Методическая статья

Инфекция грудноключичного сустава, вызванная стафилококком головой

DOI:

10.3791/70566

⸱

8 мая 2026 г.

 ,  ,  ,  ,  ,  , 
1The Second School of Clinical Medicine, Zhejiang Chinese Medical University, 2Department of Orthopaedic Surgery, Zhejiang Hospital, 3The Second Affiliated Hospital of Zhejiang Chinese Medical University, Xinhua Hospital, 4Department of Orthopedics, No.903 Hospital of PLA Joint Logistic Support Force, 5Department of Orthopedics, The First Affiliated Hospital, Zhejiang University

В этой статье

Краткое содержание

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Здесь представлен случай инфекции правого грудно-ключевого сустава с остеомиелитом, вызванным Staphylococcus capitis. Пациент прошёл хирургический дебридмент и дренаж, затем 10 недель антибиотиков, что привело к полному исчезновению симптомов и удовлетворительному заживлению раны.

Аннотация

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

74-летняя пациентка получила «сердцебиение и сжатие в груди в течение полудня». Симптомы появились внезапно во время поездки в лифте, сопровождались одышкой, но без головокружения или боли в груди. У пациентки был 5-летний анамнез диабета, контролировался метформином. 20 лет назад ей сделали правую мастэктомию из-за рака груди. При поступлении её жизненные показатели были стабильны. Физический осмотр выявил болезненное, опухшее образование на правой стороне шеи, мягкое по текстуре, с гнойным выделением. Анализы крови показали повышенный уровень C-реактивного белка (CRP) (51,47 мг/л). Исследования визуализации (компьютерная томография [КТ], УЗИ, магнитно-резонансная томография [МРТ]) выявили образование мягких тканей в правой ключичной области с возможным остеомиелитом. У пациентки была диагностирована кожная инфекция правосторонней грудиноключичного сустава, осложнённая остеомиелитом.

Были проведены хирургические дебридменты и дренаж, а патологическое обследование подтвердило инфекцию Staphylococcus capitis . Пациент лечился 10-недельным курсом антибиотиков, сначала внутривенным эртапенем, затем перешёл на пероральный линезолид. В течение всего лечения побочных реакций на лекарства не наблюдалось. Через месяц последующие наблюдения показали, что хирургическая рана пациента хорошо заживает. Симптомы пациента значительно улучшились: сердцебиение, сжатие в грудной клетке и одышка полностью прошли. Лечение было хорошо переносимым. Данный отчёт о случаях направлен на повышение осведомлённости клиницистов об инфекциях грудноключичных суставов, вызванных Staphylococcus capitis , а также на акцент на важности ранней диагностики и индивидуальных стратегий лечения.

Введение

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Инфекция грудноключичного сустава (СКЮ) — редкая форма септического артрита, составляющая менее 1% всех случаев инфекционногоартрита 1,2. Несмотря на низкую частоту, SCJI может привести к серьёзным осложнениям, таким как медиастинит, абсцесс грудной стенки и легочнаяэмпиема 2,3,4. Staphylococcus capitis, коагулаза-отрицательный стафилокок (CoNS) и распространённый комменсальный организм на коже человека, всё чаще связан с инфекциями крови, связанными с катетерами, протезными и рановымиинфекциями 5,6,7. Однако SCJI, вызванный Staphylococcus capitis, редко упоминается влитературе 8. Распространённые факторы риска SCJI включают сахарный диабет, иммуносупрессию и анамнез внутривенного употребленияпрепаратов 2,9,10. Тем не менее, случаи также были зарегистрированы у здоровых людей без сопутствующих заболеваний 11,12,13. Хотя Staphylococcus capitis обычно считается доброкачественным кожным колонизатором, при определённых условиях он может действовать как оппортунистический патоген5.

В этом случае описана инфекция грудноключичного сустава, вызванная Staphylococcus capitis у пациента, который в основном проявил сжатие в грудной клетке и сердцебиение. Диагноз был окончательно установлен с помощью визуализации и микробиологических исследований, подтвердивших инфекцию грудноключичного сустава, связанную со Staphylococcus capitis. Пациент прошёл хирургический дебридмент, после чего в общей сложности 10 недель терапии антибиотиками, что привело к полному завершению инфекции. Этот случай клинически значим и подходит для отчёта, поскольку включает типичную группу высокого риска (пожилые, диабетики с анамнезом злокачественных заболеваний) с нетипичным первым проявлением, что заполняет ключевой пробел в знаниях о SCJI, индуцированной S. capitis. Направлен на повышение осведомлённости клиницистов об инфекциях грудноключичных суставов, вызванных Staphylococcus capitis, и подчеркивает важность ранней диагностики и индивидуализированных стратегийлечения 14, 15 и 16.

ИЗЛОЖЕНИЕ СЛУЧАЯ:

74-летняя пациентка поступила в Первую аффилированную больницу Университета Чжэцзяна с основной жалобой на сердцебиение и стеснение в груди, которая продолжалась уже полдня. Симптомы начались внезапно, когда пациент ехал в лифте, характеризуясь сердцебиением, придавлением грудной клетки и одышкой. Она отрицала головокружение, затуманенное зрение, боль в груди или другой дискомфорт. У пациентки была пятилетняя история диабета 2 типа, которую лечили метформином (две таблетки в день), а также история рака молочной железы правой стороны, по поводу которой 20 лет назад ей сделали радикальную мастэктомию.

При поступлении физический осмотр показал следующее: температура: 37,2 °C; Пульс: 78 ударов/мин; Частота дыхания: 19 вдохов/мин; Давление: 128/79 мм рт. ст. Пациент был бодрым, ориентированным и имел нормальное психическое состояние. В правом грудно-ключичном суставе была обнаружена красновато-фиолетовая опухоль примерно 2 см в диаметре. Опухоль была мягкой, с локальным теплом кожи и гнойными кровавыми выделениями. Желтухи на коже и склерах не обнаружились. Зрачки были равными и реагировали на свет. Аускультация лёгких была чистой без рамель, а сердечный ритм был регулярным и без патологических шумов. Живот был мягким, нечувствительным и без отскочной боли. Отёк нижних конечностей не наблюдался, сила мышц и тонус были в норме на всех конечностях, без ограничений подвижности.

Лабораторные исследования показали следующее: лейкоциты (лейкоциты): 6,43 × 109/л; Нейтрофилы: 67,8%; C-реактивный белок (CRP): 51,47 мг/л (нормальный < 6,00 мг/л); электрокардиограмма (ЭКГ): наджелудочковая тахикардия (частота сердечных сокращений > 200 ударов в минуту); Mycobacterium tuberculosis Анализ ПЦР-полимеразной цепной реакции (ПЦР) инфицированных тканей: отрицательный.

КТ брюшной полости не выявила острой патологии брюшной полости. УЗИ выявило смешанную кистозно-твердую массу в правой подключичной области, что указывает на воспаление. МРТ стенки грудной клетки (3,0 Т) показало занятое поражение на переднем крае правой проксимальной ключицы и грудинноключичного сустава, с рекомендованной контрастной визуализацией. Воспалительные эксудаты наблюдались в правой стенке грудной клетки, подкожных тканях верхней части руки и фасциальных плоскостях. Увеличенные лимфатические узлы были отмечены в левой подмишке и средостине. Был поставлен предварительный диагноз кожной инфекции правого грудноключичного сустава, и пациентка была госпитализирована для дальнейшего лечения.

Пациенту был проведен предоперационный внутривенный эртапен (1,0 г/день) и хирургический дебридмент инфицированного поражения. Во время операции были выявлены два гнойных абсцесса в правом ключичном суставе, а также локализованные гнойные синусовые тракты и некроз как фасции, так и кости. Внутриоперационные наблюдения подтвердили, что стабильность грудноключичного сустава сохранена и не нарушена инфекцией или дебридментом. Процедура включала удаление некротической ткани, удаление остеомиетической и некротической фасций, а также воспалительную подкожную ткань. Рану промывали, и был достигнут гемостаз. Заслонка была закрыта, и установлены две дренажные трубки с отрицательным давлением.

Послеоперационный диагноз подтвердил ключичный остеомиелит. Дренаж гноя был отправлен на культуру и бактериальную идентификацию, что выявило Staphylococcus capitis, чувствительный к эртапенему. Пациент продолжил принимать эртапенем (1,0 г внутривенно в день) и получил поддерживающее лечение, включая обезболивание, защиту желудка и пищевую поддержку. Воспалительные маркеры быстро снижались после операции, при этом уровень CRP снизился с 51,47 мг/л до 17,38 мг/л в течение 4 недель.

Пациент успешно прошёл 10-недельный курс антибиотикотерапии, включающий 2 недели внутривенного эртапенема, затем 8 недель перорального линезолида. Во время лечения не было выявлено побочных реакций или осложнений. Через месяц наблюдения рана хорошо зажила, симптомы пациента значительно улучшились, с полным прекращением сердцебиения, сжатия в грудной клетке и одышки.

Диагностика, оценка и планирование:

Пациенту был поставлен диагноз редкая первичная инфекция грудноключичного сустава, осложнённая остеомиелитом, изначально клинически и радионически подозреваемая как бактериальная пиогенная инфекция. Хирургическое исследование подтвердило наличие гнойного материала, некротических мягких тканей и остеомиелита, затрагивающего медиальную ключицу. Пациентка — пожилая женщина с множеством факторов риска, включая давний диабет и анамнез злокачественной опухоли, которая предрасполагала её к оппортунистической инфекции. Клиническая картина была нетипичной: основными жалобами были сжатие в груди и сердцебиение, а местные воспалительные признаки и повышенные воспалительные маркеры поддерживали активный инфекционный процесс. Визуализация подтвердила глубокое вовлечённость мягких тканей и костей, а микробиологическая культура выявила Staphylococcus capitis как причинителя. План лечения включал неотложную хирургическую дебридмент некротических костей и мягких тканей, таргетную терапию антибиотиками на основе результатов посевов и реконструкцию мягких тканей с помощью педикированного миофасциального лоскута для прочного закрытия раны. Антибиотикотерапия включала 2 недели внутривенного введения эртапенема, затем 8 недель перорального линезолида, с тщательным наблюдением за воспалительными маркерами и заживлением раны. Было назначено послеоперационное наблюдение для оценки заживления, завершения инфекции и возможного рецидива. Долгосрочное лечение включает регулярный амбулаторный осмотр, обучение по уходу за ранами и обучение по поводу предупреждающих признаков рецидивирующей инфекции.

Доступ ограничен. Войдите в систему или начните пробный период, чтобы просмотреть этот контент.

Протокол

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Эта хирургическая процедура одобрена этическим комитетом больницы и проведена в соответствии с этическими нормами. Было получено информированное согласие от всех отдельных участников, участвовавших в исследовании.

1. Первичная оценка и сбор образцов

  1. Комплексный кожный осмотр
    1. Проведите тщательный осмотр поражённой области кожи, уделяя особое внимание наличию эритемы, отёка, некроза тканей и гнойной экссудации.
      ПРИМЕЧАНИЕ: Зафиксировать исходную визуальную документацию (например, фотографии и размеры поражений) и зафиксировать начальные клинические проявления, включая эритему и отёки.
  2. Медицинская история и сопутствующие заболевания
    1. Соберите подробную медицинскую историю, документирующую предыдущие медицинские состояния, текущие и предыдущие препараты, применяемые для управления симптомами, хирургический анамнез и любые связанные осложнения.
  3. Сбор экссудата из раны
    1. Собирайте экссудат раны стерильным мазком. Аккуратно поворачивайте мазок не менее 5 секунд, одновременно отбирая основание и края язвы. Немедленно поместите мазок в транспортную среду Amies и храните при 4 °C.
    2. Осмотрите мазок визуально, чтобы убедиться в достаточном сборе экссудата; Если образец недостаточен, повторяйте процедуру сбора без задержек.
      ПРИМЕЧАНИЕ: Транспортируйте образцы в микробиологическую лабораторию в течение 2 часа. Если немедленная обработка невозможна, храните образцы в холодильных условиях и обрабатывайте их в течение 24 часов.

2. Визуализация и эмпирическое лечение

  1. Исследования визуализации
    1. Проведите магнитно-резонансную томографию (3,0T МРТ) с использованием T1-взвешенных, T2-взвешенных и контрастно усиленных последовательностей с подавлением жира для оценки вовлечённости мягких тканей и оценки возможного расширения кости.
      ПРИМЕЧАНИЕ: Подтвердите наличие глубокого накопления жидкости в мягких тканях или образования абсцессов в ходе визуализационных исследований.
  2. Эмпирическая антибиотикотерапия
    1. Начните эмпирическое лечение антибиотиками, введя внутривенно 1 г эртапенема, разбавленного в 100 мл физиологического раствора и вводя один раз в день в течение 30 минут.
      ПРИМЕЧАНИЕ: Модифицировать режим антибиотиков в соответствии с местными паттернами восприимчивости к антимикробным препаратам и результатами посевов.

3. Хирургические процедуры дебридмана

  1. Предоперационная подготовка
    1. Проведите процедуру под общей эндотрахеальной анестезией для обеспечения достаточной мышечной расслабления, стабильной гемодинамики и неподвижности пациента во время дебридмана и реконструкции лоскута.
      ПРИМЕЧАНИЕ: Анестезиолог поддерживал соответствующую глубину анестезии и внимательно контролировал дыхательные и кровеносные функции на протяжении всей операции.
    2. Поместите пациента в положение лежа на спине с достаточным обнажением грудноключичного сустава, медиального сегмента ключицы и передней стенки грудной клетки. Проведите рутинную дезинфекцию кожи с использованием повидона-йода, затем стерильную драпируемость для создания стандартного хирургического поля.
    3. Проводите регулярный мониторинг во время операции, включая частоту сердечных сокращений, неинвазивное давление, электрокардиографию, пульсоксиметрию и парциальное давление углекислого газа в конце прилива.
  2. Дебридмент
    1. В условиях стерильной операционной удалять видимо инфицированные или некротические ткани с помощью скальпеля в сочетании с биполярным электрокоагулятором на 30–40 W. Кюретт и резецировать инфицированное поражение, охватывающее медиальный сегмент ключицы длиной 2 см, пока не будет удалена вся девитализованная кость.
    2. Продолжайте дебридмент, пока вся нежизнеспособная ткань не будет удалена и не будет здорова, кровоточащая ткань не станет ясно видна.
  3. Педикированная миофасциальная лоскутная операция
    1. Проведите педикированную реконструкцию миофасциального лоскута в стандартных операционных стерильных условиях с помощью стерильных перчаток, халата, маски и специального стерильного поля, используя груднокостную часть большой грудной мышцы в качестве донорской мышцы для педикированного миокотанного лоскута.
    2. Проводите диссекцию поверхностно к ключичной фасции, сохраняя торакоакромиальную артерию и вену в качестве сосудистого педикула для обеспечения достаточного кровоснабжения. Затем вращайте лоскут медиально, чтобы обеспечить безнатяжное покрытие дефекта грудинного ключичного сустава после дебридмента.
  4. Сбор образцов тканей
    1. Возьмите минимум три образца тканей из анатомически различных участков, включая основание язвы, край язвы и глубокие тканевые слои.
    2. Поместить каждый образец в индивидуально маркированные стерильные контейнеры для последующей микробиологической культуры и гистопатологической оценки.
      ПРИМЕЧАНИЕ: Подтвердите, что образцы тканей точно отражают разные области, включая жизнеспособные края, некротическую ткань и глубокие подкожные структуры.
  5. Мониторинг прогресса дебридмента
    1. Мониторинг и документирование характеристик раны, включая состояние заживления разреза, объём и характер дренажа, а также тенденции воспалительных маркеров, таких как СРБ (<10 мг/л) и количество лейкоцитов (<10 × 109/л).

4. Идентификация патогена

  1. Окрашивание и микроскопическое исследование
    1. Используйте инфицированные мягкие ткани и девитализированные костные ткани, полученные во время операции, для окрашивания. Обрабатывайте образцы тканей следующим образом: фиксируйте 10% нейтрально буферированный формалин, встраивайте в парафин и разрезайте на последовательные срезы толщиной 4 мкм. Затем депарафинизируйте секции ксилолом и регидратируйте с помощью градированного этанола (100% > 95% > 75%) для завершения предварительной подготовки.
    2. Проведите окрашивку по Граму.
      1. Нанесите кристаллическую фиолетовую краску на 60 секунд, затем прополосните стерильным физиологическим раствором. Затем добавьте грамм-йод на 60 секунд и тщательно прополоскайте.
      2. Проведите обесцвечивание в течение 1–2 секунд до исчезновения фиолетовых красителей, затем немедленно промывайте физиологическим раствором. Наконец, нанесите сафранин на 60 секунд; Промыть участки и высушить на воздухе, чтобы закончить окрашивание Gram.
    3. Выполните окрашивание с метенамином Гомори (GMS).
      1. Инкубировать срезы ткани, прошедшие вышеупомянутую предобработку (депарафинизацию и регидратация) в рабочем растворе GMS (приготовленном путём смешивания метенаминового серебряного раствора и буфера цитрата в соотношении 1:1) при комнатной температуре в течение 30 минут.
      2. Затем три раза промой участки стерильным физиологическим раствором, чтобы удалить незавязанную пятилку. Далее примените раствор 0,5% хлорида золота в течение 30 секунд для дифференцировки.
      3. После промывания используйте раствор тиосульфата натрия 5% на 1 минуту, чтобы прекратить реакцию окрашивания. Наконец, тщательно промыйте секции дистиллированной водой и высушите на воздухе, чтобы завершить окрашивание GMS.
      4. После завершения окрашивания наблюдайте за срезами под световым микроскопом при увеличении 200×. Фиксируйте морфологические особенности положительно окрашенных областей для точной идентификации инфекциясвязанных поражений.
        ПРИМЕЧАНИЕ: Основное внимание уделялось грибковым гифам, спорам и распространению патогенов в ткани.

5. Антибиотикотерапия

  1. Введение антибиотиков
    1. Вводите эртапен в дозе 1 г внутривенно в 100 мл физиологического раствора 0,9%, вводите один раз в день в течение 30 минут.
    2. Отслеживайте уровень CRP и прокальцитонина в сыворотке каждые 3–7 дней.
    3. После выписки назначайте пероральный линезолид 600 мг два раза в день в течение 8 недель.
      ПРИМЕЧАНИЕ: Подтвердить эффективность лечения через радиологическое улучшение (например, снижение воспалительных отёков на МРТ), нормализацию воспалительных маркеров и полное устранение клинических признаков инфекции.

6. Восстановление и последующее наблюдение

  1. Амбулаторное наблюдение
    1. Назначьте амбулаторные последующие визиты на 1, 2 и 4 недели после выписки, а затем ежемесячные обследования продолжительностью 6 месяцев.
    2. Оценить состояние заживления раны, рецидив инфекции, интенсивность боли (с использованием визуальной аналоговой шкалы [VAS]) и функциональное восстановление (например, амплитуда движений суставов).
      ПРИМЕЧАНИЕ: Документируйте еженедельный прогресс заживления раны, подтверждайте полную эпителизацию в ожидаемые сроки (<8 недель) и оценивайте адекватность обезболивания (VAS ≤ 3).
  2. Запись и анализ данных
    1. Фиксируйте внешний вид раны, объём дренажа, воспалительные маркеры и результаты визуализации при каждом повторном приёме.
    2. Безопасно храните анонимизированные данные пациентов в стандартизированной форме отчёта о случаях для последующего анализа и публикации.
      ПРИМЕЧАНИЕ: Ежемесячно проверяйте окончательные клинические результаты для подтверждения полного заживления раны, отсутствия рецидивов инфекции на 6-месячном наблюдении, а также документирование удовлетворённости пациента и его функционального восстановления.

7. Утилизация биологических опасных отходов

  1. Выбрасывайте биологические отходы (ткани, мазки, острые предметы) согласно биобезопасности больницы.

Доступ ограничен. Войдите в систему или начните пробный период, чтобы просмотреть этот контент.

Результаты

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

74-летняя женщина получила полдневной анамнез внезапных сердцебиений, сжатия в груди и одышки, без головокружения и боли в груди. У неё была история сахарного диабета 2 типа, который контролировался метформином и предыдущей операцией по удалению рака груди. Физическое обследование выявило ~2 см красно-фиолетовое болезненное образование над правым грудноключичным суставом с локализованным теплом и гнойными выделениями. Электрокардиография показала наджелудочковую тахикардию (>200 ударов в...

Доступ ограничен. Войдите в систему или начните пробный период, чтобы просмотреть этот контент.

Обсуждение

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Инфекция грудинного ключичного сустава (СКЖИ) — относительно редкая инфекция суставов, однако её заболеваемость может быть выше в некоторых популяциях. Согласно литературе, инфекция грудноключичного сустава может возникать в различных клинических условиях, включая послеоперационные инфекции (например, расширение остеомиелита на грудно-ключичный сустав после операции на сердце)17, иммуносупрессивные состояния (например, после применения ингибиторов иммунных контрол...

Доступ ограничен. Войдите в систему или начните пробный период, чтобы просмотреть этот контент.

Раскрытие информации

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Авторам нечего раскрывать.

Благодарности

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Авторы не имеют признаний.

Доступ ограничен. Войдите в систему или начните пробный период, чтобы просмотреть этот контент.

Материалы

Список материалов, использованных в этой статье
ИмяКомпанияКаталожный номерКомментарии
Транспорт Amies MediumТермо Фишер9805-200Используется для транспортировки образцов экссудата из ран в микробиологическую лабораторию
Биполярная электрокаутерияValleylab (Medtronic)1190-0001Используется для удаления некротических или инфицированных тканей во время операции
Кристальная фиолетовая (0,5% в/в)Сигма-ОлдричC-5810Окрашивающий реагент для окрашивания Gram
Этанол (70%)Сигма-ОлдричE7023Используется для обезвоживания тканей и фиксации в протоколах окрашивания
Фаропенем (устный)Н/ДН/ДАнтибиотик, используемый во второй фазе лечения
Формалин (10%)Сигма-ОлдричF-1635Используется для фиксации тканей перед гистопатологическим анализом
Метенаминовое серебряное пятно ГрокоттаСигма-Олдрич3953-000-5Используется для идентификации грибков в образцах тканей
Протеиназа KСигма-Олдрич25560-039Используется при извлечении ДНК из образцов тканей
Сафранин (0,25% против меня)Сигма-ОлдричS8884Контрокрашивание, используемое при окрашивании Gram
Взвешенная по T1 последовательность МРТSiemens HealthineersNAПоследовательность визуализации для оценки мягких тканей
T2-взвешенная последовательность МРТSiemens HealthineersNAПоследовательность визуализации для оценки мягких тканей и костей
Система VITEKBioMé Rieux4112118Автоматизированная система для идентификации бактерий

Ссылки

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,
  1. Ahmic, E., et al. Management and outcomes of sternoclavicular joint infections: a retrospective study. J Clin Med. 14 (6), 1893(2025).
  2. Metsugi, Y., Shigemitsu, K., Hirata, T., Iwamoto, Y., Sato, H. Septic arthritis of the sternoclavicular joint complicated by empyema and bronchopleural fistula: a case report. Cureus. 16 (12), e76358(2024).
  3. Koike, S., Miyazawa, M., Kobayashi, N. A rare case of empyema caused by septic arthritis of the sternoclavicular joint, successfully treated with surgical drainage. J Surg Case Rep. 2024 (5), rjae359(2024).
  4. Saishoji, Y., Mori, K., Izumi, Y. Sternoclavicular septic arthritis caused by Parvimonas micra and Fusobacterium nucleatum infection with intra-articular corticosteroid administration. Intern Med. 63 (2), 341-344 (2024).
  5. Wan, Y., et al. Complete genome assemblies and antibiograms of 22 Staphylococcus capitis isolates. BMC Genom Data. 26 (1), 12(2025).
  6. Yapar, A., et al. Increased involvement of Staphylococcus epidermidis in the rise of polymicrobial periprosthetic joint infections. J Arthroplasty. 39 (12), 3056-3061 (2024).
  7. Zahornacky, O., et al. Occurrence of bacteria belonging to the genus Enterococcus and Staphylococcus on inanimate surfaces of selected hospital facilities and their nosocomial significance. Cent Eur J Public Health. 30 (Supplement), S57-S62 (2022).
  8. Vujic, J., Hojski, A., Dackam, S. V. C., Bachmann, H., Lardinois, D. Functional outcomes of patients with sternoclavicular joint infection after extended resection. Ann Thorac Surg Short Rep. 2 (2), 193-196 (2024).
  9. Alghamdi, H. M., Alghamdi, E. A., Chowdhary, S. K., AlQahtanii, S., AlMohaini, R. Salmonella sternoclavicular septic arthritis in a non-sickle cell disease patient. Cureus. 15 (1), e34094(2023).
  10. Cydylo, M., Ivanov, I., Chineme, J. Sternoclavicular septic arthritis: a case report. Cureus. 15 (4), e38130(2023).
  11. Jlidi, M., et al. Sternoclavicular septic arthritis in a healthy adult: a case report and a review of the literature. SAGE Open Med Case Rep. 11, 2050313X231212831(2023).
  12. Mustfar, S. N. S., Haroon, R., Abd Aziz, A. The nomadic bug: a case report of Salmonella septic arthritis of sternoclavicular joint in a healthy patient. Cureus. 16 (4), e57685(2024).
  13. Yamane, T., Miyamoto, C. Escherichia coli sternoclavicular septic arthritis secondary to colon cancer-associated bacteremia. Intern Med. 64 (22), 3306-3310 (2025).
  14. Alnasser, A., Alamari, Z. S., Almutairi, T. M., Aljohani, H. T., Almulla, A. M. Sternoclavicular septic arthritis and surgical intervention: a case report. Cureus. 16 (1), e53002(2024).
  15. Khalid, N., Afzal, M. A., Haider, S. U., Michael, P., Abdullah, M. A challenging case of managing septic arthritis of the sternoclavicular joint in a patient with a history of intravenous opioid use disorder: a case report and literature review. Cureus. 15 (7), e42635(2023).
  16. Sugihara, T., et al. Successful conservative management of advanced pyogenic sternoclavicular joint arthritis with osteomyelitis and pulmonary infiltration: a case report. J Med Case Rep. 18 (1), 394(2024).
  17. Gatti, G., et al. When surgical option is not provided: a successful multidisciplinary approach to a refractory case of sternal osteomyelitis following coronary surgery. Infection. 52 (1), 265-269 (2024).
  18. Kachi, S., Sumitomo, S., Oka, H., Hata, A., Ohmura, K. Case report: inflammatory sternoclavicular joint arthritis induced by an immune checkpoint inhibitor with remarkable responsiveness to infliximab. Front Immunol. 15, 1400097(2024).
  19. Oguni, K., et al. Disseminated septic arthritis caused by Ureaplasma urealyticum in an immunocompromised patient with hypogammaglobulinemia after rituximab therapy. Infection. 52 (6), 2495-2499 (2024).
  20. Wei, L. W., Zhu, P. Q., Chen, X. Q., Yu, J. Mucormycosis in mainland China: a systematic review of case reports. Mycopathologia. 187 (1), 1-14 (2022).
  21. Canetti, D., Riccardi, N., Antonello, R. M., Nozza, S., Sotgiu, G. Mycobacterium marinum: a brief update for clinical purposes. Eur J Intern Med. 105, 15-19 (2022).
  22. Zhang, Z., et al. Facial Balamuthia mandrillaris infection with neurological involvement in an immunocompetent child. Lancet Infect Dis. 22 (3), e93-e100 (2022).
  23. Gunnlaugsdottir, S. L., et al. Native joint infections in Iceland 2003–2017: an increase in postarthroscopic infections. Ann Rheum Dis. 81 (1), 132-139 (2022).
  24. Wang, R., Tang, P., Tian, R. FDG PET/CT showing a primary lymphoma of the sternoclavicular joint. Clin Nucl Med. 46 (7), 603-604 (2021).
  25. Tabaja, H., Abu Saleh, O. M., Osmon, D. R. Periprosthetic joint infection: what's new? Infect Dis Clin North Am. 38 (4), 731-756 (2024).
  26. Hinz, M., et al. Good clinical and functional outcomes with low rates of recurrent instability and revision surgery after sternoclavicular reconstruction or repair for the treatment of instability: a systematic review. Arthroscopy. 41 (10), 4292-4302 (2025).
  27. Zhang, Q., et al. Diagnosis and treatment of chronic skin infection caused by Scedosporium apiospermum. J Vis Exp. (225), e68901(2025).
  28. Zheng, J., et al. Scrotal gangrene secondary to Staphylococcus aureus infection: a case report. Ann Ital Chir. 95 (6), 1061-1066 (2024).
  29. Wan, Y., et al. Whole-genome sequencing reveals widespread presence of Staphylococcus capitis NRCS-A clone in neonatal units across the United Kingdom. J Infect. 87 (3), 210-219 (2023).
  30. Wang, Z., et al. Development of a novel core genome MLST scheme for tracing multidrug resistant Staphylococcus capitis. Nat Commun. 13 (1), 4254(2022).
  31. Ferreira, I., et al. Oxacillin-resistant Staphylococcus spp.: impacts on fatality in a NICU in Brazil - confronting the perfect storm. Biomed Pharmacother. 179, 117373(2024).
  32. He, L., et al. Antibiotic treatment can exacerbate biofilm-associated infection by promoting quorum cheater development. NPJ Biofilms Microbiomes. 9 (1), 26(2023).
  33. Rahim, M. I., et al. Commensal microflora coating endows implants with biofilm-repellent, immunomodulatory and osteogenic properties. Acta Biomater. 212, 266-280 (2026).
  34. Tian, J., Meng, Q., Zhang, P. Therapeutic biomaterials for chronic osteomyelitis: time-space-control strategies for infection control and bone repair-a narrative review. J Funct Biomater. 17 (3), 142(2026).
  35. Yi, J., et al. Orthopedic implant infection management: prevention, barrier breakthrough, and immunomodulation. ACS Nano. 19 (30), 27009-27032 (2025).

Доступ ограничен. Войдите в систему или начните пробный период, чтобы просмотреть этот контент.

Перепечатки и разрешения

Запросить разрешение на повторное использование текста или иллюстраций этой статьи JoVE

Запросить разрешение

Теги

Похожие статьи