$$\rightleftharpoonup{xx}$$
$$\longleftharp{xx}$$,
$$\longrightharp{xx}$$,
Экспериментальные площадки
Испытания проводились на двух площадках, расположенных на расстоянии 7 км друг от друга; Участки были вакцинированы различными методами лечения. В первом испытании на исследовательской ферме Молелвейн, Северо-Западный университет (NWU) (25.810°S, 25.630°E, 1276 м) в Северо-Западной провинции Южной Африки, был создан сетчатый комплекс с тенью 40%. Почва с красным песчаным суглинком была классифицирована как форма Хаттона и содержала 75% песка, 4% ила и 21%глины 25%. Второй эксперимент был проведён на комплексе сетки кампуса NWU Mafikeng (25. 8278°S, 25. 6079°E, 1276 м). Почвы на втором участке имели песчаный суглинок с 82% песка, 3% ила, содержание глины 15%, ранее классифицировались как Arcadiaform 25. Зелёные гибридные NP CuO/ZnO были синтезированы в лаборатории кафедры химии Школы физико-химических наук факультета естественных и сельскохозяйственных наук NWU в Южной Африке.
Синтез зелёных гибридных NP CuO/ZnO
Десять (10) г сушёного субстрата из отработанного гриба Pleurotus ostreatus (SMS) были добавлены к 100 мл деионизированной воды, нагреты при 70 °C и перемешивались 2 часа26 часов. Затем смесь охлаждалась до комнатной температуры, фильтровалась, и 30 мл фильтрата добавляли в раствор, содержащий 2,5 г медного ацетата и 2 г цинкового ацетата в 30 мл дистиллированной воды. pH этого раствора был скорректирован до 8 с помощью гидроксида натрия (NaOH), нагреван до 80 °C в течение 2 часа, центрифугирован после реакции, сушился ночью в духовке и кальцинировал при 650 °C в течение 2ч 26. Синтезированные NP были охарактеризованы и подтверждены как зелёные гибридные NP CuO/ZnO.
Отбор проб и анализ почвы
Образцы почвы были собраны на Университетской ферме в Молелвейн и на испытательном полигоне кампуса на глубинах 0–15 см и 15–30 см. Впоследствии их классифицировали и исследовали по физическим и химическим свойствам, как это было описанов 27 статьях.
Экспериментальная конструкция
В исследовании использовался факториальный эксперимент, организованный в рандомизированном полном блочном дизайне (RCBD) с тремя репликами. Для оценки эффективности гибридных NP CuO-ZnO с зелёным синтезом в различных сценариях загрязнения были установлены два независимых режима воздействия на отдельных участках: Участок 1 (кампус Северо-Западного университета) представлял собой экзогенную модель загрязнения, где почва была спайкирована экстракциейAFB 1 со скоростью 160 ppb/kg для оценки возможностей NPs прямой адсорбции и экранирования от транслокации. Участок 2 (исследовательская ферма Молелвейн): представлял биологическую модель инфекции, в которой почву инокуляли спорами A. flavus в концентрации 160 спор/кг для изучения противогрибкового воздействия NPs на производство de novo микотоксинов и последующее поглощение растениями. Порошкообразные NP взвешивались и равномерно смешивались с 1 кг почвы в пластиковом пакете для посадки после инокуляции (спорыAFB 1 или A. flavus ). Каждое лечение проводилось отдельно, а руки дезинфицировали между процедурами. Затем в каждый горшок изначально сажали четыре семена кукурузы (верхний диаметр 9 см, нижний диаметр 6,5 см). Чтобы сохранить три здоровых саженца в горшке, их обрезали через неделю после появления. В соответствии с рекомендациями по оптимальному производству кукурузы, полученными на основе анализа почвы, почва была удобрена. Горшки были размещены на расстоянии между и внутри рядов 0,75 м × 0,3 м, всего получилось 216 горшков. Почва в горшках поливалась до 60% полевой вместимости после посева семян. Образцы почвы и растений были собраны на трёх этапах развития: V10 (развитие), R1 (цветение) и R6 (зрелость). Образцы затем доставлялись в лабораторию в холодильнике, наполненном льдом, и хранили при -20 °C для дальнейших исследований. Для хранения и глубокой заморозки оставшихся образцов растений на концентрацииAFB 1 и других анализов использовались коричневые бумажные пакеты. Оставшиеся образцы растений для концентрацийAFB 1 и другие анализы хранились в коричневых бумажных пакетах и замораживались глубоко до анализа.
Анализ афлатоксинов кукурузы
Компоненты для развития кукурузы (корень, стебель, лист и зерно) на различных стадиях роста собирались в стерильные пластиковые пакеты, тщательно маркировались и транспортировались в лабораторию. Для сохранения целостности данных о росте и обеспечения независимых наблюдений на каждом этапе развития был внедрён протокол деструктивной выборки. Для устранения перекрёстного загрязнения между концентрациями наночастиц и типами инокуляции инструменты и перчатки очищались 70% этанолом и промывались деионизированной водой между каждой группой обработки. В ступке с пестиком 10 г растительного материала и 1 г хлорида натрия (NaCl) измельчались в течение 10 минут в 25 мл 80% метанола и 20% дистиллированной воды. Для зерна кукурузы и сердечника кукурузы 25 г молотого образца и 2,5 г NaCl смешивались с 100 мл 80% метанола:20 дистиллированной воды на высокой скорости в течение 10 минут. Затем гомогенизированный экстракт фильтровали через стеклянный микрофибровый фильтр, после чего промывали 20 мл 20% Tween-2 в фосфатно-буферном физиологическом растворе (PBS). Афлатоксины извлекались из колонки иммунной аффинности после элюции со скоростью потока одной капли в секунду, а супернатант (цитоплазма) собирался в янтарный флакон. ЗатемAFB 1 и другие афлатоксины измерялись по методу жидкойхроматографии 28 , который включал дериватизацию афлатоксинов раствором офтальдиальдегида и ввод дериватизированных соединений в систему высокоэффективной жидкостной хроматографии (ВЭЖХ). Система HPLC была оснащена флуоресцентным детектором Jasco FP-920, настроенным на возбуждение 362 нм и излучение 425 нм. AFB 1 имел физиологическую структуру для обнаружения на длине волны возбуждения 362 нм. Использовалась колонна Хихрома (4,6 мм × 150 мм) с частицами 5 мкм, а реактор дериватизации представлял собой программу ячейки KOBRA с частотой 100 мкА. Разделение хроматографических пиков проводилось в колонне Хихрома, к которой была установлена предколонна аналогичной стационарной фазы. Инерцсил ODS-3 и ODS-3 V использовались соответственно в качестве защитных и аналитических патронов, а инжектор состоял из автопромплера с реодиновым клапаном. Подвижная фаза состояла из воды: метанола (65:35, в/в), бромида калия (119 мг) и 4 М азотной кислоты (350 мкл) на литр, и перекачивалась при расходе 1,0 мл/мин в изократической программе. Обнаружение афлатоксина считалось положительным для каждого пика при времени удержания, аналогичном стандарту, и на высоте, в пять раз выше базовогошума 29.
Были рассчитаны пределы обнаружения (LOD), предел количественной оценки (LOQ) и процент (%) восстановления для подтверждения аналитического подхода HPLC с использованием уравнений 1, 2 и 3 соответственно. LOD — это самая низкая концентрация афлатоксина, которую можно надёжно отличить от фоновых шумов, тогда как LOQ — самая низкая концентрация афлатоксина, которую можно количественно измерить с приемлемой точностью иточностью 30. AFB 1 и его метаболиты были извлечены путём добавления 10 мкл общего количества стандартов афлатоксина (AFB1, AFB2, AFG1 и AFG2) к отрицательным контрольным образцам кукурузы в тройном экземпляре. Образцы затем извлекались с помощью ВЭЖХ с использованием вышеупомянутых процедур.
LOD = X + 3s 1
LOQ = X + 10s 2
3
Таким образом: «X» — средняя концентрация укреплённых пробелов образца, а «s» — стандартное отклонение образца.
Оценка воздействия AFB1
Средние уровни афлатоксинов в рационе кукурузы, суточное потребление кукурузы и средний вес тела (дети, взрослые, крупный рогатый скот, молочные коровы и цыплята) использовались для расчета предполагаемого дневного потребления (EDI). EDI для средних афлатоксинов рассчитывался по уравнению 2 и выражался в (нг/кг массы тела/сутки); для расчёта индекса опасности (HI) значения EDI были преобразованы в нг/кг массы тела/день (1 ppb/kg/день = 1 000 нг/кг массы тела/день) для соответствия единицам TD503231.
4
Оценка и характеристика рисков
Индекс опасности (HI) рассчитывался путём деления EDI на TD50 и умножения на коэффициент безопасности 50 000. Медианная токсичная доза (TD) 50 — это необходимая доза (нг/кг/масса тела/день) для возникновения опухолей у 50% исследуемых животных, у которых не развились бы опухоли при нулевойдозе 31,32.
Анализ данных
Анализ дисперсии был проведён на собранных данных о росте и урожайности с использованием процедуры RCBD в SAS 9.4 (SAS Institute Inc., Кэри, Северная Каролина, США). Были проведены многочисленные сравнения средних значений наименьших квадратов с использованием теста Тьюки на честно значимую разницу (HSD)33.