время стимуляции, так и без стимуляции. Во время контрольных сессий (дни 15–21) магнитные пластины располагались одинаково, но оставались неактивными, что контролировало возможные эффекты обращения, манипуляции клеткой, шума окружающей среды или размещения электромагнитных пластин.
WB-MS состоял из ежедневных 20-минутных экспозиций с 15:40 до 16:00 в течение семи последовательных дней (22–28 дней экспериментального протокола), непосредственно перед периодом оценки переедания (16:00–18:00). С 29 по 35-й день мыши снова проходили сеансы без стимуляции, после чего оценивали их потребление пищи.
Сбор жировой ткани
В конце экспериментального протокола (36-й день, 8:00 утра) была собрана жировая ткань из всех экспериментальных групп. SG состоял из трёх женщин и двух мужчин (n = 5), CG — трёх женщин и трёх мужчин (n = 6), а IG — трёх женщин и четырёх мужчин (n = 7). Все животные были анестезиированы кетамином (60 мг/кг) и ксилазином (5 мг/кг)22, а отсутствие ноцицептивного ответа на стимуляцию сжатия пальцев на ногах подтвердило адекватную глубину анестезии. Затем был проведен вентральный разрез по средней линии с помощью скальпеля No3, проходящий через подреберную, паховую и среднюю области живота, после чего следовал мягкий боковой отступ кожи для открытия брюшной полости.
Депо гонадальной, ретроперитонеальной и подкожной жировой тканей были тщательно выявлены, вскрыты и удалены в стандартизированных условиях для минимизации изменчивости между выборками. Сразу после вскрытия ткани взвешивались с помощью калиброванного аналитического веса (максимальная вместимость 220 г, читаемость 0,1 мг), предварительно проверенного по спецификациям производителя23. Все образцы были обработаны в одинаковых условиях для обеспечения экспериментальной согласованности.
Подготовка мозговой ткани и иммунофлуоресценция
Мышей эвтаназировали через 90 минут после последней сессии употребленияпищи 24. Мозг был собран после внутрисердечной перфузии с 4% параформальдегида, а затем обработан для гистологического анализа. Корональные срезы мозга (30 мкм) были получены с помощью криостата, поддерживаемого при температуре −18 °C и хранящегося в PBS с азидом натрия до обработки. Подгруппа самцов из каждой экспериментальной группы была распределена для подготовки мозговой ткани для иммунофлуоресцентного анализа (SG, n = 4; CG, n = 4; IG, n = 4), а оставшиеся животные использовались для сбора жировой ткани. Это дифференциальное распределение было определено априори на основе методологических требований, поскольку внутрисердечная перфузия с параформальдегидом приводит к фиксации тканей, которая несовместима с последующим извлечением жировой ткани из-за нарушения целостности жировой ткани. Таким образом, распределение образцов осуществлялось исключительно техническими ограничениями и было независимо от назначения экспериментальных групп или биологических результатов.
Для иммунофлуоресценции c-Fos секции инкубировали в течение 72 часа с помощью моноклонального анти-c-Fos антитела мыши (1:1000, sc-166940), разбавленных в PBS, содержащем 0,25% желатина свининой кожи и 0,5% Triton X-100, который служил раствором для блокировки и проницаемости. Первичная инкубация антител проводилась в течение 24 часов при комнатной температуре, затем 48 часов при 4 °C. После инкубации секции тщательно промывались в PBS и инкубировали в течение 2 часов с разбавлением вторичного антитела против мышей (Alexa Fluor 488-конъюгированный, 1:500, AB_2338840), разбавленных в том же растворе. Наконец, секции монтировались на стеклянные стекли с использованием монтажного материала.
Получение и количественная оценка изображений
Конфокальная визуализация проводилась с помощью микроскопа с лазером 488 нм и объективной линзой 20x. Изображения Z-стека получались с помощью программного обеспечения NIS-Elements C и хранились под закодированными идентификаторами для слепого анализа. Количественная оценка c-фосположительных ядер проводилась с помощью ImageJ (ImageJ 2.9.0 / 1.53t). В подсчёты включались только полностью содержащиеся ядра, а для предотвращения двойного подсчёта отдельных клеток применялся квадрантный подход. Для каждого животного было получено по одному изображению из трёх независимых иммуноокрашенных секций с одинаковыми параметрами приобретения во всех экспериментальных группах. Количество c-фосположительных ядер количественно определялось индивидуально для каждого изображения, а значения, полученные из трёх срезов, соответствующих одному и тому же животному, суммировались. Это общее значение впоследствии нормализовали до общей анализируемой площади и выражали в c-Fos плотности (положительные ядра/мм 2). Общая схема используемых экспериментальных процедур иллюстрирована на рисунке 1A–H.

Рисунок 1: Экспериментальный дизайн и хронология протокола переедания, похожего на переедание, а также вмешательства WB-MS. (A) показывает репрезентативное изображение мыши, указывающее на начальные условия содержания. Всего 30 мышей (9 самок и 21 самец) были индивидуально помещены в домашние клетки, начиная с P30, и прошли недельный период привыкания. (B) иллюстрирует диетические условия, реализованные на протяжении всего протокола переедания с экспериментального дня по 35-й день. Контрольная группа имела ad libitum доступ к стандартной еде и воде. Группы непрерывного доступа имели ad libitum доступ к стандартной еде, воде и вкусной еде. Группы с прерывистым доступом имели ad libitful доступ к стандартной еде и воде. В то же время вкусная пища предоставлялась только по понедельникам, средам и пятницам с 16:00 до 18:00 (C), что указывает на то, что с 15 по 21 день животные продолжали соблюдать те же условия питания, а магнитные стимуляционные пластины помещались под клетки без стимуляции (фиктивного воздействия). (D) показывает, что с 22 по 28 день WB-MS вводили за 20 минут до употребления вкусной пищи при сохранении соответствующих диетических условий для каждой группы. (E) указывает, что с 29 по 35 день WB-MS был остановлен, хотя условия питания остались неизменными. (F) показывает, что мозг был собран на 72-й день после родов (P72), за которым следовал сбор жировой ткани на 73-й день (P73). (G) иллюстрирует сечение мозга с помощью криостата и иммуногистохимических процедур. Наконец, (H) показывает конфокальный микроскопический анализ иммунореактивности c-Fos. Изображения были созданы авторами с использованием Biorender, и получена соответствующая лицензия. Пожалуйста, нажмите здесь, чтобы увидеть увеличенную версию этой фигуры.
Статистический анализ
Статистический анализ проводился с использованием версии SPSS 25. Поскольку нельзя было предполагать нормальное распределение, на протяжении всего исследования использовались непараметрические тесты. Различия между SG, CG и IG оценивались с помощью теста Крускаля–Уоллиса. Повторные сравнения внутри каждой экспериментальной группы анализировались с помощью теста Фридмана, а при необходимости проводились многократные сравнения. Из-за ограниченного размера выборки для некоторых экспериментальных конечных точек, особенно у самок (n = 3 на группу), данные от самцов и самок мышей C57BL/6 были объединены для анализов, представленных на рисунках 2, 3 и 4 , чтобы повысить статистическую устойчивость и поддержать исследовательскую оценку экспериментальных результатов. Кроме того, были проанализированы объединённые данные о похожем на переедание от самцов и самок мышей C57BL/6 с помощью двустороннего ANOVA, после чего проводились многократные сравнения для оценки эффектов экспериментальной группы и времени на протяжении всего протокола кормления, включая неделю стимуляции WB-MS. Статистическая значимость была определена как p ≤ 0,05.