Набор предметов
Пациенты с острой травмой спинного мозга (n = 300), проходившие лечение в больнице с января 2023 по май 2025 года, были отобраны и классифицированы в группу с полной травмой спинного мозга (КСК) (степень A, n = 98), группу с неполной травмой спинного мозга (ISCI) (степени B, C и D; n = 95) и группу нормальной неврологической функции (NNF) (степень E, n = 107) согласно шкале нарушения травм позвоночника (классификация AIS). У пациентов группы NNF радиологические признаки ТСМ, такие как отёк, контузия или компрессия, были подтверждены магнитно-резонансной томографией (МРТ), но сенсорных или моторных дефицитов не выявлено. Ещё 90 здоровых участников, набранных в тот же период, были отобраны в контрольную группу. Критерии включения: (1) диагноз ТСМ, подтверждённый с помощью визуализации (МРТ или КТ), в соответствии с установленными клиническими рекомендациями поведению 16; (2) травма, полученная в течение 24 часов до госпитализации; и (3) взрослых участников с полными клиническими данными. Критерии исключения были: (1) история предыдущих операций, связанных с переломом или ТСМ; (2) тяжёлая ишемическая болезнь сердца или значительная болезнь сердечно-легочных; (3) острая тяжёлая черепно-мозговая травма; и (4) злокачественные опухоли, сердечно-сосудистые и цереброваскулярные заболевания или иммунные заболевания. Одобрение этого исследования было получено Этическим комитетом Четвёртой народной больницы Шэньчжэня, а также информированное согласие участников. Процедуры, использованные в этом исследовании, соответствовали положениям Хельсинкской декларации.
Коллекция образцов
Венозные образцы крови (5 мл) были собраны у участников при поступлении с помощью сывороточных сепараторных трубок в течение 24 часов после травмы. Кровь давали свертываться при комнатной температуре в течение 30 минут, после чего центрифугировали при 3 000 × г в течение 10 минут при 4 °C. Супернатантная сыворотка была аккуратно отделена, алицитирована в микропробирки без РНазы и хранена при -80 °C до дальнейшего анализа.
Культивирование клеток и индукция LPS
Клетки феохромоцитомы крыс (PC-12) и мышиные микроглиальные клетки (BV-2) были культивированы в модифицированной среде Eagle от Dulbecco с добавлением 10% плодовой бычий сыворотки при 37 °C. Для установления моделей воспалительных повреждений in vitro клетки PC-12 и BV-2 подвергались воздействию липополисахарида (LPS) в концентрациях 0, 1, 5 и 10 мкг/мл в течение 12ч. 17. Каждая концентрация была протестирована в трёх независимых биологических репликах.
RT-qPCR
Общая РНК была выделена из образцов с помощью протокола экстракции фенол-хлороформа, после чего следовала осаждение изопропанолом. Чистота РНК оценивалась с помощью спектрофотометрии, а для дальнейшего анализа использовались образцы с соотношениемA 260/280 нм в диапазоне 1,8–2,1. РНК была обратно транскрипирована в кДНК согласно протоколу комплекта обратной транскрипции, а полученная кДНК использовалась в качестве шаблона для реакций RT-qPCR с помощью премикса SYBR Green на ПЦР-инструменте. Глицералдегид-3-фосфатдегидрогеназа (GAPDH) использовалась в качестве эталонного гена для мРНК CASC11 и SPP1 , а малая ядерная РНК (U6) — в качестве эталонного гена для miR-130b-5p. Для образцов сыворотки синтетический cel-miR-39 был добавлен в сыворотку перед экстракцией РНК для контроля вариаций в восстановлении РНК. Капсюли были следующие: CASC11 вперёд 5'-ACCCTATGGAGAACCGAGAC-3' и реверс 5'-GAGGACCAACTCAGTAGGAAAT-3'; miR-130b-5p вперёд 5'-ATCCATGGTTGAGCTTCCCG-3' и обратно 5'-TAGTGCAACCTCGTCAGAGC-3'; и SPP1 мРНК вперёд 5'-GTTAAACAGGCTGATTGG-3' и обратно 5'-CATGGTCATCATCATCTTCA-3'. Экспрессия была рассчитана методом 2-ΔΔCt . Каждая реакция RT-qPCR проводилась в трёхкратных технических репликах с тремя биологическими репликатами.
Трансфекция
Заглушающие CASC11 (si-CASC11), мимик/ингибитор miR-130b-5p, плазмида сверхэкспрессии SPP1 (ov-SPP1) и их соответствующие отрицательные контроли (NC) были синтезированы и трансфектированы в клетки PC-12 и BV-2 с использованием трансфекционного реагента. Эффективность трансфекции оценивалась через 48 часов после трансфекции в трёхэкзальных биологических репликах.
Анализ на пролиферацию и апоптоз
Для анализа жизнеспособности клеток клетки посеяли в пластины с 96 лунками по 5 × 103 клеток на каждую скважину и культивировали в течение 24 часов для возможности прикрепления. После этой инкубации в каждую скважину подавали по 10 мкл реагента CCK-8, после чего следовала инкубация в течение 2 часов при 37 °C. Оптическая плотность затем фиксировалась на 450 нм с помощью считывателя микропластин. Для обнаружения апоптоза клетки отделяли трипсином, дважды промывали фосфатно-буферным физиологическим раствором (PBS) и подвешивали в связывающем буфере до конечной концентрации 1 ×10 6 клеток на колодцу. Затем 100 мкл суспензии помещали в проточную цитометрическую трубку на 5 мл, после чего добавляли 5 мкл раствора окрашивания Annexin V-FITC и 5 мкл пропидиев-йодида (PI). Образцы аккуратно смешивали и держали 15 минут при комнатной температуре, защищённую от света. Связывающий буфер затем добавлялся к окончательному дополнительному объёму в 400 мкл на пробирку, а апоптотические клетки были количественно измерены с помощью потоковой цитометрии. Все условия были проанализированы с использованием трёх технических репликат в трёх независимых биологических экспериментах.
Анализ активности двойной люциферазы
Последующие цели CASC11 и miR-130b-5p были предсказаны с помощью биоинформатических сайтов (lncRNASNP2 и TargetScan). Фрагменты, содержащие комплементарные последовательности дикого типа (wt) или мутантные (mut) комплементарные последовательности, были синтезированы и клонированы в вектор двойной люциферазы репортера для построения плазмид-репортеров wt и mut. Клетки PC-12 были засеяны и котрансфектированы с мимиком/ингибитором miR-130b-5p и сконструированными плазмидами wt/mut с использованием липидного трансфекционного реагента. Через 48 часов активность люциферазы была количественно измерена для оценки взаимодействия. Каждая группа состояла из трёх технических и трёх биологических репликат.
Анализ иммунопреципитации РНК (RIP)
RIP проводился с использованием набора для иммунопреципитации белков, связывающего РНК. Клетки лизировали с помощью буфера лизиса и инкубировали с антителами против Ago2 или нормальным антителом к IgG. РНК-белковые комплексы обогащались с помощью магнитных шариков. После промывки связанные белки удалялись, а иммунопреципитанная РНК выделялась. Уровни обогащения CASC11 и miR-130b-5p были количественно оценены с помощью RT-qPCR. Каждая группа состояла из трёх технических и трёх биологических репликат.
Вестерн блот
Белковые лизаты были получены из клеток PC-12 и BV-2 с использованием буфера лизиса клеток, а общее содержание белка измерялось с помощью анализа BCA. Для каждого образца 30 мкг белка загружалось на 12% гели SDS-PAGE и передавалось на мембраны PVDF после электрофоретического разделения. Мембраны блокировались на 2 часа при комнатной температуре в 5% обезжиренном молоке, разбавленном в TBST, а затем инкубировали ночью при 4 °C с первичными антителами против Bcl-2, Bax, расщепленной каспазы-3 и GAPDH при разбавлении 1:1 000. После промывки мембраны инкубировали вторичными антителами, конъюгированными с HRP, в течение 1 часа при комнатной температуре. Белковые сигналы анализировались с помощью программного обеспечения для анализа изображений, а плотность полос использовалась для оценки экспрессии белков, связанных с апоптозом. Эксперименты Western Blot включали три биологических репликатов, по три технических реплики для каждой группы.
ЭЛИЗА
Концентрации воспалительных цитокинов TNF-α, IL-1β и IL-6 в сыворотке пациента, а также в супернатантах клеток PC-12 и BV-2 были количественно измерены с помощью наборов ELISA согласно инструкциям производителя. Образцы инкубировали в заранее покрытых колодцах, а для дальнейшей инкубации добавлялись антитела к обнаружению. Были добавлены и инкубированы конъюгаты ферментов. После промывки добавлялись субстраты для проявления цвета, и реакции прекращались. Поглощение измерялось на 450 нм с помощью считывателя микропластин и преобразовано в концентрации воспалительных факторов на основе предоставленной стандартной кривой. Каждый анализ на ИФА проводился в трёхкратных технических репликах в трёх независимых биологических репликах.
Статистический анализ
Непрерывные переменные были представлены как средние ± стандартного отклонения (SD), а категориальные переменные — как числа и проценты (n, %). Сравнения между двумя группами проводились с помощью t-теста Студента. Для сравнений с участием более двух групп применялся односторонний анализ дисперсии (ANOVA), за которым следовал пост-хок тест Тьюки. Способность CASC11 различать клинические группы была оценена с помощью анализа операционных характеристик приемника (ROC). Связи между двумя переменными были изучены с помощью корреляционного анализа Пирсона. Для клеточных экспериментов каждая группа содержала три независимых биологических репликатов, и каждое измерение повторялось в трёх технических репликациях. Статистическая значимость была определена как P < 0,05.