$$\rightleftharpoonup{xx}$$
$$\longleftharp{xx}$$,
$$\longrightharp{xx}$$,
Одобрение этого исследования было получено Комитетом по этике неинтервенционных клинических исследований Медицинского факультета Университета Дикле (Решение No 100, дата: 01.01.2021).
Протокол ниже описывает стандартизированный шахматный метод разбавления агара для оценки синергии сочетания фосфомицинов с изолятами E. coli, устойчивыми к карбапенему.
Коллекция изолятов
В период с 15.02.2021 по 15.12.2021 были включены 60 карбапенем-резистентных штаммов E. coli, выделенных из различных клинических образцов (моча, кровь, аспират, рана, спинномозговая жидкость и эндотрахеальная аспират), полученных у стационарных пациентов Медицинского факультета Университета Дикле. Идентификация проводилась с помощью масс-спектрометрической системы MALDI-OF. При извлечении нескольких изолятов у одного и того же пациента включался только первый изолят. Были исключены образцы из амбулаторных клиник и пациентов, госпитализированных менее 48 часов. Все изоляты, устойчивые к карбапенему, E. coli, которые соответствовали заранее определённым критериям включения в период исследования, были включены последовательно; Поэтому размер выборки определялся по общему числу доступных подходящих изолятов, и априорный расчет размера выборки не проводился. В качестве штаммов для контроля качества использовались E. coli ATCC 13846 и E. coli ATCC 25922. Штаммы контроля качества тестировались параллельно с клиническими изолятами при идентичных условиях разбавления агара. Все заезды оценивались двумя независимыми наблюдателями. Результаты штаммов контроля качества показали ожидаемые паттерны ингибирования роста во всех экспериментах, и не было выявлено ни выходящих за пределы нормы, ни некорректных результатов.
Все процедуры с использованием клинических изолятов проводились в условиях биобезопасности уровня 2 (BSL-2). Использовалось соответствующее средство индивидуальной защиты (лабораторный халат, перчатки и защита глаз), а все манипуляции проводились в сертифицированном биологическом шкафе безопасности.
Идентификация видов и тестирование на антимикробную чувствительность
Тестирование резистентности к карбапенему и антимикробной восприимчивости проводилось с использованием автоматизированной системы идентификации и тестирования восприимчивости микробов. Сопротивление карбапенему, обнаруженное системой, было подтверждено диффузионным тестированием дисков с использованием дисков эртапенема, имипенема и меропенема. Диаметры зон интерпретировались согласно точкам разрываEUCAST 16,17 (Таблица 1). Все изоляты сохранялись в триптическом соевом бульоне с 20 % глицерила и хранили при −20 °C.
Таблица 1: Точки разрыва диаметра зоны для карбапенем, определенные для E. coli с помощью дискового диффузионного теста (DDT). Интерпретативные критерии диффузии диска, используемые для тестирования восприимчивости к карбапенему. Пожалуйста, нажмите здесь, чтобы скачать эту таблицу.
Бутылочки для посевы крови, подходящие для детских и аэробных образцов, инкубировались в автоматизированной системе культуры крови. Положительные бутылки были субкультивированы на EMB agar, 5% Sheep Blood Agar и Sabouraud Dextrose Agar.
Образцы мочи и эндотрахеальных аспиратов были взяты количественными методами, тогда как другие образцы обрабатывались полуколичественными методами. Образцы эндотрахеального аспирата оценивались с помощью окрашивания по Граму, и только образцы с баллом Бартлетта > 0 и Мюрреем > 3 считались значимыми и включали18.
Для образцов раны оценивалась окрашивание Gram по системе Q; выборки с Q-баллом выше 0 быливключены 19.
Бактериальные изоляты были идентифицированы с помощью масс-спектрометрии с помощью матричной лазерной десорбции/ионизации с учётом времени полёта. Балл ≥2,0 считался надёжным для идентификации на уровне рода и вида, тогда как оценки от 1,7 до 2,0 показывали надёжную идентификацию на уровнерода 20,21. Включены только изоляты с баллом ≥2.0.
Определение восприимчивости к фосфомицину методом разбавления агаром
Согласно Европейскому комитету по тестированию антимикробной чувствительности (EUCAST), метод разбавления агара рекомендуется для определения восприимчивости к фосфомицину у представителей семействаEnterobacterales 16.
Подготовка фосфомицина и других эффективных растворов антибиотиков
Для метода разбавления агара использовался порошковый гидрат соли-гидрата фосфомицина динатрия, а для создания разбавления применялась стерильная дистиллированная вода. Для каждого антибиотика планировалось восемь различных разбавлений, от 4-кратного до 3-кратного превыше предельного значения MIC, определяемого EUCAST.
Раствор фосфомицина (содержащий 2560 мкг/мл фосфомицина) был приготовлен путём растворения 51,2 мг стерильного фосфомицина динатрия, рассчитанный по формуле объёма/веса/мощности (Объём (мл) = Вес (мг) × Потенция (мкг/мг)/ Концентрация (мкг/мл)) и взвешивался в стерильных условиях в 20 мл стерильной дистиллированной воды. Окончательная концентрация планировалась на уровне 256 мкг/мл, что получилось в результате 10-кратного разбавления стандартного раствора при добавлении MHA.
Соответственно, были определены диапазоны разбавления для фосфомицина (2-256 мкг/мл), меропема и гентамицина (0,125–16 мкг/мл) и цефтриаксона (0,0625–8 мкг/мл).
Разбавления готовились последовательно двойным разбавлянием в стерильных конических трубках с 10 мл стерильной дистиллированной воды. Всего было проведено 7 последовательных двухкратных разбавлений в трубках до достижения концентрации 2 мкг/мл. Оставшиеся 10 мл в последней трубке были выброшены. Это привело к образованию восьми различных концентраций антибиотиков: 256, 128, 64, 32, 16, 8, 4 и 2 мкг/мл.
Тот же метод, что и для фосфомицина, применялся для других антибиотиков для подготовки первоначального раствора. 1,6 мг порошкового антибиотика было взвешено для цефтриаксона и 3,2 мг для меропенема и гентамицина с помощью точных весов. Для каждого антибиотика было сделано семь разбавлений. Таким образом, было получено восемь различных концентраций разбавления антибиотиков для меропенема, гентамицина и цефтриаксона (рисунок 1).

Рисунок 1: Этапы подготовки растворов разбавления фосфомицина. Последовательные этапы разбавления, используемые для получения рабочих концентраций. Пожалуйста, нажмите здесь, чтобы увидеть увеличенную версию этой фигуры.
Приготовление агаровой среды
Катионно-регулируемый Mueller-Hinton Agar (CAMHA) был подготовлен в соответствии с инструкциями производителя. Он стерилизовался при 121 °C и 1 атм в течение 15–20 минут с помощью автоклава, затем содержался при 45–55 °C в водяной бане.
Все биологические материалы стерилизовались автоклавом при 121 °C в течение 15–20 минут перед утилизацией. Отходы, содержащие антибиотики, утилизировались в соответствии с институциональными протоколами по биобезопасности и химическим отходам.
Критический шаг: Поддерживайте температуру агара в диапазоне 45–55 °C перед добавлением антибиотика. Чрезмерная температура может снижать активность фосфомицина и влиять на результаты MIC.
Добавление G6P в носитель
Для определения восприимчивости к фосфомицину EUCAST рекомендует добавлять 25 мкг/мл глюкозы-6-фосфата (G6P) в среду агара ибульона 5. На каждый литр агара 25 мг G6P растворялось в 20 мл MHA, фильтровалось для стерилизации и затем смешивалось с основной партией агара.
Подготовка тарелок для разведения агара
Для определения значений монотерапии MIC для фосфомицина, меропенема, гентамицина и цефтриаксона использовалась одна пластинка Петри на разбавление (например, 8 разбавлений для фосфомицина в диапазоне от 2 до 256 мкг/мл). Концентрации антибиотиков были отмечены на пластинах.
В комбинированном исследовании на пластинах отмечались концентрации фосфомицина и другого исследуемого антибиотика (например, фосфомицин 256 мкг/мл и меропенем 32 мкг/мл). Таким образом, для каждой комбинации было подготовлено 64 пластины, на которых отмечалась концентрация фосфомицина и другого антибиотика. Всего было подготовлено 32 пластины меропенем-гентамицинетри для монотерапии и 192 для комбинированной терапии. Стандартный рисунок с 56 маленькими квадратами по 1 см был выполнен на мраморной поверхности. Все пластины были нанесены непосредственно на этот чертеж. Таким образом, чтение и прививка были стандартизированы (рисунок 2 и рисунок 3).

Рисунок 2: Стандартная схема, созданная для вакцинации и чтения. Стандартизированная схема, используемая для вакцинации и оценки. Пожалуйста, нажмите здесь, чтобы увидеть увеличенную версию этой фигуры.

Рисунок 3: Метод оценки разбавляющих пластин агара. Оценка роста бактерий для определения МИК. F = фосфомицин; M = меропенем. Пожалуйста, нажмите здесь, чтобы увидеть увеличенную версию этой фигуры.
Два миллилитра раствора антибиотика смешали с 18 мл расплавленного CAMHA для получения конечной рабочей концентрации. Эта среда, приготовленная по упаковке производителя, охлаждалась до 45−55 °C в горячей водяной бане. Была использована одна часть (2 мл) антибиотиковой смеси, а 9 частей (18 мл) MHA смешивались в чашках Петри (антибиотик разбавлялся на 1/10). Итоговый объём агарной пластины стандартизировался примерно до 20 мл на пластину (18 мл агар + 2 мл раствора антибиотика), а окончательные концентрации антибиотиков рассчитывались после разбавления. Таким образом, концентрации антибиотиков достигались в пластинах разбавления агара (2–256 мкг/мл для фосфомицина, 0,0625–8 мкг/мл для цефтриаксона и 0,125–16 мкг/мл для меропенема и гентамицина). В качестве контроля роста использовались пластины, приготовленные из среды без раствора антибиотика (рисунок 4). Смеси, состоящие из среднего и антибиотикового раствора, затвердевали при комнатной температуре.

Рисунок 4: Контрольная среда без раствора антибиотиков. Среда без антибиотиков используется для подтверждения жизнеспособности бактерий. Пожалуйста, нажмите здесь, чтобы увидеть увеличенную версию этой фигуры.
Критический шаг: неравномерная глубина агара или недостаточное смешение антибиотиков могут привести к неточной интерпретации MIC и ложным результатам взаимодействия.
Подготовка и инокуляция изолятов
Ранее хранящиеся чистые штаммы перемещались в агар с 5% овечьей крови при комнатной температуре и инкубировали при 37 °C в течение 16–24 часов. Колонии из свежих культур подвешивались в стерильном солевом растворе, а мутность Макфарланда достигалась 0,5 с помощью оптического считывателя.
Метод разбавления агара требовал бактериального инокулума примерно10,4 КМО на пятно. Значение Макфарланда 0,5 содержит примерно 108 CFU/mL бактерий. Плотность бактерий достигалась 107 CFU/mL, разбавляя раствор в соотношении 1:10 стерильным физиологическим раствором.
2 мкл каждой бактериальной суспензии собирались из трубки с помощью автоматической пипетки. Этот объём соответствует примерно 2 × 104 КВЕ на спот. Инокуляция проводилась в целевых участках поверхности агара, начиная с пластины с самой низкой концентрацией фосфомицина и прогрессируя до самой высокой.
Таким образом, инокуляция определялась как CFU на пятно, при этом каждая точка инокуляции содержала примерно 104 CFU. Инокуляция каждой бактериальной суспензии была завершена в течение 15 минут.
Перед вакцинацией пластин с фосфомицином была установлена пластина контроля роста для проверки загрязнения. Прививку оставили высохнуть при комнатной температуре. Инкубация проводилась при 35–37 °C в течение 16–24 часа в аэробных условиях, а мутность измерялась с помощью калиброванного денситометра.
Избыточная плотность инокуля может вызвать затяжный рост и затруднить определение конечной точки. Перенастройте мутность до 0,5 Макфарланда и повторите инокуляцию, если происходит совместный рост.
Комбинированное тестирование
Использовались порошковые антибиотики меропенем, фосфомицин, гентамицин, цефтриаксон и глюкозо-6-фосфат.
Дозы антибиотиков рассчитывались по формуле объёма/веса/мощности. После приготовления стандартных растворов антибиотики были подготовлены в концентрациях трёх разбавлений в два раза выше и в четыре раза ниже восприимчивого диапазона MIC. Диапазоны разбавления рассчитывались как 2–256 мкг/мл для фосфомицина, 0,0625–8 мкг/мл для цефтриаксона и 0,125–16 мкг/мл для гентамицина и меропенема (Таблица 2, Таблица 3 и Таблица 4).
Таблица 2: Подготовка антибиотиковых растворов для комбинации фосфомицина и гентамицина. Этапы подготовки и концентрации, используемые для набора и рабочих растворов. Пожалуйста, нажмите здесь, чтобы скачать эту таблицу.
Таблица 3: Подготовка антибиотиковых растворов для комбинации фосфомицин-меропенем. Этапы подготовки и концентрации, используемые для набора и рабочих растворов. Пожалуйста, нажмите здесь, чтобы скачать эту таблицу.
Таблица 4: Подготовка антибиотиковых растворов для комбинации фосфомицина и цефтриаксона. Этапы подготовки и концентрации, используемые для набора и рабочих растворов. Пожалуйста, нажмите здесь, чтобы скачать эту таблицу.
В этом исследовании были подготовлены отдельные растворы фосфомицина для монотерапии и комбинированных экспериментов с целью компенсации различий в коэффициентах окончательного разбавления при тестировании на основе агаров. Для монотерапевтических экспериментов использовался стандартный раствор, тогда как для комбинированных экспериментов применялся скорректированный, более концентрированный бульонный раствор для компенсации дополнительного разбавления при предварительном смешивании антибиотиков.
Стандартные растворы были подготовлены как начальный этап для последовательного разбавления. Для фосфомицина 256 мг порошка точно взвешивались с помощью аналитических весов в стерильных условиях и растворялись в 50 мл стерильной дистиллированной воды с непрерывным смешиванием (магнитный мешал) до полного растворения, что приводило к конечной концентрации 5120 мкг/мл фосфомицина динатрия. Были подготовлены отдельные растворы гентамицина, меропенема и цефтриаксона.
Для серийных двухкратных разбавлений были подготовлены семь стерильных конических трубок с 25 мл стерильной дистиллированной воды. Из стандартного раствора 25 мл передавали в первую трубку с помощью регулируемой пипетки, затем последовательно переносили в последующие трубки для достижения двойного последовательного разбавления. Каждая трубка тщательно смешивалась с помощью вихревого миксера в течение 5–10 секунд после каждого шага переноса. Из финальной трубки было удалено 25 мл для поддержания равных объёмов. Таким образом была получена серия разбавления, обеспечившая минимальную концентрацию 40 мкг/мл, и всего было подготовлено восемь различных концентраций фосфомицина.
Та же процедура применялась к гентамицину, меропенему и цефтриаксону. Однако из-за различий в целевых концентрациях 16 мг гентамицина и меропенема (в диапазоне 0,125–16 мкг/мл) и 8 мг цефтриаксона (при диапазоне 0,0625–8 мкг/мл) были взвешиваны и растворены отдельно в стерильной дистиллированной воде объёмом 50 мл при асептических условиях при комнатной температуре. Последовательные двойные разведения проводились, как описано выше. Окончательные минимальные концентрации составили 2,5 мкг/мл для гентамицина и меропенема, и 1,25 мкг/мл для цефтриаксона. Для каждого антибиотика подготавливалось восемь пробирок с 25 мл различных концентраций. Поскольку фосфомицин тестировался в сочетании с тремя антибиотиками, было подготовлено всего 24 пробирки для разведения фосфомицина (8 × 3).
Для приготовления агар 18 мл агара Мюллер–Хинтон с добавлением глюкозы-6-фосфата (25 мкг/мл) предварительно охлаждали до 45–50 °C и подавались в стерильные чашки Петри. Впоследствии 1 мл раствора фосфомицина и 1 мл второго антибиотика были добавлены стерильными пипетками. Пластины аккуратно смешивались круговым вращением для обеспечения равномерного распределения и давались затвердеть при комнатной температуре. За счёт равномерного объёма смешивания и добавления агаров концентрации антибиотиков снизились примерно в 9 раз.
Для комбинированного тестирования 1 мл самой низкой концентрации фосфомицина (40 мкг/мл) комбинировали с 1 мл каждого из восьми разбавлений гентамицина (2,5–320 мкг/мл), затем добавляли в отдельные чашки Петри и аккуратно перемешивали. Та же процедура повторялась для следующей концентрации фосфомицина (80 мкг/мл) и продолжалась поэтапно до 5120 мкг/мл, обеспечивая тестирование всех возможных комбинаций концентраций. Для каждого переноса использовался новый стерильный наконечник пипетки, чтобы предотвратить перекрёстное загрязнение. Всего было подготовлено 64 чашки Петри (8 × 8 комбинаций) для комбинации фосфомицин–гентамицин (Таблица 5).
Аналогичная процедура была применена к фосфомицину в сочетании с меропенемом и цефтриаксоном, в результате чего на каждую комбинацию антибиотиков было выделено 64 пластины (Таблица 6 и Таблица 7).
Таблица 5: Расположение комбинации фосфомицина и гентамицина на среде MHA. Расположение концентраций антибиотиков на агаре Мюллера–Хинтона. FF = фосфомицин; GN = гентамицин. Пожалуйста, нажмите здесь, чтобы скачать эту таблицу.
Таблица 6: Расположение комбинации фосфомицин-меропенем на MHA-среде. Расположение концентраций антибиотиков на агаре Мюллера–Хинтона. FF = фосфомицин; MEM = меропенем. Пожалуйста, нажмите здесь, чтобы скачать эту таблицу.
Таблица 7: Расположение комбинации фосфомицин-цефтриаксон на среде MHA. Расположение концентраций антибиотиков на агаре Мюллера–Хинтона. FF = фосфомицин; CRO = цефтриаксон. Пожалуйста, нажмите здесь, чтобы скачать эту таблицу.
После приготовления антибиотиков на каждую пластину с 1 мл смеси добавляли 18 мл расплавленного агара Мюллера–Хинтона (45–50 °C), содержащего 1 мл этой смеси, что гарантировало, что температурные условия не снижали активность антибиотиков. Это привело к примерно 9-кратному разбавлению первоначального антибиотика.
Для систематической оценки пластины располагались в шахматном формате (двумерное разбавление). Концентрации фосфомицина были организованы вдоль вертикальной оси (ряды A–H), при этом наибольшая концентрация была в ряду A, а уменьшалась — к ряду H. Второй антибиотик располагался вдоль горизонтальной оси (столбцы 1–8), с увеличением концентрации от колонки 1 до колонки 8. Каждая эквивалентная позиция, таким образом, представляла собой уникальное сочетание двух концентраций антибиотиков, что позволяло всесторонне оценить эффекты взаимодействия.
Оценка результатов
Результаты минимальной ингибиторной концентрации оценивались в соответствии с рекомендациями EUCAST v.11. Пластины контроля роста демонстрировали заметный рост бактерий, тогда как пластины контроля стерильности (невакцинированные) не имели роста. MIC была определена как самая низкая концентрация, при которой не наблюдается видимый рост. Для комбинированного тестирования эффекты взаимодействия интерпретировались с использованием значений FICI. Синергия определялась как FICI ≤ 0,5, равнодушие — как > 0,5–4, а антагонизм — как > 4. Для фосфомицина значения MIC ≤ 32 мкг/мл считались восприимчивыми, а значения > 32 мкг/мл — устойчивыми. Для гентамицина и меропенема (при менингите) значения MIC ≤ 2 мкг/мл считались восприимчивыми, а показатели > 2 мкг/мл — устойчивыми. Для меропенема (при инфекциях, не связанных с менингитом) значения MIC ≤ 2 мкг/мл считались восприимчивыми. Значения > 8 мкг/мл считались устойчивыми, MIC ≤ 1 мкг/мл для цефтриаксона (для инфекций, не связанных с менингитом), MIC ≤ 2 мкг/мл для цефтриаксона (для инфекций менингитом) — восприимчивыми, а MIC > 1 мкг/мл для цефтриаксона (для инфекций менингитом) —устойчивыми 16.
Статистический анализ данных исследования проводился с помощью программного обеспечения.
Статистика: Категориальные переменные выражались в числах и процентах. Тест хи-квадрат Пирсона использовался для сравнений, при которых все ожидаемые количества клеток составили ≥5. Точный тест Фишера использовался для анализов с небольшими размерами выборки или при ожидаемом числе клеток <5. В частности, тест хи-квадрат использовался для общего сравнения показателей резистентности к фосфомицину, а точный тест Фишера применялся для подгруппового анализа синергетических, аддитивных и антагонистических частот взаимодействия, вызванных низкочастотными распределениями в некоторых комбинациях. P-значение ≤ 0,05 считалось статистически значимым.
Примечание к интерпретации: Крошечные одиночные колонии внутри зон торможения не считались растущими, если только они не слияются или не воспроизводятся при повторных испытаниях.