Исследовательская статья

Зелёные наночастицы CuO/ZnO: уменьшение транслокации и накопленияAFB 1 в кукурузе

DOI:

10.3791/70906

5 июня 2026 г.

В этой статье

Краткое содержание

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

В этом исследовании изучалась эффективность гибридных наночастиц CuO/ZnO с зелёным синтезом в уменьшении накопления и транслокации афлатоксинаB1 (AFB 1) в кукурузе, показав, что лечение в дозе 125 мг/кг значительно снижает уровеньAFB 1 и минимизирует риски воздействия пищи на человека и животных.

Аннотация

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Афлатоксин B1 (AFB 1) — это мощный канцероген, вырабатываемый видами рода Aspergillus , который загрязняет кукурузные культуры, создавая серьёзные риски для здоровья людей и животных из-за пищевого воздействия. Традиционное послеуборочное управление и химические вмешательства часто дорогостоящие или неэффективные для предотвращения перемещения почвенных токсинов в растение во время роста. Основная цель этого протокола заключалась в оценке гибридных наночастиц (НП), синтезированных зелёным синтезом меди/оксида цинка (CuO/ZnO) как устойчивого доуборки почвы. Целью исследования было выяснить, могут ли эти NPs эффективно ингибировать транслокацию и накоплениеAFB 1 в тканях кукурузы, тем самым снижая накопление токсинов в съедобных зернах. Используя рандомизированный комплексный блок на двух различных участках поля, кукуруза была выращена в почве, инокуляционной спорамиAFB 1 или Aspergillus flavus , и обработана различными концентрациями NP (0–125 мг/кг). Протокол использовал зелёный синтез с субстратом Pleurotus ostreatus для обеспечения экологичности. Ткани растений анализировались на различных физиологических стадиях с помощью высокоэффективной жидкостной хроматографии (HPLC) для измерения уровнейAFB 1 и оценки рисков для человека и скота. Обработка 125 мг/кг зелёных гибридных NPs значительно снизи<ла концентрацию AFB1 на всех стадиях роста. На территории кампуса уровеньAFB 1 был снижен на 68% на вегетативной стадии, на 82% при цветении и на 76% при созревании по сравнению с положительным контролем. Ключевым является то, что уровень зерновыхAFB 1 снизился до 6,91 ppb, что значительно снизило предполагаемую суточную норму для людей. Однако требуются дальнейшие исследования для оценки потенциальных остатков наночастиц и долгосрочной токсичности. Этот метод демонстрирует, что зеленые гибридные NP CuO/ZnO действуют как эффективный биоремедиационный агент, предотвращая транспортировку токсинов в съедобные части растения. Этот подход предлагает масштабируемую, экологически безопасную стратегию для повышения продовольственной безопасности и снижения воздействияAFB 1 в регионах, подверженных афлатоксинам.

Введение

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Афлатоксины, особенно афлатоксинB1 (AFB 1), являются одними из самых значимых микотоксинов из-за их распространённости, токсичности и влияния на человека. Они образуются определёнными грибами, преимущественно представителями видов Aspergillus 1,2,3. AFB 1 связан с гепатоцеллюлярным раком и является самым опасным из всех афлатоксинов4. Эти мощные канцерогены заражают различные сельскохозяйственные культуры, включая кукурузу (Zea mays L.), вызывая серьёзные проблемы с безопасностьюпищевых продуктов 5,6. НаличиеAFB 1 в кукурузе не только влияет на урожайность и качество урожая, но и представляет серьёзную угрозу здоровью людей и животных из-за пищевоговоздействия 7,8.

В настоящее время управление афлатоксином преимущественно опирается на послеуборочные стратегии, такие как правильная сушка, сортировка повреждённых ядерен, химические обработки (например, аммиак или озон), облучение и герметическое хранение для предотвращения роста грибков во время хранения9. Стратегии включают хорошее управление культурами, биоконтроль (например, известь) и улучшенные хранилища10. Также были испытаны физические и химические методы, такие как микроволновый, ультрафиолет (УФ), импульсный свет, электролизованная вода, холодная плазма, озон, электронный луч и гамма-облучение. Однако эти методы после сбора часто дорогостоящие, энергозатратные или непрактичные для широкого применения, и они не предотвращают транслокацию афлатоксина внутри растения во время роста.

Используемые подходы до сбора урожая включают агрономические методы, такие как устойчивые сорта, своевременная посадка, орошение для снижения засушливого стресса и биоконтроль с использованием афлатоксинных штаммов A. flavus (например, Aflasafe), которые конкурентно исключают токсигенные штаммы, но требуют повторного применения и могут не полностью решать почвеннуютранслокацию 11,12,13 . Эти методы часто сталкиваются с ограничениями: послеуборочные вмешательства не могут обратить вспять уже существующее загрязнение, влечут за собой высокие затраты на инфраструктуру сортировки/хранения в условиях с ограниченными ресурсами, рискуют потерей питательных веществ или остатками от химикатов, а эффективность биоконтроля варьируется в зависимости отэкологических условий 14.

В отличие от этого, гибридные наночастицы CuO-ZnO, синтезированные зелёным синтезом, предлагают новую стратегию пополнения почвы перед уборкой. В отличие от традиционных химических NP, зелёный синтез с использованием растительных экстрактов (например, грибного субстрата) позволяет избежать токсичных растворителей, снижает затраты и повышает биосовместимость, делая их экологическиустойчивыми 15,16. Гибридизация CuO-ZnO синергетически усиливает противогрибковую активность, генерируя реактивные кислородные формы (ROS), нарушая грибковые мембраны и обеспечивая высокую площадь поверхности для адсорбцииAFB 1, тем самым препятствуя поглощению и транслокации в съедобные части растений, такие как зерна. Это отличается от существующих стратегий тем, что позволяет проводить раннее вмешательство на границе почвы и растения, достигая снижения до 80-99%AFB 1 при низких дозах (например, 125 мг/кг), без ущерба урожайности и оставления вредных остатков17. Ключевые преимущества включают экологическую чистоту по сравнению с химическими фунгицидами, превосходящую эффективность по сравнению с однометаллическими NPs или биоконтроль в условиях переменных полевых условий, а также потенциал масштабируемой интеграции в сельскохозяйственные практики в регионах, склонных к афлатоксину, таких как Африка к югу от Сахары.

Металлические оксидные NP, в частности оксид цинка (ZnO) и оксид меди (CuO), привлекли внимание среди этих материалов благодаря своим противогрибковым свойствам и способности поглощатьтоксины 18,19. Например, сообщалось, что Cu NP способны создавать ROS, что может наносить вред бактериальным и грибным биологическиммакромолекулам 20. Также в другом эксперименте было показано, что грибные штаммы имеют заметный сдвиг с явной тенденцией к увеличению порядка при обработке CuO NP на основе хитозана, что привело к наибольшему эффектуупорядочения 21. Зелёный синтез NPs привлёк внимание как более безопасная и устойчивая альтернатива традиционным химическим методам, минимизируя токсичные побочные продукты и воздействие на окружающуюсреду 15,22.

Гибридизация NP CuO и ZnO сочетает полезные свойства обоих металлов, что потенциально повышает их эффективность в разложении или адсорбцииAFB 123,24. В настоящее время эти зелено синтезированные NPs в основном используются для контроля образования ФП в грибных штаммах в экспериментах in vitro; например, Шейк и Авад изучали влияние AgNPs, AuNP и их смеси на рост и накопление афлатоксинаB1 афлатоксина B1 афлатоксинного штамма A. flavus 25. Однако концентрация, необходимая для контроля роста A. flavus, неизвестна. Таким образом, существует критическая необходимость оценивать зеленые гибриды CuO-ZnO в условиях, значимых для полевых условий, на предмет их влияния на транслокациюAFB 1 из почвенных источников в ткани кукурузы по сравнению с традиционными NP. Таким образом, целью этого исследования было определить влияние различных концентраций зелёных гибридных NP CuO/ZnO на концентрациюAFB 1/A. flavus в тканях растений кукурузы и оценить риск AFB1 в кукурузе после обработки кукурузы зелёными гибридными NP CuO/ZnO. Исследовательские гипотезы должны были предоставить механистическую основу для наблюдаемой эффективности зелено синтезированных гибридных NP CuO-ZnO. В данном исследовании проверяются следующие измеримые гипотезы: 1) Гипотеза противогрибкового ингибирования, согласно которой гибридные NPs значительно снижают споруляцию A. flavus и последующую де-ново производствоAFB 1 в почве по сравнению с однометаллическими NP, что определяется по снижению грибковой нагрузки и уровня токсинов на участке Молелване. 2) Гипотеза адсорбции-транслокации: при наличии уже существующих токсинов (на территории кампуса) NPs должны были продемонстрировать высокую аффинность связывания сAFB 1, значительно снижая скорость транслокации токсинов из почвы в корневую систему кукурузы. 3) Гипотеза биосовместимости (фитотоксичности): согласно которой зелено синтезированные гибридные NP должны приводить к снижению остаточного накопления металла и снижению маркеров окислительного стресса в тканях кукурузы по сравнению с обычными химическими эталонами, тем самым повышая биобезопасность сельскохозяйственных культур.

Доступ ограничен. Войдите в систему или начните пробный период, чтобы просмотреть этот контент.

Протокол

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Экспериментальные площадки
Испытания проводились на двух площадках, расположенных на расстоянии 7 км друг от друга; Участки были вакцинированы различными методами лечения. В первом испытании на исследовательской ферме Молелвейн, Северо-Западный университет (NWU) (25.810°S, 25.630°E, 1276 м) в Северо-Западной провинции Южной Африки, был создан сетчатый комплекс с тенью 40%. Почва с красным песчаным суглинком была классифицирована как форма Хаттона и содержала 75% песка, 4% ила и 21%глины 25%. Второй эксперимент был проведён на комплексе сетки кампуса NWU Mafikeng (25. 8278°S, 25. 6079°E, 1276 м). Почвы на втором участке имели песчаный суглинок с 82% песка, 3% ила, содержание глины 15%, ранее классифицировались как Arcadiaform 25. Зелёные гибридные NP CuO/ZnO были синтезированы в лаборатории кафедры химии Школы физико-химических наук факультета естественных и сельскохозяйственных наук NWU в Южной Африке.

Синтез зелёных гибридных NP CuO/ZnO
Десять (10) г сушёного субстрата из отработанного гриба Pleurotus ostreatus (SMS) были добавлены к 100 мл деионизированной воды, нагреты при 70 °C и перемешивались 2 часа26 часов. Затем смесь охлаждалась до комнатной температуры, фильтровалась, и 30 мл фильтрата добавляли в раствор, содержащий 2,5 г медного ацетата и 2 г цинкового ацетата в 30 мл дистиллированной воды. pH этого раствора был скорректирован до 8 с помощью гидроксида натрия (NaOH), нагреван до 80 °C в течение 2 часа, центрифугирован после реакции, сушился ночью в духовке и кальцинировал при 650 °C в течение 2ч 26. Синтезированные NP были охарактеризованы и подтверждены как зелёные гибридные NP CuO/ZnO.

Отбор проб и анализ почвы
Образцы почвы были собраны на Университетской ферме в Молелвейн и на испытательном полигоне кампуса на глубинах 0–15 см и 15–30 см. Впоследствии их классифицировали и исследовали по физическим и химическим свойствам, как это было описанов 27 статьях.

Экспериментальная конструкция
В исследовании использовался факториальный эксперимент, организованный в рандомизированном полном блочном дизайне (RCBD) с тремя репликами. Для оценки эффективности гибридных NP CuO-ZnO с зелёным синтезом в различных сценариях загрязнения были установлены два независимых режима воздействия на отдельных участках: Участок 1 (кампус Северо-Западного университета) представлял собой экзогенную модель загрязнения, где почва была спайкирована экстракциейAFB 1 со скоростью 160 ppb/kg для оценки возможностей NPs прямой адсорбции и экранирования от транслокации. Участок 2 (исследовательская ферма Молелвейн): представлял биологическую модель инфекции, в которой почву инокуляли спорами A. flavus в концентрации 160 спор/кг для изучения противогрибкового воздействия NPs на производство de novo микотоксинов и последующее поглощение растениями. Порошкообразные NP взвешивались и равномерно смешивались с 1 кг почвы в пластиковом пакете для посадки после инокуляции (спорыAFB 1 или A. flavus ). Каждое лечение проводилось отдельно, а руки дезинфицировали между процедурами. Затем в каждый горшок изначально сажали четыре семена кукурузы (верхний диаметр 9 см, нижний диаметр 6,5 см). Чтобы сохранить три здоровых саженца в горшке, их обрезали через неделю после появления. В соответствии с рекомендациями по оптимальному производству кукурузы, полученными на основе анализа почвы, почва была удобрена. Горшки были размещены на расстоянии между и внутри рядов 0,75 м × 0,3 м, всего получилось 216 горшков. Почва в горшках поливалась до 60% полевой вместимости после посева семян. Образцы почвы и растений были собраны на трёх этапах развития: V10 (развитие), R1 (цветение) и R6 (зрелость). Образцы затем доставлялись в лабораторию в холодильнике, наполненном льдом, и хранили при -20 °C для дальнейших исследований. Для хранения и глубокой заморозки оставшихся образцов растений на концентрацииAFB 1 и других анализов использовались коричневые бумажные пакеты. Оставшиеся образцы растений для концентрацийAFB 1 и другие анализы хранились в коричневых бумажных пакетах и замораживались глубоко до анализа.

Анализ афлатоксинов кукурузы
Компоненты для развития кукурузы (корень, стебель, лист и зерно) на различных стадиях роста собирались в стерильные пластиковые пакеты, тщательно маркировались и транспортировались в лабораторию. Для сохранения целостности данных о росте и обеспечения независимых наблюдений на каждом этапе развития был внедрён протокол деструктивной выборки. Для устранения перекрёстного загрязнения между концентрациями наночастиц и типами инокуляции инструменты и перчатки очищались 70% этанолом и промывались деионизированной водой между каждой группой обработки. В ступке с пестиком 10 г растительного материала и 1 г хлорида натрия (NaCl) измельчались в течение 10 минут в 25 мл 80% метанола и 20% дистиллированной воды. Для зерна кукурузы и сердечника кукурузы 25 г молотого образца и 2,5 г NaCl смешивались с 100 мл 80% метанола:20 дистиллированной воды на высокой скорости в течение 10 минут. Затем гомогенизированный экстракт фильтровали через стеклянный микрофибровый фильтр, после чего промывали 20 мл 20% Tween-2 в фосфатно-буферном физиологическом растворе (PBS). Афлатоксины извлекались из колонки иммунной аффинности после элюции со скоростью потока одной капли в секунду, а супернатант (цитоплазма) собирался в янтарный флакон. ЗатемAFB 1 и другие афлатоксины измерялись по методу жидкойхроматографии 28 , который включал дериватизацию афлатоксинов раствором офтальдиальдегида и ввод дериватизированных соединений в систему высокоэффективной жидкостной хроматографии (ВЭЖХ). Система HPLC была оснащена флуоресцентным детектором Jasco FP-920, настроенным на возбуждение 362 нм и излучение 425 нм. AFB 1 имел физиологическую структуру для обнаружения на длине волны возбуждения 362 нм. Использовалась колонна Хихрома (4,6 мм × 150 мм) с частицами 5 мкм, а реактор дериватизации представлял собой программу ячейки KOBRA с частотой 100 мкА. Разделение хроматографических пиков проводилось в колонне Хихрома, к которой была установлена предколонна аналогичной стационарной фазы. Инерцсил ODS-3 и ODS-3 V использовались соответственно в качестве защитных и аналитических патронов, а инжектор состоял из автопромплера с реодиновым клапаном. Подвижная фаза состояла из воды: метанола (65:35, в/в), бромида калия (119 мг) и 4 М азотной кислоты (350 мкл) на литр, и перекачивалась при расходе 1,0 мл/мин в изократической программе. Обнаружение афлатоксина считалось положительным для каждого пика при времени удержания, аналогичном стандарту, и на высоте, в пять раз выше базовогошума 29.

Были рассчитаны пределы обнаружения (LOD), предел количественной оценки (LOQ) и процент (%) восстановления для подтверждения аналитического подхода HPLC с использованием уравнений 1, 2 и 3 соответственно. LOD — это самая низкая концентрация афлатоксина, которую можно надёжно отличить от фоновых шумов, тогда как LOQ — самая низкая концентрация афлатоксина, которую можно количественно измерить с приемлемой точностью иточностью 30. AFB 1 и его метаболиты были извлечены путём добавления 10 мкл общего количества стандартов афлатоксина (AFB1, AFB2, AFG1 и AFG2) к отрицательным контрольным образцам кукурузы в тройном экземпляре. Образцы затем извлекались с помощью ВЭЖХ с использованием вышеупомянутых процедур.

LOD = X + 3s 1

LOQ = X + 10s 2

figure-protocol-13

Таким образом: «X» — средняя концентрация укреплённых пробелов образца, а «s» — стандартное отклонение образца.

Оценка воздействия AFB1
Средние уровни афлатоксинов в рационе кукурузы, суточное потребление кукурузы и средний вес тела (дети, взрослые, крупный рогатый скот, молочные коровы и цыплята) использовались для расчета предполагаемого дневного потребления (EDI). EDI для средних афлатоксинов рассчитывался по уравнению 2 и выражался в (нг/кг массы тела/сутки); для расчёта индекса опасности (HI) значения EDI были преобразованы в нг/кг массы тела/день (1 ppb/kg/день = 1 000 нг/кг массы тела/день) для соответствия единицам TD503231.

figure-protocol-24

Оценка и характеристика рисков
Индекс опасности (HI) рассчитывался путём деления EDI на TD50 и умножения на коэффициент безопасности 50 000. Медианная токсичная доза (TD) 50 — это необходимая доза (нг/кг/масса тела/день) для возникновения опухолей у 50% исследуемых животных, у которых не развились бы опухоли при нулевойдозе 31,32.

Анализ данных
Анализ дисперсии был проведён на собранных данных о росте и урожайности с использованием процедуры RCBD в SAS 9.4 (SAS Institute Inc., Кэри, Северная Каролина, США). Были проведены многочисленные сравнения средних значений наименьших квадратов с использованием теста Тьюки на честно значимую разницу (HSD)33.

Доступ ограничен. Войдите в систему или начните пробный период, чтобы просмотреть этот контент.

Результаты

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Концентрация афлатоксина в компонентах роста
Результаты показали, что концентрации афлатоксина в компонентах роста и в зерне кукурузы, обработанном зелёным синтезированными NPs CuO/ZnO, что указывает на наличие всех основных типов афлатоксинов (AFG2, AFG1, AFB2 и AFB1). Калибровочные кривые, используемые для расчёта концентраций афлатоксина, показали хорошую линейность между различными афлат...

Доступ ограничен. Войдите в систему или начните пробный период, чтобы просмотреть этот контент.

Обсуждение

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Успех этого протокола в снижении транслокации и накопленияAFB 1 в кукурузе зависит от нескольких критически важных этапов, обеспечивающих как биологическую эффективность, так и аналитическуюнадёжность 16,27. Результаты показывают, что 125 мг/кг зелено синтезированных гибридных NP CuO-ZnO значительно снижали концентрациюAFB 1 в обеих экспериментальных моделях, хотя и с помощью потенциально различных

Доступ ограничен. Войдите в систему или начните пробный период, чтобы просмотреть этот контент.

Раскрытие информации

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

У авторов нет конфликта интересов, которые можно было бы заявлять.

Благодарности

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Эта работа была поддержана стипендией PhD Северо-Западного университета и стипендией факультета естественных наук и сельского хозяйства.

Доступ ограничен. Войдите в систему или начните пробный период, чтобы просмотреть этот контент.

Материалы

Список материалов, использованных в этой статье
ИмяКомпанияКаталожный номерКомментарии
Медь(II) ацетат [Cu(CO2CH3)2]Sigma-Aldrich Pty, Сент-Луис, Миссури, США10,53,753Тёмно-сине-зелёный кристаллический твёрдый материал (98% чистоты)
Стеклянный микрофибровый фильтр и bbsp;Sigma-Aldrich Pty, Сент-Луис, Миссури, США1703965Боросиликатное стекло  
Система высокопроизводительной жидкостной хроматографии (HPLC)Симадзу20H2Для разделения и количественной оценки аналитов  
Этанол класса HPLCSigma-Aldrich Pty, Сент-Луис, Миссури, США34923Бесцветный растворитель высокой чистоты ( & ge; 99 %)
Метанол класса HPLCMerck KGaA, Дармштадт, Германия322415Бесцветный растворитель высокой чистоты ( & ge; 99 %)
Столбец иммунной аффинностиСимадзуKJ524Для селективной очистки целевых аналитов
Семена кукурузы PAN 5R-590RNWKН/ДМаленькие, твёрдые зерна с белым колуором
Фосфатно-буферный физиологический раствор (PBS)Merck KGaA, Дармштадт, Германия3526580Изотонический буферный раствор  
Пластиковые пакетыЭко-Агро Энтерпрайз (Pty) LtdН/ДПерфорированный
Очищенные AFB1, AFB2, AFG1, AFG2 и AF — всего на местеTrilogy Analytical Laboratory, Inc (Воссбринк Драйв, Вашингтон, США)TAS-M12DA1-10Белое до бело-белое кристаллическое твердое тело
Хлорид натрия (NaCl)Sigma-Aldrich Pty, Сент-Луис, Миссури, СШАН/ДБелое кристаллическое твердое тело
Цинковый ацетат [Zn(CH3COO2)2H2O]Химикаты VWR2331 210 2Белокристаллическое твердое вещество (99 % чистоты)

Ссылки

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,
  1. Yilmaz, S., Bag, H. Aflatoxin B1: mechanism, oxidative stress and effects on animal health. J Anim Biol Vet. 2, 1-16 (2022).
  2. Awuchi, C. G., Ondari, E. N., Ogbonna, C. U., Upadhyay, A. K., Baran, K., et al. Mycotoxins affecting animals, foods, humans, and plants: Types, occurrence, toxicities, action mechanisms, prevention, and detoxification strategies—A revisit. Foods. 10 (6), 1279 (2021).
  3. Afzal, A., Syed, S., Ahmad, R., Zeeshan, M., Nabi, G. The menace of aflatoxin: understanding the effects of contamination by Aspergillus species on crops and human health and advancements in managing these toxic metabolites. Aspergillus and Aspergillosis-Advances in Genomics, Drug Development, Diagnosis and Treatment. , (2023).
  4. Cao, W., Yu, P., Yang, K., Cao, D. Aflatoxin B1: metabolism, toxicology, and its involvement in oxidative stress and cancer development. Toxicol Mech Methods. 32 (6), 395-419 (2022).
  5. Kortei, N. K., Annan, T., Kyei-Baffour, V., Essuman, E. K., Okyere, H., et al. Exposure and risk characterizations of ochratoxins A and aflatoxins through maize (Zea mays) consumed in different agro-ecological zones of Ghana. Sci Rep. 11 (1), 23339 (2021).
  6. Adetuniji, M., Atanda, O., Ezekiel, C., Dipeolu, A., Uzochukwu, S., et al. Distribution of mycotoxins and risk assessment of maize consumers in five agro-ecological zones of Nigeria. Eur Food Res Technol. 239 (2), 287-296 (2014).
  7. Li, C., Liu, X., Wu, J., Ji, X., Xu, Q. Research progress in toxicological effects and mechanism of aflatoxin B1 toxin. PeerJ. 10, e13850 (2022).
  8. Peles, F., Sipos, P., Győri, Z., Pfliegler, W. P., Giacometti, F., et al. Adverse effects, transformation and channeling of aflatoxins into food raw materials in livestock. Front Microbiol. 10, 2861 (2019).
  9. Sarwar, A., Khan, S. A. Implementation of best practices to ensure aflatoxin controlled chilli production from post harvesting to customer in developing country. J Educ Manag Soc Sci. 1 (1), 24-32 (2020).
  10. Hell, K., Mutegi, C., Fandohan, P. Aflatoxin control and prevention strategies in maize for Sub-Saharan Africa. Julius-Kühn-Archiv. 425, 534 (2010).
  11. Cheli, F., Pinotti, L., Novacco, M., Ottoboni, M., Tretola, M., et al. Mycotoxins in wheat and mitigation measures. Wheat improvement, management and utilization. 10, 67240 (2017).
  12. Adegoke, G. O., Letuma, P. Strategies for the prevention and reduction of mycotoxins in developing countries. Mycotoxin and food safety in developing countries. , 123-136 (2013).
  13. Kebede, H., Abbas, H. K., Fisher, D. K., Bellaloui, N. Relationship between aflatoxin contamination and physiological responses of corn plants under drought and heat stress. Toxins. 4 (11), 1385-1403 (2012).
  14. Mshanga, J. P., Makule, E. E., Ngure, F. M. Physical methods for reduction of aflatoxins exposure in groundnuts in some low-income countries: A review. Curr Res Nutr Food Sci. 11 (2), 504-518 (2023).
  15. Gamedze, N. P., Mthiyane, D. M., Mavengahama, S., Singh, M., Onwudiwe, D. C. Biosynthesis of ZnO nanoparticles using the aqueous extract of Mucuna pruriens: structural characterization, and the anticancer and antioxidant activities. Chem Afr. 7 (1), 219-228 (2024).
  16. Ngwenya, S. C., Sithole, N. J., Mthiyane, D. M., Jobe, M. C., Babalola, O. O., et al. Effects of green-synthesised copper oxide–zinc oxide hybrid nanoparticles on antifungal activity and phytotoxicity of aflatoxin B1 in maize (Zea mays L.) seed germination. Agronomy. 15 (2), 313 (2025).
  17. Peng, C., Pang, R., Li, J., Wang, E. Current advances on the single-atom nanozyme and its bioapplications. Adv Mater. 36 (10), 2211724 (2024).
  18. Panhwar, S., Buledi, J. A., Mal, D., Solangi, A. R., Balouch, A., et al. Importance and analytical perspective of green synthetic strategies of copper, zinc, and titanium oxide nanoparticles and their applications in pathogens and environmental remediation. Curr Anal Chem. 17 (8), 1169-1181 (2021).
  19. Gebre, S. H., Sendeku, M. G. New frontiers in the biosynthesis of metal oxide nanoparticles and their environmental applications: an overview. SN Appl Sci. 1 (8), 928 (2019).
  20. Alavi, M., Kennedy, J. F. Recent advances of fabricated and modified Ag, Cu, CuO and ZnO nanoparticles by herbal secondary metabolites, cellulose and pectin polymers for antimicrobial applications. Cellulose. 28, 3297-3310 (2021).
  21. Krumova, E., Benkova, D., Stoyancheva, G., Dishliyska, V., Miteva-Staleva, J., et al. Exploring the mechanism underlying the antifungal activity of chitosan-based ZnO, CuO, and SiO2 nanocomposites as nanopesticides against Fusarium solani and Alternaria solani. Int J Biol Macromol. 268, 131702 (2024).
  22. Kumar, J. A., Krithiga, T., Manigandan, S., Sathish, S., Renita, A. A., et al. A focus to green synthesis of metal/metal based oxide nanoparticles: Various mechanisms and applications towards ecological approach. J Clean Prod. 324, 129198 (2021).
  23. Chouhan, D., Choudhuri, C., Mathur, P. Implication of nanotechnology for the management of seed-borne pathogens in cereal crops. Food production, diversity, and safety under climate change. , 263-272 (2024).
  24. Vega-Fernández, L., Quesada-Grosso, R., Viñas, M., Irías-Mata, A., Montes de Oca-Vásquez, G., et al. Current applications and future perspectives of nanotechnology for the preservation and enhancement of grain and seed traits. Nanomaterials for environmental and agricultural sectors. , 191-220 (2023).
  25. Soil Classification Working Group. . Soil classification: a natural and anthropogenic system for South Africa. , (2018).
  26. Ngwenya, S., Sithole, N. J., Ramachela, K., Mthiyane, D. M., Mwanza, M., et al. Eco-friendly synthesis of ZnO, CuO, and ZnO/CuO nanoparticles using extract of spent Pleurotus ostreatus substrate, and their antioxidant and anticancer activities. Discov Nano. 20 (1), 35 (2025).
  27. Ngwenya, S. C., Sithole, N. J., Mthiyane, D. M., Mwanza, M., Onwudiwe, D. C., et al. Effects of AFB1 and Aspergillus flavus spores on root rhizospheric fungal population, seedling emergence, plant growth, and yield. Agronomy. 15 (3), 523 (2025).
  28. Ekwomadu, T. I., Dada, T. A., Akinola, S. A., Nleya, N., Mwanza, M. Analysis of selected mycotoxins in maize from north-west South Africa using high performance liquid chromatography (HPLC) and other analytical techniques. Separations. 8 (9), 143 (2021).
  29. Akinola, S. A., Ateba, C. N., Mwanza, M. Behaviour of Aspergillus parasiticus in aflatoxin production as influenced by storage parameters using response surface methodology approach. Int J Food Microbiol. 357, 109369 (2021).
  30. Hepsag, F., Golge, O., Kabak, B. Quantitation of aflatoxins in pistachios and groundnuts using HPLC-FLD method. Food Control. 38, 75-81 (2014).
  31. Kortei, N. K., Agyekum, A. A., Akuamoa, F., Baffour, V. K., Alidu, H. W. Risk assessment and exposure to levels of naturally occurring aflatoxins in some packaged cereals and cereal based foods consumed in Accra, Ghana. Toxicol Rep. 6, 34-41 (2019).
  32. de Matos, C. J., Schabo, D. C., do Nascimento, Y. M., Tavares, J. F., Lima, E. O., et al. Aflatoxin M1 in Brazilian goat milk and health risk assessment. J Environ Sci Health B. 56 (4), 415-422 (2021).
  33. Abdi, H., Williams, L. J. Tukey’s honestly significant difference (HSD) test. Encycl Res Des. 3 (1), 1-5 (2010).
  34. Siwela, A. H., Nziramasanga, N. Regulatory aspects of aflatoxin control in Zimbabwe—A review. J Appl Sci South Afr. 5, 141-147 (1999).
  35. Boni, S., Beed, F., Kimanya, M., Koyano, E., Mponda, O., et al. Aflatoxin contamination in Tanzania: quantifying the problem in maize and groundnuts from rural households. World Mycotoxin J. 14 (4), 553-564 (2021).
  36. Yard, E. E., Daniel, J. H., Lewis, L. S., Rybak, M. E., Paliakov, E. M., et al. Human aflatoxin exposure in Kenya, 2007: a cross-sectional study. Food Addit Contam A. 30 (7), 1322-1331 (2013).
  37. Chanda, R., Fincham, R., Venter, P. A review of the South African food control system: challenges of fragmentation. Food Control. 21 (6), 816-824 (2010).
  38. EFSA. . Outcome of a public consultation on the draft risk assessment of aflatoxins in food. , (2020).
  39. Albersheim, P., Darvill, A., Roberts, K., Sederoff, R., Staehelin, A. . Plant cell walls. , (2010).
  40. Banfalvi, G. . Biological membranes. , (2016).
  41. Tien, H. T., Ottova-Leitmannova, A. . Membrane biophysics: as viewed from experimental bilayer lipid membranes. , (2000).

Доступ ограничен. Войдите в систему или начните пробный период, чтобы просмотреть этот контент.

Перепечатки и разрешения

Запросить разрешение на повторное использование текста или иллюстраций этой статьи JoVE

Запросить разрешение

Теги

B1Aspergillus flavus

Похожие статьи